CN117737257A - 一组草鱼c3.1基因snp分子标记及其在鉴定草鱼出血病抗性中的应用 - Google Patents

一组草鱼c3.1基因snp分子标记及其在鉴定草鱼出血病抗性中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一组草鱼C3.1基因SNP分子标记,其特征在于,所述分子标记包含SNP1、SNP2、SNP3、SNP4、SNP5、SNP6、SNP7、SNP8、SNP9和SNP10;所述SNP1‑SNP10位点为依次位于1号染色体上的第7065、第42128位、第42188位、第42452位、第48268位、第76714位、第76773位、第76945位、第77153位和第77252位核苷酸;所述SNP1‑SNP10位点在染色体上的位置是基于草鱼参考基因组序列比对确定的,草鱼参考基因组序列的版本号为HZGC01(GCA_019924925.1)。测序扩增确定C3.1基因内含子上存在一些抗GCRV相关单核苷酸多态性位点,其中具有显著差异性位点有SNP3(g.42188A/G)的AA基因型,SNP7(g.76773C/T)的CT基因型,SNP8(g.76945T/C)的CT基因型。本发明揭示了C3.1在草鱼免疫抗病方面的作用,为开展草鱼抗GCRV分子育种提供了相关有效标记,并为解析其抗病性状的遗传机制提供理论基础。

Description

一组草鱼C3.1基因SNP分子标记及其在鉴定草鱼出血病抗性 中的应用
技术领域
本发明涉及分子标记技术,具体而言,涉及一组草鱼C3.1基因SNP分子标记及其在草鱼出血病抗性中的应用。
背景技术
草鱼(Ctenopharyngodon idella)隶属于鲤科、雅罗鱼亚科、草鱼属,是我国淡水养殖中重要的养殖鱼类之一,2022年年产量达590.4万吨,居淡水养殖产量首位,较2021年增幅2.6%,在我国淡水鱼类养殖产量中占比21.79%。近些年来我国草鱼养殖产量增长迅速,养殖规模逐渐扩大,养殖方式也逐渐增多。草鱼出血病属呼肠孤病毒科(Reoviridae)水生呼肠孤病毒属成员(Aquareovirus),因此也称之为草鱼呼肠孤病毒(Grass carpreovirus,GCRV),是一种传染快、发病急、死亡率高的危害鱼类最严重的流行病,主要危害一、二龄鱼种,流行季节(6-9)月发病率高,死亡率高达80%以上。电镜观察结果显示,GCRV能在草鱼肠道、脾网状细胞、血管内皮细胞、肾等组织中进行复制,无外衣壳的未成熟GCRV粒子存在于肾脏组织,而成熟的GCRV粒子则主要分布于肠道内,在草鱼其他组织中没有观察到相应的病毒颗粒。目前草鱼出血病的防控大致可分为疫苗预防免疫、抗病毒药物防治和生态防控三类,以疫苗免疫为主。
补体系统(Complement System)是由30多种可溶性蛋白、膜结合性蛋白和补体受体组成的多分子系统,在先天性免疫和适应性免疫中均起着重要的作用。种质资源是遗传育种的物质基础,经过多年的工作,为草鱼种质资源保护和遗传改良提供了坚实保障,其中分子遗传学、基因组学研究在其中占据重要地位。其中分子标记已经在畜禽和水产抗病育种中已经起到了非常重要的作用,且研究表明,某些基因的多态性与抗病性状是有关联的,如TLRs、MBL等,也越来越多的学者将防治草鱼出血病的目光投向了草鱼群体中的抗性群体,欲通过育种改良解决这一难题。陈松林团队通过对MHCⅡB基因的多态性研究,筛选出牙鲆抗病等位基因,并将其用于抗病品系的选育中,培育了具有抗病力强的“鲆优2号”;等筛选出了大西洋鲑中抗病性强和易感病的MHC基因型,选出了2个抗病基因型家系和1个易感家系;
