CN116271004A - 一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂、应用及制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂、应用及制备方法，基于脂质体自组装机制，通过微流控装置调节流速及流速比控制粒径完成制备，所述微流控装置包括产物出口、溶液混合通道和若干注入口，所述注入口和产物出口上均设有与外部设备连接的导管；制备所述脂质体的原料包括山药多糖、蛋黄卵磷脂和胆固醇。通过制备过程中通道的尺寸设计、流速比以及总流速的控制，使制得的空白脂质体粒径在50nm～250nm范围内可实现粒径调控，分布系数小于0.2，具备单一分散性。制备得到的山药多糖脂质体包封率可达79.02％，平均粒径154.2nm，PDI为0.083，产品均一稳定，具有缓释效果，体外细胞实验表明可以促进小鼠脾淋巴细胞的增殖，具有免疫增强作用。
Description
技术领域
本发明涉及免疫及药物制剂技术领域，尤其涉及一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂、应用及制备方法。
背景技术
微流控技术是一种新兴技术，可应用于操纵微纳米级自组装系统，实现对粒径的精细控制。其中微流控芯片中的微通道尺寸可达到微米级别，实现流体理想的扩散混合效果。微流控方法提供了持续生产优化，均匀的纳米颗粒的能力，解决了传统批量生产方法的许多局限性。
脂质体是人工合成的模拟细胞膜的封闭球形囊泡，能够携带各种亲水的、疏水的和两性的物质，它们可以被包入脂质体内部水相，或插入类脂双分子层，或吸附、连接在脂质体表面，作为模拟细胞膜和药物载体。其中，脂质体作为药物载体，其尺寸大小与其在体内的分布位置和时间有着一定的关系，不同的药物在体内不同位置产生的疗效也有一定的差异。此外，脂质体粒径的大小还会对脂质体的稳定性以及包封率产生影响。
通过聚碳酸酯膜挤出脂质体可以产生具有规定孔径和可接受PDI(≤0.2)的脂质体，是制造具有已知定义特征的脂质体的最可接受和可重复的过程，但同时挤出过程也是一个费力且耗时的过程。在脂质体生产中，微流控技术通过使用相交的微通道，使流体在通道内进行高度混合，不但可以取代脂质体生产过程中的脂质水化和挤出步骤，还可以实现纳米级粒径的灵活调控。
山药是中国著名的食用和药用植物。山药多糖是山药的重要组成部分，主要由甘露糖、木糖、阿拉伯糖、葡萄糖和半乳糖组成。已经证明，山药多糖具有多种生物活性，如免疫调节、抗氧化和抗肿瘤活性。
由于多糖的结构具有各自的特点，例如单糖的种类、连接位点、单糖和糖苷键的构型以及重复单元的数量等都会因提取多糖的种类不同而不同，现有技术中其他脂质体的制备方法对山药多糖脂质体纳米制剂的制备没有过多的指导价值。此外，制备出具有高包封率的多糖脂质体，至今仍是一个公认的难题。若要获得具有较高的药物包封率并且粒径较小的山药多糖脂质体纳米制剂，则更难以实现。
本发明公开的一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂、应用及制备方法，是首次利用微流控芯片制备山药多糖脂质体，实现了高包封率山药多糖脂质体的可控制备。
发明内容
本发明的发明目的是一种基于微流控的山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂、应用及制备方法，实现粒径可控以及高度单分散性。
为达到上述发明目的，本发明采用的技术方案是：一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂的制备方法，基于脂质体自组装机制，通过微流控装置调节流速及流速比控制粒径完成制备，所述微流控装置包括产物出口、溶液混合通道和若干注入口，所述注入口和产物出口上均设有与外部设备连接的导管；制备所述脂质体的原料包括山药多糖、蛋黄卵磷脂和胆固醇。
优选地，所述注入口包括水相溶液入口和脂质相溶液入口，水相溶液入口和脂质相溶液入口均通过导管与外部微量注射泵连通；产物在产物出口处通过导管流入外部接收装置。
优选地，所述水相溶液入口为山药多糖缓冲溶液入口，所述脂质相溶液入口为脂质乙醇溶液入口。
