CN116396988B - 一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法 - Google Patents

一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN116396988B
CN116396988B CN202310571702.4A CN202310571702A CN116396988B CN 116396988 B CN116396988 B CN 116396988B CN 202310571702 A CN202310571702 A CN 202310571702A CN 116396988 B CN116396988 B CN 116396988B
Authority
CN
China
Prior art keywords
micro
polyunsaturated fatty
algae
mango
fatty acid
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202310571702.4A
Other languages
English (en)
Other versions
CN116396988A (zh
Inventor
林宜萌
平文祥
葛菁萍
凌宏志
王美琦
徐静
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Heilongjiang University
Original Assignee
Heilongjiang University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Heilongjiang University filed Critical Heilongjiang University
Priority to CN202310571702.4A priority Critical patent/CN116396988B/zh
Publication of CN116396988A publication Critical patent/CN116396988A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN116396988B publication Critical patent/CN116396988B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/64Fats; Fatty oils; Ester-type waxes; Higher fatty acids, i.e. having at least seven carbon atoms in an unbroken chain bound to a carboxyl group; Oxidised oils or fats
    • C12P7/6409Fatty acids
    • C12P7/6427Polyunsaturated fatty acids [PUFA], i.e. having two or more double bonds in their backbone
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12Unicellular algae; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,属于微生物发酵技术领域。本发明的目的是为了挖掘高COD亚麻脱胶废液的利用场景,拓展产多不饱和脂肪酸的微生物来源。具体方法:亚麻脱胶液上清加入尿素后调整pH并灭菌;接种微芒藻Micractinium sp.HDA05培养得到发酵液;发酵液离心留沉淀,经冻干、研磨与有机溶剂抽提即获得含有多不饱和脂肪酸的粗油。本发明方法获得的多不饱和脂肪酸产量可达403~588 mg/L,与常规培养基相比节约培养成本,且产量提升显著。

