CN116947980B - 温度控制表达系统及其构建方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种温敏阻遏蛋白突变体mCI39,其氨基酸序列如SEQ ID No.4所示,该突变体相较于CⅠ857而言,具有更强的动态范围。并且公开了采用该突变体所构建的温度控制表达系统。该温度控制表达系统在低温时阻遏目的基因的表达,高温时激活目的基因的表达,可用于蛋白质(胶原蛋白、纤连蛋白等)生产、小分子化合物(羟脯氨酸)合成等多方面,通过调控温度从而实验不同目标产物的合成与生产。本发明选用porin启动子来控制温敏阻遏蛋白的表达,可以明显提高目标蛋白的表达量。

Description

温度控制表达系统及其构建方法
技术领域
本发明涉及温度控制表达系统及其构建方法,属于蛋白表达技术领域。
背景技术
工业菌株开发需要代谢工程策略,微生物则是代谢工程中改造的主要对象,以大规模合成所需产品。但传统的代谢工程手段大多是静态调控,通过设计和改造遗传编码元件对目标产物的代谢途径进行静态优化,这种调控方式是定向不可逆的,不具备灵活性,在大规模生产活动中对发酵表达的外在调节条件(温度、pH、溶氧等)要求较高;随着生物技术的发展,新的代谢工程改造技术也不断发展,出现了动态调控手段,相比于静态调控,动态调控具备可逆、灵活、能根据不断变化的环境做出相应的反应,包括温度控制表达系统。温度控制表达系统由于其快速感应温度变化以及外在条件操控的可控性,在微生物合成中具有极大的优势。
发明内容
本发明的目的是提供一种温度控制表达系统,可以高效表达异源蛋白。
本发明采用的技术方案:
一种温敏阻遏蛋白突变体mCI39,是在温敏阻遏蛋白CⅠ857的基础具有如下突变位点:M1V、K6N、S33T、L65S、K68R、S108Y、K118E、D188G,其中温敏阻遏蛋白CⅠ857的氨基酸序列如SEQ ID No.2所示,突变体mCI39的氨基酸序列如SEQ ID No.4所示。
上述的温敏阻遏蛋白突变体mCI39的编码基因,其DNA序列如SEQ ID No.3所示。
含有上述的温敏阻遏蛋白突变体mCI39的温度控制表达系统。
所述的温度控制表达系统用于表达目标蛋白,使用能与温敏阻遏蛋白mCI39结合的温敏启动子来控制目标蛋白编码基因的表达,通过温度变化控制目标蛋白编码基因转录表达,温敏阻遏蛋白mCI39采用组成型启动子来进行控制表达。
优选的,所述组成型启动子为porin启动子或pRM启动子。
优选的,所述组成型启动子为porin141启动子,其序列如SEQ ID No.7所示。
优选的,所述温敏启动子为pR启动子,其序列如SEQ ID No.8所示。
优选的,表达目标蛋白的载体结构为pSEVA321-porin-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因,或者载体结构为pSEVA321-pRM-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因。
优选的,还包括宿主菌,所述载体转化到宿主菌中。
本发明还公开了上述的温度控制表达系统的构建方法,其步骤包括:
(1)将λ噬菌体编码的温敏阻遏蛋白mCI39,连接到带有porin启动子的载体上得到pSEVA321-porin-mCI39
(2)将温敏启动子-目标蛋白编码基因片段连接到pSEVA321-porin-mCI39载体上,最终得到载体pSEVA321-porin-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因;
(3)将载体pSEVA321-porin-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因转化到宿主菌,
完成温度控制表达系统的构建。
优选的,所述宿主菌为大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、假单胞菌和盐单胞菌。
本发明还公开了上述的温度控制表达系统的构建方法,其步骤包括:
(1)将λ噬菌体编码的温敏阻遏蛋白mCI39,连接到带有RM启动子的载体上得到pSEVA321-pRM-mCI39
(2)将温敏启动子-目标蛋白编码基因片段连接到pSEVA321-pRM-mCI39载体上,最终得到载体pSEVA321-pRM-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因;
(3)将载体pSEVA321-pRM-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因中的RM启动子替换为porin启动子,得到载体pSEVA321-porin-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因;
(4)将载体pSEVA321-porin-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因转化到宿主菌,
完成温度控制表达系统的构建。
优选的,所述宿主菌为大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、假单胞菌或盐单胞菌。
本发明的有益效果:
本发明提供了一种温敏阻遏蛋白突变体mCI39,在CⅠ857的基础上做如下突变:M1V+K6N+S33T+L65S+K68R+S108Y+K118E+D188G,该突变体相较于CⅠ857而言,具有更强的动态范围。采用该突变体所构建的温度控制系统在低温时阻遏目的基因的表达,高温时激活目的基因的表达,可用于蛋白质(胶原蛋白、纤连蛋白等)生产、小分子化合物(羟脯氨酸)合成等多方面,通过调控温度从而实验不同目标产物的合成与生产。本发明选用porin启动子,尤其是porin141启动子来控制温敏阻遏蛋白的表达,可以明显提高目标蛋白的表达量。
附图说明
图1为pSEVA321-pRM-CI857-pR-GFP的质粒图谱。
具体实施方式
以下通过实施例进一步说明本发明,但不作为对本发明的限制。以下提供了本发明实施方案中所使用的具体材料及其来源。但是,应当理解的是,这些仅仅是示例性的,并不意图限制本发明,与如下试剂和仪器的类型、型号、品质、性质或功能相同或相似的材料均可以用于实施本发明。下述实施例中所使用的实验方法如无特别说明,均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1.温控系统的构建及表征
(1)pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP质粒的构建
λ噬菌体编码的温敏阻遏蛋白CⅠ857,其编码基因序列如SEQ ID NO.1所示,氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示,中国专利文献CN112522285A已经公开了该蛋白,通过Snapgene软件设计引物,以PCR技术扩增出CⅠ857与载体pSEVA321骨架的基因片段后回收PCR产物,并利用同源臂引物,采用Gibson连接技术将CⅠ857与骨架片段连接,构建表达载体pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP,质粒图谱如图1所示。其中pR是温敏阻遏蛋白相对应的温控启动子,其序列如SEQ ID No.8所示,pRM的序列如SEQ ID No.9所示。将连接产物转化到大肠杆菌DH5α感受态细胞中,以氯霉抗性筛选阳性转化子,挑选转化子进行琼脂凝胶电泳验证,选择阳性转化子进行测序验证及质粒抽提。
转化大肠杆菌S17-1、DH5α、BL21(DE3)、MG1655和JM109感受态细胞:在冰上缓慢融解感受态细菌(对于新鲜制备的感受态可以直接使用),加入3-5ul连接产物,轻轻用手指弹动离心管,以混匀细菌和质粒连接产物,冰浴放置30min,结束后42℃水浴热激1.5min后冰浴2min,加入500ul LB,于37℃、220rpm恒温摇床培养1小时,培养后2000-3000g离心1min使菌体沉淀,留下约50-100ul上清重悬沉淀,然后全部涂布到含有氨苄素抗性的LB平板上,37℃倒置培养过夜。选择阳性转化子送测,以带有测序结果正确质粒的菌株进行后续测试。
(2)温控系统在不同类型大肠杆菌中的测试
挑取带有pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP表达系统的E.coli菌株单克隆,接种到含有1mlLB培养基的深孔板中,分别以LB培养基与野生型S17-1、DH5-、BL21(DE3)、MG1655和JM109菌株为对照,在30℃与37℃分别培养12h后转接1%量到1ml新的LB培养基中,分别在12h培养后使用酶标仪测试荧光强度,检测该系统的可行性。
将带有pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP表达系统的E.coli菌株单克隆的酶标仪数据减去野生型菌株的酶标仪数据,得到不同类型大肠杆菌中的酶标仪分析数据如表1所示。
表1:pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP表达质粒在不同类型大肠杆菌中的表达水平
FI/OD 30℃ 37℃
pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP-S17-1 0.95 54.72
pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP-DH5α 1.16 58.61
pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP-BL21(DE3) 1.32 69.94
pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP-MG1655 1.27 82.43
pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP-JM109 1.50 168.38
由表1可知,当该系统在JM109中表达时,其荧光值最高,故后续温敏阻遏蛋白的突变体筛选均在JM109中进行。
实施例2.温控系统的优化——温敏阻遏蛋白CⅠ857突变体筛选
(1)使用易错PCR对编码CI857阻遏蛋白的基因进行随机突变,得到一系列mCI857基因片段,以此在体外构建突变库;
(2)将一系列突变基因mCI857插入到pSEVA321骨架得到系列载体
pSEVA321-pRM-mCⅠ857-pR-GFP,将以上系列载体转化E.coli JM109,获得表达阻遏蛋白突变基因的表达系统;
