CS241812B1 - Způsob izolace proteolytických enzymů - Google Patents
Způsob izolace proteolytických enzymů Download PDFInfo
- Publication number
- CS241812B1 CS241812B1 CS846362A CS636284A CS241812B1 CS 241812 B1 CS241812 B1 CS 241812B1 CS 846362 A CS846362 A CS 846362A CS 636284 A CS636284 A CS 636284A CS 241812 B1 CS241812 B1 CS 241812B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- activity
- trypsin
- solution
- elution
- mol
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Izolace podle vynálezu se provádí adsorpcí iproteas na částice čaje. Eluce .proteas se provádí roztoky anorganických solí, např. sírany a chloridy sodnými, draselnými nebo amonnými nebo změnou dH elučního roztoku.
Description
241812
Vynález; se 'týká 'způsobu izolace proteoly-tic-kých enzymů.
Proteoilytieké emzyiny je možno- ze směsí(najpř. .hrubé -extrakty živočišnýidh tkání aro-stlilnných pleti-v, živná média 'po kultivaciprodukčních mikroorganismů apo-d.) izolo-vat celou řadou metod, mezi nimiž význam-né místo zaujímají metody chromatografic-ké.
Kromě lo-nexové -a gelové chromatografiese stále více používá chromatografie aflnit-ní, která využívá specifických reverzibilnííchinterakcí mezi llgandem, který bývá imobi-lizován na vhodném inertním nerozpustnémnosiči, a izolovanou pro-teasou (Lowe, C. R.,Dean, P. D. G.: Afi-nitiní chroimato-grafie,SNTL Praha, 1979, str. 154; Vesa, V. S.:Prikll. Biochim. Mikrobiol. 16, 629 /1980/;Glemiža, A. A.: Prik.1, Biochim. Mikrobiol.18, 792 /19--82/].
Jako typické příklady je možno uvést izo-laci pepsinu na sloupci polylysin-Sepharosy4B (Nevaldine, B., Keisselil, B.: Biochim. Bio-phys. A-cta 250, 207 /19-71/ j, izolaci p-ankrea-tického trypsitau na evomukoid-Spheronu(Turková, J., Seifertová, A.: J. Ohromátogr.14,8, 293 /1978/), nebo izolaci 'proteas -z listůovsa na hemoglobiin-Seipharose (Drivdahil,R. H., Thimamn, K.: Plant. Physicl. 59, 1-059/1977/).
Typické afini-tní s-orbenty pro- izolaci pro-teas jsou připravovány imobilizací vhodnýchligandů na nerozpustné nosiče. Přitom jenutno často1 použit -několikastupňový procespro aktivaci nosiče, jsou v-yžadovány spe-ciální chemikálie apod.
Způsob -izolace proteoilyticlkýeh enzymů zk-omiplexnxích směsí podíle vynálezu spočíváv tom, že se ‘proteasy obsažené v roztokuadsorbují na částice čaje. Jejich eiluoe seprovádí roztoky anorganických solí, s výjim-kou solí ovlivňujících enzymovou aktivitu,s výhodou sírany a chloridy sodnými, dra-selnými a amonnými, nebo je možno eluciprovést změnou pH eluičního roztoku. Výhodou tohoto způsobu j,e použití velmidostupné suroviny (a to i ve formě odpadu,tj. po jejím primárním použití k přípravěnápoje), a rovněž to, že čaj je možno proizolaci proteas připravit velmi jednoduchýmzpůsobem.