Description

一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法
技术领域
本发明属于微生物发酵技术领域,具体涉及一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法。
背景技术
多不饱和脂肪酸(PUFAs)是人类及动物饮食的重要组成部分,在细胞信号传导、膜结构和功能以及许多其他生理反应中发挥重要作用。一些藻类在生长过程中可积累PUFA,具有开发为PUFA原料的潜力,可用来增加动物饲料和动物产品的营养水平。但藻类培养过程成本较高,限制了其生产PUFA的规模化应用。利用废水培养藻类,有助于解决藻类培养过程中的成本问题。但不同类型废水特征不同,需要针对性探索培养藻类的可行性。在《城镇污水处理厂污染物排放标准》、《地表水环境质量标准》和《污水综合排放标准》三个国家标准中,对于废水排放COD限值有严格规定。但麻类纤维脱胶等产生COD较高的工业,其废液中COD浓度远超排放限值100~1000 mg/L的要求。因此,有必要针对高COD含量的麻类脱胶废液,挖掘其利用场景,回收其中营养元素,促进废水资源化利用。本发明针对亚麻脱胶废液这一类废水的利用问题,提供一种微芒藻产多不饱和脂肪酸的方法。目前尚无微芒藻属微生物利用高COD亚麻脱胶废液高产多不饱和脂肪酸的报道。
本发明中,微芒藻HDA05的拉丁名为Micractiniumsp. HDA05,保藏于黑龙江大学微生物重点实验室,本发明中微芒藻HDA05的来源为:富油微藻的分离筛选及其脂质积累相关酶学分析[D]. 黑龙江大学, 2015。
发明内容
为了挖掘高COD废液的利用场景,拓展产多不饱和脂肪酸的微生物来源,本发明提供一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法。
本发明微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量5000~12000 mg/L的亚麻脱胶废液静置8~10h,取静置后上清液;每升上清液加入尿素0.5~0.8 g,调整上清液pH为6.8~8.8;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1~0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度22~27℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵6~8 d;以3500~4500rpm离心10~15min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本发明步骤一中尿素可替换为硝酸钠、氯化铵或硝酸铵。
有益效果:
1. 本发明中的微芒藻属(Micractiniumsp.)藻株HDA05可通过光能自养和化能异养两种方式生长。在利用光能、CO2的同时,还可以利用亚麻脱胶废液中的营养元素及有机物。利用本发明的方法,藻类在积累生物量、合成高附加值产物的同时实现亚麻脱胶废液利用。
2. 本发明提供的方法步骤简单,不需添加额外的碳源,能够节省藻类培养的水源、碳源成本。添加的尿素可为工业级,价格低廉。与常规培养基相比,藻类细胞在高COD亚麻脱胶废液中生长更快,多不饱和脂肪酸的产量更高。本发明中微芒藻属(Micractiniumsp.)藻株HDA05在高COD亚麻脱胶废液中培养时,多不饱和脂肪酸产量可达403~588 mg/L,与常规培养基相比节约培养成本,且产量提升显著。
3. 本发明所用的微芒藻为绿藻类,可直接作为健康食品及膳食补充来源,可直接以藻粉形式加入食品或饲料,也可以富集多不饱和脂肪酸后作为相关营养强化成分添加。本发明的方法对食品、膳食补充剂及饲料生产具有促进作用。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的实施方式进行说明。需要理解的是以下实施例只是起到说明的目的,并非对本发明的范围进行限制。
下述实施例中所使用的试剂、材料,若无特殊说明,均可从商业途径得到。
下述实施例中所使用的实验方法,若无特殊说明,均为常规实验方法。
实施例1:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量9884 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入尿素0.8 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以3500 rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.80 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸286 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸515 mg。
实施例2:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量5633 mg/L的亚麻脱胶废液静置9h,取静置后上清液;每升上清液加入尿素0.6 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以4200rpm离心12 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.45 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸278 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸403 mg。
实施例3:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量9072 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入尿素0.8 g,调整上清液pH为8.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵8 d;以4500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.96 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸300 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸588 mg。
实施例4:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量9351 mg/L的亚麻脱胶废液静置9h,取静置后上清液;每升上清液加入尿素0.6 g,调整上清液pH为7.0;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度27℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵6 d;以3500rpm离心15 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.73 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸260 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸450 mg。
实施例5:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量5356 mg/L的亚麻脱胶废液静置10h,取静置后上清液;每升上清液加入尿素0.7 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度23℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵6 d;以4500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.53 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸277 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸424 mg。
由实施例1~实施例5可知,本发明采用微芒藻Micractiniumsp. HDA05,利用高COD的亚麻脱胶废液发酵,可产多不饱和脂肪酸,且多不饱和脂肪酸含量较高,每克藻粉含多不饱和脂肪酸260~300 mg,每升亚麻脱胶废液获得不饱和脂肪酸424~588 mg。
实施例6:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量7526 mg/L的亚麻脱胶废液静置10h,取静置后上清液;每升上清液加入硝酸钠0.7 g,调整上清液pH为8.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度24℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以4500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.68 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸289 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸486 mg。
实施例7:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量5087 mg/L的亚麻脱胶废液静置10h,取静置后上清液;每升上清液加入硝酸钠0.7 g,调整上清液pH为8.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.66 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸275 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸457 mg。
实施例8:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量6100 mg/L的亚麻脱胶废液静置10h,取静置后上清液;每升上清液加入硝酸钠0.5 g,调整上清液pH为6.9;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.75 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸269 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸471 mg。
由实施例6~实施例8可知,本发明采用微芒藻Micractiniumsp. HDA05,利用高COD的亚麻脱胶废液发酵,可产多不饱和脂肪酸,且多不饱和脂肪酸含量较高,每克藻粉含多不饱和脂肪酸269~289 mg,每升亚麻脱胶废液获得不饱和脂肪酸457~486 mg。
实施例9:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量7506 mg/L的亚麻脱胶废液静置10h,取静置后上清液;每升上清液加入氯化铵0.6 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.89 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸258 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸488 mg。
实施例10:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量9530 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入氯化铵0.5 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.77 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸236 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸418 mg。
实施例11:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量11320 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入氯化铵0.5 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵8 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.93 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸249 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸481 mg。
由实施例9~实施例11可知,本发明采用微芒藻Micractiniumsp. HDA05,利用高COD的亚麻脱胶废液发酵,可产多不饱和脂肪酸,且多不饱和脂肪酸含量较高,每克藻粉含多不饱和脂肪酸236~258 mg,每升亚麻脱胶废液获得不饱和脂肪酸418~488 mg。
实施例12:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量7056 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入硝酸铵0.5 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵7 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.80 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸251 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸452 mg。
实施例13:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量7056 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入硝酸铵0.5 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.1 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度27℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵8 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.70 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸260 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸442 mg。
实施例14:
本实施方式微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法按照以下步骤进行:
步骤一、将COD含量7056 mg/L的亚麻脱胶废液静置8h,取静置后上清液;每升上清液加入硝酸铵0.8 g,调整上清液pH为7.5;121℃灭菌15 min。
步骤二、按照接种量0.2 g/L将微芒藻Micractiniumsp. HDA05接种至上述灭菌后上清液中,在温度25℃、摇床转速150rpm、光照强度3000 lux的条件下发酵8 d;以3500rpm离心10 min,留沉淀获得微芒藻藻泥。藻泥经冷冻干燥后研磨,再以氯仿/甲醇(v:v=2:1)抽提三次,静置后取下层有机相,用氮吹仪干燥有机溶剂即获得多不饱和脂肪酸的粗油。
本实施例每升亚麻脱胶废液可收获的微芒藻1.75 g,每克藻粉含多不饱和脂肪酸279 mg,折合每升亚麻脱胶废液可获得多不饱和脂肪酸488 mg。
由实施例12~实施例14可知,本发明采用微芒藻Micractiniumsp. HDA05,利用高COD的亚麻脱胶废液发酵,可产多不饱和脂肪酸,且多不饱和脂肪酸含量较高,每克藻粉含多不饱和脂肪酸251~279 mg,每升亚麻脱胶废液获得不饱和脂肪酸442~488 mg。
比较例1:
本比较例与实施例1不同的是,步骤一中上清液pH为5.5,不经过灭菌环节。其他步骤和参数和实施例1相同。
比较例2:
本比较例与实施例1不同的是,步骤一中不加入尿素。其他步骤和参数和实施例1相同。
比较例3:
本比较例与实施例1不同的是,步骤一中不加入尿素,以微藻培养常用培养基BG-11替代亚麻脱胶废液。其他步骤和参数和实施例1相同。
比较例4:
本比较例与实施例1不同的是,步骤二中不设置光照和摇床转速。其他步骤和参数和实施例1相同。
比较例5:
本比较例与实施例1不同的是,步骤二中温度设置为30℃。其他步骤和参数和实施例1相同。
表1 实施例1与比较例的多不饱和脂肪酸产量对比
组别 微茫藻生物量(g/L) 藻粉PUFA含量(mg/g) 亚麻脱胶废液PUFA产量(mg/L)
实施例1 1.80 286 515
比较例1 0.30 220 66
比较例2 0.55 185 102
比较例3 0.68 209 142
比较例4 0.95 195 185
比较例5 1.20 170 204
显然,上述实施例仅仅是为清楚地说明所作的举例,而并非对实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说,在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引伸出的显而易见的变化或变动仍处于本发明创造的保护范围之中。

