CN116589557B - 一种肿瘤新生抗原特异性tcr及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及肿瘤免疫技术领域，具体涉及一种肿瘤新生抗原特异性TCR及其应用。本发明提供的肿瘤新生抗原TCR能够特异性识别并结合ENTPD6新生抗原(FYAFSCYYDL)，具有较高的亲和力，该TCR可用于基因编辑改造T细胞，用于TCR‑T细胞的制备，制得的TCR‑T细胞能够特异性识别ENTPD6新生抗原，杀伤表达该新生抗原的肿瘤细胞，用于携带该新生抗原的肿瘤的治疗和相关药物开发。

Description

一种肿瘤新生抗原特异性TCR及其应用
技术领域
本发明涉及肿瘤免疫技术领域，尤其涉及一种肿瘤新生抗原特异性TCR及其应用。
背景技术
肿瘤新生抗原是肿瘤细胞中因基因突变或病毒整合等事件编码产生的正常组织中不存在的多肽。针对肿瘤新生抗原的TCR-T疗法，被认为是能够攻克实体肿瘤最有效的治疗手段之一。TCR(T cell receptor)是T细胞表面的特征性标志，经基因改造TCR的T细胞可以对肿瘤细胞表面的抗原分子进行特异性识别，进而针对肿瘤细胞产生免疫反应。与直接使用新生抗原来刺激患者本人的特异性T细胞扩增的治疗方法相比，TCR-T疗法的效果明显更优。但是，TCR-T疗法具有高度特异性，针对不同肿瘤新生抗原的TCR不同，因此需要获得肿瘤新生抗原特异性TCR，进而用于TCR-T疗法。
发明内容
本发明提供一种肿瘤新生抗原特异性TCR及其应用。
本发明针对ENTPD6新生抗原开发特异性TCR，ENTPD6新生抗原的序列为FYAFSCYYDL，是一种肝癌优势新生抗原，该新生抗原已在申请人在先专利CN113956342B中公开。为开发能够特异性识别并杀伤携带ENTPD6新生抗原靶细胞的TCR-T细胞，获得ENTPD6新生抗原特异性TCR是最关键的环节。本发明利用四聚体染色技术，将ENTPD6新生抗原特异性T细胞进行标记，使用流式细胞术对新生抗原特异性T细胞进行分选，进一步使用Sanger测序技术对这些T细胞的TCR序列进行测序。针对捕获的TCR序列进行筛选和验证，利用这些TCR序列构建了能够特异性识别ENTPD6新生抗原的TCR-T细胞，同时构建了能够共表达HLA-A*24:02与ENTPD6新生抗原或其配对的野生抗原的COS-7靶细胞，通过ELISPOT技术检测TCR-T细胞对表达ENTPD6新生抗原的靶细胞的识别杀伤作用，最终获得能够高效、特异性识别并结合ENTPD6新生抗原的TCR以及表达该TCR的TCR-T细胞。
具体地，本发明提供以下技术方案：
本发明提供肿瘤新生抗原TCR，所述肿瘤新生抗原TCR包含TCRα链可变区和TCRβ链可变区；
所述TCRα链可变区的CDR3的氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示，所述TCRβ链可变区的CDR3的氨基酸序列如SEQ ID NO.6所示。
优选地，所述TCRα链可变区的CDR1、CDR2、CDR3的氨基酸序列分别如SEQ ID NO.1-3所示，所述TCRβ链可变区的CDR1、CDR2、CDR3的氨基酸序列分别如SEQ ID NO.4-6所示。
具有上述α和β链可变区CDR序列的TCR能够特异性识别并结合ENTPD6新生抗原(序列为FYAFSCYYDL)，具有较高的亲和力，且难以识别和结合其对应的野生抗原结合。
上述CDR序列具体如下：
SEQ ID NO.1：α链可变区的CDR1：SVFSS；
SEQ ID NO.2：α链可变区的CDR2：VVTGGEV；
SEQ ID NO.3：α链可变区的CDR3：AGVANAGGTSYGKLT；
SEQ ID NO.4：β链可变区的CDR1：SGHKS；
SEQ ID NO.5：β链可变区的CDR2：YYEKEE；
SEQ ID NO.6：β链可变区的CDR3：ASSLEVDMNTEAF。