Vynález je dokumentován příklady použi-tí. Příprava sorbentu Čaj (běžné druhy čaje získané z obchod-ní sítě) byli opakovaně povařein ve vodě,dokud se uvolňovaly hnědě zbarvené .látky,Čaj, který po intenzívním povaření neuvol-ňova’1 tyto barevné látky, byl převeden dokolony. Kolony byly dále promyty vodou,roztokem chloridu sodného nebo síranu a-monného (1 mol. I-1] a opět vodou, dokudabsorbantce vodných a solných promyvů při28-0 mm a tloušťce vrstvy 1 cm nebyla men-ší než 0,01. Příklad 1
Na kolonu s -částicemi čaje o rozměrech110 X 12 mm bylo aplikováno 10 ml mode-lového roztoku obsahujícího 10 mig trypsinua 100 mg enzymového hydrolyzátu kasetou.Baiast-ní bílkoviny byly z kolony vymyty vo-dou. Adsorbovaný trypsin byl z kolony eluo-ván zvýšením iontové s-íly (prostředí (elucíroztokem chloridu sodného, 1 mol.I-1).
Obsah bílkovin byl stanoven Lowryho me-todou (Lo-wiry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr,A. L., Randall, R. J.: Bio.1. Chem. 193, 2615/1951/j a aktivita proteasy byla stanovenaazokaseinovou metodou (Šafařík, I.: J. Chro-matogr. 261, 138 /1983/). Z celkově aplikované pr-oteolytické akti-vity se s balastními bílkovinami při elucivodou vymylo 17 % aktivity, při elu-ci roz-tokem chloridu sodnéih-o se v prvých 50 mlroztoku -vymylo 65 % aktivity a v celkovémobjemu 150 ml se roztokem NaCl vymylo81 % -z vnesené aktivity. Specifická aktivitatrypsinu se po chiromatografii zvýšila 18ikrát. Příklad 2
Za analogických podmínek jako v příkla-du 1 byla provedena chromatografie 10 mgtrypsinu pro bakteriologii (cca 7 let starýpreparát), rozpuštěného v 10 mil vody. Zcelkově aplikované proteoly-ti-cké aktivity seš balastními bílkovinami při eluici vodouvymylo 12 % aktivity, při eluci roztokemchloridu sodného (1 mol. I-1) se v -celko-vém -objemu 150 ml vymylo 85 %. Specific-ká aktivita trypsinu se po -chiromatografiizvýšila 2,2,krát. Příklad 3
Za analogických podmínek jako v příkla-du 1 (rozměr sloupce 200 X 12 mm) bylaprovedena izollace proteasy produkované doživného média kmenem Bacillus isjp., kterýbyl izolován z půdy. Po aplikaci 10 ml od-středěného kultivačního média byly b-alast-ní bílkoviny vymyty vodou a adsorbovanéproteasy roztokem síranu amonného (1 mol..I-1). Z -celkově aplikované proteoilytieké akti-vity se s balastními bílkovinami při etocfvodou vymylo 15 % aktivity, při eluci roz-tokem' síranu amonného se v> -celkovém ob-jemu 150 ml vymylo 77 % aktivity. Speci-fická aktivita piroteasy se po chromatogra-fii zvýšila eOtorát. P ř i fc 1 a d 4
Na sloupci čaje o rozměrech 20-0 X 12immbyla provedena -chromatografie kyselého vy-čeřeného hovězího p-ankreaticlkého extrak-tu. Extrakt by.l předem aplikací na kolonu24 hod dialyzován proti tekoucí vodě a po-
Claims (1)
- 241312 té necháln 24 hod při laboratorní teplotě,aby byla umožněna konverze trypsinogenua chymotrypsinogenu na aktivní proteasy. Bylo aplikováno 6 m'l roztolkn, z celkoivěaplikované 'piroteolytické aktivity se s ba-lastními bílkoviínami při eluci vodou vymy-lo 10 % aktivity, při elu-ci roztokem NaC,l(1 moil.il-1) se v objemu 140 ml vymylo 02procent aktivity. Specifická aktivita proteasse po cihromatografii zvýšila 4krát. Příklad 5 Za analogických podmínek jako v příkla-du 1 byla provedena cihromatografie 400 mgtrypsinu v 50 mil vody pro určení kapacity pRedm Et Způsob izolace proteolytických enzymů,vyznačující se tím, že se proteasy obsaženév roztoku adsorbují na částice čaje, jejicheluce se provádí roztoky anorganických so-lí s výjimkou solí, které ovlivňují enzymo- sorbentu. Po eluci nenavázaného- trypsinua balastnícb bílkovin vodou byil adsorbova-ný trypsin eluován roztokem chloridu sod-ného (1 mol. I-1). Kapacita soťbentu je při-bližně 2 míg čistého trypsinu na 1 ml sor-bentu. Příklad 6 Za analogických podmínek jako v přípa-du 2, byly provedeny chroimatografie tryp-sinu. K eluci aktivní proteasy bylo rovněžmožno použít roztok chloridu draselného(1 mol.il-1) a roztok kyseliny chlorovodí-kové [cca 0,01 mol. I-1). vou aktivitu, s výhodou sírany a chloridysodnými, draselnými a amonnými nebo jemožno jejich elu-ci provést změn-ou pH eluč-ního roztoku.