Claims (6)

1.一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,其特征在于微芒藻属微生物利用亚麻脱胶废液产多不饱和脂肪酸的方法,包括以下步骤:
步骤一、将亚麻脱胶废液静置8~10 h,取静置后上清液;加入尿素,调整上清液pH为6.8~8.8;121℃灭菌15 min;
步骤二、接种微芒藻Micractinium sp. HDA05至上述灭菌后上清液发酵6~8 d;离心留沉淀获得微芒藻生物质,经冻干、研磨与有机溶剂抽提即得到多不饱和脂肪酸的粗油。
2. 根据权利要求1所述的微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,其特征在于步骤一中亚麻脱胶废液化学需氧量(COD)浓度为5000~12000 mg/L。
3. 根据权利要求1所述的微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,其特征在于步骤一中尿素添加量为0.5~0.8 g/L,尿素可替换为硝酸钠、氯化铵或硝酸铵。
4. 根据权利要求1所述的微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,其特征在于步骤二中微芒藻的接种量为0.1~0.2 g/L。
5. 根据权利要求1所述的微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,其特征在于步骤二中微芒藻的发酵条件为温度22~27℃,摇床转速150rpm,光照强度3000 lux。
6.根据权利要求1所述的微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法,其特征在于步骤二中微芒藻生物质收获条件为离心转速3500~4500rpm,离心时间为10~15min。
CN202310571702.4A 2023-05-22 2023-05-22 一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法 Active CN116396988B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202310571702.4A CN116396988B (zh) 2023-05-22 2023-05-22 一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202310571702.4A CN116396988B (zh) 2023-05-22 2023-05-22 一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN116396988A CN116396988A (zh) 2023-07-07
CN116396988B true CN116396988B (zh) 2023-08-22

Family

ID=87020044

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202310571702.4A Active CN116396988B (zh) 2023-05-22 2023-05-22 一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN116396988B (zh)