在补体各成分中,C3的血清含量最高;在功能上,C3亦居于中心地位,它既是几条激活途径的交汇,又是C3b依赖性阳性反馈环路的基础;同时,C3裂解片段及其结合蛋白复杂而多样,在免疫防御、免疫调控以及免疫病理中发挥着重要作用。C3(186kDa)裂解为C3b(177kDa)和C3a(9kDa)是补体激活级联的中心步骤,可通过三种不同的途径启动-经典途径,凝集素途径和替代途径。补体系统有多种成分介导三种激活途径,在清除外来病原体方面具有很高的效率,但其不适当和过度激活会引发宿主自身免疫性疾病。与具有单个C3的四足动物不同,所有硬骨鱼都具有多个C3,这使得硬骨鱼可以产生多个具有功能活性的C3a。从草鱼(Ctenopharyngodon idella)基因组中鉴定出9个C3基因,命名为C3.1-C3.9。
基于C.idella的转录组分析,补体通路在草鱼感染GCRV过程中变化显著,C3基因为补体通路中关键基因,基于草鱼中具有多个C3拷贝数,本发明的研究目的为,对草鱼C3.1-C3.9进行进化及结构特征分析,判断多个C3拷贝基因中主效因子,并研究该基因SNP位点研究其与草鱼出血病抗性关联,为开发草鱼抗GCRV分子育种提供基础依据。
发明内容
本发明首先提供了一组草鱼C3.1基因SNP分子标记,所述分子标记包含SNP1、SNP2、SNP3、SNP4、SNP5、SNP6、SNP7、SNP8、SNP9和SNP10;
所述SNP1位点为1号染色体上的第7065位核苷酸;
所述SNP2位点为1号染色体上的第42128位核苷酸;
所述SNP3位点为1号染色体上的第42188位核苷酸;
所述SNP4位点为1号染色体上的第42452位核苷酸;
所述SNP5位点为1号染色体上的第48268位核苷酸;
所述SNP6位点为x号染色体上的第76714位核苷酸;
所述SNP7位点为1号染色体上的第76773位核苷酸;
所述SNP8位点为1号染色体上的第76945位核苷酸;
所述SNP9位点为1号染色体上的第77153位核苷酸;
所述SNP10位点为1号染色体上的第77252位核苷酸;
所述SNP1、SNP2、SNP3、SNP4、SNP5、SNP6、SNP7、SNP8、SNP9和SNP10位点在染色体上的位置是基于草鱼参考基因组序列比对确定的,草鱼参考基因组序列的版本号为HZGC01(GCA_019924925.1)。
本发明还提供了上述分子标记作为检测靶标在开发产品中的应用;所述产品的功能为如下(a)或(b)或(c)或(d):
(a)筛查GCRV抗性群体;
(b)筛查GCRV易感群体
(c)评价鱼类患出血病抗性的风险;
(d)鱼类抗GCRV分子育种;
任选地,所述鱼类为草鱼。
本发明还提供了用于检测上述分子标记的物质在制备产品中的应用;所述产品的功能为如下(a)或(b)或(c)或(d):
(a)筛查GCRV抗性群体;
(b)筛查GCRV易感群体;
(c)评价鱼类患出血病抗性的风险;
(d)鱼类抗GCRV分子育种;
任选地,所述鱼类为草鱼。
优选地,所述物质为引物。
优选地,所述引物包含SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8。
本发明还提供了一种产品,包括上述分子标记的物质;所述产品的功能为如下(a)或(b)或(c)或(d):
(a)筛查GCRV抗性群体;
(b)筛查GCRV易感群体;
(c)鉴定鱼类出血病抗性;
(d)鱼类抗GCRV分子育种;
任选地,所述鱼类为草鱼。
优选地,所述物质为引物。
优选地,所述引物包含SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8。
本发明还提供了一种鉴定草鱼出血病抗性的方法,其包括如下步骤:检测上述的SNP,然后判断基因型。
优选地,所述方法用于非诊断目的。
本发明与现有技术相比,至少具有如下有益效果:
本发明以草鱼(Ctenopharyngodon idella)的C3.1。表达分析表明,C3.1是草鱼中的优势C3分子,它在C3主效表达组织肝脏中的表达在mRNA水平上都显著高于其他C3分子。本发明对分组家系后代攻毒后进行qPCR,C3.1在肝和头肾中的相对表达量较高,随攻毒进程两次上升下降,其中在12h具有显著差异,子代抗性和易感群体C3.1的表达具有显著差异。测序扩增确定C3.1基因内含子上存在一些抗GCRV相关单核苷酸多态性位点,其中具有显著差异性位点有SNP3(g.42188A/G)的AA基因型,SNP7(g.76773C/T)的CT基因型,SNP8(g.76945T/C)的CT基因型。本发明揭示了C3.1在草鱼免疫抗病方面的作用,为开展草鱼抗GCRV分子育种提供了相关有效标记,并为解析其抗病性状的遗传机制提供理论基础。
附图说明
图1草鱼C3蛋白活性遗传水平,(a)草鱼亲本血液ELISA检测蛋白活性表达;(b)根据亲本蛋白表达活性按照20%、60%、20%分为高、中、低群体进行繁育,检测子代鳍条C3.1-C3.9mRNA表达含量。
图2草鱼C3.1-C3.9全长筛选位点信息统计,顺序分别为,C3.1-C3.9SNP基因组位置分布信息图,C3.1-C3.9SNP转换颠换数据统计图,C3.1-C3.9SNP转换颠换类型统计图,C3.1-C3.9SNP编码信息统计图。
图3验证草鱼C3.1基因内10个SNP信息,(a)草鱼C3.1基因结构及SNP位点(方块为外显子,折线为内含子);(b)C3.1随机筛选4个SNP位点峰图验证,顺序分别为,SNP1第7065位点T/C型测序峰图,SNP2第42128位点T/C型测序峰图,SNP3第42188位点A/G型测序峰图,SNP4第42452位点A/G型测序峰图。
图4草鱼C3.1基因SNP位点单倍型分析,(a)抗性群体C3.1中SNP1-SNP10连锁不平衡分析;(b)易感群体C3.1中SNP1-SNP10连锁不平衡分析。
具体实施方式
为使本发明要解决的技术问题、技术方案和优点更加清楚,下面将结合附图及具体实施例进行详细描述。
实施例1材料与方法
1.1试验材料
普通草鱼,体长10-15cm,体质量15-25g,从湘阴渔场获得,在28-31℃水温的实验室暂养系统中驯化并饲养一周,每天以3%的体质量作为喂食量,更换四分之一的水,密切监测水温、溶氧及氨浓度。
攻毒用GCRV从珠江所提供病鱼分离提毒获得,后利用普通草鱼注射分离毒株扩繁制备。
1.2草鱼抗感和易感群体的采集
随机选取普通鱼苗进行攻毒感染试验,各分为5组重复,对照组40尾鱼不作处理放置在系统内养殖,中组GCRV感染组200尾鱼浸泡10ml稀释500倍病毒滴度为1×107TCID50/mL的GCRV溶液,普通组GCRV感染组200尾鱼浸泡10ml稀释500倍病毒滴度为1×107TCID50/mL的GCRV溶液,感染后每隔6h观察1次鱼苗死亡情况,参考前期研究中评判抗感和易感样品的标准,将感染后5d内死亡的个体作为易感个体,感染后14d后还存活的个体作为抗感个体,采集易感、抗感个体的尾鳍样品,于样品稳定剂(TaKaRa)中,-20℃保存备用。
1.3DNA提取
抗性-易感草鱼鳍条的基因组DNA按照omega试剂盒提取。
1.4引物、PCR扩增和测序
根据草鱼补体系统C3.1序列及SNP位点设计SNP特异性扩增引物,20μLPCR扩增体系:7μL的水,10×PCR缓冲液10μL,正反引物各1μL(10μmol·L-1),和1μL的模板DNA。进行PCR反应的条件如下:在94℃预变性5min,94℃变性30s,58~65℃复性30s,和72℃延伸30s,共35个循环,72℃10min。
表1草鱼C3.1扩增多态性引物
1.5C3.1中SNP的鉴定与数据分析
以草鱼基因组DNA为模板进行PCR得到的产物在2%琼脂糖凝胶上电泳分离,用PCR凝胶纯化试剂盒纯化。随后生工公司对纯化的PCR产物进行双向测序。用DNAMAN软件对扩增片段进行拼接。利用测序手段获得抗性、易感样本对照参考基因组筛选验证SNP,采用SPSS23.0软件进行统计分析。用卡方检验计算等位基因频率和基因型频率在抗性组和易感群组中的差异。P<0.05和0.01分别代表有统计学意义和差异极显著。
2结果与讨论
2.5C3蛋白及遗传性