优选地，所述TCRα链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO.7所示或与如SEQ ID NO.7所示的氨基酸序列具有至少80％的相似性，所述TCRβ链可变区的氨基酸序列如SEQ IDNO.8所示或与如SEQ ID NO.8所示的氨基酸序列具有至少80％的相似性。
在具有以上所述的α和β链可变区CDR序列的情况下，与如SEQ ID NO.7所示的氨基酸序列具有至少80％、至少85％、至少86％、至少87％、至少88％、至少89％、至少90％、至少91％、至少92％、至少93％、至少94％、至少95％、至少96％、至少97％、至少98％、至少99％、至少99.5％的序列相似性的α链可变区序列，以及与如SEQ ID NO.8所示的氨基酸序列具有至少80％、至少85％、至少86％、至少87％、至少88％、至少89％、至少90％、至少91％、至少92％、至少93％、至少94％、至少95％、至少96％、至少97％、至少98％、至少99％、至少99.5％的序列相似性的β链可变区序列对应的TCR也在本发明的保护范围内。
在本发明的一些实施方式中，所述TCRα链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO.7所示，所述TCRβ链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO.8所示。
具有上述α和β链可变区序列的TCR能够特异性识别并结合ENTPD6新生抗原(序列为FYAFSCYYDL)，具有较高的亲和力，且难以识别和结合其对应的野生抗原结合。
上述可变区序列具体如下：
SEQ ID NO.7：α链可变区：
SEQ ID NO.8：β链可变区：
本发明提供一种抗原结合蛋白，所述抗原结合蛋白包含以上所述的肿瘤新生抗原TCR。
上述抗原结合蛋白可为多价TCR复合物，其包含至少两个TCR分子，其中至少一个TCR为本发明提供的上述肿瘤新生抗原TCR。
本发明提供编码以上所述的肿瘤新生抗原TCR的核酸分子。
优选地，编码所述TCRα链可变区的核酸分子的核苷酸序列如SEQ ID NO.9所示。编码所述TCRβ链可变区的核酸分子的核苷酸序列如SEQ ID NO.10所示。
本发明提供一种生物材料，所述生物材料为含有以上所述核酸分子的载体，或者，所述生物材料为含有以上所述核酸分子或所述载体的宿主细胞。
以上所述的载体可为表达载体或克隆载体。
优选地，所述载体为表达载体，所述表达载体包含将所述核酸分子可操作地与表达调控序列连接的多核苷酸。所述载体能够将所述核酸分子递送至宿主细胞。
以上所述的载体包括但不限于质粒载体、病毒载体等。
优选地，所述载体为病毒载体。
在本发明的一些实施方式中，所述载体为慢病毒载体或逆转录病毒载体。
以上所述的宿主细胞包括微生物细胞或动物细胞。其中微生物细胞包括但不限于大肠杆菌、酵母等，动物细胞不具备繁殖为动物个体的潜力，包括但不限于昆虫细胞、CHO细胞、293T细胞等。
本发明提供一种免疫细胞，所述免疫细胞表达以上所述的肿瘤新生抗原TCR。
所述免疫细胞包括CD8+T细胞、细胞毒性T细胞、CD4+T细胞、CD4-CD8-双阴性T细胞、γδT细胞、自然杀伤细胞、树突状细胞或上述细胞的任意组合。
优选地，所述免疫细胞为T细胞。所述T细胞为幼稚T细胞、中央记忆T细胞、效应记忆T细胞、干细胞记忆T细胞或上述T细胞的任何组合。
以上所述的免疫细胞可通过将编码所述肿瘤新生抗原TCR的核酸分子导入免疫细胞中得到。具体地，利用含有编码所述肿瘤新生抗原TCR的核酸分子的慢病毒载体感染PBMC细胞，经培养得到肿瘤特异性T细胞。
本发明提供的肿瘤新生抗原TCR能够特异性识别并结合ENTPD6新生抗原(序列为FYAFSCYYDL)，可用于预防、治疗或诊断肿瘤的产品的制备。
本发明提供以上所述的肿瘤新生抗原TCR或所述抗原结合蛋白或所述核酸分子或所述生物材料或所述免疫细胞的以下任一种应用：
(1)在制备用于预防和/或治疗肿瘤的药物中的应用；
