CS214546B1 - a method for isolating cholinesterase type enzymes - Google Patents
a method for isolating cholinesterase type enzymes Download PDFInfo
- Publication number
- CS214546B1 CS214546B1 CS78981A CS78981A CS214546B1 CS 214546 B1 CS214546 B1 CS 214546B1 CS 78981 A CS78981 A CS 78981A CS 78981 A CS78981 A CS 78981A CS 214546 B1 CS214546 B1 CS 214546B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- activity
- buffer
- column
- units
- solution
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Vynález sa týká sposobu izolácie en - zýmov cholínesterázového typu. Podstata vynálezp spočívá v tom, že biologický roztok obsahuje enzým chlínesterázového typu s výhodou acetylcholínesterázu alebo pseudocholín esterázu po úpravě na pH 7,5 až 9 a iónovej sily pod 0,01 M sa nechá v prvom stupni interagovať s výhodou na koloně s gélom sieťovaného a metylová - ného polyestylénimínu a po následnom premytí gelu rovnakým tlraivým roztokom sa v druhom stupni vytěsní zakotvený enzým elúciou roztokom o pH 8 a iónovej sile vyššej ako 0,1 M alebo účinkom zriedeného roztoku cholínu, připadne inej alkylamóniovej soli. Vynález má použitie pri izolácii alebo purifikácii enzýmov cholínesterázového typu pre výskům alebo priemyselnú prax.The invention relates to a method for isolating cholinesterase-type enzymes. The essence of the invention lies in the fact that a biological solution containing a cholinesterase-type enzyme, preferably acetylcholinesterase or pseudocholinesterase, after adjustment to pH 7.5 to 9 and an ionic strength below 0.01 M, is allowed to interact in the first stage, preferably on a column with a gel of cross-linked and methylated polyethylenimine, and after subsequent washing of the gel with the same solvent, in the second stage the anchored enzyme is displaced by elution with a solution with pH 8 and an ionic strength higher than 0.1 M or by the effect of a diluted solution of choline or another alkylammonium salt. The invention has application in the isolation or purification of cholinesterase-type enzymes for research or industrial practice.
Description
Vynález sa týká sposobu izolácie enzýmov cholínesterázového typu, a to acetylcholínes-terázy /acetylcholín hydroláza, EC 3. 1. 1. 7/ a pseudocholínesterážy /acylcholín acylhydroláza, EC 3. 1. 1. 8/. Při izolácii a purifikácii enzýmov cholínesterázového typu sa obyčejné vychádza z homogenátu ckaniva / acetylcholínesteráza, pseudocholínnesteráza/ alebo krvnej plazmy za použitia etanolovej frakcionácie / pseudocholínesteráza /, Surgenor D.M., Ellias D.i.J.Amer.chem.soo.76 6049, 1954, připadne áalšej chroraatografie na géli z fosforečnanu vápenatého,resp.ionomeniči / Malstrom B.G., Levin S.,Boman H.GtiActa Chem.Scand.,10, 1077, 1956/ ,’připadne áalšej géůpvej filtrácie / Das P.K.,Liddell J.jBiochem.J.,116,875, 1970/. Rých -lou metodou purifilácie acetylcholínesterázy z hovadzích erytrocytov afinitnou gélovouchromatografiou na Sepharoze s naviazaným d-tubukarinom a elúciou s chloridom sodným po-pisujú Jung J. a Belleau B.j Mol.Pharmacol.,8, 589, 1972. Trimetyl/m-aminofenyl/ amóniumchlorid, hydrochlorid ako afimMmý ligand viazaný na Bio-Gel A popisujú Berman J.D. aYoung M. jProc.Nat.Aoad.Sci US 68, 395, 1971. Nevýhodou uvedených postupov je ich zdíha -vosí, připadne nákladná příprava afinitných ligandov a v áalšom nie jednoduché viazaniena nosič.The present invention relates to a process for the isolation of cholinesterase-type enzymes, namely acetylcholine terrase / acetylcholine hydrolase, EC 3.1.1.7 and pseudocholinesterase / acylcholine acyl hydrolase, EC 3.1.1. In the isolation and purification of cholinesterase-type enzymes, it is common to start with the homogenate of the human / acetylcholinesterase, pseudocholinnesterase / or blood plasma using ethanol fractionation (pseudocholinesterase), Surgenor DM, Ellias DiJAmer.chem.so.76 6049, 1954, possibly further gel chromatography. calcium phosphate, or ion exchange / Malstrom BG, Levin S., Boman H.GtiActa Chem.Sc., 10, 1077, 1956, respectively, additional filtration (Das PK, Liddell J. Biochem. J., 116,875, 1970 /. A rapid method of purifying acetylcholinesterase from bovine erythrocytes by affinity gel chromatography on d-tubukarin-bound Sepharose and eluting with sodium chloride is described by Jung J. and Belleau Bj Mol.Pharmacol., 8, 589, 1972. Trimethyl-m-aminophenyl / ammonium chloride the hydrochloride as an affinity ligand bound to Bio-Gel A describes Berman JD U.S. Pat. No. 68, 395, 1971. The disadvantage of said processes is their attractiveness, or the costly preparation of affinity ligands and, furthermore, the carrier is not easy to bind.