CN1221319A - 植物免疫组合物 - Google Patents

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    • A01N63/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/30Microbial fungi; Substances produced thereby or obtained therefrom
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Abstract

本发明提供了一种在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的制剂,其中该制剂是来自非植物致病性微生物体的生物物质提取物,可通过以下步骤得到:a)在每升无机或有机溶剂中重新悬浮50g到200g(干重)来自非植物致病性微生物的生物物质;b)在室温下搅拌1到12小时;c)温育;d)重新悬浮;e)使其冷却至室温;以及f)选择性地,过滤。

Description

植物免疫组合物
本发明一般地涉及植物免疫,更具体地,涉及能在植物中诱导针对植物致病性微生物,例如植物致病性真菌的抗性的组合物和方法。
发明背景
各种研究表明,植物对某些疾病的易感性与缺少对这些疾病的遗传性抗性机制的潜力并不一致。事实上,众所周知,通过以下方式,可在明显易感性植物中诱导抗性,这些方式包括:免疫接种植物病原体的无毒性形式和低毒植物病原体,或用植物病原体限制性免疫接种。得到诱导的抗性是持久的,并且一般对病原体是非特定性的。
这种防御系统是早期致病性识别事件复杂的相互作用,识别事件产生信号从细胞内、细胞间免疫位置传递到整个植物体。这些信号借助阻断甚至杀死入侵病原体引发一系列的可诱导的防御反应。许多防御反应由基因转录水平控制。
病原体检测在尽可能靠近植物表面的地方进行。侵袭病原体的细胞壁降解产物(葡聚糖激发物)和受侵袭的植物细胞的片段(oligogalacturonide激发物)都是最佳描述的警戒信号。二次信号从受侵袭部位传遍整个植物体。文献引述最多的信号链中的化合物是水杨酸,但电信号也已被描述为防御诱导信号。
通过产生警戒信号激活的防御反应覆盖很宽的范围,包括化学、生化和机械防御。在单子叶植物常常观察到,在与病原体试图侵入的位点相应的地方,通过胼胝质堆积强化细胞壁。在单子叶和双子叶植物中观察到水解酶(例如,有溶菌酶活性的壳多糖酶,β-1,3-葡聚糖酶,蛋白水解酶)的诱导。植物体可以通过以局部地高度升高的浓度合成具有毒性的次生代谢产物,即所谓的植物抗毒素,应答,植物抗毒素能够杀死侵入的微生物。受到攻击的植物细胞的最早反应之一是产生活性氧自由基,这常常是完全牺牲侵入部位周围有限数量细胞的开始。
发明概述
令人惊奇的是,已经发现来自一般对任何植物都不致病的微生物(非植物致病性微生物)的生物物质提取物,可以被用来在植物中诱导对植物致病性微生物的抗性。
因此,本发明提供了一种能在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的制剂,其中这种制剂是来自非植物致病性微生物的生物物质提取物,该提取物通过以下步骤得到:
a)每升无机或有机溶剂中悬浮50克到200克(干重)来自非植物致病性微生物的生物物质;
b)室温下搅拌1至12小时;
c)温育;
d)重新悬浮;
e)使其冷却至室温;以及
f)选择性地,过滤。
(此后称“本发明的制剂”)
本发明还提供了农用组合物,包括用上述步骤可获得的制剂,结合农业上可接受的载体材料(稀释剂),以及选择性地一种或多种能在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的植物农药。
根据本发明,还提供了一种来自产黄青霉的,能够在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的提取物。
本发明进一步提供通过给植株、土壤或种子施用本发明制剂,在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的方法。这种制剂可以以非配制的形式,或农用组合物形式使用。
本发明还提供了生产在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的制剂的方法,其中该制剂是来自非植物致病性微生物的生物物质提取物,该提取物通过以下步骤得到:
a)每升无机或有机溶剂中重新悬浮50克到200克(干重)来自非植物致病性微生物的生物物质;
b)室温下搅拌1至12小时;
c)温育;
d)重新悬浮;
e)使其冷却至室温;以及
f)选择性地,过滤。发明详述
