CS214546B1 - sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu - Google Patents

sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu Download PDF

Info

Publication number
CS214546B1
CS214546B1 CS78981A CS78981A CS214546B1 CS 214546 B1 CS214546 B1 CS 214546B1 CS 78981 A CS78981 A CS 78981A CS 78981 A CS78981 A CS 78981A CS 214546 B1 CS214546 B1 CS 214546B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
activity
buffer
column
units
solution
Prior art date
Application number
CS78981A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Stefan Kucar
Original Assignee
Juraj Zemek
Ludovit Kuniak
Stefan Kucar
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Juraj Zemek, Ludovit Kuniak, Stefan Kucar filed Critical Juraj Zemek
Priority to CS78981A priority Critical patent/CS214546B1/cs
Publication of CS214546B1 publication Critical patent/CS214546B1/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Vynález sa týká sposobu izolácie enzýmov cholínesterázového typu, a to acetylcholínes-terázy /acetylcholín hydroláza, EC 3. 1. 1. 7/ a pseudocholínesterážy /acylcholín acylhydroláza, EC 3. 1. 1. 8/. Při izolácii a purifikácii enzýmov cholínesterázového typu sa obyčejné vychádza z homogenátu ckaniva / acetylcholínesteráza, pseudocholínnesteráza/ alebo krvnej plazmy za použitia etanolovej frakcionácie / pseudocholínesteráza /, Surgenor D.M., Ellias D.i.J.Amer.chem.soo.76 6049, 1954, připadne áalšej chroraatografie na géli z fosforečnanu vápenatého,resp.ionomeniči / Malstrom B.G., Levin S.,Boman H.GtiActa Chem.Scand.,10, 1077, 1956/ ,’připadne áalšej géůpvej filtrácie / Das P.K.,Liddell J.jBiochem.J.,116,875, 1970/. Rých -lou metodou purifilácie acetylcholínesterázy z hovadzích erytrocytov afinitnou gélovouchromatografiou na Sepharoze s naviazaným d-tubukarinom a elúciou s chloridom sodným po-pisujú Jung J. a Belleau B.j Mol.Pharmacol.,8, 589, 1972. Trimetyl/m-aminofenyl/ amóniumchlorid, hydrochlorid ako afimMmý ligand viazaný na Bio-Gel A popisujú Berman J.D. aYoung M. jProc.Nat.Aoad.Sci US 68, 395, 1971. Nevýhodou uvedených postupov je ich zdíha -vosí, připadne nákladná příprava afinitných ligandov a v áalšom nie jednoduché viazaniena nosič.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že biologický roztok obsahujúci enzým cholínesterá-zového typu s výhodou acetylcholínesterázu alebo pseudocholíncesterázu po úpravě pH na7,5 až 9 a iónovej sily pod 0,01 M sa nechá v prvom stupni interagovaí s výhodou na koloněs gélom sieíovaného a metylovaného polyetylénimínu o napúčavora objeme 6 až .12 ml/g a ponáslednom premytí gélu rovnakým tlmivýra roztokom sa v druhom stupni vytěsní zakotvený en-zým elúciou tlmivým roztokom o pH 8 a iónovej sile vyššej ako 0,1 M, alebo tlmivým roz-tokom o pH alebo účinkom zriedeného roztoku cholínu, připadne inej alkylamóniovej soli.
Postup možno aplikovaí tak vsádkovým spósobom, alebo výhodnejšie je pracovaí tak,žepolyetylénimínový modifikovaný ligand je naplněný v koloně, cez ktorú sa prelieva biolo-gický roztok obsahujúci cholínesterázové enzýmy. Kapacita nosiča dosahuje niekoíko tisícjednotiek enzýmu na gram suchého nosiča. Po zakotvení enzýmu sa gél na koloně premýva 60násobným objemom tlmivého roztoku o pH 8 aby sa vytěsnili nežiaduce sprievqdné látky. Povymytí sprievodných látok sa viazaný čistý enzým uvolní z nosiča na koloně elúciou s tl-mivým roztokom o pH 8 a iónovej sily vyššej ako 0,1 M alebo tlmivým roztokom o pH 6, ale-bo zriedeným roztokom cholínu, připadne inej alkylamóniovej soli. Uvedeným postupom sadosiahne takmer 50 násobná purifikácia enzýmu.
Metylováný sieíovaný polyetylénimín představuje afinitný' ligand obsahujúci opakujú-ce sa strukturálně jednotky cholínu, čo je základora vyaokej účinnosti izolácie a puri -fikácie cholínových enzýmov. Výhodou nového postupu je, že práprava afinitného liganda je jednoduchá a nevyžadu-je drahé chemikálie, umožňuje pracovaí vsádzkovým alebo kolonovým spósobom, afinitný li-gand je stály a možno ho používaí mnohonásobné, umožňuje dosahovaí jednoduchým postupommnohonásobná purifikáciu izolovaných enzýmov. Přikladl K 10 g vodného roztoku polyetylénimínu obsahujúceho 5 g suchej hmotnosti polyetyló-nimípu sa přidal 1 ml 25 %-ného roztoku hydroxidu sodného a 0,5 g 2-chlórmetyloxiránu.
Po dokonalom premiešaní rěakčnej zmesi za vzniku emulzie dochádza k reakcii za súčasné-ho zahrievania zmesi. Vonkajším chladením sa udržiavala teplota reakčnej zmesi pri teplo-tě 40 až 50 °C. Po skončení sieíovania / 1 h/ sa zosieíováný polyetylenimín mixoval vovodnom roztoku v mixéri na potřebnú veíkosí častíc /0,1 až 0,3 mm/. Takto připravenýsieíovaný polyetylénimín mal napúčací objem 6 ml/g, stupeň sieíovania 0,046 otylénimí-nových jednotiek pripadajúcich na jednu priečnu hydín 'ypropánovú vazbu a obsah aralnoskupin 1,65 mol/g, středná dlžku vonkajších reíazcov 17,4 A, čo odpovedá 4 etyléni-mínovým jednotkám. Takto připravený sieíovaný polyetylénimín sa suspendoval v 25 ml vo-dy a miešal.ňa elektromagnetickéj miešaěke s 5 g metyljodidu pri izbovej teplete po do-\u 16 hodin. Nadbytočný metyljodid sa odpařil na vákuovej odparke. Získaný sieíovaný