(2)在制备肿瘤特异性T细胞中的应用；
(3)在制备TCR-T细胞中的应用；
(4)在制备肿瘤诊断试剂中的应用。
本发明所述的肿瘤优选为肝脏肿瘤，更优选为肝癌。
本发明提供一种药物组合物，所述药物组合物包含以上所述的肿瘤新生抗原TCR或所述抗原结合蛋白或所述核酸分子或所述生物材料或所述免疫细胞。
以上所述的药物组合物还可包含药学上可接受的载体或辅料。
以上所述的药物组合物可用于肿瘤的预防或治疗，尤其是肝脏肿瘤的预防或治疗。
本发明提供一种诊断试剂，所述诊断试剂包含以上所述的肿瘤新生抗原TCR或所述抗原结合蛋白或所述核酸分子或所述生物材料或所述免疫细胞。
上述诊断试剂可用于肿瘤的诊断，尤其是肝脏肿瘤的诊断。
本发明提供一种治疗肿瘤的方法，所述方法包括给予受试者以上所述的肿瘤新生抗原TCR或所述抗原结合蛋白或所述核酸分子或所述生物材料或所述免疫细胞。
本发明的有益效果在于：本发明提供的肿瘤新生抗原TCR能够特异性识别并结合ENTPD6新生抗原(序列为FYAFSCYYDL)，具有较高的亲和力，该TCR可用于基因编辑改造T细胞，用于TCR-T细胞的制备，制得的TCR-T细胞能够特异性识别ENTPD6新生抗原(序列为FYAFSCYYDL)，杀伤表达该新生抗原的肿瘤细胞，用于携带该新生抗原的肝癌患者的治疗以及相关治疗药物的开发。
附图说明
为了更清楚地说明本发明或现有技术中的技术方案，下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作一简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为本发明实施例1中来自肝癌患者的ENTPD6新生抗原特异性T细胞。使用ENTPD6新生抗原多肽刺激肝癌患者外周血中ENTPD6新生抗原特异性T细胞扩增，然后使用四聚体染色技术对其进行标记分选，体外培养并检测细胞状态，图中绿色的为活细胞，作为下游Sanger测序的对象。
图2为本发明实施例2中验证TCR-T对携带新生抗原的靶细胞杀伤作用的实验设计方案示意图。
图3为本发明实施例2中慢病毒载体lenti-BSD-T2A-EGFP的质粒图谱。
图4为本发明实施例2中lenti-BSD-T2A-S5-1-BA1的质粒图谱。
图5为本发明实施例2中ENTPD6新生抗原特异性TCR-T杀伤靶细胞实验，其中，WT(W)代表野生抗原，Mut(M)代表新生抗原，*P<0.05；**P<0.01；***P<0.001。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合本发明中的附图，对本发明中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
本发明所涉及肝癌患者就诊于北京大学人民医院并行肝脏切除术。在北京大学人民医院伦理委员会的批准下，收集和使用患者样本，且对患者或患者家属进行了告知，双方签署了知情同意书。肿瘤组织样本从手术室收集样本后，使用液氮运输箱将样本运输至实验室，保存于液氮罐中。患者血液于常温下运输至实验室，6h内使用Ficoll密度梯度离心法完成对外周血单个核细胞(PBMC)的分离，并保存于液氮罐中。实施例中使用的细胞系COS-7购自中国医学科学院基础医学研究所。
实施例1肿瘤新生抗原特异性TCR的获得
在前期研究中发现了肝癌优势新生抗原——序列为FYAFSCYYDL(SEQ ID NO.30)的ENTPD6新生抗原。对于新生抗原，能够特异性结合新生抗原的TCR是激活T细胞的必要条件，因此本发明通过TCR测序和筛选获得能够特异性识别该新生抗原的TCR。
TCR获得的大体流程如下：利用四聚体染色技术将肝癌患者的新生抗原特异性T细胞进行标记，使用流式细胞术对新生抗原特异性T细胞进行分选，进一步使用Sanger测序技术对这些T细胞的TCR序列进行测序，将捕获的TCR序列采用gBlast工具进行验证((https://www.ncbinlm.nih.gov/)，对验证成功的TCR进行功能验证，筛选能够特异性识别并结合序列为FYAFSCYYDL的ENTPD6新生抗原且具有较高亲和力的TCR。
其中涉及的四聚体染色技术中通过分别置换新生抗原多肽及其对应野生抗原多肽得到能够检测对应抗原特异性T细胞的Tetramer抗体，用于Tetramer染色实验，Tetramer制备及染色方法参考专利CN113956342B，步骤基本如下：
(1)QuickSwitchTMQuant Tetramer肽置换
所用的试剂盒为QuickSwitchTMQuant Tetramer HLA-A*24:02Kit-PE(品牌：MBL，货号：TB-7302-K1)，用DMSO制备10mM置换用候选肽溶液，分别继续用水稀释至2mM，从-20℃取出1mM参比肽恢复至室温。依据检测量分装QuickSwitchTMQuant Tetramer 50μl/样至EP管中，分别加入1μl上述候选肽和参比肽至EP管中，再加入1μl多肽置换因子，用移液器混匀后避光于室温下孵育5h，冷藏于4℃冰箱中待用。
(2)QuickSwitchTMQuant Tetramer肽置换效率检测
根据需要，将10×Assay Buffer稀释至1×工作浓度，将捕获磁珠涡旋振荡60s，取圆底96孔微孔板，根据需要每孔加入20μl磁珠。对微孔进行编号，将2号孔加入5μl 1×Assay Buffer，1号孔和3号孔加入5μl Tetramer，其余孔各加入5μl已完成肽置换的Tetramer。用铝箔避光后，将微孔板放置于平板振荡器上，以550rpm的速度振荡45min。每孔加入150μl 1×Assay Buffer，置于磁力板上静置5min，去除上清液。保持微孔板置于磁力板上状态下，涡旋2s，然后将微孔板从磁力板上取下。将25×Exiting Peptide Antibody用1×Assay Buffer稀释到1×工作浓度。除1号孔加入25μl 1×Assay Buffer，其余各孔加入25μl 1×Exiting Peptide Antibody。用铝箔避光后，将微孔板放置于平板振荡器上，以550rpm的速度振荡55min。每孔加入150μl 1×Assay Buffer，置于磁力板上静置5min，去除上清液。保持微孔板置于磁力板上状态下，涡旋2s，然后将微孔板从磁力板上取下。每孔加入200μl1×Assay Buffer重悬磁珠，同时将200μl 1×Assay Buffer加入孔X，再加入5μl的捕获磁珠并混匀，作为磁珠对照品。进行流式细胞术分析，计算获得肽置换效率。
(3)QuickSwitchTMQuant Tetramer细胞染色实验
按照常规方法制备细胞，使用PBS溶液重悬细胞，使浓度在1×106～1×107cell/ml。每50μl的细胞悬液中加入10μl的Clear Back(品牌：MBL，货号：MTG-001)，并在室温下反应5分钟，将细胞以60μl/管分装到流式管中，每管分别加入10μl不同的已成功置换肽的Tetramer。在室温下孵育30分钟。加入CD8抗体，在4℃下孵育20分钟。加入适量的PBS，400g，离心5分钟。小心地去掉上清液。将每管细胞用500μl的PBS再次重悬，各加入20μl 7AAD。将样品于4℃避光保存，并在24小时内进行流式细胞术分析。
(4)QuickSwitchTMQuant Tetramer HLA-A*24:02Kit-PE新生抗原肽置换效率检测结果
针对新生抗原，通过置换合成了能够检测对应新生抗原特异性T细胞及其对应野生抗原特异性T细胞的Tetramer抗体，所用的试剂盒为QuickSwitchTMQuant Tetramer HLA-A*24:02Kit-PE(品牌：MBL，货号：TB-7302-K1)，并对各抗体的置换效率使用流式细胞术进行了检测，当Tetramer抗体置换效率>75％，其用于特异性T细胞的检测结果可被广泛接受，因此使用置换效率>75％的Tetramer抗体对特异性T细胞频率进行检测，Tetramer染色结果参照专利CN113956342B中实施例1的步骤6。
进一步通过流式分选，得到了1000个新生抗原(FYAFSCYYDL)特异性T细胞，经体外培养14天(培养条件：X-VIVO 15培养基+5％人AB血清+1％青霉素/链霉素+100IU/ml IL2+10μl/ml美天旎T Cell TransAct EA)，扩增至约2×106，细胞活率的检测结果如图1所示。结果显示，分选所得T细胞培养后状态极佳，可用于TCR测序。
作为示例，以下仅列举测序和筛选过程中的8个TCR的序列(这些序列均使用IgBlast工具(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)验证成功)及其功能验证结果。8对TCR V区关键序列如表1所示，其中S20-1-BA2的α链可变区的CDR1、CDR2、CDR3的氨基酸序列分别如SEQ ID NO.1-3所示，β链可变区的CDR1、CDR2、CDR3的氨基酸序列分别如SEQ ID NO.4-6所示，α链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO.7所示，β链可变区的氨基酸序列如SEQ IDNO.8所示。
表1潜在的ENTPD6新生抗原特异性TCR序列
实施例2新生抗原特异性T细胞对携带新生抗原的靶细胞的细胞毒作用检测
基于实施例1经测序得到的TCR序列，构建具有识别ENTPD6新生抗原潜力的TCR-T细胞；同时构建能够共表达HLA-A*24:02与ENTPD6新生抗原或其配对的野生抗原的COS-7靶细胞，通过ELISPOT技术检测TCR-T细胞对ENTPD6新生抗原的识别和靶细胞杀伤作用。验证TCR-T对携带新生抗原的靶细胞杀伤作用的实验设计方案示意图如图2所示。
1、TCR-T构建方法如下(以S5-1-BA1这一TCR为例进行说明)：
首先以慢病毒载体lenti-BSD-T2A-EGFP为出发载体(质粒图谱如图3所示，序列如SEQ ID NO.25所示)。通过BfuAI和EcoRI双酶切切除lenti-BSD-T2A-EGFP载体的EGFP区域，回收酶切后的lenti-PURO-T2A-EGFP骨架。合成含有S5-1-BA1 Vβ、Cys mTRBC1、P2A、S5-1-BA1 Vα和LVL_Cys mTRAC的双链DNA片段，其中Cys mTRBC1、P2A和LVL_Cys mTRAC为固定序列(SEQ ID NO.26、27、28所示)。S5-1-BA1的TCRVα和TCR Vβ为可变序列，其余7对TCR的构建只需要将这两个序列替换为相应的TCR序列即可。利用Gibson无缝连接的技术将双链DNA片段连接至lenti-BSD-T2A-EGFP骨架之中。将其转化至TransStbl3化学感受态细胞，经筛选鉴定得到能够表达S5-1-BA1 TCR的质粒，将其命名为lenti-BSD-T2A-S5-1-BA1(质粒图谱如图4所示，序列如SEQ ID NO.29所示)。
将质粒lenti-BSD-T2A-S5-1-BA1进行慢病毒包装，与辅助质粒pVSVg与psPAX2共同转入HEK293T工具细胞，所用的转染试剂为PEI。12小时后换液，48小时后收集产出的病毒液，2,000g离心10min，去除较大的细胞及碎片，然后使用0.45μm的过滤器进一步去除微小的细胞碎片。使用100K浓缩离心管浓缩病毒液，并使用慢病毒滴度ELISA检测试剂盒测定病毒滴度。在6孔板中培养健康供者来源的PBMC细胞。每孔细胞数为2×106个。每孔培养基为2ml的X-VIVO 15+5％人AB血清+1％青霉素/链霉素+100IU/ml IL-2+10μl美天旎T CellTransAct EA。使用慢病毒对细胞进行感染，MOI＝20，加入终浓度为10μg/ml Polybrene进行助染。每2-3天半量换液。14天后收获TCR-T细胞。
其它TCR的TCR-T细胞的构建方法参考上述S5-1-BA1 TCR-T细胞的构建。
