CN116519850A - 一种快速检测血清样本中16种激素浓度的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及激素检测领域，具体涉及一种快速检测血清样本中16种激素浓度的方法，所述方法包括：S1 建立校准曲线；S2 将待进样样本通过超高效液相色谱串联质谱进行检测，所述待进样样本为经前处理的血清样本，所述前处理方式包括利用包含内标物的萃取剂前处理血清样本后复溶；所述萃取剂包括乙酸乙酯和甲酸；所述质谱的条件包括：基于大气压力化学电离源，采用正负离子切换的检测模式和多反应监测的扫描模式，以及2周期3实验模式；S3 利用所述校准曲线，计算并获得所述血清样本中的所述激素的浓度。本发明提供了一种能够真实、准确地反映出患者体内的激素浓度的方法，有望应用至辅助临床医生进行疾病的初步筛查和诊断。

Description

一种快速检测血清样本中16种激素浓度的方法
技术领域
本发明涉及激素检测领域，具体涉及一种快速检测血清样本中16种激素浓度的方法。
背景技术
激素在机体的内分泌、旁分泌和内分泌调节水平上起着至关重要的作用，例如皮质类固醇（例如糖皮质激素和盐皮质激素）参与多种生物过程，包括应激反应和免疫反应以及炎症和碳水化合物代谢的调节；性类固醇（例如孕激素、雄激素和雌激素）介导生殖功能和性特征的发育以及其他功能；褪黑素参与同步昼夜节律，包括睡眠-觉醒时间、血压调节和季节性繁殖。
癫痫是以大脑神经元突发性异常放电导致短暂大脑功能障碍为突出特征的一种慢性疾病。癫痫和机体各种内分泌激素之间有着密切而复杂的关联。癫痫患者往往存在内分泌激素的异常，常见的症状包括生育障碍、多囊卵巢、过早绝经及性功能障碍等。癫痫患者机体内激素（包括内源性或外源性激素）水平的波动，不仅可以直接影响癫痫发作频率和严重程度，而且还可以间接通过药物代谢动力作用改变抗癫痫药物的浓度，从而对癫痫的发作产生影响。研究显示，癫痫发作可能会导致机体的糖皮质激素（例如皮质醇）浓度升高，而过高水平的糖皮质激素会对“下丘脑-垂体-肾上腺（HPA）轴”的负反馈抑制增强，通过对认知的影响（例如注意分散、高度警觉、激发恐惧等）影响癫痫的发展。此外，癫痫发作和发作间歇的痫样放电还可能导致雌激素和孕激素的失调。还有研究表明，过高水平的糖皮质激素容易增加神经元兴奋性、痫性活动和癫痫易感性；过高水平的雌激素（例如雌二醇和雌酮）具有促痫作用，而孕激素可能具有抗癫痫作用。据报道，顽固性癫痫患者在癫痫发作间期的基线褪黑素水平较低，而发作后期的褪黑素水平升高，因此，监测癫痫患者的褪黑素水平，可能实现对癫痫发作的预测。
综上，癫痫与内分泌激素之间的关系复杂，监测癫痫患者的体内激素水平，有助于揭示癫痫患者的发作规律以及诱发癫痫和内分泌紊乱的病因机制和危险因素，这对癫痫患者的临床诊疗和生活质量的提高具有重大意义。
除癫痫外，激素及激素代谢组学在临床上的应用还有助于其他疾病的初步筛查和诊断，包括库欣综合征、醛固酮增多症、先天性肾上腺增生、性发育障碍和多囊卵巢综合征等。举例来说，欧洲肾上腺肿瘤研究网络建议对疑似肾上腺皮质癌的患者进行术前激素检查，特别推荐评估基础皮质醇、硫酸脱氢表雄酮、雄烯二酮、17α-羟孕酮、睾酮、雄烯二酮和雌二醇等激素。此外，对疑似库欣综合征的患者进行皮质醇分泌的昼夜节律检查被认为是有意义的初步筛查。
综上所述，激素的准确定量对众多疾病的初步筛查、诊断和病程监测至关重要。由于具有相同的母体结构，类固醇激素的结构相似，检测难度较高。传统的检测方法为免疫测定法，但由于交叉反应，其难以同时测定多种结构类似的类固醇激素。气相色谱-质谱法和气相色谱-质谱/质谱法的出现虽然提高了定量限、信噪比和线性范围，但是其前处理极为复杂，包括需要酶解去偶联、衍生化、固相萃取或液液萃取等，使用成本及时间成本极高，不利于临床上的大通量检测和自动化发展需求。在衍生化前处理方案中，整体前处理步骤包括：加入萃取剂-震荡-离心-转移-浓缩-加入衍生化试剂-震荡反应-（加入萃取剂-震荡-离心-转移-浓缩-）复溶。换句话说，衍生化前处理方案需要加入衍生化试剂来与待测的分析物进行化学反应。有些衍生化前处理方案甚至还会增加一步萃取-浓缩步骤，以防止衍生化时加入的催化剂污染质谱。衍生化前处理方案中繁琐的步骤会增加检测人员的操作难度，使误差更容易被引入。同时，衍生化试剂需要在配制完成后及时使用，否则会部分失活导致衍生化效率下降甚至影响分析物的定量。例如，专利CN111366671B公开了一种同时检测血清中18种类固醇激素的化学衍生-超高效液相色谱-串联质谱法，其采用液液萃取-化学衍生的前处理方法来提取目标类固醇激素，不仅前处理耗时较长（至少50 min），而且步骤繁琐（例如，加入萃取剂-震荡-离心-转移-浓缩-加入衍生化试剂-震荡反应-复溶），极易引入误差。该方法使用成本及时间成本极高，而且对检测人员提出了更高的要求，这不仅违背大通量检测和自动化发展需求，而且难以推广至各级医疗机构。由于待测的分析物中有大极性物质及小极性物质，固相萃取方案无法对每一种分析物达到较为优异的回收率。同时，固相萃取方案也存在步骤繁琐的缺点。步骤繁琐不仅使得整体方法耗时长，而且每一步操作的准确性都会受检测人员个人能力和经验的影响，同一份样品甚至可能因为实际检测人员的不同而产生不同的结果。例如，专利CN112051348B公开了一种血清或血浆中类固醇激素的固相萃取方法，其前处理步骤更为繁琐（例如，加入甲醇沉淀蛋白-调整有机相与水相的体积比-离心-对固相萃取板孔进行活化处理-淋洗液处理-洗脱液处理-收集洗脱液处理后的馏分-向收集板孔内加入水-涡旋混匀-封膜），仅离心步骤就需要5-15 min，且极易引入误差。类似地，该方法使用成本及时间成本极高，而且对检测人员提出了更高的要求，这不仅违背大通量检测和自动化发展需求，而且难以推广至各级医疗机构。专利CN114674961A公开了一种非衍生化同步检测血清中17种类固醇激素的试剂盒，该专利的技术方案完全不涉及雌酮、雌二醇、雌三醇这三种雌激素的检测，其临床意义大打折扣。换句话说，目前的激素（特别是类固醇激素）检测方法中的前处理方法存在步骤繁琐、效率低等问题，难以推广至各级医疗机构且无法实现大通量和自动化检测。