采集攻毒后抗性、易感两个群体的鳍条提取RNA检测C3.1-C3.9表达量,采集草鱼血液进行ELISA检测,结果如图1,在173尾长江草鱼、92尾湘江草鱼亲本发现血液中C3的散点分布图呈现一种中间宽、两头尖的分布,符合正态分布特征。长江草鱼C3蛋白含量平均值为130.7,分布偏右,分布平缓,偏度为0.326,峰度为0.140,湘江草鱼C3蛋白含量平均值为146.6,分布偏左,分布陡峭,偏度为0.065,峰度为-0.416。湘江流域亲本平均C3蛋白浓度高于长江亲本,说明C3蛋白在不同个体中存在多态性,且根据养殖水域不同蛋白活性水平也有差异,也会影响草鱼对抗病毒效应。C3根据蛋白表达含量20%、60%、20%、分为高、中、低三组,分别进行繁育,检测子代鳍条中C3.1-C3.9mRNA表达含量,结果见图1,可知C3.1、C3.2、C3.4、C3.5、C3.6、C3.8、C3.9趋势相同,都是中组大于高组大于低组,说明C3遗传层面特性,中等蛋白水平亲本繁育的子代一龄有较高mRNA水平。
2.6草鱼C3.1的SNPs鉴定及其抗GCRV的关系
采集子代抗性、易感群体进行C3.1-C3.9mRNA表达水平分析见图2,结果表明其中C3.4、C3.7表达水平在易感群体中低于抗性群体,其他7个基因都是抗性群体表达低于易感群体,C3.1、C3.4相较于其他7个基因属于高表达,且在抗性、易感两个群体中具有显著性差异,其中C3.1差异表达在两倍以上,更符合本研究后续SNP分析的表性差异选择,采集肌肉送生工公司进行测序用于筛选SNP位点。
测序所得C3.1-C3.9的SNP信息进行统计,结果见图2,C3.2的SNP位点数远高于其他8个C3基因,C3.1、C3.8、C3.9的SNP位点数量接近,C3.3最少。其中9个C3基因中处于内含子的SNP位点约占74.95%,其中C3.6内含子SNP位点占所有位点数的89.67%,C3.4、C3.1、C3.9其次,C3.2最少,占56.38%;处于外显子的SNP位点约占22.85%,其中C3.2外显子SNP位点占所有位点数的42.42%最高,其次是C3.7、C3.8、C3.3,C3.6处于外显子数量最少,占总数的0.098%;剩下SNP位点基本处于3’UTR和5’UTR,占0.01%,且基本3’UTR数量大于5’UTR。
在所有外显子SNP中,非同义转换占46.2%,其中C3.7占比最高,达到68.99%,C3.5最少仅有27.78%,C3.7有一个外显子SNP为终止突变,处于第1385位。此外C3.1-C3.9还具有不少indel突变,其中C3.8的indel突变数目最高,为51个,C3.3最少仅有4个且全在内含子区域,其余8个基因indel位置在内含子的数量在88.23%以上,其余还处在外显子、3’UTR、5’UTR位置上。
对SNP的类型分析发现,C3.1-C3.9的转换类型占65.96%-56.14%,其中C3.3、C3.7、C3.8、C3.9中C/T类转换类型占比最多,其他都是A/G占比最高,其中发现[G→A]出现的次数高于[A→G];同样[C→T]出现的频次明显高于[T→C],C3.1-C3.9的ts/tv值分别为1.94、1.37、1.27、1.89、1.39、1.66、1.86、1.52、1.67。
利用攻毒后抗性、易感群体进行重测序筛选SNP位点,其中选择C3.1表达效应较高的基因进行后续分析,部分可能性位点进行验证见图3,从所选抗性、易感子代草鱼群体中,C3.1筛选位点,C3.1中第7065位C/T型,抗性群体突变频率为0.821,易感群体突变频率为0.591;第42128位T/C型,抗性突变频率为0.571,易感群体突变频率为0.875;第42188位A/G型,抗性群体突变频率为0.286,易感群体突变频率为0.5;第42452位A/G型,抗性群体突变频率为0.285,易感群体突变频率为0.875;第48268位C/T型,抗性群体突变频率为0.875,易感群体突变频率为0.684;第76714位G/A型,抗性群体突变频率为0.345,易感群体突变频率为0.611;第76773位C/T型,抗性群体突变频率为0.25,易感群体突变频率为0.11;第76945位T/C型,抗性群体突变频率为0.379,易感群体突变频率为0.11;第77153位A/C型,抗性群体突变频率为0.273,易感群体突变频率为0.667;第77252位T/C型,抗性群体突变频率为0.182,易感群体突变频率为0.467;将C3.1上筛选到的SNP位点按照位置信息排序,分别命名为SNP1、SNP2、SNP3、SNP4、SNP5、SNP6、SNP7、SNP8、SNP9、SNP10。