2、表达新生抗原的靶细胞的构建方法如下：
采用能够共表达患者HLA-抗原肽的单质粒系统(专利CN111850018B)，该质粒载体包含人类白细胞抗原(HLA)亚型连接区、抗原表位连接区以及位于两者之间的标签序列。将编码新生抗原多肽FYAFSCYYDL和配对的野生多肽FYAFSYYYDL的DNA序列分别连入携带有HLA-A*24:02型序列载体的抗原表位连接区，进而将HLA-A*24:02分子和上述新生抗原或配对的野生抗原以慢病毒的形式分别转导于COS-7靶细胞中，构建能够共表达HLA-A*24:02与ENTPD6新生抗原或其配对的野生抗原的COS-7靶细胞。
3、细胞毒作用检测
分别以上述1中构建的表达不同TCR的TCR-T细胞作为效应细胞，以上述2中构建的携带新生抗原和携带配对的野生抗原的COS-7细胞作为靶细胞，将效应细胞于X-VIVO 15培养基中静息10h，以效应细胞：靶细胞＝10:1的比例(细胞数分别为1×105和1×104)于酶联免疫斑点实验(ELISPOT)平板中共孵育12h，分析效应细胞释放IFN-γ情况，并进行对比。ELISPOT结果显示，与表达配对野生抗原的COS-7靶细胞共培养时相比，与表达ENTPD6新生抗原的COS-7靶细胞共培养时，TCR-T分泌IFN-γ留下的斑点数量显著增多，平均大小也明显增大(图5)，其中，S20-1-BA2为ENTPD6新生抗原TCR V区关键序列的最佳克隆，与其它TCR相比，表达该TCR的TCR-T细胞对靶细胞的杀伤作用和特异性明显更优(图5)。
最后应说明的是：以上实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的精神和范围。

Claims (9)

1.肿瘤新生抗原TCR，其特征在于，所述肿瘤新生抗原TCR包含TCR α链可变区和TCR β链可变区；
所述TCR α链可变区的CDR1、CDR2、CDR3的氨基酸序列分别如SEQ ID NO.1-3所示，所述TCR β链可变区的CDR1、CDR2、CDR3的氨基酸序列分别如SEQ ID NO.4-6所示；
所述肿瘤新生抗原的氨基酸序列为FYAFSCYYDL。
2.根据权利要求1所述的肿瘤新生抗原TCR，其特征在于，所述TCR α链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO.7所示，所述TCR β链可变区的氨基酸序列如SEQ ID NO.8所示。
3.核酸分子，其特征在于，所述核酸分子编码根据权利要求1或2所述的肿瘤新生抗原TCR。
4.根据权利要求3所述的核酸分子，其特征在于，编码所述TCR α链可变区的核酸分子的核苷酸序列如SEQ ID NO.9所示，和/或，编码所述TCR β链可变区的核酸分子的核苷酸序列如SEQ ID NO.10所示。
5.生物材料，其特征在于，所述生物材料为含有权利要求3或4所述的核酸分子的载体，或者，所述生物材料为含有权利要求3或4所述的核酸分子的宿主细胞，或者，所述生物材料为携带含有权利要求3或4所述的核酸分子的载体的宿主细胞。
6.一种免疫细胞，其特征在于，所述免疫细胞表达权利要求1或2所述的肿瘤新生抗原TCR。
7.根据权利要求6所述的免疫细胞，其特征在于，所述免疫细胞为T细胞。
8.权利要求1或2所述的肿瘤新生抗原TCR或权利要求3或4所述的核酸分子或权利要求5所述的生物材料或权利要求6或7所述的免疫细胞的以下任一种应用：
（1）在制备用于预防和/或治疗肝癌的药物中的应用；
（2）在制备针对肝癌的TCR-T细胞中的应用；
（3）在制备肝癌诊断试剂中的应用。
9.一种药物组合物，其特征在于，所述药物组合物包含权利要求1或2所述的肿瘤新生抗原TCR或权利要求3或4所述的核酸分子或权利要求5所述的生物材料或权利要求6或7所述的免疫细胞。
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