除此之外，现有技术的部分检测方法还可能存在可重复性差的问题，进而影响检测结果的真实性和准确性。例如，在使用质谱仪Xevo TQ-S并以5 μl为进样体积（样品仅浓缩了不到2倍）的条件下，一旦基线噪音增大、复杂生物基质中样品干扰因素增多、基质效应明显，专利CN111398447B的检测结果极易受到影响，进而可能无法实现其所公开的雌二醇的定量下限，这严重影响检测结果的真实性和准确性，也不利于推广应用。部分现有技术公开了以600 ℃作为离子源温度，这实际上会造成部分激素的降解，进而严重影响检测结果的真实性和准确性。
发明内容
本发明提供了一种快速检测血清样本中16种激素浓度的方法，所述激素包括17α-羟孕酮（17α-Hydroxyprogesterone，17-OHP）、皮质醇（Cortisol，HC）、双氢睾酮（Stanolone或dihydrotestosterone，DHT）、孕烯醇酮（Pregnenolone，PREG）、孕酮（Progesterone，PROG）、11-脱氧皮质醇（11-Doxycortisol，DC）、21-脱氧皮质醇（21-Doxycortisol，21-DC）、雄烯二酮（Androstenedione，A2）、褪黑素（Melatonin，MLT）、睾酮（Testosterone，T）、皮质酮（Corticosterone，CORT）、脱氢表雄酮（Dehydroepiandrosterone，DHEA）、雌三醇（Estriol，E3）、雌酮（Estrone，E1）、硫酸脱氢表雄酮（Dehydroepiandrosterone sulfate，DHEAS）和雌二醇（Estradiol，E2），其特征在于，所述方法包括：
S1 采用稳定同位素内标定量法，以所述激素的标准品与所述激素的内标物的浓度比为X轴，以所述激素的标准品与所述激素的内标物的峰面积比为Y轴，建立校准曲线；
S2 将待进样样本通过超高效液相色谱串联质谱进行检测，所述色谱的条件包括：流动相A为包含5 mM甲酸铵、乙酸铵、氟化铵、甲酸、乙酸、氢氟酸和氨水中的一种或两种的水溶液、流动相B为乙腈进行梯度洗脱；所述待进样样本为经前处理的所述血清样本，所述前处理方式包括利用包含所述内标物的萃取剂前处理所述血清样本后复溶，得到所述待进样样本；所述萃取剂包括乙酸乙酯和甲酸；所述质谱的条件包括：基于大气压力化学电离源，采用正负离子切换的检测模式和多反应监测的扫描模式，以及2周期3实验模式，其中所述2周期3实验模式包括：周期1实验1：气帘气为35 psi，放电电流为4 μA，离子化电压为5500 V，温度为450 ℃，喷雾气为60 psi；周期1实验2：气帘气为35 psi，放电电流为4 μA，离子化电压为-4500 V，温度为450 ℃，喷雾气为60 psi；和周期2实验1：气帘气为35 psi，放电电流为4 μA，离子化电压为5500 V，温度为550 ℃，喷雾气为60 psi；
S3利用所述校准曲线，计算并获得所述血清样本中的所述激素的浓度。
本发明采用乙腈作为流动相B，与现有技术常用的甲醇相比，其在高流速情况下柱压更低、色谱稳定性和分离效果更好。
在一些实施例中，所述17α-羟孕酮、所述皮质酮、所述双氢睾酮、所述孕烯醇酮、所述孕酮、所述11-脱氧皮质醇、所述21-脱氧皮质醇、所述雄烯二酮、所述褪黑素、所述睾酮、所述皮质醇和所述脱氢表雄酮采用正离子模式，对应的碰撞电压分别为40 V、33 V、24 V、34 V、27 V、33 V、25 V、30 V、20 V、31 V、80 V和18 V；所述雌三醇、所述雌酮、所述硫酸脱氢表雄酮和所述雌二醇采用负离子模式，对应的碰撞电压分别为-51 V、-50 V、-30 V和-50V。
在一些实施例中，所述内标物包括d9-孕酮、d5-睾酮和d4-雌二醇。
在一些实施例中，所述质谱的条件还包括：所述d9-孕酮、所述d5-睾酮采用正离子模式，对应的碰撞电压分别为26 V、27 V；所述d4-雌二醇采用负离子模式，对应的碰撞电压为-33 V。
在一些实施例中，所述萃取剂的配制方法包括向所述乙酸乙酯加入所述甲酸，所述甲酸的体积为所述乙酸乙酯的体积的0.1%。
在一些实施例中，所述前处理方式具体包括：向200 μL所述血清样本中加入2 mL所述包含所述内标物的萃取剂，涡旋1min后以3000 r/min离心1 min，取有机相50℃氮吹干燥1 min，加入50 μL复溶剂复溶，得到所述待进样样本。
在一些实施例中，所述复溶剂为所述流动相A和所述流动相B的混合溶液，其中所述流动相A和所述流动相B的体积比为3：2。