我们在启动子板块同样进行分析,假定C3.1在基因组中查找序列前2k为启动子区,扩增启动子片段,暂未发现SNP突变位点,根据研究基因组中SNP出现频次约为1330bp长度出现1个SNP,所以启动子区可能存在SNP的几率较少。
C3.1基因在GCRV抗性组和乙肝组的SNP统计分析结果如下,利用SPSS19.0软件进行卡方检验发现,C3.1基因的SNP3、SNP4、SNP7、SNP8这4个位点的基因型频率在抗性群体和易感群体中存在极显著差异(P<0.01),C3.1基因的SNP6的基因型频率在抗性群体和易感群体中存在显著差异(P<0.05)但这5个位点的等位基因频率在易感群体和抗性群体中差异均不显著,而SNP1、SNP9这2个位点,在易感群体和抗性群体中等位基因频率差异极显著,SNP2、SNP10等位基因频率差异显著,但这4个位点基因型频率差异不显著。
表2抗性组和敏感组C3.1中个SNP位点的基因型和等位基因的频率
2.7草鱼C3.1SNP的连锁不平衡分析及与病毒抗性的关联分析;
使用Popgen32和PIC软件对10个SNP位点在抗性组和易感组中的遗传多态性进行分析,结果显示,在抗性群体中,PIC的范围处于0.1948-0.3739之间,SNP5属于低度多态(PIC<0.25),其余SNP属于中度多态(0.25≤PIC<0.50);在易感群体中,PIC的范围处于0.1778-0.375之间,其中SNP2、SNP4、SNP7、SNP8属于低度多态(PIC<0.25),其余SNP属于中度多态(0.25≤PIC<0.50)。当PIC>0.50时群体处于高度多态性水平。经χ2检验结果表明,两组群体得到10个位点均处于哈迪–温伯格平衡状态(P>0.05),SNP4位点理论基因型频率和观测基因型频率之间的差异显著(P<0.05)。
表3草鱼C3.1基因GCRV抗性易感组遗传多态性分析
使用Popgen32和PIC软件对10个SNP位点在抗性组和易感组中的遗传多态性进行分析,结果图4显示,使用Haploview 4.2软件中的Four Gamete Rule计算方法对C3.1的10个SNP位点进行连锁不平衡分析,在抗性群体中结果显示:SNP2、SNP3这2个位点高度连锁,构成单倍块1,可形成CG、TA、CA、TG共4个单倍型;SNP5、SNP6这2个位点高度连锁,构成单倍块2,可形成TG、CG、CA共3个单倍型。在易感群体中结果显示:SNP2、SNP3、SNP4这3个位点高度连锁,构成单倍块1,可形成CGA、CAG、TAG、TAA、CAA共5个单倍型;SNP5、SNP6这2个位点高度连锁,构成单倍块2,可形成TG、CG、CA、TA共4个单倍型;SNP7、SNP8、SNP9这3个位点高度连锁,构成单倍块3,可形成CTA、CTC、CCC、TCC、CCA共5个单倍型。