此处所用的“植物”,我们是指典型的栽培植物,即种植以生产可收获的产品。在本发明范围内,通过导入抗性以得到保护的目的植物包括,例如,以下植物品种:谷类植物(小麦、大麦、黑麦、燕麦、水稻、高粱以及相关农作物),甜菜(蔗糖甜菜和饮料甜菜),核果,梨果和小果(苹果、梨、李、桃、杏、樱桃、草莓、木莓和欧洲黑莓),豆科植物(豆子、扁豆、豌豆和大豆),油类植物(油菜、芥子、罂粟、橄榄、向日葵、椰子、蓖麻、可可豆、花生),藤类植物(黄瓜、葫芦和瓜),纤维植物(棉花、亚麻、大麻、黄麻),柑桔类植物(橙、柠檬、葡萄和桔),蔬菜(菠菜、莴苣、芦笋、卷心菜、胡萝卜、洋葱、大蒜、西红柿、马铃薯和胡椒),月桂科(鳄梨、肉桂和樟脑),或者诸如玉米、烟草、坚果、咖啡、糖甘蔗、茶叶、藤本植物、啤酒花、香蕉和天然橡胶树的植物;以及观赏植物,草地(草皮)和堤岸植物。
优选地,根据本发明保护的植物包括茄科如西红柿,马铃薯,豆子,黄瓜,胡椒,烟草,花生和葡萄藤。
特别优选地,根据本发明保护的植物包括:茄科植物。
此处使用的“植物致病性微生物”,我们是指能够侵袭植物并对其造成损害的真菌、细菌和病毒。本发明制剂在诱导对植物致病性真菌抗性中特别有效。这些植物致病性真菌包括,例如,致病疫霉(Phytophthora infestans),黄枝孢(Cladosporium fulvum),葡萄生单轴霉(Plasmopora viticola),芦芦科刺盘孢(Collectotrichumlagenarium),Pseudomonas lachrymans和Puccinla tritici。
用本发明制剂在抵抗致病疫霉和黄枝孢保护茄科植物如西红柿、马铃薯和抵抗葡萄生单轴霉保护葡萄及抵抗葫芦科刺盘孢和Pseudomonaslachrymans保护黄瓜中取得尤其好的效果。
此处使用的“非植物致病性微生物”,我们是指那些在植物中不引起疾病的微生物属和种类。优选地,非植物致病性微生物也是非植物特异性的微生物,即它们不在植物上生长。
根据本发明可以使用的微生物属的例子包括:
细菌:醋杆菌属,无色菌属,放线菌属,气杆菌属,产碱菌属,节杆菌属,芽孢杆菌属,短杆菌属,Cephalosporium,梭状芽孢杆菌属,棒杆菌属,隐球菌属,埃希氏菌属,黄杆菌属,葡糖杆菌属,乳杆菌属,明串珠菌属,甲烷杆菌属,甲烷单胞菌属,甲基弧菌属,小细菌属,小球菌属,小单孢菌属,分枝杆菌属,诺卡氏菌属,丙酸杆菌属,精朊杆菌属,变形杆菌属,假单胞菌属,红假单胞菌属,糖多孢菌属,八叠球菌属,孢子丝菌属,链球菌属,链霉菌属,高温单孢菌属,硫杆菌属,黄色单胞菌属。
真菌和酵母:Acremonium,座壳孢属,阿舒囊霉属,曲霉属,短梗霉属,白僵菌属,假丝酵母属,麦角属,斜盖伞属,弯孢霉菌,柱霉属,假囊酵母属,伊文氏杆菌属,镰孢霉属,梭链孢属,赤霉属,汉逊酵母属,Hirsutella,克鲁维酵母菌属,绿僵菌属,毛霉属,Myocandida,新赤壳属,Phaecilomyces,青霉属,Pericularia,Phanerochaete,须霉属,毕齐酵母属,发芽微菌属,根霉属,酵母属,裂殖酵母属,Sesquicilliopsis,Streptomyxa,Tolypocladium,色串胞属,球拟酵母属,栓菌属,木霉属,三角酵母属。
根据本发明可以使用的特定的种类包括:
细菌:醋化醋杆菌,弱氧化醋杆菌,木醋杆菌,Achromobacterobae,密苏里游动放线菌,产气气杆菌,粪产碱菌,Arthrobacterhyalinus,石蜡节杆属,Arthrobacter simplex,酸热芽孢杆菌,解淀粉芽孢杆菌,溶解淀粉芽孢杆菌,短芽孢杆菌,热溶芽孢杆菌,蜡状芽孢杆菌,环状芽孢杆菌,凝结芽孢杆菌,坚强芽杆菌,迟缓芽孢杆菌,地衣芽孢杆菌,巨大芽孢杆菌,多粘芽孢杆菌,日本甲虫芽孢杆菌,短小芽孢杆菌,枯草芽孢杆菌,Brevibacterium amylolyticum,黄色短杆菌,乳发酵短杆菌,丙酮丁醇梭菌,丁酸梭菌,Corynebacteriumgelatinosum,谷氨酸棒杆菌,Corynebacterium guanofaciens,解烃棒杆菌,嗜石油棒杆菌,Cryptococcus laurentii,大肠杆菌,产氨黄杆菌,生黑葡糖杆菌,Lactobacillus bulgaris,德氏乳杆菌,瑞士乳杆菌,乳乳杆菌,戊糖乳杆菌,Leuconostoc brevis,肠膜明串珠菌葡聚糖亚种,肠膜明串珠菌,Methanobacillus omelianski,Methanobacillussoenhngenii,Methanomonas margaritae,Methanomonas capsulatus,甲烷假单孢菌,索氏甲基弧菌,嗜氨微杆菌,谷氨酸微球菌,炭样小单孢菌,棘孢小单孢菌,伊纽小单孢菌,橄榄星孢小单孢菌,绛红小单孢菌,草分枝杆菌,包皮垢分枝杆菌,Nocardia alkanoglutinosa,加德纳诺卡氏菌,地中海诺卡氏菌,灰暗诺卡氏菌,费氏丙酸杆菌,谢氏丙酸杆菌,红色精朊杆菌,雷氏普罗威登斯菌,淀粉皮假单胞菌,致金色假单胞菌,德阿昆哈假单胞菌,脱氮假单胞菌,甲基养假单胞菌,卵状假单胞菌,吡咯菌素假单胞菌,类球红细菌,红色糖多孢菌,藤黄八叠球菌,Sporotrichum pulverulentum,乳酸乳球菌,Strepotococcus fradiae,乳链球菌,变异链球菌,唾液链球菌嗜热亚种,链霉菌属所有种类,弯曲高温单孢菌,褐色高温单孢菌,氧化亚铁硫杆菌,氧化硫硫杆菌。