在一些实施例中，所述梯度洗脱的程序包括：0-0.50 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；0.70 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为70:30；0.70-4.30 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为70:30；4.33 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为62:38；4.33-4.60min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为62:38；4.61 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为45:55；4.61-6.90 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为45:55；6.91 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为30:70；6.91-8.00 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为30:70；8.01 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；8.01-8.50 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；停止进样。
在一些实施例中，所述色谱的条件还包括采用ExionLC AC超高效液相色谱仪和ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱，所述色谱柱的规格为：1.7 μm，2.1×100 mm。
在一些实施例中，所述色谱的条件还包括：柱温为55 ℃。
与现有技术相比，本发明的有益效果：
1）有观点认为，制约质谱效率提升的瓶颈在于繁琐的前处理环节，理由是生物样本不能直接进入质谱仪进行分析，而是需要经过一系列的样品前处理流程，才能够达到净化或纯化样品、降低基质干扰、提升灵敏度和准确性等效果。本发明的技术方案基于液液萃取，整体前处理步骤包括：加入萃取剂-震荡（1 min）-离心（1 min）-转移-浓缩（1 min）-复溶，步骤简单，耗时远远短于现有技术中采用衍生化处理方案、固相萃取方案、甚至是其他液液萃取方案。虽然本发明提供的前处理方案步骤简单，但经多次试验验证，本发明的前处理方案可以有效萃取复杂基质（例如血清样本）中的多种目标分析物以及在相同复杂基质的条件下萃取出更多的目标分析物，具有鲁棒性（robustness，也可以理解为稳定性或抗干扰性）好、可重复性高、易于标准化等优势。此外，本发明的前处理方案对检测人员的个人能力和经验要求不高，适用于各级医疗机构，甚至适用于实现自动化检测。换句话说，本发明提供的方法一定程度上避免了现有技术中提取血清样本中的激素的前处理方法存在的步骤多、耗时长、容易引入误差、受检测人员主观经验影响和难以自动化等诸多缺点。
2）本发明创造性地采用大气压力化学离子源以及相应的2周期3实验模式（而非现有技术采用电喷雾离子源并以固定的离子源温度的技术方案），以多温度的方式来检测各分析物，能够以最大程度保护激素不被降解的同时，使得各激素能够在最适温度充分离子化。这在一定程度上避免了现有技术的单一离子源温度所造成的激素降解和/或激素无法充分离子化的问题，提高了本发明方法的准确性。
3）虽然本发明前处理方案简单，但经多次试验验证，本发明提供的方法能够一定程度上避免基线噪音、复杂生物基质中样品干扰因素、基质效应等干扰对定量效果的影响，信噪比高的同时，灵敏度、准确性和可重复性都能达到较高水平，例如本发明能够检测的双氢睾酮、部分雌激素等激素仍然可以达到纳克级、甚至皮克级，符合临床检验要求。除此之外，本发明提供的方法的色谱出峰时间短（例如8 min左右）、通量更高，满足高通量、高效率、自动化的要求，适合于推广至各级医疗机构。
4）激素在机体的内分泌、旁分泌和内分泌调节水平上起着至关重要的作用。本发明提供的方法能够真实、准确地反映出患者体内的激素浓度，能够辅助临床医生进行疾病的初步筛查和诊断。在一些实施例中，本发明提供的方法适用于监测癫痫患者的体内激素水平、甚至实现揭示癫痫患者的发作规律以及诱发癫痫和内分泌紊乱的病因机制和危险因素，对癫痫患者的临床诊疗和生活质量的提高具有重大意义。
综上所述，本发明提供了一种基于超高效液相色谱-质谱/质谱技术对16种激素进行检测的方法。与现有技术相比，本发明前处理简单、通量大、灵敏度高、检测效率高、鲁棒性好、可重复性高、易于自动化等优势，有利于应用至临床，以帮助临床医生评估人体健康和疾病进程。
如本文所使用，术语“受试者”、“个体”和“患者”可互换地使用，是指从中采集生物样品的哺乳动物，除非另有说明。
如本文所使用，术语“样品”或“生物样品”或“样本”或“临床样本”或“生物基质”可互换地使用，是指从受试者分离的生物材料。在本发明中，“生物基质”包括血液（例如全血、血浆和血清）和唾液及其经预处理分离的部分。在一些优选实施例中，所述生物基质为血清。预处理的方法包括过滤、蒸馏、提取、浓缩、失活干扰组分或添加试剂等。