通过对筛选到的SNP位点进行分型并开展GCRV抗性关联分析发现,草鱼C3.1基因SNP3、SNP4、SNP7、SNP8位点的基因型频率在易感群体和抗病群体中存在极显著差(P<0.01),其中SNP3位点的AG基因型在易感群体中为优势基因型(75%),AA基因型在抗病群体中为优势基因型(42.86%);SNP4位点的AG基因型在易感群体中为优势基因型(87.5%);SNP7位点的CC基因型在易感群体中为优势基因型(94.4%),CT基因型在抗病群体中为优势基因型(75%);SNP8位点的TT基因型在易感群体中为优势基因型(72.2%),CT基因型在抗病群体中为优势基因型(58.6%);这些结果表明,C3.1基因的SNP3(g.42188A/G)的AA基因型,SNP7(g.76773C/T)的CT基因型,SNP8(g.76945T/C)的CT基因型基因型与草鱼抗GCRV呈显著相关性。分别对抗性和易感群体的对C3.1基因SNP位点进行连锁不平衡发现,群体间C3.1的10个SNP位点之间存在不同程度的连锁不平衡。本研究筛选到的抗性SNP位点可作为草鱼分子育种的候选分子标记,为抗GCRV草鱼品系的遗传育种提供理论基础。
以上所述是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明所述原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (10)

1.一组草鱼C3.1基因SNP分子标记,其特征在于,所述分子标记包含SNP1、SNP2、SNP3、SNP4、SNP5、SNP6、SNP7、SNP8、SNP9和SNP10;
所述SNP1位点为1号染色体上的第7065位核苷酸;
所述SNP2位点为1号染色体上的第42128位核苷酸;
所述SNP3位点为1号染色体上的第42188位核苷酸;
所述SNP4位点为1号染色体上的第42452位核苷酸;
所述SNP5位点为1号染色体上的第48268位核苷酸;
所述SNP6位点为x号染色体上的第76714位核苷酸;
所述SNP7位点为1号染色体上的第76773位核苷酸;
所述SNP8位点为1号染色体上的第76945位核苷酸;
所述SNP9位点为1号染色体上的第77153位核苷酸;
所述SNP10位点为1号染色体上的第77252位核苷酸;
所述SNP1、SNP2、SNP3、SNP4、SNP5、SNP6、SNP7、SNP8、SNP9和SNP10位点在染色体上的位置是基于草鱼参考基因组序列比对确定的,草鱼参考基因组序列的版本号为HZGC01(GCA_019924925.1)。
2.权利要求1所述分子标记作为检测靶标在开发产品中的应用;所述产品的功能为如下(a)或(b)或(c)或(d):
(a)筛查GCRV抗性群体;
(b)筛查GCRV易感群体
(c)评价鱼类患出血病抗性的风险;
(d)鱼类抗GCRV分子育种;
任选地,所述鱼类为草鱼。
3.用于检测权利要求1所述分子标记的物质在制备产品中的应用;所述产品的功能为如下(a)或(b)或(c)或(d):
(a)筛查GCRV抗性群体;
(b)筛查GCRV易感群体;
(c)评价鱼类患出血病抗性的风险;
(d)鱼类抗GCRV分子育种;
任选地,所述鱼类为草鱼。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述物质为引物。
5.根据权利要求4所述的应用,其特征在于,所述引物包含SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8。
6.一种产品,包括权利要求1所述分子标记的物质;所述产品的功能为如下(a)或(b)或(c)或(d):
(a)筛查GCRV抗性群体;
(b)筛查GCRV易感群体;
(c)鉴定鱼类出血病抗性;
(d)鱼类抗GCRV分子育种;
任选地,所述鱼类为草鱼。
7.根据权利要求2所述的产品,其特征在于,所述物质为引物。
8.根据权利要求3所述的产品,其特征在于,所述引物包含SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8。
9.一种鉴定草鱼出血病抗性的方法,其特征在于,其包括如下步骤:检测权利要求1所述的SNP,然后判断基因型。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于,所述方法用于非诊断目的。
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