CN117126749A - 一种南海海百合来源真菌及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明属于生物医药技术领域,具体涉及一种南海海百合来源真菌及其应用。本发明的南海海百合来源真菌命名为Penicillium brocae SYSU‑CJ‑17,所述南海海百合来源真菌的发酵代谢物可以分离纯化得到吡啶甲酸类生物碱化合物,这类化合物对癌症具有显著的抑制作用,在制备抗癌药物中具有较好的开发前景;并且本发明提供的南海海百合来源真菌可以利用现代微生物发酵工程技术进行再生产、无原材料后顾之忧,也不会破坏生态平衡,易实现大规模产业化,可以作为可再生性药物资源,为研究与开发海洋微生物制品和海洋微生物药物提供了丰富的原料来源。

Description

一种南海海百合来源真菌及其应用
技术领域
本发明属于生物医药技术领域。更具体地,涉及一种南海海百合来源真菌及其应用。
背景技术
海洋真菌是海洋微生物的重要组成部分,海洋真菌活性代谢产物是海洋微生物代谢产物的重要分支之一。海洋真菌菌株的代谢产物包括新颖的骨架和各种类型取代基,具有不同的结构类型,如萜类化合物、肽类化合物、生物碱类化合物、酮类化合物、酯类化合物等,具有不同的生物活性。其中,萜类化合物具有抗癌、抗菌、抗微生物等活性;肽类化合物,尤其是环肽类化合物,可以是抗生素、毒素、免疫抑制剂、离子转移调节器、蛋白黏合抑制剂、酶抑制剂等。
海百合是目前现存的古老的棘皮动物,主要分为有柄海百合和无柄海百合。海百合心动迟缓,为了躲避敌人的进攻,往往会产生一些具有刺激性的“化学武器”进行防御,并且大部分的海百合都有着鲜艳的色彩,预示着其含有较强的活性化合物。已有文献报道,可以从海百合中提取分离得到多种抗肿瘤活性和抗菌活性的化合物。并且,研究表明,一些生物体的活性代谢产物实际上是由其共附生微生物产生的。如李永芳等对采自湛江海百合共附生真菌Alternaria brassicae93的次级代谢产物进行分离纯化,得到5个化合物,确定所得化合物的理化性质、波谱数据,发现不同化合物具有不同的生理活性(李永芳.海百合Comanthinaschlegeli共附生真菌Alternaria brassicae 93次级代谢产物研究[J].中山大学学报(自然科学版),2015(54):75-78.DOI:10.13471/j.cnki.acta.snus.2015.04.014.)。除此以外,海洋微生物中还含有大量的微生物或活性物质有待发掘。
发明内容
本发明要解决的技术问题是海洋微生物中还含有大量的微生物或活性物质未被发掘的缺陷和不足,提供一种南海海百合来源真菌,所述真菌的发酵产物中可以分离纯化得到具有抑制癌细胞的吡啶甲酸类生物碱。
因此,本发明的另一个目的是提供所述南海海百合来源真菌在制备吡啶甲酸类生物碱中的应用。
所述吡啶甲酸类生物碱具有抗癌效果本发明还有一目的是提供所述南海海百合来源真菌在制备抗癌药物中的应用。
本发明上述目的通过以下技术方案实现:
一种南海海百合来源真菌,所述南海海百合来源真菌命名为PenicilliumbrocaeSYSU-CJ-17,保藏在广东省微生物菌种保藏中心,保藏日期是2023年05月26日,保藏号是GDMCC No:63444。
进一步地,所述南海海百合来源真菌在中国南海海百合中分离得到。
更进一步地,所述南海海百合来源真菌的培养基为PDA培养基、PDB培养基、孟加拉红培养基中的一种或多种。优选地,种子培养时,可以加入20~30g/L的盐。
进一步地,所述南海海百合来源真菌的培养条件为:25-28℃,3-5天。
优选地,放大发酵时,可以采用大米培养基。具体的,所述大米培养基为40~50g大米,50mL 2~3%的盐水,置于培养瓶混匀后密封,经高温灭菌锅121℃(0.1MPa)高温灭菌25min冷却至室温,放置2天,即得。
另外的,本发明还提供了所述南海海百合来源真菌在制备吡啶甲酸类生物碱中的应用。
进一步地,所述吡啶甲酸类生物碱具有式(I)、(II)结构:
更进一步地,所述吡啶甲酸类生物碱具有抗癌效果。
因此,本发明进一步要求保护所述南海海百合来源真菌在制备抗癌药物中的应用。
进一步地,所述癌为胃癌、乳腺癌。
更进一步地,所述药物的剂型为口服剂、注射剂、外用剂或吸入剂。
本发明具有以下有益效果:
本发明提供了一种南海海百合来源真菌,命名为Penicillium brocaeSYSU-CJ-17,所述南海海百合来源真菌的发酵代谢物可以分离纯化得到吡啶甲酸类生物碱化合物,这类化合物对癌症具有显著的抑制作用,在制备抗癌药物中具有较好的开发前景;并且本发明提供的南海海百合来源真菌可以利用现代微生物发酵工程技术进行再生产、无原材料后顾之忧,也不会破坏生态平衡,易实现大规模产业化,可以作为可再生性药物资源,为研究与开发海洋微生物制品和海洋微生物药物提供了丰富的原料来源。
附图说明
图1为本发明实施例1所得吡啶甲酸类生物碱化合物(I)的核磁共振氢谱图。