(3)理想情况下,CI857阻遏蛋白在低于30℃能与PR启动子的操纵区域OR结合,从而抑制绿色荧光蛋白基因的转录表达;当温度高于37℃时,阻遏蛋白从OR解离下来,RNA聚合酶得以进行转录,从而表达绿色荧光蛋白;采用流式细胞仪初步分选出在不同温度培养条件下荧光强度较高的细胞,得到不同温度敏感的mCI39变异体,在39℃以及42℃下能使荧光蛋白发光,其中mCI39变异体相较于CI857阻遏蛋白的突变位点为M1V+K6N+S33T+L65S+K68R+S108Y+K118E+D188G;
(4)分别对以上变体进行酶标仪验证不同温度敏感的mCI突变体的荧光表达效果,其结果如表2所示。
表2:温敏阻遏蛋白CⅠ857及其mCI39突变体在不同温度下的荧光表达效果:
实施例3.温控系统的优化——温敏蛋白启动子优化
通过Snapgene软件设计引物,使用T4连接酶将控制CI857阻遏蛋白表达的启动子pRM替换为不同表达强度的porin(porin141>porin140>porin58)启动子,其中porin58启动子的序列如SEQ ID No.5所示,porin140启动子的序列如SEQ ID No.6所示,porin141启动子的序列如SEQ ID No.7所示,具体步骤为:
S1、在pRM两侧位点设计引物,将启动子序列作为同源臂,其中porin58的引物序列如SEQ ID No.10-11所示,porin140的引物序列如SEQ ID No.12-13所示,porin141的引物序列如SEQ ID No.14-15所示;
S2、使用引物对pSEVA321-pRM-CⅠ857-pR-GFP进行基因片段扩增,扩增出的片段为环p产物;
S3、使用T4 DNA Ligase将环p产物进行连接,反应总体系为10ul,在0.2ml的PCR小管中依次加入表3所示的下列成分:
表3连接反应体系
将以上成分混匀后,瞬时离心,16℃过夜连接(或25℃1小时),获得连接产物;
S4、将S3反应后的产物转入JM109感受态,从反应体系取出3-5ul于冰上与感受态混合均匀,并冰浴30min,其后水浴锅中42℃热激90s,然后立即置于冰上2min,再加入500ulLB培养基,37℃摇床中振荡培养1小时后涂布于相应抗性的平板上,在37℃摇床中倒置培养12-14小时;
S5、挑取S4中培养板的单克隆菌落进行PCR,选择阳性克隆进行测序,将测序结果与原始目的基因序列进行比对,确认是否成功将启动子进行更换,若成功更换,则进行质粒提取以及菌液保藏。
按实施例1的方法测量不同启动子的荧光表达效果,其结果如表4所示。
表4:不同启动子的荧光表达效果
从上表可知,在37℃时,选用porin 141启动子,荧光值最强,说明porin 141启动子更有利于目的基因的表达。
实施例4.温控系统与阻遏蛋白lacI的偶联
为了开发一个温度依赖的双功能控制开关,在此构建两个模块——其中一个是由温敏阻遏蛋白CI857突变体基因编码的CI857突变体,另一个是由phIF编码的抑制因子phIF。并在PphIF启动子控制下引入LacI抑制子和相关操作子LacO来实现对pR启动子转录活性的负反馈调控(参考文献DOI为:https://doi.org/10.1038/s41467-021-21654-x)。以绿色荧光蛋白GFP与红色荧光蛋白mRFP为报告蛋白,将突变体mCI39构建到pSC101载体上得到pSC101-pRM-mCI39-pR-GFP,结合LacI/LacO进行调控。
GFP与mRFP在CI857与mCI39中以37℃培养不同时间点的荧光强度如下表所示:
表5 GFP与mRFP在CI857与mCI39中以37℃培养不同时间点的荧光强度
实施例5.温控系统在嗜盐单胞菌中的应用
将CI857与上述实施例3中的阻遏蛋白变体mCI39构建到载体上pSEVA321上,以绿色和红色荧光蛋白作为指示蛋白,生成pSEVA321-pRM-CI857-pR-GFP及pSEVA321-pRM-mCI39-pR-mRFP,将前述两质粒共转接合到嗜盐单胞菌Halomonas sp.TD1.0中,分别在37℃和39℃下培养12h后测试该系统在37℃(改造前)和39℃(改造后)的表达情况,表达结果如表6所示。
表6改造前后的荧光表达效果
FI/OD GFP mRFP
37℃(改造前) 398.04 1.04
39℃(改造后) 1.73 479.63
表明该温控系统在窄温范围内能起到很好的调控效果,从而可以使该系统在盐单胞菌中有更广泛的应用。
实施例6.温控系统在异源蛋白表达中的应用
目前用基因重组技术构建工程菌来获得大量外源基因产物,但外援基因的高水平表达,不仅涉及宿主、载体和克隆基因之间的关系,还与其所处的环境条件息息相关。温度是影响工程菌生长、质粒稳定性和重组产物形成的重要因素。大多数蛋白在低温时有较好的表达,但低温时菌体的生长会受限,为了在有较多的菌体密度的条件下更多表达外源蛋白,在此设计温度控制系统应用于不限胶原蛋白的其他蛋白生产表达。所述宿主包括大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、嗜盐单胞菌等;
以胶原蛋白(Col)生产为例,具体步骤如下:
S1.将胶原目的基因Col连接到pSEVA321-pRM-mCI39-pR骨架或pSEVA321-pRM-CI857-pR骨架上,通过Gibson后获得pSEVA321-pRM-mCI39-pR-Col质粒、pSEVA321-pRM-CI857-pR-Col质粒;