真菌和酵母:Acremonium chrysogenum,粉虱座壳孢,棉阿舒囊霉、泡盛曲霉,黄曲霉,解乌头酸曲霉,米曲霉,酱油曲霉,土曲霉,温特曲霉,出芽短梗霉,白僵菌,Beauveria inflatum,Candida flaveri,解脂假丝酵母,Candida oleophila,Candida periculosa,热带假丝酵母,产朊假丝酵母,顶头孢,雀稗麦角,Claviceps fusiformis,Clitopiluspasseckerianus,弯孢、Cyclindrocarpon radicicola,阿舒假囊酵母,异常汉逊酵母,Hirstutella thompsonii,脆壁克鲁维酵母,乳酸克鲁维酵母,绿僵菌,米黑毛霉,微小毛霉,Myocandida ribofiavina,侵菅新赤壳,Phaecilomyces varioti,产黄青霉,沙门柏干酪青霉,Penicilliumgriseofulvum,娄地青霉,展青霉,Phanerochaete chrysosporium,布拉克须霉,季也蒙毕赤酵母,树干毕赤酵母,Pullularia pullulans,Rhizopusdelemar,台湾根霉,日本根霉,Rhizopus nigricans,雪白根霉,酿酒酵母,卡尔酵母,鲁酵母,Saccharomyces lipolytica,粟酒裂殖酵母,Sclerotium glutanicum,Sesquicilliopsis rosariensis,Streptomyxa affinis,Tolypocladium inflatum,Tolypocladium terricola,Torula cremovis,木兰球拟酵母,Torulopsis utilis,血红栓菌、三角酵母。
非植物致病性微生物优选真菌或酵母,但尤其选择真菌。
特别优选的真菌种类属于以下属和种:
Acremonium属种类如Acremonium Chrysogenum,曲霉属种类如泡盛曲霉,解乌头酸曲霉,短梗霉属种类如出芽短梗霉,白僵菌属种类如Beauveria bassiana,Beauveria inflatum,斜盖伞属种类如Clitopiluspasseckerianus,毛霉属种类如米黑毛霉,微小毛霉,新赤壳属种类如侵菅新赤壳,Phaecilomyces种类如Phaecilomyces varioti,青霉属种类如产黄青霉,沙门柏干酪青霉,桔青霉,Penicillium griscofulvum,娄地青霉,Penicillium urticae,展青霉,Phanerochaete属种类如Phanerochaete chrysosporium,发芽微菌属种类如Pullularia pullmans,裂殖酵母属种类如粟酒裂殖酵母,Tolypocladium属种类如Tolypocladium infiatum,Tolypocladium terricola,栓菌属种类如血红栓菌,木霉属种类如康宁木霉,Trichoderma reseei,绿色木霉。
根据本发明可以使用的更优选的微生物属于青霉属和头孢属,其中产黄青霉和顶头孢是特别优选的。
此处使用的“生物物质(biomass)”指的是在为例如生产药剂如抗生素的生物技术发酵过程中得到的干燥的有机废品。在收集的时候,湿的微生物生物物质经过过滤从液体中分离,例如含抗生素相,并且例如在130到150℃下,4到6小时时间干燥。这种干燥的有机废品现在可作为生产本发明制剂的起始材料。
优选地,起始材料是来自生物技术发酵过程的废品的,优选地来自产黄青霉和顶头孢发酵的真菌生物物质(菌丝体)。
适合作为提取过程步骤(a)和(d)的无机溶剂的优选例子是水。适合作为步骤(a)和(d)的有机溶剂的优选例子是醇类,例如异丙醇,乙烯醇或甲醇。
通常使用浓度为每升溶剂中50到200克(干重)来自非植物致病性微生物的生物物质。优选地每升溶剂中悬浮大约150克(干重)生物物质。
从步骤(a)得到的悬浮液在没有进一步调整时,典型地pH值为2.8-5.6,优选地大约3.3到大约3.6。此悬浮液一般在室温下(+20~+25℃)搅拌1到12小时[步骤(b)]。
步骤(c)的典型温育条件是,例如在+120℃1小时,+80℃2小时,+20℃12小时。由此,最高温度是+120℃,最低温是+20℃。在+120℃时,温育期时间不应超过2小时,并且不应少于0.5小时;而在+20℃时,温育期最短时间应是8小时,最长时间是70小时。本领域技术人员将知道在所给的+120℃和+20℃之间的任一温度下,如何确定温育期的最短和最长时间。优选地温育在同时加热和高压灭菌的情况下进行,例如+120℃1小时(由此路线得到的提取物此后称为提取物PEN-A)或在+80℃2小时。在20℃温育12小时得到的提取物称为提取物PEN-B。
步骤(d)中重新悬浮典型地通过震荡进行或混合步骤(c)中可能已分离或固体和液体成分的悬浮液。
步骤(e)当然是在使用的温育温度高于室温时才需要。
步骤(f)中的过滤典型地通过滤纸进行,得到褐色的澄清溶液并有发酵产物典型的气味。此过滤步骤也可通过间断式或连续离心,或采用压滤器以工业规模进行。过滤步骤尤其用来减少植物毒性的危险。本发明优选制剂是通过包括过滤步骤(f)的步骤得到。
根据本发明,在步骤(e),或优选地过滤步骤(f)之后,提取物适当干燥,这样可以以粉末形式包装和运输,并被最终使用者重新悬浮使用。干燥条件并不关键,已知的方法如冻干法,喷干法或旋转干燥法都可使用。
提取方法的改变将导致所需植物保护剂的活性严重丧失和/或引起提取物严重的植物毒性副作用。
本发明制剂典型地包含以下活性成份:
1)聚合程度在2到30之间甚至更大的支链或非支链低聚糖,
2)单糖类,和
3)蛋白,糖蛋白和/或脂蛋白。
优选地,本发明的制剂包含:
1)0.5~8.0克/升,聚合程度在2到30之间的支链或非支链低聚糖,主要是β1-6键和β1-3键,
2)0.1~4.0克/升单糖,和
3)0.1~1.5克/升蛋白,糖蛋白和/或脂蛋白。
由上述低聚糖水解释放的单体主要是按如1∶1∶1(对于产黄青霉),2∶1∶2,1∶1∶2或2∶1∶1比例的甘露糖、半乳糖和葡萄糖,另外还有N-乙酰葡聚糖,葡聚糖和壳多糖。
主要的诱导植物防御的活性与分子量<3’000道尔顿的分子相关。
本发明也提供在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的组合物,包括作为活性成分的本发明制剂,并与农业上可接受的稀释剂(此后称稀释剂)和选择性地一种或多种植物农药结合。这些组合物用常规方法得到,例如通过混合本发明制剂,稀释剂和选择性地,诸如表面活性剂的其它成份得到。
此处使用的术语稀释剂是指农业可接受的液体或固体材料,它可加入到活性制剂中分别将制剂稀释到可用的或所需的活性强度,使之成为更容易或更好应用的形式。这样的稀释剂的例子是滑石、高岭土,硅藻土,二甲苯或水。
以喷雾形式,如可分散的水浓缩液或可湿的粉末使用的特别配方可包含表面活性剂如润湿剂、分散剂,例如甲醛和奈磺酸盐的缩合产物,烷芳基磺酸盐,木素磺酸盐,脂肪烷基磺酸盐,乙氧化烷基苯酚和乙氧基脂肪醇。一般地配方包含重量百分比为0.01-90%的活性制剂(本发明制剂和可选择的农药),0-20%的农业上可接受的表面活性剂和10-99.99%的稀释剂。组合物的浓缩形式,例如乳化浓缩液,一般包含重量百分比为2-90%,优选地5-70%之间的活性制剂。配方的应用形式一般包含重量百分比为0.0005%-10%的本发明活性制剂,如活性制剂典型的喷雾悬浮液,举例来说可含有重量百分比从0.0005%到0.05%例如0.0001%,0.002%或0.005%的活性制剂。
除了常用的稀释剂和表面活性剂,本发明制剂还可进一步含具有特殊目的的添加剂,如稳定剂,钝化剂(用于有活性表面的固体配方或载体),增加植物吸附性的试剂,防腐剂,消泡剂和着色剂。
可与本发明制剂联合使用的合适的植物农药包括杀真菌剂、除草剂、杀细菌剂、杀虫剂等。本发明制剂优选地与杀真菌剂联合使用,杀真菌剂例如硫磺,百菌清,抑菌灵;胍类杀真菌剂如双胍盐;二硫代氨基甲酸盐如代森锰锌,代森锰,代森锌,甲基代森锌;三氯甲硫基苯基邻氨甲酰亚胺及类似物如克菌丹,敌菌丹和灭菌丹;苯并咪唑类如多菌灵,苯菌灵,吡咯类如噁醚唑,环唑醇,氟硅唑,粉唑醇,乙唑醇,丙环唑,戊菌唑,戊唑醇,metaconazole,epoxiconazol,氟醚唑,triticonazde,烯丙异噻唑,tricyclazole,fluquinconazole,prochloraz;吗琳类如丙菌灵;苯锈啶,烯酰吗啉,或其它有益作用的物质,如在WO97/00011配方Ⅰ中公开的杀真菌剂如quinoxyfen,famoxyadone,spiroxamine,fenhexamide,2-(2-苯氧基苯基)-(E)-2-甲羟亚氨基-N-甲基乙酰胺,[2-(2,5-二甲基苯氧基甲基)-苯基]-(E)-2-甲羟亚氨基-N-甲酰胺,(1R,3S/1S,3R)-2,2-二氯-N-[(R)-1-(4-氯苯基)-乙基]-1-乙基-3-methylcyclopropan carboxamide,甲氧基丙烯酸酯和甲羟亚氨基丙烯酸酯;azoxystrobin,kresoxiom-methyl cymoxanil,cyprodinil,咯喹酮,噁霜灵,烷基金属,或R-烷基金属,或杀虫剂如呋线威或如EP-A-0580553的配方Ⅰ中公开的化合物,由此优选地与环唑醇,丙环唑,R-烷基金属,或噁霜灵结合。