图2为本发明实施例1所得吡啶甲酸类生物碱化合物(I)的核磁共振碳谱图。
图3为本发明实施例1所得吡啶甲酸类生物碱化合物(I)的HRESIMS质谱图。
图4为本发明实施例2所得吡啶甲酸类生物碱化合物(II)的核磁共振氢谱图。
图5为本发明实施例2所得吡啶甲酸类生物碱化合物(II)的核磁共振碳谱图。
图6为本发明实施例2所得吡啶甲酸类生物碱化合物(II)的HRESIMS质谱图。
图7为本发明所得吡啶甲酸类生物碱化合物(I)和(II)在不同梯度浓度下抑制各种胃癌细胞系的实验结果数据统计图。
具体实施方式
以下结合说明书附图和具体实施例来进一步说明本发明,但实施例并不对本发明做任何形式的限定。除非特别说明,本发明采用的试剂、方法和设备为本技术领域常规试剂、方法和设备。
本发明实施例中所采用的真菌为海洋真菌,该海洋真菌为一株来自中国南海海百合的萼部分离得到的真菌。通过测序得到该菌株的ITS-rRNA基因片段序列为:
GTGCTTCTGAGTGAGGTCTCTGGGTCCACCTCCCACCCGTGTTTACCGTACCCTGTTGCTTCGGCGCGCCCGCCCTCGCGGCCGCCGGGGGGCCTCCGCCCCCGGGCCCGTGCCCGCCGAAGACACCCCTGAACGCTGTCTGAAGATTGTCGTCTGAGCGAATAGCGAAAAATAAGTTAAAACTTTCAACAACGGATCTCTTGGTTCCGGCATCGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATAACTAATGTGAATTGCAGAATTCAGTGAATCATCGAGTCTTTGAACGCACATTGCGCCCCCTGGTATTCCGGGGGGCATGCCTGTCCGAGCGTCATTGCTGCCCTCAAGCCCGGCTTGTGTGTTGGGCCGCCGTCCCCCCCTTCCCGGGGGGACGGGCCCGAAAGGCAGCGGCGGCACCGCGTCCGGTCCTCGAGCGTATGGGGCTCTGTCACCCGCTCTGCAGGCCCGGCCGGCGCCAGCCGACCCCCATCATCCTTTTTTTCAGGTTGACCTCGGATCAGGTAGGGATACCCGCTGAACTTAAGCATATCAAAA。
经过分子生物学鉴定,其分类为Penicillium brocae,真菌命名为Penicilliumbrocae SYSU-CJ-17,保藏在广东省微生物菌种保藏中心,保藏日期是2023年05月26日,保藏号是GDMCC No:63444。
种子培养基:按照每升水中加入30g海盐和24g PDB培养基粉末进行配制,平均分配到4个1L锥形瓶内,经高温灭菌锅121℃(0.1MPa)条件灭菌25min,冷却至室温,静置24小时,即得。
大米培养基:50g大米,50mL3%的盐水,置于培养瓶混匀后密封,经高温灭菌锅121℃(0.1MPa)高温灭菌25min冷却至室温,放置2天,即得。
除非特别说明,以下实施例所用试剂和材料均为市购。
实施例1南海海百合来源真菌Penicillium brocae SYSU-CJ-17发酵制备吡啶甲酸类生物碱化合物(I)
1、南海海百合来源真菌Penicillium brocae SYSU-CJ-17发酵制备吡啶甲酸类生物碱化合物(I)具体包括以下步骤:
S1、种子培养液的获得:将南海海百合来源真菌Penicillium brocaeSYSU-CJ-17接入种子培养基,将接种后的锥形瓶放置在摇床上,摇床转速100~150rpm,25℃恒温培养72小时,获得种子培养液。
S2、发酵培养:挑选瓶内无染菌现象的培养基接种到大米培养基中,每瓶接种10mL菌种(步骤S1所得种子培养液),共接种200瓶,室温静置培养30天得发酵物。
S3、提取分离:发酵培养后,将S2所得发酵物用乙酸乙酯浸泡提取,减压浓缩提取液得粗浸膏;分别以不同体积比的石油醚-乙酸乙酯作为洗脱剂,依次用体积比为5:1、4:1、3:1、2:1、1:1、2:3、1:4、0:1的石油醚-乙酸乙酯进行梯度洗脱,对粗浸膏采用硅胶柱进行层析分离,分别得到不同极性组分。
S4、高效液相分离纯化:将步骤S3中所得石油醚-乙酸乙酯体积比为1:1的洗脱部分通过高效液相色谱分离纯化,所述高效液相色谱的条件为:流动相:60%MeOH–40%H2O;流速:3mL/min,检测波长为230nm或275nm,色谱柱:半制备柱Ultimate XB-Phenyl,10×250mm,5μm;仪器Essentia LC-16,在保留时间12min处得到白色粉末。
2、吡啶甲酸类生物碱化合物(I)的表征:
对所得白色粉末进行核磁共振和质谱检测,所得谱图如图1~3所示,经分析检测,该化合物结构的理化性质数据如下:
UV(MeOH)λmax(logε)229.6(4.08),269.4(3.78);
IR(neat)νmax 3367cm-1,2917cm-1,2844cm-1,1720cm-1,1574cm-1,1431cm-1,1389cm-1,1312cm-1,1254cm-1,1216cm-1,1154cm-1,1119cm-1,1077cm-1,1016cm-1,869,796cm-1,708cm-1,630cm-1
HR-ESIMS m/s 515.2752[M+H]+(calcd for C28H39N2O7,515.2752),详细信息如表1所示。
表1吡啶甲酸类生物碱化合物(I)的HR-ESIMS信息
NMR核磁的数据:
13C NMR(150MHz,CDCl3C 171.11C,165.92C,165.06C,150.12CH,149.75CH,145.58C,144.93C,142.96C,142.35C,137.23CH,136.80CH,125.46CH,125.04CH,67.85CH,67.13CH2,65.08CH2,52.88CH3,33.15CH2,33.12CH2,30.92CH2,30.90CH2,29.52CH2,29.40CH2,29.17CH2,29.14CH2,20.93CH2.
1H NMR(600MHz,CDCl3H 8.54s,8.53s,8.06d,8.04d,7.65dd,7.62dd,4.47dd,4.41dd,4.29–4.25m,4.22d,3.98s,2.67td,2.07s,1.61q,1.33–1.20m。
从质谱和核磁共振的结果分析可确定化合物式(I)的分子式为C28H38N2O7
从平面结构发现化合物(I)的一个手性中心C-19,由于该化合物具有一条柔性的长链,无法通过ECD计算得到准确的构型。但这种具有单甘油片段且只有一个手性中心的化合物手性可以通过旋光来判断,若旋光值若为负值,则该手性中心为S构型,若为正值则是R构型。
因此,通过测定白色粉末的旋光,得到该化合物的旋光数据为(c0.001,MeOH),可判断该化合物(I)的构型为19R。
综上所述,所得白色粉末为吡啶甲酸类生物碱化合物(I),具体结构式如下:
实施例2南海海百合来源真菌Penicillium brocae SYSU-CJ-17发酵制备吡啶甲酸类生物碱化合物(II)
1、南海海百合来源真菌Penicillium brocae SYSU-CJ-17发酵制备吡啶甲酸类生物碱化合物(II)具体包括以下步骤:
S1、种子培养液的获得:将南海海百合来源真菌Penicillium brocaeSYSU-CJ-17接入种子培养基中,将接种后的锥形瓶放置在摇床上,摇床转速100~150rpm,25℃恒温培养72小时,获得种子培养液。
S2、发酵培养:挑选瓶内无染菌现象的培养基进行接种到大米培养基中,每瓶接种10mL菌种(步骤S1所得种子培养液),共接种200瓶,静置培养30天得发酵物。
S3、提取分离:发酵培养后,将S2所得发酵物用乙酸乙酯浸泡提取,减压浓缩提取液得粗浸膏;分别以不同体积比的石油醚-乙酸乙酯作为洗脱剂,依次用体积比为5:1、4:1、3:1、2:1、1:1、2:3、1:4、0:1的石油醚-乙酸乙酯进行梯度洗脱,对粗浸膏采用硅胶柱进行层析分离,分别得到不同极性组分。
S4、高效液相分离纯化:将步骤S3中所得石油醚-乙酸乙酯体积比为1:1的洗脱部分通过高效液相色谱分离纯化,所述高效液相色谱的条件为:流动相:60%MeOH-H2O;流速:3mL/min,色谱柱:半制备柱Ultimate XB-Phenyl,10×250mm,5μm;仪器Essentia LC-16,在保留时间8.5min处得到淡黄色无定形物。
2、吡啶甲酸类生物碱化合物(II)的表征:
对所得淡黄色无定形物进行核磁共振和质谱检测,所得谱图如图4~6所示,经分析检测,该化合物结构的理化性质数据如下:
UV(MeOH)λmax(logε)229.8(4.07),268.7(3.78)nm;
IR(neat)νmax 3352cm-1,2913cm-1,2852cm-1,1704cm-1,1655cm-1,1570cm-1,1428cm-1,1389cm-1,1312cm-1,1246cm-1,1204cm-1,1116cm-1,1023cm-1,862cm-1,773cm-1,696cm-1,626cm-1
HR-ESIMS m/s 473.2650[M+H]+(calcd for C26H37N2O6,473.2646),详细信息如表2所示。
表2吡啶甲酸类生物碱化合物(II)的HR-ESIMS信息
NMR核磁的数据:
13C NMR(150MHz,CD3OD)δC 166.57C,165.95C,150.71CH,150.67CH,146.27C,146.24C,144.54C,144.40C,138.85CH,138.75CH,126.42CH,126.18CH,71.13CH,68.15CH2,63.88CH2,53.10CH3,33.76CH2,31.97CH2,31.95CH2,30.52CH2,30.38CH2,30.17CH2.
