CS252925B1 - Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu - Google Patents

Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu Download PDF

Info

Publication number
CS252925B1
CS252925B1 CS861925A CS192586A CS252925B1 CS 252925 B1 CS252925 B1 CS 252925B1 CS 861925 A CS861925 A CS 861925A CS 192586 A CS192586 A CS 192586A CS 252925 B1 CS252925 B1 CS 252925B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
yeast
culture medium
cells
autolysate
weight
Prior art date
Application number
CS861925A
Other languages
English (en)
Other versions
CS192586A1 (en
Inventor
Ivan Psenicka
Viktor Malanik
Miroslav Marek
Original Assignee
Ivan Psenicka
Viktor Malanik
Miroslav Marek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ivan Psenicka, Viktor Malanik, Miroslav Marek filed Critical Ivan Psenicka
Priority to CS861925A priority Critical patent/CS252925B1/cs
Publication of CS192586A1 publication Critical patent/CS192586A1/cs
Publication of CS252925B1 publication Critical patent/CS252925B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu, v kultivačním mediu obsahujícím kvasničný, autolyzát spočívá v tom, že kultivační medium obsahuje kvasničný autolyzát připravený bezprostředně před kultivací mikrobiálních buněk rodu Escherichia nebo stabilizovaný sterilizací při max. 120 °C po dobu max. 1 hodiny v koncentraci 0,2 až 1 % hmot. sušiny s výhodou 0,5 % hmot. sušiny ve formě supernatantu nebo filtrátu.