优选地，溶液混合通道包括流体聚焦混合单元和具有栏板的直行剪切通道。
优选地，所述微流控装置为“棒棒糖”形微流控芯片，所述微流控芯片的制作材料为聚二甲基硅氧烷(PDMS)，相邻2个水相溶液入口之间设有一个脂质相溶液入口。该微流控芯片通过等离子机处理使芯片通道键合密封，无需夹具，可重复使用。
优选地，所述水相溶液入口的数量为2个，脂质相溶液入口的数量为1个，1个脂质相溶液入口位于2个水相溶液入口之间。
优选地，所述导管为聚四氟乙烯管，内径0.3～0.8mm，外径0.9～1.4mm。
优选地，所述注入口、产物出口和混合通道宽度范围为50μm～300μm，通道高度范围为50μm～200μm，直行剪切通道长度为5mm～20mm。
优选地，具体包括如下步骤：
步骤一，取蛋黄卵磷脂、胆固醇加入无水乙醇，超声溶解，作为脂质相溶液；
步骤二，取山药多糖加入磷酸盐缓冲液中，超声溶解，用0.45μm有机尼龙膜过滤，作为水相溶液；
步骤三，将水相溶液，脂质相溶液分别加入外部微量注射泵，固定在微量注射泵上，通过导管与注入口连接，设定流速；
步骤四，水相溶液与脂质相溶液在流体聚焦混合单元汇合，乙醇扩散至缓冲液相，乙醇浓度降低，脂质分子自组装包裹山药多糖水相形成山药多糖粗脂质体，在直行剪切通道受剪切力的作用进一步减小粒径，产物通过产物出口上的导管流入接收装置；
步骤五，收集产物，通过旋蒸去除乙醇，用磷酸盐缓冲溶液定容至原溶液体积，得到目标山药多糖脂质体纳米制剂，低温保存。
优选地，步骤一中，蛋黄卵磷脂和胆固醇的质量浓度比为1:1～10:1，蛋黄卵磷脂在无水乙醇中的浓度为5mg/m L～15mg/m L。
优选地，所述蛋黄卵磷脂和胆固醇的质量浓度比包括但不限于1:1、2:1、3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1、10:1，优选为5：1～8:1。
优选地，所述蛋黄卵磷脂在无水乙醇中的浓度包括但不限于5mg/m L、6mg/m L、7mg/m L、8mg/m L、9mg/m L、10mg/m L、11mg/m L、12mg/m L、13mg/m L、14mg/m L、15mg/mL，优选为5-10mg/m L。
优选地，步骤二中，山药多糖在磷酸盐缓冲液的浓度为0.02mg/m L～2mg/m L。
优选地，步骤二中，山药多糖在磷酸盐缓冲液中的浓度包括但不限于0.02mg/m L、0.05mg/m L、0.08mg/m L、0.1mg/m L、0.2mg/m L、0.3mg/m L、0.4mg/m L、0.5mg/m L、0.6mg/m L、0.7mg/m L、0.8mg/m L、0.9mg/m L、1mg/m L、1.1mg/m L、1.2mg/m L、1.3mg/mL、1.4mg/m L、1.5mg/m L、1.6mg/m L、1.7mg/m L、1.8mg/m L、1.9mg/m L、2mg/m L，优选为0.2mg/m L～1mg/m L。
优选地，步骤三中，步骤三中，可以通过调控脂质相和水相的流速来控制山药多糖脂质体的粒径、分散性以及包封率；山药多糖缓冲液相和脂质相的流速之和为400μL/min～1000μL/min，流速比为3:1～9:1。
优选地，步骤三中，山药多糖缓冲液相和脂质相的流速之和包括但不限于400μL/min、450μL/min、500μL/min、550μL/min、600μL/min、650μL/min、700μL/min、750μL/min、800μL/min、850μL/min、900μL/min、950μL/min、1000μL/min；优选为600μL/min～900μL/min。
优选地，步骤三中，山药多糖缓冲液相和脂质相流速比包括但不限于3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1，优选为5:1～8:1。
优选地，步骤四中，流体聚焦处的混合模式为脂质相包裹水相，被外侧水相包裹。
优选地，步骤五中，产物单次收集体积为10m L～20m L，旋蒸转速为30r/min～60r/min，旋蒸温度为30℃～50℃，旋蒸时间为5min～10min。