Claims (4)

  1. metylovaný polyetylénimín s obsahem amino skupin 0,01 mmol/g sa premyl 500 ml vody a použilpo predchádzajúco, premyti 30 ml 0,1 % roztokom albuminu hovadzieho séra a 50 ml fosfátové-ho pufru /5 mM, pH 8/. Na takto připravený stípec/15 x 1,5 cm/ sa mahieslo 5 ml konskejplazmy, zriedenej 5 mM fosfátového pfru /5 ml, pH 8/ s aktivitou 200 jednotiek. Stípec sana to premyl okolo 300 ml horouvedeného fosfátového pufru /do negativnéj reakcie na pro-teiny v eluáte/. Naviazaná butyrylcholínesteráza sa vytěsnila '150 ml 5 mM fosfátového puf-ru / pH 7,6/ obsahujúceho 0,1 M chlorid sodný.Uvedená vytěsněná frakcia obsahovala 12,5 mgbielkovín a 148 jednotiek butyrylcholínesterázovej aktivity^ co představuje 72 % celkovejaktivity a 48,5 násobné precistenie. Příklad
  2. 2 Postup podía příkladu 1, s tým rozdielom, že sa pracovalo vsádkovým sposobom, t.j.niena koloně a gél zosieíovaného metylovaného polyetýléniminu /5 g/ o napúčacom objeme 12 ml/gsa adjústoval 30 ml 0,1 % roztoku albuminu v 50 mM borátovom pufri / ph 9 /. Takto adjusto-vaný gél sa zmiešal s 5 rol íudskej plazmy, zriedenej do 10 ml horeuvedeným borátovým pufrom/celkový obsah bielkovín 442 mg a celková aktivita 165 jednotiek butyrylcholínesterázovejaktivity. Naviazaná butyrylcholínesterázová aktivita sa vytěsnila 0,2 M roztokom cholínu v5 iriM borátovom pufri / pH 9, 150 ml/. Vytěsněná frakcia obsahovala 16,8 mg bielkovín a 105jednotiek aktivity, čo představuje 16,8 násobné precistenie. Příklad
  3. 3 Ako zdroj acetylcholínesterázy sa použil extrakt z hovadzích erytrocytov, připravený zTritonu-X-100 postupom podía Ciliv G. a Ožand P.T.: Biochem.Biophys. Acta, 248, 136, 1972a po odcentrifugovaní / 10 fliOO g, 30 min./sa uvedený extrakt / 5 ml / adjustoval na pH 8,5mM fosfátovým pufrom / 5 ml / a naniesel na stípec / 20x1,5 cm/ sieíovaného metylovanéhopolyetylénimínu. Po premyti stípca 300 ml fosfátového pufru / ph 8 / sa naviazaná acetyl -cholínesteráza uvolnila 150 ml 50 mM fosfátového pufru / pH 6 /. Výíažok 18,7 mg bielkovín a celková aktivita enzýmu 193 jednotiek. Příklad
  4. 4 Postup podía příkladu 2, s tým rozdielom, že k vytesneniu naviazanej butyryl cholínes-terázy sa použil / 0,1 M roztok trimetyl / p-aminofenyl / amónium chloridu v 5 mM fosfáto-vom pufri / pH 8, 150 ml /. Vytěsněná frakcia obsahovala 12 mg bielkovín a 110 jednotiek aktivity. Vynález možno uplatnií všade, kde je potřebné izolovaí alebo prečistií enzýmy cholín -esterázóvého typu a to či už v priemyselnej praxi alebo vo výskume. PREDMET VYNÁLEZU Spóteob izolácie enzýmov cholínesterázového typu využitím principu afinitnej chromato -grafie vyznačený tým, že biologický roztok obsahujúci enzým cholínesterázového typu s vý -hodou acetylcholínosterázu alebo pseudocholínesterázu po úpravě pH na 7,5 až 9 a iónovejsily pod 0,01 M sa nechá v prvom stupni interagovaí s výhodou na koloně s gélom sieíované-ho a metylovaného polyetylénimínu o napúčacom objeme 6 až 12 ml/g a po následnom premytigélu rovnakým tlmivým roztokom sa v druhom stupni vytěsní zakotvený enzým elúciou s tlrai-vým roztokom o pH 8, o iónovej sile vyššej ako 0,1 M, alebo tlmivým roztokom o pH 6 aleboúčinkom zriedeného roztoku cholínu, připadne inej alkylamoniovej soli.
CS78981A 1981-02-03 1981-02-03 sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu CS214546B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78981A CS214546B1 (sk) 1981-02-03 1981-02-03 sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS78981A CS214546B1 (sk) 1981-02-03 1981-02-03 sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS214546B1 true CS214546B1 (sk) 1982-04-09