这种结合在防治晚期凋萎病(致病疫霉),anthrocnose(葫芦科刺盘孢),锈病(Puccinia tritici),霜霉病(禾白粉菌),青枯病(嗜管欧文嗜菌)和叶角斑病(流泪绿细菌)时尤其有效。
植物杀真菌剂配方例子如下:
a.可湿性粉末配方
将10份干燥形式的本发明制剂,4份合成的精细SiO2,3份月桂基硫酸盐,7份木素磺酸钠和66份精细纯的高岭土以及10份硅藻土混合并研磨,直到颗粒平均大小至大约5微米。所得的可湿性粉末在使用前用水稀释成喷洒液,通过叶面喷洒和根部浸润使用。
b.颗粒
在液筒混合器中,按重量比,将0.5份粘合剂(非离子tenside)喷到94.5份石英砂上,并全部彻底混匀。然后加入5份干燥形式的本发明制剂,接着彻底混匀以得到颗粒大小在0.3到0.7毫米之间变动的颗粒配制物(需要时,颗粒可以加入重量比1~5%的滑石粉来干燥)。这种颗粒可以通过渗入所处理植物附近的土壤使用。
c.乳化浓缩液
按重量比例,将10份本发明制剂与10份乳化剂和80份二甲苯混合,这样得到的浓缩物在使用前用水稀释以形成具所需浓度的乳剂。
d.拌种剂
45份本发明试剂和1.5份phenoldecaglycolether环氧乙烷加合物,2份润滑油,51份滑石粉,0.5份着色剂罗丹明B混合。混和物在Contraplex磨碎机中于10,000rpm磨碎,直到得到的颗粒大小少于20微米。得到的干粉有很好的吸附性,并可以例如通过在缓慢转动的容器中混合2到5分钟应用于种子。
本发明试剂可以通过喷洒叶和/或茎表面应用于植物,它可以通过浸润土壤或通过在土壤中运用颗粒或胶囊应用于土壤,并且可以作为拌种剂使用施用于种子。
优选的使用方式是通过喷洒在叶和茎的表面,或者通过轮流喷洒叶和/或茎表面和浸湿土壤结合使用。
当本发明制剂通过喷洒植物叶和茎表面使用时,它也可含进一步的成份,如本领域已知的佐剂、固定剂、表面活性剂和胶粘剂。
当组合物用来作为伴种剂时,可以和粘合剂结合使用,或者以胶囊形式使用,这可通过熟知的胶囊技术完成。
典型地,本发明试剂的使用剂量是每植物0.005到1.0克葡萄糖当量,或者变换地每公顷每次治疗0.05kg到2kg。可能需要重复治疗。葡萄糖当量用葡萄糖为标准按“Anthron”方法决定。[Dische,Z(1962)碳水化合物的颜色反应。碳水化合物生物化学方法Vol.(由Whistler,R.L.Wolfrom,M.L,编辑)学术出版社Inc.New York]。
用于在植物中诱导抗性的提取物的使用浓度典型地是0.5到3.0克/升葡萄糖当量。
根据以下公式,计算相对于对照植物的保护程度:
Figure A9719498900141
下面的例子用来证明本发明。这些例子是为了说明而不是限制。实施例1  青霉属提取物的制备
300克干重由青霉素生产得来的产黄青霉菌丝体废物转移到2000毫升Duran玻璃瓶中,其中加入蒸馏水至终浓度为2升(溶液的pH值是3.2)。得到的悬浮液在室温下以700转/分的速度搅拌1小时,然后于+121℃,1巴高压灭菌1小时。而后蒸馏热瓶小心摇动使之冷却并放置过夜。然后瓶中的所有内容物通过Melitta滤纸咖啡过滤器1×10过滤,收集含活性提取物的过滤液(此后称为“PEN提取液”)。提取液的糖含量(葡萄糖当量)以葡萄糖为标准按“Anthron”方法确定[Dische,Z(1962)碳水化合物的颜色反应。碳水化合物的生物化学方法。Vol.(Whistler,R.L.Wolfrom,M.L.编辑)学术出版社Inc.New York]。
典型的PEN提取液每升大约含有5克葡萄糖当量,在用于所测植物前典型地稀释2-3倍。实施例2  处理西红柿以抵抗致病疫霉植物和真菌材料
植物西红柿(Lycopersicum esculentum)的变种“Baby F1”在温室中,于含1/3沙子和2/3 TKS1土壤混合物的120穴育种床中生长,培养条件为25℃,16小时光照/8小时无光照。14天后,单个幼苗移载到直径10厘米的盆中,保持在同样的生长条件下再生长3周。
致病疫霉菌种在密封塑料盘中的双凹切开的土豆片(从生物养植得到的Bintije栽培品种)上,避光,+12至+16℃,60~80%相对湿度下培养6-7天。