Description

- 1 - 252 925
Vynález se týká způsobu kultivace mikroorganismu rodu Escherichia, jež zaručuje co nejvyšší L-aspartat : amoniak lyasovouaktivitu tohoto mikroorganismu. Nakultivováné buňky je možno po-užít přímo k průmyslové biotransformaci fumaranu amonného naL-aspartan amonný nebo s výhodou k přípravě heterogenního bio-katalyzátoru pro uvedenou biotransformaci prováděnou kontinuál-ním kolonovým způsobem.
Pro ekonomickou výrobu kyseliny L-asparagové je důležitoupodmínkou použití bakteriálního kmene, obsahujícího co nejvyššíhladinu enzymu aspartasy /L-aspartat :amoniak lyasy; E.G.4.3.1.1./. Tento požadavek je možno splnit jednak použitím vhod-ného kmenového materiálu /tzv. vysokoprodukčních mutant/ a jed-nak způsobem kultivace těchto mikrobiálních buněk.
Postupné zvyšování specifické enzymové aktivity způsobenépoužitím vysokoprodukčních mutant kmene Escherichia coli s aspartasovou aktivitou a zároveň výběrem optimálních kultivačníchpodmínek demonstruje následující příklad. V roce 1974 byla spe-cifická enzymová aktivita mikrobiálních buněk používaných k prů-myslové výrobě, kyseliny L-asparagové v Japonsku okolo 0,5 ukatna gram vlhkých buněk /Chibata I., Tosa T., Sáto T.: AppliedMicrobiology 27, 878 /1974//» zatímco v roce 1979 byly používá-ny mikrobiální buňky se specifickou enzymovou aktivitou přesa-hující 28 ukat na gram vlhkých buněk /Sáto T.', Nishida Y., TosaT., Chibata I.: Biochim. Biophys. Acta 57O> 179 /1979//. Přilogickém pokračování tohoto vývoje je možno očekávat, že tytohodnoty aktivit již jsou a nadále budou překonávány. Prudký vzrůst enzymové aktivity používaných mikrobiálních buněk^ dosa-% hovaný jednak výběrem vhodného kmenového materiálu, jednak opti-malizací kultivačních podmínek, se pozitivně odráží i v nezaned- 232 925 - 2 - batelném prodloužení poločasu enzymové aktivity vytvořených he-terogenních biokatalyzátorů, v důsledku čehož jsou i značné eko-nomické úspory při kontinuální kolonové výrobě kyseliny L-aspa-ragové.
Vzhledem k tomu, že příprava heterogenních biokatalyzáto-rů vylučuje možnost použití mikrobiálních buněk kultivovanýchza přítomnosti pekařských kvasnic či jiných kvasinek, je nutnopoužívat kvasničných autolyzátů. Nevýhodou komerčně vyráběnýchkvasničných autolyzátů je kromě vyšších nákladů na kultivaci téžskutečnost, že je při jejich použití získána biomasa buněks nižší aspartasovou aktivitou ve srovnání s buňkami kultivova-nými za přítomnosti kvasničné suspense.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob kultivace mikroorganis-mu rodu Escherichia v médiu obsahujícím autolyzát připravenýautolýz.ou kvasinek při pH 5 až 7,5 a teplotě 45 až 50 °G během4fi až 72 hodin za nepřístupu vzduchu s následnou centrifugacína separátoru a stanovením sušiny v supernatantu, který spočívápodle vynálezu v tom, že se použije supernatant nebo filtráts 0,2 až 1 % hmot. sušiny připraveným bezprostředně před kulti-vací mikrobiálních buněk nebo stabilizovaným sterilizací přimax. 120 °C po dobu max. 1 hodiny. Buňky rodu Escherichia sekultivují v kultivačním mediu o složení: pepton 0,1 až 2 % hmot.,hovězí extrakt 0,25 až 3 % obj., kvasničný autolyzát připravenýpodle vynálezu 0,2 až 1 % hmot. ve formě příslušného množstvísupernatantu. před zaočkováním se k vysterilizovánému roztokupřidá 7,15 % obj. sterilního roztoku fumaranu amonného o kon-centraci 1 mol/litr a pH 7,0. Výhodou způsobu kultivace podle vynálezu je náhrada komerč-ně vyráběných kvasničných autolyzátů z hlediska kultivace kva-litnějším a přitom levnějším, snadno připravítelným autolyzátemvlastní provenience při současném snížení jeho optimální kon-centrace v kultivačním médiu z 1 % hmot. na 0,5 % hmot. Z eko-nomického hlediska je atraktivní též úspora energie, kdy je po-užíván přímo roztok autolyzátů po separaci /supernatant/ beznutnosti následného sušení či lyofilisace. Získané buňky mikro-
J 232 923 organismu rodu Escherichia připravené způsobem podle vynálezupřitom vykazují přibližně trojnásobnou aspartasovou aktivituve srovnání s buňkami připravenými dosud používanou kultivacíza přítomnosti komerčně vyráběných kvasničných autolyzátů přizachování stejného nebo i vyššího nárůstu biomasy.
Vyšší ekonomika celého procesu výroby kyseliny L-asparago-vé se promítá nejen z hlediska nižších nákladů na kultivačnímedium, ale výrazně též z hlediska využití z nakultivovanýchbuněk s vysokou aspartasovou aktivitou připraveného biokataly-zátoru, který má při shodném obsahu buněk 2 až 5krát delší ope-rační poločas. V dalším je vynález blíže objasněn v příkladech provedení,aniž by se jimi omezoval. Příklad 1
Jeden hmot. díl pekařských kvasnic byl suspendován v při-bližně pětinásobném množství vody, pH suspenze bylo upravenona hodnotu 6,5 a směs byla ponechána za nepřístupu vzduchu přiteplotě 50 °C po dobu 48 h. poton byla suspenze odstředěna naseparátoru a potřebné množství supernatantu /po stanovení suši-ny/ bylo použito pro přípravu kultivačního média.
Mikroorganismus Escherichia alcalescens byl zaočkován kličkou ze šikmého agaru do 500 ml varné baňky s plochým dnem obsa-hující 75 ml média následujícího složení; 0,5 % hmot. kvasnič-ného autolyzátu /vztaženo na sušinu^ připraveného výše popsanýmpostupem, 0,5 % hmot. peptonu, 0,75 % obj. hovězího vývaru a0,9 % hmot. fumaranu amonného. Acidita kultivačního média posterilizaci byla v rozmezí pH 5 až 8, s výhodou 6,5. Kultivaceprobíhala na rotační třepačce za intenzivního vzdušnění po do-bu 6 až 24 h, s výhodou 16 h při teplotě 25 až 40 °0, s výhodoupři 54 °C. Získané inokulum bylo použito k zaočkování vlastníchprodukčních baněk.
Varné 500 ml baňky s plochým dnem obsahující 25 až 150 ml,s výhodou 75 ml kultivačního média o složení totožném s médiempoužitým k přípravě inokula byly zaočkovány vždy 1 ml inokula.Po kultivaci za podmínek popsaných při kultivaci inokula byly

Claims (1)