Family

ID=5340658

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS78981A CS214546B1 (sk) 1981-02-03 1981-02-03 sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS214546B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hiller et al. Biotin binding to avidin. Oligosaccharide side chain not required for ligand association
Geffen et al. Immunohistochemical localization of protein components of catecholamine storage vesicles
EP1260582B1 (en) Conjugates of factor IX and a biocompatible polymer
Chevli et al. The antimalarial drug mefloquine binds to membrane phospholipids
CA1172961A (en) Process for producing substances produced by cells
JPH032560A (ja) 新規なクロマトグラフィー用固定担体
Sandberg et al. Isolation and characterization of lipid-protein particles containing platelet factor 3 released from human platelets
KR890001927B1 (ko) 섬유질 헤마글루티닌의 정제방법
Yang et al. Immobilization of phospholipid vesicles and protein-lipid vesicles containing red cell membrane proteins on octyl derivatives of large-pore gels
Zachowski et al. Use of a concanavalin A polymer to isolate right side-out vesicles of purified plasma membranes from eukariotic cells
Crowley et al. Optimization of protein immobilization on 1, 1′-carbonyldiimidazole-activated diol-bonded silica
Mackness et al. Partial purification and properties of sheep serum ‘A’-esterases
CS214546B1 (sk) sposob izolácie enzýmov cholínesterázového typu
JPH0367676B2 (cs)
JPH0423751B2 (cs)
JPS6034916A (ja) 第1x因子および他のビタミンk依存性タンパク質の高純度精製
Lisanti et al. Brain clathrin and clathrin-associated proteins.
JPS6147511B2 (cs)
US4027012A (en) Process for the extraction of components having anticoagulant activity "in vivo" from snake venoms and products obtained
RU2068703C1 (ru) Способ получения магноиммуносорбентов
US4828996A (en) Materials and method for immobilizing biologically active substances
WO2018221823A1 (en) Matrix of rice husk silica for immobilizing enzyme and uses thereof
Wiig Effect of neuraminidase on lymphoid cells: differences in structure of B and T cells and thymocytes of the mouse shown by cell electrophoresis and sialic acid determination
CN1212013A (zh) 从蛇毒中纯化凝血酶样蛋白酶
US4350767A (en) Method for isolating and purifying enzymes from a crude enzyme solution