接种悬浮液通过用100毫升冰冷蒸馏水冲洗覆盖形成孢子的致病疫霉菌丝体的土豆片制备。菌丝体碎片经过滤除去,滤过的孢子囊数量通过在显微镜下于“Neubauer”计算器中计算确定。
接种液浓度在即将接种之前调整到每毫升30-40,000个孢子囊。处理
处于五真叶阶段的西红柿植株在用致病疫霉孢子囊悬浮液接种前7天和3天,用PEN提取物根灌或喷酒。
根灌:植株在处理前一天保持干燥,盆放在7×7cm的盘子中以收集过剩的灌溉液。在温室中室温下施用60毫升每升含1-2克葡萄糖当量的PEN提取液。
喷洒:用JATO 232FR型空气动力喷枪以0.5巴的压力,在整株植物上喷洒含1-2克葡萄糖当量的PEN提取液直到接近溢出(每株大约10-15毫升)。
处理后,在接种攻击植物前,植物置于温室中。对照组植物用蒸馏水模拟处理。攻击接种:
在通风的接种室,用JATO 232FR型空气动力喷枪以0.2巴的压力,对处理组或对照组植物喷洒10毫升冰冷的孢子囊悬浮液,主要在低部叶面覆盖均匀的troplets薄层。
接种后,立即将植物移到有机玻璃盒子中,在+12至+16℃,100%相对湿度下避光放置24小时。然后将它们放回温室,并在上述标准条件下放置。评估:
接种5-6天后,当在对照组植物上可看到典型症状时,侵染程度目测确定,表示为在所测植物下部5片叶子上受侵染叶片区域的百分率(%)。根据下述公式计算相对于对照组的保护程度。
结果在表Ⅰa中表示。结合根灌和喷洒得到最佳结果。表Ⅰa:在根灌和喷洒施用及根灌与喷洒结合施用中,使用PEN在西红柿中诱导针对致病疫霉的抗性。
    处理°     PEN浓度 受侵染叶面百分率%     保护%
    D+S     1.5g/l,2.0g/l     4     91
    D+S     1.5g/l,1.0g/l     10     75
    D+S     1.5g/l,0.5g/l     23.3     50.1
    D+S*     2.0g/l,1.5g/l     8     89
    2D     1.5g/l     40     14.3
    1D     1.5g/l     18.3     60.8
    2S     1.5g/l     10     78.6
    1S     1.5g/l     16.7     64.2
    对照,水     47
  *对照,水     73
数值是四个独立试验的平均值。平均误差≤9.5%。D=根灌,S=喷洒。接种前7天第一次处理,接种前3天第二次处理。此数值来自在不同的试验,因此也有不同的对照值,如表Ⅰa最后一行所示。实施例3  处理马铃薯以抵抗致病疫霉
使用与实施例2相同的方法,在从“Bintje”品种块茎长出的,处于四叶阶段的马铃薯中诱导对致病疫霉的抗性。结果在图Ⅰb中表示。通过喷洒施用得到最佳结果。表Ⅰb:在喷洒施用和喷洒与根灌结合施用中,使用PEN在土豆中诱导对致病疫霉的抗性
    处理°  PEN浓度 受侵染叶面百分率%     保护%
    1D+1S     2g/l,2g/l     10     83
    1D+1S     1g/l,1g/l     20     67
    2S     3g/l     7     89
    2S     2g/l     3     95
    2S     1g/l     8     86
    2S     0.5g/l     27     56
    β-丁酸     500ppm     23     61
    对照,水     61     0
此数值是三个独立试验的平均值。平均误差≤11%。D=根灌,S=喷洒。接种前7天第一次处理,接种前3天第二次处理。BABA=用作标准化学诱导剂的β-丁酸。实施例4  处理菜豆以抵抗疣顶单胞锈菌植物和真菌材料
品种“Musica”的两种菜豆(Phaseolus aureus)种子于装有含1/3沙子和2/3 TKS1的土壤混合物,直径8厘米的盆中,在+25℃,16/8小时光/暗节律下生长16天。每盆选出第二片叶子即将展开的一株幼苗用于试验。
取出KRYO液氮保存的疣顶单胞锈菌菌株的孢子。1mg孢子产出1ml接种悬浮液。处理:
处于第二片叶阶段的菜豆植株在用疣顶单胞锈菌孢子悬浮液接种前7天和3天,进行根灌和/或喷洒。
根灌:植株在处理前1天保持干燥,培养盆放在7×7cm的盘中以收集过剩的灌溉液。40毫升PEN提取液,每升含有1-2克葡萄糖当量。处理完毕后,植株在温室中,于+20至+25℃不浇水放置一天。
喷酒:用JATO 232FR型空气动力喷枪,在0.5巴下,在整个植株上喷洒含1~2克葡萄糖当量的PEN提取液、
处理后,在接种攻击植物前,植物置于温室中。对照组植株用蒸馏水模拟处理。攻击接种:
在通风的接种室,用JATO 232FR型空气动力喷枪,以0.2巴压力,对处理组或对照组植物喷洒近3毫升孢子悬浮液,在低部叶面覆盖均匀的troplets薄层。
接种后,立即将植株转移到有机玻璃盒子中,在+20℃,60%相对湿度和黑暗中放置24小时,然后恢复光照,在相同条件下再放置4天。此后将植株放回温室,并在上述标准条件下放置。除去未接种的叶子。评估:
接种两周后,当真菌在对照植株形成孢子时,侵染程度目测确定,表示为接种叶受侵染叶面百分率。根据下述公式计算相对于对照组的保护程度。结果在表Ⅱ中表示。以2g/l或0.5g/l浓度两次根灌得到最佳结果。表Ⅱ:在根灌和喷洒应用及根灌与喷洒结合应用中,通过用PEN喷洒处理在菜豆诱导对疣顶单胞锈菌的抗性。
    处理* PEN浓度 受侵染叶面百分率%     保护%
    2D     2g/l     5     95
    2D     1g/l     60     37
    2D     0.5g/l     3     97
    1D+1S     2g/l     17     82
    1D+1S     1g/l     33     65
    1D+1S     0.5g/l     50     47
    2S     2g/l     27     72
    2S     1g/l     90     5.3
    2S     0.5g/l     60     37
对照组,水     87     9
数值是二个独立试验的平均值,每个实验使用4个植物,平均误差≤8.5%。D=根灌,S=喷洒。接种前7天第一次处理,接种前3天第二次处理。实施例5  处理小麦以抵抗小麦叶锈病菌植物和真菌材料
品种“Arina”的10种小麦(Triticum arvense)种子于含1/3沙子和2/3 TKS1的土壤混合物,直径8cm的盆中,在+25℃,16/8小时光/暗节律下生长7天,直到第一片叶子完全展开。
褐锈病菌株小麦叶锈病菌繁殖在同样品种的小麦上。切下完全侵染的,长出孢子的叶片,掸下孢子粉到含0.05%Tween 20的水中。接种密度调整到每毫升100,000个孢子。处理:
第二片叶子刚长出的小麦植株在接种前7天和接种前3天喷洒。整株植株用model JATO 232 FR型空气动力喷枪,以0.5巴压力,喷洒含1~2克葡萄糖当量和0.05%Tween 20的PEN提取液直到接近溢出。
处理后,在接种攻击前植株置于温室中。对照植株用蒸馏水模拟处理。攻击接种:
在通风接种室,用JATO 232 FR型空气动力喷枪,以0.2巴压力对处理组或对照组植株喷洒近3毫升孢子悬浮液,以在整株幼苗上形成均匀的troplets薄层。
当troplets干后,植株转移到有机玻璃盒子中,在+20℃,60%相对湿度下,避光放置24小时,然后恢复光照,植物在相同条件下再放置4天。此后将植株放回温室,并在上述标准条件下放置。评估:
接种10天后,当真菌在对照组植株上形成孢子时,侵染程度通过目测确定,表示为接种植株叶子受侵染叶面百分率。根据下式公式计算相对于对照组的保护程度
Figure A9719498900201
结果在表Ⅱ中表示。以2g/l浓度施用分子量2-3KD的PEN组分得到最佳结果。表Ⅲ:通过用PEN和PEN的分子大小组分喷洒处理在小麦中诱导对小麦叶锈病菌的抗性。
    处理     浓度 受侵染百分率%     保护%
    PEN     2g/l     15.9     73.9
    PEN     1g/l     42.2     30.9
    PEN>30kD     4g/l     21.4     65
    PEN>10kD     2g/l     33.3     45.5
    PEN>10KD     1g/l     25     59
    PEN 2-3KD     2g/l     8.9     85.4
   PEN 2-3kD     1g/l     20     67.3
   PEN>300D     1g/l     11.1     81.3
   PEN>300D     0.5g/l     33.3     45.5
   CGA 245 704     30ppm     31.3     48.8
   CGA 245 704     6-ppm     60     20
    配方对照     42.9     29.8
    水对照     61.1     0
此数值是4个独立试验的平均值。平均误差≤10%。CAG 245 704,BION的活性成分,用作化学标准诱导剂。实施例6  处理黄瓜以抵抗葫芦科刺盘孢和流泪绿细菌植物/致病菌材料