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že biologický roztok obsahujúci enzým cholínesterá-zového typu s výhodou acetylcholínesterázu alebo pseudocholíncesterázu po úpravě pH na7,5 až 9 a iónovej sily pod 0,01 M sa nechá v prvom stupni interagovaí s výhodou na koloněs gélom sieíovaného a metylovaného polyetylénimínu o napúčavora objeme 6 až .12 ml/g a ponáslednom premytí gélu rovnakým tlmivýra roztokom sa v druhom stupni vytěsní zakotvený en-zým elúciou tlmivým roztokom o pH 8 a iónovej sile vyššej ako 0,1 M, alebo tlmivým roz-tokom o pH alebo účinkom zriedeného roztoku cholínu, připadne inej alkylamóniovej soli.The essence of the invention is that the biological solution containing the cholinesterase-type enzyme, preferably acetylcholinesterase or pseudo-cholinesterterase, after adjusting the pH to 7.5-9 and ionic strength below 0.01M, is preferably interacted with the gel-crosslinked and methylated column in the first stage. polyethyleneimine with a swelling volume of 6 to 12 ml / g and subsequent washing of the gel with the same buffer solution is displaced in the second stage by anchored elution with a buffer of pH 8 and an ionic strength of greater than 0.1 M, or a buffer solution of pH or by the action of a dilute solution of choline, optionally another alkylammonium salt.
Postup možno aplikovaí tak vsádkovým spósobom, alebo výhodnejšie je pracovaí tak,žepolyetylénimínový modifikovaný ligand je naplněný v koloně, cez ktorú sa prelieva biolo-gický roztok obsahujúci cholínesterázové enzýmy. Kapacita nosiča dosahuje niekoíko tisícjednotiek enzýmu na gram suchého nosiča. Po zakotvení enzýmu sa gél na koloně premýva 60násobným objemom tlmivého roztoku o pH 8 aby sa vytěsnili nežiaduce sprievqdné látky. Povymytí sprievodných látok sa viazaný čistý enzým uvolní z nosiča na koloně elúciou s tl-mivým roztokom o pH 8 a iónovej sily vyššej ako 0,1 M alebo tlmivým roztokom o pH 6, ale-bo zriedeným roztokom cholínu, připadne inej alkylamóniovej soli. Uvedeným postupom sadosiahne takmer 50 násobná purifikácia enzýmu.The process can be applied in a batchwise manner, or more preferably, the polyethyleneimine modified ligand is loaded in a column through which the biological solution containing cholinesterase enzymes is poured. The carrier capacity reaches several thousand units of enzyme per gram of dry carrier. After anchoring the enzyme, the gel on the column is washed with a 60-fold volume of pH 8 buffer to displace unwanted additives. The washings of the accompanying materials release the bound pure enzyme from the carrier on the column by elution with a pH 8 buffer and an ionic strength greater than 0.1 M, or a pH 6 buffer, or a dilute choline solution or other alkylammonium salt. Purification of the enzyme by almost 50-fold is achieved by this method.
Metylováný sieíovaný polyetylénimín představuje afinitný' ligand obsahujúci opakujú-ce sa strukturálně jednotky cholínu, čo je základora vyaokej účinnosti izolácie a puri -fikácie cholínových enzýmov. Výhodou nového postupu je, že práprava afinitného liganda je jednoduchá a nevyžadu-je drahé chemikálie, umožňuje pracovaí vsádzkovým alebo kolonovým spósobom, afinitný li-gand je stály a možno ho používaí mnohonásobné, umožňuje dosahovaí jednoduchým postupommnohonásobná purifikáciu izolovaných enzýmov. Přikladl K 10 g vodného roztoku polyetylénimínu obsahujúceho 5 g suchej hmotnosti polyetyló-nimípu sa přidal 1 ml 25 %-ného roztoku hydroxidu sodného a 0,5 g 2-chlórmetyloxiránu.Methylated crosslinked polyethyleneimine is an affinity ligand containing recurring structurally choline units, which is the basis for the superior isolation and purification of choline enzymes. The advantage of the novel process is that the preparation of the affinity ligand is simple and does not require expensive chemicals, allows the batch or column process to be used, the affinity of the ligand is stable and can be used multiple times, allowing simple purification of the isolated enzymes by simple purification. Example 1 To 10 g of an aqueous solution of polyethyleneimine containing 5 g of dry weight of polyethylsulphide was added 1 ml of 25% sodium hydroxide solution and 0.5 g of 2-chloromethyloxirane.