优选地，步骤五中，产物单次收集体积包括但不限于10m L、11m L、12m L、13m L、14m L、15m L、16m L、17m L、18m L、19m L、20m L。
优选地，步骤五中，旋蒸转速包括但不限于30r/m in、35r/min、40r/min、45r/min、50r/min、55r/min、60r/min，优选为35r/min～45r/min。
优选地，步骤五中，旋蒸温度包括但不限于30℃、32℃、35℃、38℃、40℃、42℃、45℃、48℃、50℃，优选为40℃～45℃。
优选地，步骤五中，旋蒸时间包括但不限于5min、6min、7min、8min、9min、10min，优选为6min～8min。
优选地，步骤五中，保存温度为2～5℃，优选为4℃。
上文中，本申请所述的制备方法能够在50n m～250n m范围内可实现山药多糖脂质体粒径调控，分布系数小于0.2。
本申请还要求保护一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂，采用上文所述的制备方法制备而成。
本申请还要求保护一种如上文所述的山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂在免疫增强药物以及疫苗佐剂中的应用。
上文中，本申请所述的制备方法制备的山药多糖脂质体，产品粒径均一，分散性好。在37℃磷酸盐缓冲液中进行透析释放，脂质体能减缓山药多糖的释放，具有缓释效果。
上文中，体外探究山药多糖脂质体对小鼠脾淋巴细胞增殖的促进作用，选取单独刺激淋巴细胞有显著增殖效果的浓度范围，与ConA/LPS协同促进T/B细胞增殖，发现与其他空白组以及对照组相比，山药多糖脂质体在多种浓度下均能显著促进淋巴细胞增殖，表明了其具有持续的免疫增强功能。
由于上述技术方案运用，本发明与现有技术相比具有下列优点：
1.结合微流控技术，利用通道剪切力，使制备得到的山药多糖脂质体粒径可控并具有良好的分布系数(PDI<0.2)，工艺简单，重复性好，有利于山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂的生产。山药多糖脂质体包封率可达79.02％，平均粒径154.2n m，PDI为0.083，产品均一稳定，具有缓释效果；
2.本发明制备方法操作简单，制备的山药多糖脂质体具有优良的综合性能，，体外细胞实验表明可以促进小鼠脾淋巴细胞的增殖，具有免疫增强作用，为疫苗佐剂提供了选择。
附图说明
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案，下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单的介绍，显而易见地，下面描述中的一些附图是本发明的一些实施方式，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1是微流控装置的结构示意图。
图2水相和脂质相不同流速比与总流速所制备的空白脂质体粒径结果图。
图3水相和脂质相不同流速比与总流速所制备的空白脂质体分布系数结果图。
图4本发明制备的山药多糖脂质体的透射电镜图。
图5本发明制备的山药多糖脂质体和山药多糖的体外释放结果图。
图6山药多糖脂质体单独刺激淋巴细胞增殖结果图。
图7山药多糖脂质体协同刀豆蛋白刺激T淋巴细胞增殖结果图。
图8山药多糖脂质体协同脂多糖刺激B淋巴细胞增殖结果图。
其中，001、山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口A；003、山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口B，002、脂质相入口，004、产物出口。
具体实施方式
下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
对比例1
本对比例涉及空白脂质体的制备，具体步骤包括：
取蛋黄卵磷脂、胆固醇加入无水乙醇，超声溶解，作为脂质相溶液；取磷酸盐缓冲液(PH＝7.4)作为水相溶液；
取2个30m L注射器吸取水相溶液，固定在多通道微量注射泵上，分别通过导管与如图1所示的微流控芯片装置的山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口A001、山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口B003连接；取1个10m L注射器吸取脂质相相溶液，固定在多通道微量注射泵上，通过导管与微流控芯片的脂质相入口002连接；设定总流速为400μL/min，山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口A001和山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口B003注射速度保持一致，与脂质相入口002注射速度的流速比为3：1；产物在微流控芯片的产物出口004通过导管流出，用15m L离心管收集产物。通过40℃旋蒸5min去除乙醇，用磷酸盐缓冲溶液定容至原溶液体积，得到目标空白脂质体(BL)，置于4℃保存。
对比例2
本对比例涉及空白脂质体的粒径调控，空白脂质体的制备方法同对比例1，其中，流速比分别为3:1、5:1、7:1、9:1，总流速为400μL/min、600μL/min、800μL/min、1000μL/min，考察不同流速比与总流速对空白脂质体粒径以及分布系数的影响。
不同流速比与总流速对空白脂质体粒径的影响如图2，该流速比以及总流速条件下可以实现空白脂质体在50nm～250nm范围内的粒径可控制备，并且粒径随着总流速以及流速比的增大，有总体下降的趋势。
不同流速比与总流速对空白脂质体粒径的影响如图3，该流速比以及总流速条件下空白脂质体的分布系数均小于0.2，说明该条件范围下制得的空白脂质体具有良好的单分散性。
实施例1
本实施例涉及一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂的制备方法，基于脂质体自组装机制，通过微流控装置调节流速及流速比控制粒径完成制备，所述微流控装置包括产物出口、溶液混合通道和若干注入口，所述注入口和产物出口上均设有与外部设备连接的导管；制备所述脂质体的原料包括山药多糖、蛋黄卵磷脂和胆固醇。
优选地，所述注入口包括水相溶液入口和脂质相溶液入口，水相溶液入口和脂质相溶液入口均通过导管与外部微量注射泵连通；产物在产物出口处通过导管流入外部接收装置。
优选地，所述水相溶液入口为山药多糖缓冲溶液入口，所述脂质相溶液入口为脂质乙醇溶液入口。
优选地，溶液混合通道包括流体聚焦混合单元和具有栏板的直行剪切通道。
优选地，所述微流控装置为“棒棒糖”形微流控芯片，所述微流控芯片的制作材料为聚二甲基硅氧烷(PDMS)，相邻2个水相溶液入口之间设有一个脂质相溶液入口。该微流控芯片通过等离子机处理使芯片通道键合密封，无需夹具，可重复使用。
优选地，所述水相溶液入口的数量为2个，脂质相溶液入口的数量为1个，1个脂质相溶液入口位于2个水相溶液入口之间。
优选地，所述导管为聚四氟乙烯管，内径0.3～0.8mm，外径0.9～1.4mm。
优选地，所述注入口、产物出口和混合通道宽度范围为50μm～300μm，通道高度范围为50μm～200μm，直行剪切通道长度为5mm～20mm。
优选地，具体包括如下步骤：
步骤一，取蛋黄卵磷脂、胆固醇加入无水乙醇，超声溶解，作为脂质相溶液；
步骤二，取山药多糖加入磷酸盐缓冲液中，超声溶解，用0.45μm有机尼龙膜过滤，作为水相溶液；
步骤三，将水相溶液，脂质相溶液分别加入外部微量注射泵，固定在微量注射泵上，通过导管与注入口连接，设定流速；
步骤四，水相溶液与脂质相溶液在流体聚焦混合单元汇合，乙醇扩散至缓冲液相，乙醇浓度降低，脂质分子自组装包裹山药多糖水相形成山药多糖粗脂质体，在直行剪切通道受剪切力的作用进一步减小粒径，产物通过产物出口上的导管流入接收装置；
步骤五，收集产物，通过旋蒸去除乙醇，用磷酸盐缓冲溶液定容至原溶液体积，得到目标山药多糖脂质体纳米制剂，低温保存。
优选地，步骤一中，蛋黄卵磷脂和胆固醇的质量浓度比为1:1～10:1，蛋黄卵磷脂在无水乙醇中的浓度为5mg/m L～15mg/m L。