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103131529A (zh) * 2011-11-23 2013-06-05 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 一种提取微生物油脂的方法
CN103589503A (zh) * 2012-08-13 2014-02-19 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 一种高效提取微生物油脂的方法
KR20160093189A (ko) * 2015-01-28 2016-08-08 경북대학교 산학협력단 지방산을 생산하는 마이크락티니움 knua034 균주 및 이를 이용한 지방산의 생산 방법
CN108660079A (zh) * 2017-03-31 2018-10-16 财团法人食品工业发展研究所 微芒藻属(micractinium sp.)及其用途
CN110184126A (zh) * 2019-06-26 2019-08-30 厦门昶科生物工程有限公司 一种硅藻中多不饱和脂肪酸的提取方法
CN115029248A (zh) * 2022-06-21 2022-09-09 昆明理工大学 一种利用回用废水提高微藻脂质产量的方法
CN116064239A (zh) * 2021-10-31 2023-05-05 中国石油化工股份有限公司 一株富含油脂的微芒藻及其培养应用

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103131529A (zh) * 2011-11-23 2013-06-05 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 一种提取微生物油脂的方法
CN103589503A (zh) * 2012-08-13 2014-02-19 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 一种高效提取微生物油脂的方法
KR20160093189A (ko) * 2015-01-28 2016-08-08 경북대학교 산학협력단 지방산을 생산하는 마이크락티니움 knua034 균주 및 이를 이용한 지방산의 생산 방법
CN108660079A (zh) * 2017-03-31 2018-10-16 财团法人食品工业发展研究所 微芒藻属(micractinium sp.)及其用途
CN110184126A (zh) * 2019-06-26 2019-08-30 厦门昶科生物工程有限公司 一种硅藻中多不饱和脂肪酸的提取方法
CN116064239A (zh) * 2021-10-31 2023-05-05 中国石油化工股份有限公司 一株富含油脂的微芒藻及其培养应用
CN115029248A (zh) * 2022-06-21 2022-09-09 昆明理工大学 一种利用回用废水提高微藻脂质产量的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Investigation of anaerobic digestion of Chlorella sp. and Micractinium sp. grown in high-nitrogen wastewater and their co-digestion with waste activated sludge;Meng Wang et al.;《BIOMASS AND BIOENERGY》;第80卷;第30-37页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN116396988A (zh) 2023-07-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Siddiki et al. Microalgae biomass as a sustainable source for biofuel, biochemical and biobased value-added products: An integrated biorefinery concept
Luo et al. Nutrient removal and lipid production by Coelastrella sp. in anaerobically and aerobically treated swine wastewater
US5578472A (en) Process for the production of ethanol from microalgae
Huo et al. Magnetic field intervention on growth of the filamentous microalgae Tribonema sp. in starch wastewater for algal biomass production and nutrients removal: Influence of ambient temperature and operational strategy
CN107937382B (zh) 一种固定化微藻的制备方法
Acebu et al. Bioethanol production from Chlorella vulgaris ESP-31 grown in unsterilized swine wastewater
Veronesiv et al. Pre-treated digestate as culture media for producing algal biomass
Dhandayuthapani et al. Bioethanol from hydrolysate of ultrasonic processed robust microalgal biomass cultivated in dairy wastewater under optimal strategy
Xu et al. Observation of few GR24 induced fungal-microalgal pellets performance for higher pollutants removal and biogas quality improvement
Aggarwal et al. The state-of-the-art production of biofuel from microalgae with simultaneous wastewater treatment: influence of process variables on biofuel yield and production cost
CN101613724B (zh) 重复利用高山被孢霉菌粕制备花生四烯酸的方法
Wang et al. Insights into differences between spore-assisted and pellet-assisted microalgae harvesting using a highly efficient fungus: Efficiency, high-value substances, and mechanisms
JP2009148211A (ja) D−アラビトールの発酵製造方法及びその実施に用いる微生物
CN116396988B (zh) 一种微芒藻属微生物产多不饱和脂肪酸的方法
CN111778170B (zh) 一种贝莱斯芽孢杆菌及其应用
CN112359074B (zh) 一种利用乙酸刺激微藻异养产油的方法
CN110885755B (zh) 利用小麦淀粉加工废水混养培养小球藻的方法
JP2009261287A (ja) クロレラ・水素生産方法およびクロレラ・水素生産装置
RU2397247C1 (ru) Способ биосинтеза липазы
JP3004510B2 (ja) 微細藻からのエタノール製造プロセス
CN110358687B (zh) 一株产d泛解酸内酯水解酶的赤霉菌及应用、发酵方法
CN111349679B (zh) 蛋白核小球藻细胞利用木薯渣为主要原料制备生物柴油的方法
JP3004509B2 (ja) 微細藻からのエタノール製造方法及び装置
Pathak et al. Recent advancements in bioflocculation of microalgae for bioenergy applications
CN113249289B (zh) 微生物发酵生产pufa的废水循环再利用的方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant