CN1428434A - 一种检测微囊藻产毒的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种检测微囊藻产毒的方法,该方法根据微囊藻毒素合成酶基因mcyB仅存在于产毒微囊藻的原理,用mcyB序列设计出特异引物TOX1P/1M和TOX2P/2M,利用全细胞PCR,通过样品的制备、引物的合成、PCR反应、电泳检测来确定微囊藻是否产毒。本发明检测时间短、重现性好、灵敏度和准确性高,所需仪器设备和试剂相对简单,可大批量快速鉴别培养物或自然水样中的微囊藻是否产毒。
Description
技术领域:
本发明涉及蓝藻中的微囊藻,更具体涉及检测微囊藻是否产毒的方法。
背景技术:
由于江河湖泊中的水体富营养化日益加剧,水体中的藻类水华频繁爆发,已经成为水环境污染的严重问题。蓝藻水华不仅影响水体的生态功能,影响景观水体的旅游价值。更严重的是,一些蓝藻水华产生的毒素会直接或间接地影响人类的健康,长期饮用含蓝藻毒素的水源有诱发肝癌的危险。
我国湖泊等水体发生的蓝藻水华绝大多数为微囊藻水华。在微囊藻中,有些种类产微囊藻毒素,有些则不产生微囊藻毒素。即使在同一种类中,也有产毒和非产毒株系之分,如铜绿微囊藻Microcystisaeruginosa。
传统的微囊藻分类主要以形态学特征为依据,如群体大小、形态和胶鞘有无等。大量的研究表明,上述作为分类依据的形态学特征在不同种类之间并没有显著的差别,并且,即便是同一种类,这些特征也会随其生长环境的变动而产生差异。由于上述原因,使得微囊藻种间水平的鉴别显得尤为困难。通过形态学分类的方法无法鉴别微囊藻是否产生毒素。
现有检测产毒微囊藻的分子生物学方法如下:抽提待检测藻样的总DNA,然后以总DNA作为模板。由于微囊藻毒素合成酶基因mcyB仅存在于产毒微囊藻中,根据mcyB序列设计出特异引物TOX1P/1M和TOX2P/2M。用TOX1P/1M和TOX2P/2M两对引物,通过PCR的方法特异性地扩增出产毒微囊藻中mcyB的某些片段,从而鉴定微囊藻样品是否产毒。
该方法的不足之处在于:抽提细胞的总DNA耗时长、效率低、样品需要量较大,且抽提DNA所用的去污剂很难完全去除,影响PCR检测的准确性和重现性;另一方面,抽提总DNA需要的试剂、仪器设备复杂,无法用于现场水华样品的直接检测,使得其应用范围受到限制。
发明内容:
本发明的目的是提供一种检测微囊藻产毒的方法。该方法利用全细胞DNA聚合酶链式扩增反应(PCR)的方法来检测微囊藻是否产毒,检测所需时间短、重现性好、准确性高,所需仪器设备和试剂相对简单,可大批量快速鉴别培养物或自然水样中的微囊藻是否产毒。
为了达到上述目的,本发明按下列步骤顺序进行:
1、取含有0.1~5毫克微囊藻的藻液,用3000~6000转/分钟离心5~10分钟,去除上清液;
2、加入1~5毫升无菌的去离子水,充分混匀,用3000~6000转/分钟离心5~10分钟,去上清;
3、将步骤2重复3~5次,再加入1~5毫升无菌去离子水,充分混匀,得到藻细胞悬液;
4、根据TOX1P/1M和TOX2P/2M的序列合成TOX1P/1M和TOX2P/2M两对引物,序列如下:
TOX1P:5’-CGATTGTTACTGATACTCGCC-3’
TOX1M:5’-TAAGCGGGCAGTTGCTGC-3’
TOX2P:5’-GGAACAAGTTGCACAGAATCCGC-3’
TOX2M:5’-CCAATCCCTATCTAACACAGTAACTCGG-3’
5、将下列试剂加入到试管中:牛血清白蛋白(BSA)20pmol,2微升含1.5毫摩尔MgCl2的10倍热稳定DNA聚合酶反应缓冲液,四种单核苷酸(dNTPs)各0.2微摩尔的混合物;引物对TOX1P/1M 20pmol;热稳定的DNA聚合酶(Taq DNA Polymerase)0.5个单位;6微升藻细胞悬液,再加入去离子水至总体积20微升;如果总体积为20~100微升,上述相关试剂用量按相应比例扩大;
6、用DNA聚合酶链式扩增反应(PCR)仪,进行PCR;采用下列参数:起始变性93~96℃,1分钟,循环数30个(92~96℃,15~25秒;55~57℃,25~40秒;72℃,50~60秒),后处理过程72℃,7分钟,得到引物对TOX1P/1M扩增的片段;
7、将步骤5中的引物对TOX1P/1M换成引物对TOX2P/2M,其它试剂与步骤5相同,重复步骤6的操作,得到引物对TOX2P/2M扩增的片段;
8、选取确定产毒的微囊藻扩增到的特异性片段作为阳性对照,用琼脂糖凝胶电泳进行检测,如果微囊藻样品中扩增的特异性片段与阳性对照中特异性片段在同一条直线上,则表明该片段与阳性对照的大小一致,是产毒微囊藻。
上述产毒微囊藻中,引物对TOX1P/1M扩增的片段约为1300bp,引物对TOX2P/2M扩增的片段约为350bp。
全细胞PCR与常规PCR的区别为,在全细胞PCR中加入一定量的BSA。在PCR反应的起始变性阶段,温度达到95℃,使得部分藻细胞的DNA释放出来,作为PCR反应的模板。如果没有BSA,DNA可能会被核酸酶(DNase)降解,BSA有稳定反应的作用,防止DNA的降解,从而使反应顺利进行。全细胞PCR不需要复杂的反应程序或要求特殊的热循环仪。另外,BSA价格低廉,且用量很小。
本发明与现有技术相比具有以下优点:1、对材料的要求不高,无论以实验室培养物、自然水样或以干藻粉等作为材料都可获得较好的扩增效果,因此,可直接应用于野外样品的检测;2、省去了抽提DNA等烦琐的步骤,操作较为简单易行,省时省力;3、成本低廉,对操作和仪器的要求不高,检测通量大;4、检测所需时间短、重现性好、灵敏度和准确性高、结果直观,为及时预报自然水体中的产毒微囊藻提供了灵敏、可靠的技术。
具体实施方式1:
1、取含有1毫克Microcystis wesenbergii 908(韦氏微囊藻908)的藻液,用5000转/分钟离心5分钟,去除上清液;
2、加入2毫升无菌的去离子水,充分混匀,用5000转/分钟离心5分钟,去上清;
3、将步骤2重复3次,再加入2毫升无菌去离子水,充分混匀,得到藻细胞悬液;
4、根据TOX1P/1M和TOX2P/2M的序列合成TOX1P/1M和TOX2P/2M两对引物,序列如下:
TOX1P:5’-CGATTGTTACTGATACTCGCC-3’
TOX1M:5’-TAAGCGGGCAGTTGCTGC-3’
TOX2P:5’-GGAACAAGTTGCACAGAATCCGC-3’
TOX2M:5’-CCAATCCCTATCTAACACAGTAACTCGG-3’
5、将下列试剂加入到试管中:牛血清白蛋白(BSA)20pmol,2微升含1.5毫摩尔MgCl2的10倍热稳定DNA聚合酶反应缓冲液,四种单核苷酸(dNTPs)各0.2微摩尔的混合物;引物对TOX1P/1M 20pmol;热稳定的DNA聚合酶(Taq DNA Polymerase)0.5个单位;6微升藻细胞悬液,再加入去离子水至总体积20微升;
6、用DNA聚合酶链式扩增反应仪,进行PCR;采用下列参数:起始变性96℃,1分钟,循环数30个(94℃,15秒;57℃,25秒;72℃,60秒),后处理过程72℃,7分钟,得到引物对TOX1P/1M扩增的片段;
7、将步骤5中的引物对TOX1P/1M换成引物对TOX2P/2M,其它试剂与步骤5相同,重复步骤6的操作,得到引物对TOX2P/2M扩增的片段;
8、选取Microcystis sp.PCC7806(微囊藻属PCC7806)扩增到的特异性片段作为阳性对照,用琼脂糖凝胶电泳进行检测,Microcystiswesenbergii 908中扩增的特异性片段和Microcystis sp.PCC7806中扩增的特异性片段在同一条直线上,表明Microcystis wesenbergii 908是产毒微囊藻。
具体实施方式2:
1、取含有5毫克Microcystis aeruginosa 937(铜绿微囊藻937)的藻液,用4000转/分钟离心5分钟,去除上清液;
2、加入5毫升无菌的去离子水,充分混匀,用6000转/分钟离心5分钟,去上清;
3、将步骤2重复5次,再加入5毫升无菌去离子水,充分混匀,得到藻细胞悬液;
4、根据TOX1P/1M和TOX2P/2M的序列合成TOX1P/1M和TOX2P/2M两对引物,序列如下:
TOX1P:5’-CGATTGTTACTGATACTCGCC-3’
TOX1M:5’-TAAGCGGGCAGTTGCTGC-3’
TOX2P:5’-GGAACAAGTTGCACAGAATCCGC-3’
TOX2M:5’-CCAATCCCTATCTAACACAGTAACTCGG-3’
5、将下列试剂加入到试管中:牛血清白蛋白(BSA)20pmol,2微升含1.5毫摩尔MgCl2的10倍热稳定DNA聚合酶反应缓冲液,四种单核苷酸(dNTPs)各0.2微摩尔的混合物;引物对TOX1P/1M 20pmol;热稳定的DNA聚合酶(Taq DNA Polymerase)0.5个单位;6微升藻细胞悬液,再加入去离子水至总体积20微升;
6、用DNA聚合酶链式扩增反应仪,进行PCR;采用下列参数:起始变性96℃,1分钟,循环数30个(96℃,25秒;55℃,40秒;72℃,50秒),后处理过程72℃,7分钟,得到引物对TOX1P/1M扩增的片段;
7、将步骤5中的引物对TOX1P/1M换成引物对TOX2P/2M,其它试剂与步骤5相同,重复步骤6的操作,得到引物对TOX2P/2M扩增的片段;
8、选取Microcystis sp.PCC7806(微囊藻属PCC7806)扩增到的特异性片段作为阳性对照,用琼脂糖凝胶电泳进行检测,Microcystisaeruginosa 937中扩增的特异性片段和Microcystis sp.PCC7806中扩增的特异性片段在同一条直线上,表明Microcystis aeruginosa 937是产毒微囊藻。
具体实施方式3:
1、取含有3毫克Microcystis aeruginosa 912(铜绿微囊藻912)的藻液,用6000转/分钟离心5分钟,去除上清液;
2、加入3毫升无菌的去离子水,充分混匀,用5000转/分钟离心5分钟,去上清;
3、将步骤2重复4次,再加入3毫升无菌去离子水,充分混匀,得到藻细胞悬液;
4、根据TOX1P/1M和TOX2P/2M的序列合成TOX1P/1M和TOX2P/2M两对引物,序列如下:
TOX1P:5’-CGATTGTTACTGATACTCGCC-3’
TOX1M:5’-TAAGCGGGCAGTTGCTGC-3’
TOX2P:5’-GGAACAAGTTGCACAGAATCCGC-3’
TOX2M:5’-CCAATCCCTATCTAACACAGTAACTCGG-3’
5、将下列试剂加入到试管中:牛血清白蛋白(BSA)20pmol,2微升含1.5毫摩尔MgCl2的10倍热稳定DNA聚合酶反应缓冲液,四种单核苷酸(dNTPs)各0.2微摩尔的混合物;引物对TOX1P/1M 20pmol;热稳定的DNA聚合酶(Taq DNA Polymerase)0.5个单位;6微升藻细胞悬液,再加入去离子水至总体积20微升;
6、用DNA聚合酶链式扩增反应仪,进行PCR;采用下列参数:起始变性96℃,1分钟,循环数30个(95℃,20秒;56℃,30秒;72℃,55秒),后处理过程72℃,7分钟,得到引物对TOX1P/1M扩增的片段;
7、将步骤5中的引物对TOX1P/1M换成引物对TOX2P/2M,其它试剂与步骤5相同,重复步骤6的操作,得到引物对TOX2P/2M扩增的片段;
8、选取Microcystis sp.PCC7806扩增到的特异性片段作为阳性对照,用琼脂糖凝胶电泳进行检测,Microcystis aeruginosa 937中扩增的特异性片段和Microcystis sp.PCC7806中扩增的特异性片段不在同一条直线上,表明Microcystis aeruginosa 937不是产毒微囊藻。
Claims (1)
1、一种检测微囊藻产毒的方法,其特征在于,该方法按下列步骤顺序进行:
A、取含有0.1~5毫克微囊藻的藻液,用3000~6000转/分钟离心5~10分钟,去除上清液;
B、加入1~5毫升无菌的去离子水,充分混匀,用3000~6000转/分钟离心5~10分钟,去上清;
C、将步骤B重复3~5次,再加入1~5毫升无菌去离子水,充分混匀,得到藻细胞悬液;
D、根据TOX1P/1M和TOX2P/2M的序列合成TOX1P/1M和TOX2P/2M两对引物,序列如下:
TOX1P:5’-CGATTGTTACTGATACTCGCC-3’
TOX1M:5’-TAAGCGGGCAGTTGCTGC-3’
TOX2P:5’-GGAACAAGTTGCACAGAATCCGC-3’
TOX2M:5’-CCAATCCCTATCTAACACAGTAACTCGG-3’
E、将下列试剂加入到试管中:牛血清白蛋白(BSA)20pmol,2微升含1.5毫摩尔MgCl2的10倍热稳定DNA聚合酶反应缓冲液,四种单核苷酸(dNTPs)各0.2微摩尔的混合物;引物对TOX1P/1M 20pmol;热稳定的DNA聚合酶(Taq DNA Polymerase)0.5个单位;6微升藻细胞悬液,再加入去离子水至总体积20微升;
F、用DNA聚合酶链式扩增反应仪,进行PCR;采用下列参数:起始变性93~96℃,1分钟,循环数30个(92~96℃,15~25秒;55~57℃,25~40秒;72℃,50~60秒),后处理过程72℃,7分钟,得到引物对TOX1P/1M扩增的片段;
G、将步骤E中的引物对TOX1P/1M换成引物对TOX2P/2M,其它试剂与步骤E相同,重复步骤F的操作,得到引物对TOX2P/2M扩增的片段;
H、选取确定产毒的微囊藻扩增到的特异性片段作为阳性对照,用琼脂糖凝胶电泳进行检测,如果微囊藻样品中扩增的特异性片段与阳性对照中特异性片段在同一条直线上,则表明该片段与阳性对照的大小一致,是产毒微囊藻。
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