如本文所使用，术语“分析物”或“目标分析物”是指可以在生物基质中发现并需要检测或定量的分子或离子。在本发明中，“分析物”或“目标分析物”具体包括17α-羟孕酮、皮质醇、双氢睾酮、孕烯醇酮、孕酮、11-脱氧皮质醇、21-脱氧皮质醇、雄烯二酮、褪黑素、睾酮、皮质酮、脱氢表雄酮、雌三醇、雌酮、硫酸脱氢表雄酮、雌二醇。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。显而易见地，下面描述中的附图是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动性的前提下，还可以根据这些附图获得其它的附图。
图1为本发明涉及的主要实验材料的具体信息的汇总图；
图2为正离子模式下、各目标分析物的质谱参数及对应内标物的汇总图；
图3为负离子模式下、各目标分析物质谱参数及对应内标物的汇总图；
图4为内标物的质谱参数的汇总图；
图5为周期2实验1下质控血浆样品的色谱图；
图6为周期1实验1下质控血浆样品的色谱图；
图7为周期1实验2下质控血浆样品的色谱图；
图8为周期2实验1下空白人造血浆样品的色谱图；
图9为周期1实验1下空白人造血浆样品的色谱图；
图10为周期1实验2下空白人造血浆样品的色谱图；
图11为各目标分析物的定量线性范围及标准曲线的汇总图；
图12为各目标分析物的批内/批间准确度和精密度的汇总图；
图13为不同溶剂萃取的色谱图；
图14为不同溶剂萃取的结果图；
图15为本发明方法中梯度洗脱程序的示意图。
具体实施方式
为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
本文中“和/或”包括任何和所有一个或多个列出的相关项的组合。
本文中“多个”意指两个或两个以上，即其包含两个、三个、四个、五个等。
需要说明的是，在本文中，术语“包括”、“包含”或者其任何其他变体意在涵盖非排他性的包含，从而使得包括一系列要素的过程、方法、物品或者装置不仅包括那些要素，而且还包括没有明确列出的其他要素，或者是还包括为这种过程、方法、物品或者装置所固有的要素。在没有更多限制的情况下，由语句“包括一个……”限定的要素，并不排除在包括该要素的过程、方法、物品或者装置中还存在另外的相同要素。
如在本说明书中使用的，术语“大约”，典型地表示为所述值的+/-5%，更典型的是所述值的+/-4%，更典型的是所述值的+/-3%，更典型的是所述值的+/-2%，甚至更典型的是所述值的+/-1%，甚至更典型的是所述值的+/-0.5%。
在本说明书中，某些实施方式可能以一种处于某个范围的格式公开。应该理解，这种“处于某个范围”的描述仅仅是为了方便和简洁，且不应该被解释为对所公开范围的僵化限制。因此，范围的描述应该被认为是已经具体地公开了所有可能的子范围以及在此范围内的独立数字值。例如，范围1〜6的描述应该被看作已经具体地公开了子范围如从1到3，从1到4，从1到5，从2到4，从2到6，从3到6等，以及此范围内的单独数字，例如1，2，3，4，5和6。无论该范围的广度如何，均适用以上规则。
实施例一：储备液及工作液的制备
本发明涉及的主要实验材料的具体信息如图1所示。
1.1.采用甲醇为工作液稀释剂，标记为溶剂A；采用PBS和胎牛白蛋白作为人造血浆，配制方法包括：取100 mL PBS，加入胎牛血清50 mg，混合均匀后标记为人造空白血浆B。
1.2.分析物储备液和内标物储备液的制备：
1.2.1.将分析物配制成以下浓度的储备液（配制两份，分别为分析物标准曲线储备液和分析物质控储备液）：17α-羟孕酮1 mg/mL、皮质酮1 mg/mL、双氢睾酮1 mg/mL、孕烯醇酮1 mg/mL、孕酮1 mg/mL、11-脱氧皮质醇1 mg/mL、21-脱氧皮质醇1 mg/mL、雄烯二酮1mg/mL、褪黑素1 mg/mL、睾酮1 mg/mL、皮质醇1 mg/mL、脱氢表雄酮1 mg/mL、雌三醇1 mg/mL、雌酮1 mg/mL、硫酸脱氢表雄酮1 mg/mL、雌二醇1 mg/mL。分析物储备液均保存于-80℃冰箱中。
1.2.2.内标物储备液分别为d9-孕酮（PROG-d9）、d5-睾酮（T-d5）和d4-雌二醇（E2-d4）的100 μg/mL的储备液。内标物储备液均保存于-80℃冰箱中。
1.2.3.分析物工作液的制备：使用溶剂A，将分析物标准曲线储备液和分析物质控储备液稀释成如下浓度的工作液：17α-羟孕酮10 μg/mL、皮质酮10 μg/mL、双氢睾酮10 μg/mL、孕烯醇酮10 μg/mL、孕酮100 μg/mL、11-脱氧皮质醇10 μg/mL、21-脱氧皮质醇10 μg/mL、雄烯二酮10 μg/mL、褪黑素10 μg/mL、睾酮10 μg/mL、皮质醇1 mg/mL、脱氢表雄酮100 μg/mL、雌三醇10 μg/mL、雌酮10 μg/mL、硫酸脱氢表雄酮1 mg/mL、雌二醇10 μg/mL。分析物工作液均保存于-80℃冰箱中。
1.3.分析物标准曲线血浆以及质控血浆的制备：