黄瓜(Cucumis sativus)Wisconsin变种植株在40ml的盆中,于温室中生长10天。于+20℃、在含V8-蔬菜汁培养基的培养皿上生长7天。流泪绿细菌于+30℃,在含YDC培养基(酶母-葡萄糖-碳酸钙)的锥形瓶中生长24小时。处理:
用特殊喷管,将含有1.5g/l或3g/l葡萄糖当量的PEN-A或PEN-B提取液的喷洒液喷到叶子上直到接近溢出。处理后,植株在+22℃的温室中培养3天或7天。对照组植株用水处理。攻击接种
葫芦科刺盘孢的孢子悬浮液(1.2.105孢子/毫升)用Velbiss喷枪喷到植株叶子上。植株在+23℃,95%相对湿度(RL)避光培养30小时。然后植株转移到温室,条件为+22至+23℃,标准相对湿度。
用Velibiss喷枪,将流泪绿细菌悬浮液(108细胞/毫升)以2巴压力喷到叶子上。接种前植株在100%相对湿度下培养4小时。接种后植株再在23至+24℃,100%相对湿度的温度中培养。评估:
6天(流泪绿细菌)或7~8天(葫芦科刺盘菌)后,疫病通过目测判断,估算受侵染叶面百分率。结果总结在下表中。
    预防活性%接种前处理天数         PEN-A          PEN-B
    1.5g/l     3.0g/l     1.5g/l     3.0g/l
葫芦科刺盘孢/黄瓜3天     96     92     98     98
葫芦科刺盘孢/黄瓜7天     0     95     0     0
流泪绿细菌/黄瓜7天     10     10     80     35
流泪绿细菌/黄瓜7天     0     20     20     20

Claims (13)

1.一种在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的制剂,其中该制剂是可按下述方法得到的来自非植物致病性微生物的生物物质提取液:
a)在每升无机或有机溶剂中重新悬浮50g-200g(干重)来自非植物致病性微生物的生物物质;
b)在室温下搅拌1到12小时;
c)温育;
d)重新悬浮;
e)使其冷却至室温;以及
f)选择性地,过滤。
2.根据权利要求1所述的制剂,其中来自非植物致病性微生物的生物物质是来自生物技术发酵过程的废物的真菌生物物质。
3.根据权利要求1或2所述的制剂,其中微生物是非植物特异的微生物。
4.根据前述权利要求中任意一项所述的制剂,其中生物物质来自下列微生物发酵:Acremonium属种类,曲霉属种类,短梗霉属种类,白僵菌属种类,斜盖伞属种类,毛霉菌属种类,新赤壳属种类,Phaecilomyces属种类,青霉属种类,Phanerochate属种类,Pullularia属种类,裂殖酵母属种类,Tolypocladium属种类,栓菌属种类,木霉属种类。
5.根据前述权利要求中任意一项所述的制剂,其中生物物质来自产黄青霉和顶头孢发酵。
6.根据前述权利要求中任意一项所述的制剂,包含以下物质作为活性成份:
a)聚合程度2-30之间的分支或不分支低聚糖;
b)单糖;和
c)蛋白,糖蛋白和/或脂蛋白。
分子量<3’000道尔顿。
7.一种在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的组合物,该组合物包含有效量的根据前述权利要求中任意一项所述的植物抗性诱导制剂和农业上可接受的稀释剂。
8.根据权利要求7所述的组合物,进一步包含一种或多种植物农药。
9.来自产黄青霉的提取物,该提取物能在植物中诱导对植物致病性微生物的抗性。
10.根据权利要求9所述的提取物,其中该提取物通过下述方法得到。
a)在每升无机或有机溶剂中再次悬浮50g到200g(干重)来自产黄青霉的生物物质;
b)在室温下搅拌1到12小时;
c)温育;
d)重新悬浮;
e)使其冷却至室温;以及
f)选择性地,过滤。
11.根据权利要求9或10所述的提取物,其中该提取物以0.5-3.0g/l葡萄糖当量浓度施用时,可在植物中诱导抗性。
12.通过给植物,土壤或种子施用有效量的权利要求1到6中任意一项所限定的制剂,在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的方法。
13.生产用于在植物中诱导对植物致病性微生物抗性的制剂的方法,所述制剂是来自非植物致病性微生物的生物物质抽提液,该方法包括以下步骤:
a)在每升无机或有机溶剂中重新悬浮50g到200克(干重)来自非植物致病性微生物的生物物质;
b)在室温下搅拌1到12小时;
c)温育;
d)重新悬浮;
e)使其冷却至室温;以及
f)选择性地,过滤。
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