S2.将构建完成的质粒通过热激转化的方式转化到E.coli BL21(DE3)感受态菌株中即为表达菌株;
S3.挑取上述表达菌株的单菌落,转接到接有5ml LB培养液的摇菌管中(一级培养液),37℃过夜培养,再以1%的一级培养液接入20mlLB培养液中(二级培养液),37℃培养12h后取5%二级培养液接到50ml LB培养液中,并且将温度设定在37℃,220rpm震荡培养至OD为0.6-0.8左右时,加入IPTG诱导胶原蛋白的产生,同时将温度提高到42℃诱导胶原蛋白的产生,诱导时间为3h,再将温度降低到39℃,继续诱导5小时以实现胶原的高水平生产,胶原按常规方法纯化,得到的产量数据如表7所示。
表7 CI857与mCI39表达胶原蛋白的产量比对
pSEVA321-pRM-CI857-pR-Col pSEVA321-pRM-mCI39-pR39-Col
蛋白产量(g/L) 1.53 3.60

Claims (12)

1.一种温敏阻遏蛋白突变体mCI39,其特征在于其氨基酸序列如SEQ ID No.4所示。
2.权利要求1所述的温敏阻遏蛋白突变体mCI39的编码基因。
3.根据权利要求2所述的编码基因,其特征在于其DNA序列如SEQ ID No.3所示。
4.含有权利要求1所述的温敏阻遏蛋白突变体mCI39的温度控制表达系统;其中温度控制表达系统用于表达目标蛋白,其特征在于使用能与温敏阻遏蛋白突变体mCI39结合的温敏启动子来控制目标蛋白编码基因的表达,通过温度变化控制目标蛋白编码基因转录表达,温敏阻遏蛋白突变体mCI39采用组成型启动子来进行控制表达。
5.根据权利要求4所述的温度控制表达系统,其特征在于所述组成型启动子为porin启动子或pRM启动子;所述组成型启动子为porin141启动子,其序列如SEQ ID No.7所示。
6.根据权利要求4所述的温度控制表达系统,其特征在于所述温敏启动子为pR启动子,其序列如SEQ ID No.8所示。
7.根据权利要求4所述的温度控制表达系统,其特征在于表达目标蛋白的载体结构为pSEVA321-porin- mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因,或者载体结构为pSEVA321-pRM-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因。
8.根据权利要求7所述的温度控制表达系统,其特征在于还包括宿主菌,所述载体转化到宿主菌中。
9.权利要求4-8中任一项所述的温度控制表达系统的构建方法,其特征在于其步骤包括:
(1)将λ噬菌体编码的温敏阻遏蛋白突变体mCI39,连接到带有porin或pRM 启动子的载体上,得到pSEVA321- porin - mCI39或者pSEVA321- pRM - mCI39载体;
(2)将温敏启动子-目标蛋白编码基因片段连接到pSEVA321- porin - mCI39或者pSEVA321- pRM - mCI39载体上,最终得到载体pSEVA321- porin - mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因或pSEVA321-pRM - mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因;
(3)将载体pSEVA321- porin - mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因或pSEVA321-pRM- mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因转化到宿主菌,完成温度控制表达系统的构建。
10.根据权利要求9所述的构建方法,其特征在于所述宿主菌为大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、假单胞菌和盐单胞菌。
11.权利要求4-8中任一项所述的温度控制表达系统的构建方法,其特征在于其步骤包括:
(1)将λ噬菌体编码的温敏阻遏蛋白突变体mCI39,连接到带有pRM启动子的载体上得到pSEVA321- pRM - mCI39
(2)将温敏启动子-目标蛋白编码基因片段连接到pSEVA321- pRM - mCI39载体上,最终得到载体pSEVA321- pRM - mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因;
(3)将载体pSEVA321- pRM - mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因中的pRM启动子替换为porin启动子,得到载体pSEVA321-porin- mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因;
(4)将载体pSEVA321-porin-mCI39-温敏启动子-目标蛋白编码基因转化到宿主菌,完成温度控制表达系统的构建。
12.根据权利要求11所述的构建方法,其特征在于所述宿主菌为大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、假单胞菌或盐单胞菌。
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