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS846362A CS241812B1 (cs) | 1984-08-22 | 1984-08-22 | Způsob izolace proteolytických enzymů |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS846362A CS241812B1 (cs) | 1984-08-22 | 1984-08-22 | Způsob izolace proteolytických enzymů |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS636284A1 CS636284A1 (en) | 1985-08-15 |
| CS241812B1 true CS241812B1 (cs) | 1986-04-17 |
Family
ID=5410471
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS846362A CS241812B1 (cs) | 1984-08-22 | 1984-08-22 | Způsob izolace proteolytických enzymů |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS241812B1 (cs) |
-
1984
- 1984-08-22 CS CS846362A patent/CS241812B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS636284A1 (en) | 1985-08-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Clonis et al. | Novel cationic triazine dyes for protein purification | |
| US3649456A (en) | Separation of polypeptide substances with macroreticular resins | |
| BG95362A (bg) | Химопапаин и метод за пречистването му | |
| US5087369A (en) | Fluidized bed separation and recovery of proteins from fluids in a rotary column | |
| Pangburn et al. | Affinity chromatography of thermolysin and of neutral proteases from B. subtilis | |
| Taylor | A comparison of various commercially-available liquid chromatographic supports for immobilization of enzymes and immunoglobulins | |
| Matano et al. | Cellulose promotes extracellular assembly of Clostridium cellulovorans cellulosomes | |
| US4252902A (en) | Process for purification of crude kallikrein | |
| KR960705921A (ko) | 사람 활성화 단백질 C제제 및 이의 제조 방법(Human activated protein C preparation and process for producing the same) | |
| O'Carra et al. | [77] Lactate dehydrogenase: Specific ligand approach | |
| CS241812B1 (cs) | Způsob izolace proteolytických enzymů | |
| Pacaud | Purification of protease II from Escherichia coli by affinity chromatography and separation of two enzyme species from cells harvested at late log phase | |
| Makriyannis et al. | Design and study of peptide‐ligand affinity chromatography adsorbents: Application to the case of trypsin purification from bovine pancreas | |
| Kamra et al. | Crosslinked concanavalin AO-(diethylaminoethyl)-cellulose—an affinity medium for concanavalin A-interacting glycoproteins | |
| SU644796A1 (ru) | Способ очистки протеолитических ферментов | |
| Herion et al. | Purification of urokinase by monoclonal antibody affinity chromatography | |
| JPH0223158B2 (cs) | ||
| Ishii et al. | [64] Affinity methods using argininal derivatives | |
| CS243322B1 (cs) | Způsob izolace proteolytických enzymů | |
| US4318990A (en) | Separation of proteases from fluids | |
| RU2008353C1 (ru) | Способ получения препарата коллагеназы | |
| CS249200B1 (cs) | Způsob izolace proteolytických enzymů | |
| US4030977A (en) | Method for purification of physiologically active substance using enzyme-enzyme inhibitor system | |
| Šafařík | Rapid isolation of bacterial proteinases by column chromatography on sawdust | |
| SU942427A1 (ru) | Способ очистки протеолитических ферментов |