1.3.1.标准曲线血浆的制备：将1.2.1.中配制的分析物标准曲线储备液：17α-羟孕酮5 μL、皮质酮1 μL、双氢睾酮5 μL、孕烯醇酮5 μL、孕酮10 μL、11-脱氧皮质醇1 μL、21-脱氧皮质醇1 μL、雄烯二酮5 μL、褪黑素1 μL、睾酮5 μL、皮质醇5 μL、脱氢表雄酮20 μL、雌三醇10 μL、雌酮10 μL、硫酸脱氢表雄酮5 μL和雌二醇5 μL，与951 μL人造空白血浆B混合，得到1 mL最高浓度点的混合标准曲线血浆。用人造空白血浆B，将上述最高浓度点的混合标准曲线血浆逐级稀释为七个不同浓度的标准曲线血浆（简称为“系列标准曲线血浆”），该系列标准曲线血浆的浓度点（包含最高浓度点）分别为：
17α-羟孕酮：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；皮质酮：0.1 ng/mL，0.2 ng/mL，1 ng/mL，5 ng/mL，10 ng/mL，25ng/mL，50 ng/mL，100 ng/mL；双氢睾酮：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；孕烯醇酮：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；孕酮：0.1 ng/mL，0.2 ng/mL，1 ng/mL，5 ng/mL，10 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL，100 ng/mL；11-脱氧皮质醇：0.01 ng/mL，0.02ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，1 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，10 ng/mL；21-脱氧皮质醇：0.01 ng/mL，0.02 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，1 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，10 ng/mL；雄烯二酮：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；褪黑素：0.01 ng/mL，0.02 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，1 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，10 ng/mL；睾酮：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；皮质醇：0.5 ng/mL，1 ng/mL，5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL，125 ng/mL，250 ng/mL，500 ng/mL；脱氢表雄酮：0.1 ng/mL，0.2 ng/mL，1 ng/mL，5 ng/mL，10 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL，100 ng/mL；雌三醇：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；雌酮：0.05 ng/mL，0.1 ng/mL，0.5 ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL；硫酸脱氢表雄酮：0.5ng/mL，1ng/mL，5ng/mL，25 ng/mL，5 ng/mL，125 ng/mL，250 ng/mL，500 ng/mL；雌二醇：0.05 ng/mL，0.1ng/mL，0.5ng/mL，2.5 ng/mL，5 ng/mL，12.5 ng/mL，25 ng/mL，50 ng/mL。
1.3.2.质控血浆的制备：将1.2.1.中配制的分析物质控储备液：17α-羟孕酮5 μL、皮质酮1 μL、双氢睾酮5 μL、孕烯醇酮5 μL、孕酮10 μL、11-脱氧皮质醇1 μL、21-脱氧皮质醇1 μL、雄烯二酮5 μL、褪黑素1 μL、睾酮5 μL、皮质醇50 μL、脱氢表雄酮20 μL、雌三醇10μL、雌酮10 μL、硫酸脱氢表雄酮50 μL和雌二醇5 μL，与861 μL人造空白血浆B混合，得到2mL混合高浓度质控（HQC）混合血浆。用人造空白血浆B，将上述HQC混合血浆逐级稀释为中浓度质控（MQC）混合血浆、低浓度质控（LQC）混合血浆和定量下限质控（LLOQ）混合血浆，该质控混合血浆的浓度点分别为：
17α-羟孕酮：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；皮质酮：0.1 ng/mL，0.3 ng/mL，7.5 ng/mL，75 ng/mL；双氢睾酮：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；孕烯醇酮：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；孕酮：0.1 ng/mL，0.3 ng/mL，7.5 ng/mL，75 ng/mL；11-脱氧皮质醇：0.01 ng/mL，0.03 ng/mL，0.75 ng/mL，7.5 ng/mL；21-脱氧皮质醇：0.01 ng/mL，0.03 ng/mL，0.75 ng/mL，7.5 ng/mL；雄烯二酮：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；褪黑素：0.01 