  1. - 4 - 252 925 buněčné suspenze slity a stanovena průměrná specifická enzymo-vá aktivita L-aspartat : amoniak lyasy, která činila 93 ^katna gram vlhkých buněk. Příklad 2 Buňky mikroorganismu Sscherichia alcalescens byly kultivo-vány shodným postupem jako v příkladu 1 v kultivačním médiu ná-sledujícího složení: 1 % hmot. kvasničného autolyzátu /vizpříklad 1/ stabilizovaného sterilizací při 120 °G po dobu 1 h, 2 % hmot,, peptonu, 0,25 % obj. hovězího vývaru a 1 % hmot. fu- maranu amonného. Získané buňky vykazovaly aspartasovou aktivi- ·· tu 78yukat na gram vlhké biomasy. Příklad 5 Kultivací mikroorganismu Escherichia coli v kultivačnímmédiu o složení 0,2 % hmot. kvasničného autolyzátu /viz příklad1/, 0,1 % hmot. peptonu, 5 % obj. hovězího extraktu a 0,8 %fumaranu amonného za shodných podmínek jako v příkladu 1 bylapřipravena suspenze mikrobiálních buněk Escherichia coli o as-partasové aktivitě 12 ukat na 1 gram vlhké biomasy. PŘEDMĚT VYNÁLEZU Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazu-jících L-aspartat : amoniak lyasovou aktivitu, za intenzivníhovzdušnění, v me'diu obsahujícím kvasničný autolyzát připravenýautolýzou kvasinek při pH 5 až 7,5, vyznačující se tím, že kul-tivační médium obsahuje kvasničný autolyzát připravený bez-prostředně před kultivací mikrobiálních buněk rodu Escherichianebo stabilizovaný sterilizací při max. 120 °C po dobu max. 1 hodiny v koncentraci 0,2 až 1 % hmot. sušiny, s výhodou 0,5 %hmot. sušiny ve formě supernatantu nebo filtrátu.
CS861925A 1986-03-19 1986-03-19 Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu CS252925B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS861925A CS252925B1 (cs) 1986-03-19 1986-03-19 Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS861925A CS252925B1 (cs) 1986-03-19 1986-03-19 Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS192586A1 CS192586A1 (en) 1987-02-12
CS252925B1 true CS252925B1 (cs) 1987-10-15

Family

ID=5354859

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS861925A CS252925B1 (cs) 1986-03-19 1986-03-19 Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS252925B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS192586A1 (en) 1987-02-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1168999A (en) Method for preparing 2,5-diketo-d-gluconic acid
US4248966A (en) Synthesis of isopenicillin derivatives in the absence of living cells
US4774179A (en) Process for preparing a 7-aminocephalosporanic acid compound
Tsugawa et al. Production of l-Glutamic Acid from dl-Hydantoin-5-propionic Acid by Microoganisms: Part I. Screening of l-Glutamic Acid-Producing Microorganisms and Some Optimal Conditions for Production of l-Glutamic Acid
JPH07289284A (ja) 光学活性4−ヒドロキシ−2−ケトグルタル酸の製造法
US5093255A (en) Acid urease and production thereof
US4652527A (en) Process for culturing methylophilus methylotrophus
US4492756A (en) Microorganisms of the genus Hyphomicrobium and process for degrading compounds wich contain methyl groups in aqueous solutions
US3901762A (en) Process for production of a fermentation product
US4418146A (en) Preparation of D-N-carbamyl-α-aminoacids and micro-organisms for carrying out this preparation
US4006057A (en) Method of producing L-cysteine and L-cystine
US4745059A (en) Process for the preparation of L-phenylalanine
DE69738080T2 (de) Biokatalysatoren mit amin-acylase aktivität
US4610964A (en) Novel microorganism and its use in a process for the preparation of alpha amylase
RU2340667C2 (ru) СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ШТАММА Rhodococcus rhodochrous МЗЗ, ПРОДУЦИРУЮЩЕГО НИТРИЛГИДРАТАЗУ
CS252925B1 (cs) Způsob kultivace mikroorganismů rodu Escherichia, vykazujících L-aspartats amoniak lyasovou aktivitu
US4357425A (en) Process for producing L-amino acid oxidase
JPH0646941B2 (ja) 微生物の培養法
KR0146493B1 (ko) 발효법에 의한 l-알라닌의 제조 방법
US5356805A (en) Gamma-polyglutamate hydrolase
JP3006907B2 (ja) 発酵法によるl−アラニンの製造法
US3720584A (en) Process for the production of monohydroxy carboxylic acids
KR910004371B1 (ko) 미생물에 의한 세팔로스포린c의 제조방법
Garza et al. Optimization of aspartate ammonia lyase production by Bacillus cereus
SU644833A1 (ru) Штамм 85-продуцент -аспарагиновой кислоты