Po dokonalom premiešaní rěakčnej zmesi za vzniku emulzie dochádza k reakcii za súčasné-ho zahrievania zmesi. Vonkajším chladením sa udržiavala teplota reakčnej zmesi pri teplo-tě 40 až 50 °C. Po skončení sieíovania / 1 h/ sa zosieíováný polyetylenimín mixoval vovodnom roztoku v mixéri na potřebnú veíkosí častíc /0,1 až 0,3 mm/. Takto připravenýsieíovaný polyetylénimín mal napúčací objem 6 ml/g, stupeň sieíovania 0,046 otylénimí-nových jednotiek pripadajúcich na jednu priečnu hydín 'ypropánovú vazbu a obsah aralnoskupin 1,65 mol/g, středná dlžku vonkajších reíazcov 17,4 A, čo odpovedá 4 etyléni-mínovým jednotkám. Takto připravený sieíovaný polyetylénimín sa suspendoval v 25 ml vo-dy a miešal.ňa elektromagnetickéj miešaěke s 5 g metyljodidu pri izbovej teplete po do-\u 16 hodin. Nadbytočný metyljodid sa odpařil na vákuovej odparke. Získaný sieíovanýUpon complete mixing of the reaction mixture to form an emulsion, the reaction occurs while heating the mixture. External cooling maintained the temperature of the reaction mixture at 40-50 ° C. Upon completion of the cross-linking (1 h), the crosslinked polyethyleneimine was mixed in the aqueous mixer solution to the required particle size (0.1 to 0.3 mm). The crosslinked polyethyleneimine thus prepared had a swelling volume of 6 ml / g, a cross-linking degree of 0.046 otyleneimine units per transverse poultrypropane bond, and an araldehyde content of 1.65 mol / g, an average outer strand length of 17.4 A, corresponding to 4 ethylene- mine units. The crosslinked polyethyleneimine thus prepared was suspended in 25 ml of water and stirred with electromagnetic stirrer with 5 g of methyl iodide at room temperature for 16 hours. Excess methyl iodide was evaporated in a vacuum evaporator. Obtained cross-linked
Claims (4)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS78981A CS214546B1 (en) | 1981-02-03 | 1981-02-03 | a method for isolating cholinesterase type enzymes |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS78981A CS214546B1 (en) | 1981-02-03 | 1981-02-03 | a method for isolating cholinesterase type enzymes |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS214546B1 true CS214546B1 (en) | 1982-04-09 |
Family
ID=5340658
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS78981A CS214546B1 (en) | 1981-02-03 | 1981-02-03 | a method for isolating cholinesterase type enzymes |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS214546B1 (en) |
-
1981
- 1981-02-03 CS CS78981A patent/CS214546B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Hiller et al. | Biotin binding to avidin. Oligosaccharide side chain not required for ligand association | |
| Geffen et al. | Immunohistochemical localization of protein components of catecholamine storage vesicles | |
| EP1260582B1 (en) | Conjugates of factor IX and a biocompatible polymer | |
| Chevli et al. | The antimalarial drug mefloquine binds to membrane phospholipids | |
| CA1172961A (en) | Process for producing substances produced by cells | |
| JPH032560A (en) | Fixed carrier for novel chromatography | |
| Sandberg et al. | Isolation and characterization of lipid-protein particles containing platelet factor 3 released from human platelets | |
| KR890001927B1 (en) | Method for purification of filamentous hemagglutinin | |
| Yang et al. | Immobilization of phospholipid vesicles and protein-lipid vesicles containing red cell membrane proteins on octyl derivatives of large-pore gels | |
| Zachowski et al. | Use of a concanavalin A polymer to isolate right side-out vesicles of purified plasma membranes from eukariotic cells | |
| Crowley et al. | Optimization of protein immobilization on 1, 1′-carbonyldiimidazole-activated diol-bonded silica | |
| Mackness et al. | Partial purification and properties of sheep serum ‘A’-esterases | |
| CS214546B1 (en) | a method for isolating cholinesterase type enzymes | |
| JPH0367676B2 (en) | ||
| JPH0423751B2 (en) | ||
| JPS6034916A (en) | High purity purification of ix factor and other vitamin k dependent proteins | |
| Lisanti et al. | Brain clathrin and clathrin-associated proteins. | |
| JPS6147511B2 (en) | ||
| US4027012A (en) | Process for the extraction of components having anticoagulant activity "in vivo" from snake venoms and products obtained | |
| RU2068703C1 (en) | Method of magnoinnune sorbent preparing | |
| US4828996A (en) | Materials and method for immobilizing biologically active substances | |
| WO2018221823A1 (en) | Matrix of rice husk silica for immobilizing enzyme and uses thereof | |
| Wiig | Effect of neuraminidase on lymphoid cells: differences in structure of B and T cells and thymocytes of the mouse shown by cell electrophoresis and sialic acid determination | |
| CN1212013A (en) | Purification of thrombin-like protease from snake venom | |
| US4350767A (en) | Method for isolating and purifying enzymes from a crude enzyme solution |