CS241812B1 - Způsob izolace proteolytických enzymů - Google Patents

Způsob izolace proteolytických enzymů Download PDF

Info

Publication number
CS241812B1
CS241812B1 CS846362A CS636284A CS241812B1 CS 241812 B1 CS241812 B1 CS 241812B1 CS 846362 A CS846362 A CS 846362A CS 636284 A CS636284 A CS 636284A CS 241812 B1 CS241812 B1 CS 241812B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
activity
trypsin
solution
elution
mol
Prior art date
Application number
CS846362A
Other languages
English (en)
Other versions
CS636284A1 (en
Inventor
Ivo Safarik
Original Assignee
Ivo Safarik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ivo Safarik filed Critical Ivo Safarik
Priority to CS846362A priority Critical patent/CS241812B1/cs
Publication of CS636284A1 publication Critical patent/CS636284A1/cs
Publication of CS241812B1 publication Critical patent/CS241812B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Izolace podle vynálezu se provádí adsorpcí iproteas na částice čaje. Eluce .proteas se provádí roztoky anorganických solí, např. sírany a chloridy sodnými, draselnými nebo amonnými nebo změnou dH elučního roztoku.

Description

241812
Vynález; se 'týká 'způsobu izolace proteoly-tic-kých enzymů.
Proteoilytieké emzyiny je možno- ze směsí(najpř. .hrubé -extrakty živočišnýidh tkání aro-stlilnných pleti-v, živná média 'po kultivaciprodukčních mikroorganismů apo-d.) izolo-vat celou řadou metod, mezi nimiž význam-né místo zaujímají metody chromatografic-ké.
Kromě lo-nexové -a gelové chromatografiese stále více používá chromatografie aflnit-ní, která využívá specifických reverzibilnííchinterakcí mezi llgandem, který bývá imobi-lizován na vhodném inertním nerozpustnémnosiči, a izolovanou pro-teasou (Lowe, C. R.,Dean, P. D. G.: Afi-nitiní chroimato-grafie,SNTL Praha, 1979, str. 154; Vesa, V. S.:Prikll. Biochim. Mikrobiol. 16, 629 /1980/;Glemiža, A. A.: Prik.1, Biochim. Mikrobiol.18, 792 /19--82/].
Jako typické příklady je možno uvést izo-laci pepsinu na sloupci polylysin-Sepharosy4B (Nevaldine, B., Keisselil, B.: Biochim. Bio-phys. A-cta 250, 207 /19-71/ j, izolaci p-ankrea-tického trypsitau na evomukoid-Spheronu(Turková, J., Seifertová, A.: J. Ohromátogr.14,8, 293 /1978/), nebo izolaci 'proteas -z listůovsa na hemoglobiin-Seipharose (Drivdahil,R. H., Thimamn, K.: Plant. Physicl. 59, 1-059/1977/).
Typické afini-tní s-orbenty pro- izolaci pro-teas jsou připravovány imobilizací vhodnýchligandů na nerozpustné nosiče. Přitom jenutno často1 použit -několikastupňový procespro aktivaci nosiče, jsou v-yžadovány spe-ciální chemikálie apod.
Způsob -izolace proteoilyticlkýeh enzymů zk-omiplexnxích směsí podíle vynálezu spočíváv tom, že se ‘proteasy obsažené v roztokuadsorbují na částice čaje. Jejich eiluoe seprovádí roztoky anorganických solí, s výjim-kou solí ovlivňujících enzymovou aktivitu,s výhodou sírany a chloridy sodnými, dra-selnými a amonnými, nebo je možno eluciprovést změnou pH eluičního roztoku. Výhodou tohoto způsobu j,e použití velmidostupné suroviny (a to i ve formě odpadu,tj. po jejím primárním použití k přípravěnápoje), a rovněž to, že čaj je možno proizolaci proteas připravit velmi jednoduchýmzpůsobem.
Vynález je dokumentován příklady použi-tí. Příprava sorbentu Čaj (běžné druhy čaje získané z obchod-ní sítě) byli opakovaně povařein ve vodě,dokud se uvolňovaly hnědě zbarvené .látky,Čaj, který po intenzívním povaření neuvol-ňova’1 tyto barevné látky, byl převeden dokolony. Kolony byly dále promyty vodou,roztokem chloridu sodného nebo síranu a-monného (1 mol. I-1] a opět vodou, dokudabsorbantce vodných a solných promyvů při28-0 mm a tloušťce vrstvy 1 cm nebyla men-ší než 0,01. Příklad 1
Na kolonu s -částicemi čaje o rozměrech110 X 12 mm bylo aplikováno 10 ml mode-lového roztoku obsahujícího 10 mig trypsinua 100 mg enzymového hydrolyzátu kasetou.Baiast-ní bílkoviny byly z kolony vymyty vo-dou. Adsorbovaný trypsin byl z kolony eluo-ván zvýšením iontové s-íly (prostředí (elucíroztokem chloridu sodného, 1 mol.I-1).
Obsah bílkovin byl stanoven Lowryho me-todou (Lo-wiry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr,A. L., Randall, R. J.: Bio.1. Chem. 193, 2615/1951/j a aktivita proteasy byla stanovenaazokaseinovou metodou (Šafařík, I.: J. Chro-matogr. 261, 138 /1983/). Z celkově aplikované pr-oteolytické akti-vity se s balastními bílkovinami při elucivodou vymylo 17 % aktivity, při elu-ci roz-tokem chloridu sodnéih-o se v prvých 50 mlroztoku -vymylo 65 % aktivity a v celkovémobjemu 150 ml se roztokem NaCl vymylo81 % -z vnesené aktivity. Specifická aktivitatrypsinu se po chiromatografii zvýšila 18ikrát. Příklad 2
Za analogických podmínek jako v příkla-du 1 byla provedena chromatografie 10 mgtrypsinu pro bakteriologii (cca 7 let starýpreparát), rozpuštěného v 10 mil vody. Zcelkově aplikované proteoly-ti-cké aktivity seš balastními bílkovinami při eluici vodouvymylo 12 % aktivity, při eluci roztokemchloridu sodného (1 mol. I-1) se v -celko-vém -objemu 150 ml vymylo 85 %. Specific-ká aktivita trypsinu se po -chiromatografiizvýšila 2,2,krát. Příklad 3
Za analogických podmínek jako v příkla-du 1 (rozměr sloupce 200 X 12 mm) bylaprovedena izollace proteasy produkované doživného média kmenem Bacillus isjp., kterýbyl izolován z půdy. Po aplikaci 10 ml od-středěného kultivačního média byly b-alast-ní bílkoviny vymyty vodou a adsorbovanéproteasy roztokem síranu amonného (1 mol..I-1). Z -celkově aplikované proteoilytieké akti-vity se s balastními bílkovinami při etocfvodou vymylo 15 % aktivity, při eluci roz-tokem' síranu amonného se v> -celkovém ob-jemu 150 ml vymylo 77 % aktivity. Speci-fická aktivita piroteasy se po chromatogra-fii zvýšila eOtorát. P ř i fc 1 a d 4
Na sloupci čaje o rozměrech 20-0 X 12immbyla provedena -chromatografie kyselého vy-čeřeného hovězího p-ankreaticlkého extrak-tu. Extrakt by.l předem aplikací na kolonu24 hod dialyzován proti tekoucí vodě a po-

Claims (1)

  1. 241312 té necháln 24 hod při laboratorní teplotě,aby byla umožněna konverze trypsinogenua chymotrypsinogenu na aktivní proteasy. Bylo aplikováno 6 m'l roztolkn, z celkoivěaplikované 'piroteolytické aktivity se s ba-lastními bílkoviínami při eluci vodou vymy-lo 10 % aktivity, při elu-ci roztokem NaC,l(1 moil.il-1) se v objemu 140 ml vymylo 02procent aktivity. Specifická aktivita proteasse po cihromatografii zvýšila 4krát. Příklad 5 Za analogických podmínek jako v příkla-du 1 byla provedena cihromatografie 400 mgtrypsinu v 50 mil vody pro určení kapacity pRedm Et Způsob izolace proteolytických enzymů,vyznačující se tím, že se proteasy obsaženév roztoku adsorbují na částice čaje, jejicheluce se provádí roztoky anorganických so-lí s výjimkou solí, které ovlivňují enzymo- sorbentu. Po eluci nenavázaného- trypsinua balastnícb bílkovin vodou byil adsorbova-ný trypsin eluován roztokem chloridu sod-ného (1 mol. I-1). Kapacita soťbentu je při-bližně 2 míg čistého trypsinu na 1 ml sor-bentu. Příklad 6 Za analogických podmínek jako v přípa-du 2, byly provedeny chroimatografie tryp-sinu. K eluci aktivní proteasy bylo rovněžmožno použít roztok chloridu draselného(1 mol.il-1) a roztok kyseliny chlorovodí-kové [cca 0,01 mol. I-1). vou aktivitu, s výhodou sírany a chloridysodnými, draselnými a amonnými nebo jemožno jejich elu-ci provést změn-ou pH eluč-ního roztoku.
CS846362A 1984-08-22 1984-08-22 Způsob izolace proteolytických enzymů CS241812B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS846362A CS241812B1 (cs) 1984-08-22 1984-08-22 Způsob izolace proteolytických enzymů

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS846362A CS241812B1 (cs) 1984-08-22 1984-08-22 Způsob izolace proteolytických enzymů

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS636284A1 CS636284A1 (en) 1985-08-15
CS241812B1 true CS241812B1 (cs) 1986-04-17

Family

ID=5410471

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS846362A CS241812B1 (cs) 1984-08-22 1984-08-22 Způsob izolace proteolytických enzymů

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS241812B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS636284A1 (en) 1985-08-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Clonis et al. Novel cationic triazine dyes for protein purification
US3649456A (en) Separation of polypeptide substances with macroreticular resins
BG95362A (bg) Химопапаин и метод за пречистването му
US5087369A (en) Fluidized bed separation and recovery of proteins from fluids in a rotary column
Pangburn et al. Affinity chromatography of thermolysin and of neutral proteases from B. subtilis
Taylor A comparison of various commercially-available liquid chromatographic supports for immobilization of enzymes and immunoglobulins
Matano et al. Cellulose promotes extracellular assembly of Clostridium cellulovorans cellulosomes
US4252902A (en) Process for purification of crude kallikrein
KR960705921A (ko) 사람 활성화 단백질 C제제 및 이의 제조 방법(Human activated protein C preparation and process for producing the same)
O'Carra et al. [77] Lactate dehydrogenase: Specific ligand approach
CS241812B1 (cs) Způsob izolace proteolytických enzymů
Pacaud Purification of protease II from Escherichia coli by affinity chromatography and separation of two enzyme species from cells harvested at late log phase
Makriyannis et al. Design and study of peptide‐ligand affinity chromatography adsorbents: Application to the case of trypsin purification from bovine pancreas
Kamra et al. Crosslinked concanavalin AO-(diethylaminoethyl)-cellulose—an affinity medium for concanavalin A-interacting glycoproteins
SU644796A1 (ru) Способ очистки протеолитических ферментов
Herion et al. Purification of urokinase by monoclonal antibody affinity chromatography
JPH0223158B2 (cs)
Ishii et al. [64] Affinity methods using argininal derivatives
CS243322B1 (cs) Způsob izolace proteolytických enzymů
US4318990A (en) Separation of proteases from fluids
RU2008353C1 (ru) Способ получения препарата коллагеназы
CS249200B1 (cs) Způsob izolace proteolytických enzymů
US4030977A (en) Method for purification of physiologically active substance using enzyme-enzyme inhibitor system
Šafařík Rapid isolation of bacterial proteinases by column chromatography on sawdust
SU942427A1 (ru) Способ очистки протеолитических ферментов