1H NMR(600MHz,CD3OD)δH 8.51dd,8.12d,8.06d,7.83ddd,4.46dd 4.33dd,4.00dt,3.95s,3.65d,2.73q,1.68–1.61m,1.35–1.25m。
从质谱和核磁共振的结果分析可确定化合物式(II)的分子式为C26H36N2O6
从平面结构发现化合物(II)的一个手性中心C-19,由于该化合物具有一条柔性的长链,无法通过ECD计算得到准确的构型。但这种具有单甘油片段且只有一个手性中心的化合物手性可以通过旋光来判断,若旋光值若为负值,则该手性中心为S构型,若为正值则是R构型。
因此,测定所得淡黄色无定形物的旋光,得到该化合物的旋光数据为 (c0.001,MeOH)可以判断该化合物的手性为19S。
综上所述,所得淡黄色无定形物为吡啶甲酸类生物碱化合物(II),具体结构式如下:
实施例3化合物的抗癌活性测试
1、细胞培养
本实施例中所用胃癌细胞系(MGC803、MKN45、HGC27、AGS、SNU1和KATO3)培养于含有10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素/链霉素的RPIM-1640培养基(以下简称为培养基)中,细胞放置于含有5%CO2,温度为37℃的细胞培养箱中培养。
2、CCK8法测定细胞活力
将500个细胞均匀稀释于100μL培养基,接种于96孔板中,细胞培养24h后,将化合物(I)或化合物(II)稀释成不同浓度,并以50μL的培养基添加到每孔中;连续4天细胞孵育后加入CCK8试剂,96孔板在含5%CO2,37℃的培养箱中继续孵育1~2小时;根据CCK8试剂盒的说明在450nm处测量吸光度。最终结果显示为百分比,采用GraphPad Prism 7软件计算体外IC50值。其抑制率计算公式为[OD(加药组)-OD(对照组)]/[OD(对照组)-OD(空白组)]×100%。
结果参见图7,由图可见化合物(I)和(II)可以剂量依赖性的抑制胃癌细胞的增殖活性。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种南海海百合来源真菌,其特征在于,所述南海海百合来源真菌命名为Penicillium brocae SYSU-CJ-17,保藏在广东省微生物菌种保藏中心,保藏日期是2023年05月26日,保藏号是GDMCC No:63444。
2.根据权利要求1所述南海海百合来源真菌,其特征在于,所述南海海百合来源真菌在中国南海海百合中分离得到。
3.根据权利要求1所述南海海百合来源真菌,其特征在于,所述南海海百合来源真菌的培养基为PDB培养基、PDA培养基、孟加拉红培养基中的一种或多种。
4.根据权利要求1所述南海海百合来源真菌,其特征在于,所述南海海百合来源真菌的培养条件为:25-28℃,3-5天。
5.权利要求1~4任一所述南海海百合来源真菌在制备吡啶甲酸类生物碱中的应用。
6.根据权利要求5所述应用,其特征在于,所述吡啶甲酸类生物碱具有式(I)、(II)结构:
7.根据权利要求6所述应用,其特征在于,所述吡啶甲酸类生物碱具有抗癌效果。
8.权利要求1~4任一所述南海海百合来源真菌在制备抗癌药物中的应用。
9.根据权利要求8所述应用,其特征在于,所述癌为胃癌、乳腺癌。
10.根据权利要求8所述应用,其特征在于,所述药物的剂型为口服剂、注射剂、外用剂或吸入剂。
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