ng/mL，0.03 ng/mL，0.75 ng/mL，7.5 ng/mL；睾酮：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；皮质醇：0.5 ng/mL，1.5 ng/mL，37.5 ng/mL，375 ng/mL；脱氢表雄酮：0.1 ng/mL，0.3 ng/mL，7.5ng/mL，75 ng/mL；雌三醇：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；雌酮：0.05ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL；硫酸脱氢表雄酮：0.1 ng/mL，0.3 ng/mL，7.5ng/mL，75 ng/mL和雌二醇：0.05 ng/mL，0.15 ng/mL，3.75 ng/mL，37.5 ng/mL。
1.4.内标工作液的制备：分别取1.2.2.中的内标物储备液d9-孕酮 0.5 μL、d5-睾酮 0.25 μL和d4-雌二醇0.25 μL，并向其中加入萃取剂（乙酸乙酯，0.1%甲酸）得到内标工作液100 mL（即包含内标物的萃取剂），于4℃冰箱中保存。
1.5.复溶剂A的制备：将30 mL流动相A和20 mL流动相B（即流动相A：流动相B=60：40）混合得到的溶剂作为样品进样前的稀释剂，标记为复溶剂A。本发明还测试了以流动相A：流动相B=85：15作为复溶剂，使用该复溶剂时，各个目标分析物（尤其是对需要定量下限较低的雌二醇、雌三醇等激素）的响应明显低于复溶剂A。此外，如果进样小瓶中的有机相比例过高，则会导致样品上样后有机相比例过高，其效果与采用高初始有机相比例流动相类似，即分离效果变差。
实施例二：UPLC-MS/MS分析检测
2.1.主要仪器：超高效液相串联质谱系统（UPLC-MS/MS）由AB公司的ExionLC AC超高效液相色谱仪和SCIEX公司的6500型三重四级杆质谱组成，配有APCI离子源以及Analyst数据采集处理系统；XPE26电子分析天平（METTLER公司）；VX-Ⅱ多管涡旋振荡器（天根生化科技有限公司）；TGL-19高速冷冻离心机（四川蜀科仪器有限公司）。
2.2.实验方法：
2.2.1.色谱条件：色谱柱采用Waters公司的ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱，规格为1.7 μm，2.1×100 mm。流动相A为含5 mM 氟化铵的水溶液，流动相B为乙腈，柱温为55℃，流动相的总流速保持在0.5 mL/min。实际上，流动相A可以为包含5 mM甲酸铵、乙酸铵、氟化铵、甲酸、乙酸、氢氟酸和氨水中的一种或两种的水溶液，优选为以氟化铵作为流动相的添加剂，以提高分析物的离子化效果。
梯度洗脱的洗脱程序（如图15所示，黑线上方表示流动相A所占比例，黑线下方表示流动相B所占比例）为：
0-0.50 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；0.70 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为70:30；0.70-4.30 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为70:30；4.33 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为62:38；4.33-4.60 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为62:38；4.61 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为45:55；4.61-6.90 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为45:55；6.91 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为30:70；6.91-8.00 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为30:70；8.01 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；8.01-8.50 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；停止进样。进样体积优选为10 μL。
2.2.2.质谱条件：基于APCI（大气压化学电离）离子源，采用2周期3实验模式，对目标分析物和内标物进行多反应监测扫描，各通道驻留时间为20 msec。其中，2周期3实验模式具体包括：
周期1实验1：气帘气（Curtain Gus，CUR）为35 psi，放电电流（NebulizerCurrent，NC）为4 μA，离子化电压（Ionization Voltage，IS）为5500 V，温度（Temperature，TEM）为450 ℃，喷雾气（Ion Source Gas1，GS1）为60 psi。
周期1实验2：气帘气（Curtain Gus，CUR）为35 psi，放电电流（NebulizerCurrent，NC）为4 μA，离子化电压（Ionization Voltage，IS）为-4500 V，温度（Temperature，TEM）为450 ℃，喷雾气（Ion Source Gas1，GS1）为60 psi。
周期2实验1：气帘气（Curtain Gus，CUR）为35 psi，放电电流（NebulizerCurrent，NC）为4 μA；离子化电压（Ionization Voltage，IS）为5500 V，温度（Temperature，TEM）为550 ℃，喷雾气（Ion Source Gas1，GS1）为60 psi。
各目标分析物和内标物的质谱参数如图2、图3和图4所示。
2.2.3.样本的前处理：向200 μL标准曲线血浆、质控血浆或待测血清中，加入1.4.中制备的内标工作液2 mL，涡旋1 min并离心（3000 r/min，1 min）。取有机相50 ℃氮吹干燥1 min，加入50 μL复溶剂A复溶，得到待进样样本。
2.3.方法学验证
2.3.1.选择性：取经2.2.3中前处理后的空白人造血浆样品以及质控血浆样品，分别进样。
图8-图10为2周期3实验模式下，空白人造血浆样品的色谱图。具体地，图8为周期2实验1（正离子模式）下空白人造血浆样品的色谱图；图9为周期1实验1（正离子模式）下空白人造血浆样品的色谱图；图10为周期1实验2（负离子模式）下空白人造血浆样品的色谱图；其中横坐标为时间（min），纵坐标为强度（cps，每秒计数）。在空白人造血浆样品的色谱图中，各目标分析物及内标物的保留时间（如图8、图9和图10中各目标分析物及内标物名称左方的数字所示）处均未出现干扰峰，说明本方法具有良好的选择性。
图5-图7为2周期3实验模式下，质控血浆样品中分析物的色谱图。具体地，图5为周期2实验1（正离子模式）下质控血浆样品的色谱图；图6为周期1实验1（正离子模式）下质控血浆样品的色谱图；图7为周期1实验2（负离子模式）下质控血浆样品的色谱图；其中横坐标为时间（min），纵坐标为强度（cps，每秒计数）。上述结果表明，本发明提供的方法的分离效果好、灵敏度高、能够对16种激素进行准确定量分析。
2.3.2.校准曲线：取实施例二制备的标准曲线血浆样品进样，采用同位素内标法进行定量，权重因子为1/x2。在Analyst软件中建立的校准曲线线性良好，相关系数均大于0.99，各分析物的定量线性范围及标准曲线如图11所示。
2.3.3.准确性与精密度：取实施例二制备的空白人造血浆样品、系列标准曲线样品及不同浓度的质控样品构成分析批，并连续分析3个分析批。1个分析批包括：1个空白样品+2份系列标准曲线样品（1份系列标准曲线样品包括8个不同浓度的样品）+5份不同浓度的质控样品（1份质控样品包括4个浓度（即HQC、MQC、LQC、LLOQ）的质控样品），共计37个样品。各目标分析物的批内/批间准确度和精密度如图12所示。
实施例三
本实施例测试了不同萃取剂对血清样本中的激素的萃取效率的影响，实验结果如图13和图14所示。图13为不同溶剂萃取的色谱图，其中曲线1代表图14的测试1（即DCM（二氯甲烷）），曲线2代表图14的测试2（即EAF（乙酸乙酯、甲酸））；曲线3代表图14的测试3（即HD（正己烷、二氯甲烷））；曲线4代表图14的测试4（即HDF（正己烷、二氯甲烷、甲酸））：曲线5代表图14的测试5（即HDI（正己烷、二氯甲烷、异丙醇））；曲线6代表图14的测试6（即HEX（正己烷））；曲线7代表图14的测试7（即HDIF（正己烷、二氯甲烷、异丙醇、甲酸））；曲线8代表图14的测试8（即HDM（正己烷、二氯甲烷、甲醇））；曲线9代表图14的测试9（即HDMF（正己烷、二氯甲烷、甲醇、甲酸））。图14为不同溶剂萃取的结果图，图14中“效果”部分的数字代表有多少种目标分析物的萃取效率最高；甲酸处的0.1%是指向配好的溶剂中加入该溶剂的0.1%体积的甲酸。本实施例发现，采用正己烷的萃取剂的萃取效率较差（测试3-9），采用二氯甲烷的萃取剂并不能有效萃取大部分种类的激素（测试1、3-9）；而采用乙酸乙酯和甲酸的混合溶剂（100:0.1%，v/v）作为萃取剂的萃取效率较佳，故本发明采用乙酸乙酯和甲酸的混合溶剂作为萃取剂。实验结果表明，本发明提供的萃取剂（也可以理解为液液萃取方案），能够在相同的复杂基质（例如血清）的条件下萃取出更多的目标分析物。除此之外，本发明提供的萃取剂还能够提高检测过程中的信噪比，使得基线噪音对定量结果的影响相对更小。
上面结合附图对本发明的实施例进行了描述，但是本发明并不局限于上述的具体实施方式，上述的具体实施方式仅仅是示意性的，而不是限制性的，本领域的普通技术人员在本发明的启示下，在不脱离本发明宗旨和权利要求所保护的范围情况下，还可做出很多形式，这些均属于本发明的保护之内。

Claims (10)

1.一种快速检测血清样本中16种激素浓度的方法，所述激素包括17α-羟孕酮、皮质醇、双氢睾酮、孕烯醇酮、孕酮、11-脱氧皮质醇、21-脱氧皮质醇、雄烯二酮、褪黑素、睾酮、皮质酮、脱氢表雄酮、雌三醇、雌酮、硫酸脱氢表雄酮和雌二醇，其特征在于，所述方法包括：
S1 采用稳定同位素内标定量法，以所述激素的标准品与所述激素的内标物的浓度比为X轴，以所述激素的标准品与所述激素的内标物的峰面积比为Y轴，建立校准曲线；
S2 将待进样样本通过超高效液相色谱串联质谱进行检测，所述色谱的条件包括：流动相A为包含5 mM甲酸铵、乙酸铵、氟化铵、甲酸、乙酸、氢氟酸和氨水中的一种或两种的水溶液、流动相B为乙腈进行梯度洗脱；所述待进样样本为经前处理的所述血清样本，所述前处理方式包括利用包含所述内标物的萃取剂前处理所述血清样本后复溶，得到所述待进样样本；所述萃取剂包括乙酸乙酯和甲酸；所述质谱的条件包括：基于大气压力化学电离源，采用正负离子切换的检测模式和多反应监测的扫描模式，以及2周期3实验模式，其中所述2周期3实验模式包括：周期1实验1：气帘气为35 psi，放电电流为4 μA，离子化电压为5500 V，温度为450 ℃，喷雾气为60 psi；周期1实验2：气帘气为35 psi，放电电流为4 μA，离子化电压为-4500 V，温度为450 ℃，喷雾气为60 psi；和周期2实验1：气帘气为35 psi，放电电流为4 μA，离子化电压为5500 V，温度为550 ℃，喷雾气为60 psi；
S3 利用所述校准曲线，计算并获得所述血清样本中的所述激素的浓度。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述17α-羟孕酮、所述皮质酮、所述双氢睾酮、所述孕烯醇酮、所述孕酮、所述11-脱氧皮质醇、所述21-脱氧皮质醇、所述雄烯二酮、所述褪黑素、所述睾酮、所述皮质醇和所述脱氢表雄酮采用正离子模式，对应的碰撞电压分别为40 V、33 V、24 V、34 V、27 V、33 V、25 V、30 V、20 V、31 V、80 V和18 V；所述雌三醇、所述雌酮、所述硫酸脱氢表雄酮和所述雌二醇采用负离子模式，对应的碰撞电压分别为-51V、-50 V、-30 V和-50 V。
3.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述内标物包括d9-孕酮、d5-睾酮和d4-雌二醇。
4.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述前处理方式具体包括：向200 μL所述血清样本中加入2 mL所述包含所述内标物的萃取剂，涡旋1min后以3000 r/min离心1 min，取有机相50℃氮吹干燥1 min，加入50 μL复溶剂复溶，得到所述待进样样本。
5.如权利要求1或4所述的方法，其特征在于，所述萃取剂的配制方法包括向所述乙酸乙酯加入所述甲酸，所述甲酸的体积为所述乙酸乙酯的体积的0.1%。
6.如权利要求4所述的方法，其特征在于，所述复溶剂为所述流动相A和所述流动相B的混合溶液，其中所述流动相A和所述流动相B的体积比为3：2。
7.如权利要求3所述的方法，其特征在于，所述质谱的条件还包括：所述d9-孕酮、所述d5-睾酮采用正离子模式，对应的碰撞电压分别为26 V、27 V；所述d4-雌二醇采用负离子模式，对应的碰撞电压为-33 V。
8.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述梯度洗脱的程序包括：0-0.50 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；0.70 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为70:30；0.70-4.30 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为70:30；4.33 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为62:38；4.33-4.60 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为62:38；4.61 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为45:55；4.61-6.90 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为45:55；6.91 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为30:70；6.91-8.00 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为30:70；8.01 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；8.01-8.50 min时，所述流动相的流速为0.5 mL/min，所述流动相A与所述流动相B的体积比为85:15；停止进样。
9.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述色谱的条件还包括采用ExionLC AC超高效液相色谱仪和ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱，所述色谱柱的规格为：1.7 μm，2.1×100mm。
10.如权利要求9所述的方法，其特征在于，所述色谱的条件还包括：柱温为55 ℃。
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