优选地，所述蛋黄卵磷脂和胆固醇的质量浓度比包括但不限于1:1、2:1、3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1、10:1，优选为5：1～8:1。
优选地，所述蛋黄卵磷脂在无水乙醇中的浓度包括但不限于5mg/m L、6mg/m L、7mg/m L、8mg/m L、9mg/m L、10mg/m L、11mg/m L、12mg/m L、13mg/m L、14mg/m L、15mg/mL，优选为5-10mg/m L。
优选地，步骤二中，山药多糖在磷酸盐缓冲液的浓度为0.02mg/m L～2mg/m L。
优选地，步骤二中，山药多糖在磷酸盐缓冲液中的浓度包括但不限于0.02mg/m L、0.05mg/m L、0.08mg/m L、0.1mg/m L、0.2mg/m L、0.3mg/m L、0.4mg/m L、0.5mg/m L、0.6mg/m L、0.7mg/m L、0.8mg/m L、0.9mg/m L、1mg/m L、1.1mg/m L、1.2mg/m L、1.3mg/mL、1.4mg/m L、1.5mg/m L、1.6mg/m L、1.7mg/m L、1.8mg/m L、1.9mg/m L、2mg/m L，优选为0.2mg/m L～1mg/m L。
优选地，步骤三中，步骤三中，可以通过调控脂质相和水相的流速来控制山药多糖脂质体的粒径、分散性以及包封率；山药多糖缓冲液相和脂质相的流速之和为400μL/min～1000μL/min，流速比为3:1～9:1。
优选地，步骤三中，山药多糖缓冲液相和脂质相的流速之和包括但不限于400μL/min、450μL/min、500μL/min、550μL/min、600μL/min、650μL/min、700μL/min、750μL/min、800μL/min、850μL/min、900μL/min、950μL/min、1000μL/min；优选为600μL/min～900μL/min。
优选地，步骤三中，山药多糖缓冲液相和脂质相流速比包括但不限于3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1，优选为5:1～8:1。
优选地，步骤四中，流体聚焦处的混合模式为脂质相包裹水相，被外侧水相包裹。
优选地，步骤五中，产物单次收集体积为10m L～20m L，旋蒸转速为30r/min～60r/min，旋蒸温度为30℃～50℃，旋蒸时间为5min～10min。
优选地，步骤五中，产物单次收集体积包括但不限于10m L、11m L、12m L、13m L、14m L、15m L、16m L、17m L、18m L、19m L、20m L。
优选地，步骤五中，旋蒸转速包括但不限于30r/m in、35r/min、40r/min、45r/min、50r/min、55r/min、60r/min，优选为35r/min～45r/min。
优选地，步骤五中，旋蒸温度包括但不限于30℃、32℃、35℃、38℃、40℃、42℃、45℃、48℃、50℃，优选为40℃～45℃。
优选地，步骤五中，旋蒸时间包括但不限于5min、6min、7min、8min、9min、10min，优选为6min～8min。
优选地，步骤五中，保存温度为2～5℃，优选为4℃。
上文中，本申请所述的制备方法能够在50n m～250n m范围内可实现山药多糖脂质体粒径调控，分布系数小于0.2。
本实施例还涉及一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂，采用上文所述的制备方法制备而成。
本实施例还涉及保护一种如上文所述的山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂在免疫增强药物以及疫苗佐剂中的应用。
本实施例制备的山药多糖脂质体的包封率的测定方法为：鱼精蛋白法结合苯酚-硫酸法测定。具体步骤包括：
游离山药多糖的分离：吸取0.5m L脂质体于5m L离心管中,添加10mg/m L的0.5mL鱼精蛋白,充分摇匀后静置3min，加入3m L磷酸盐缓冲液，在室温条件下4000r/min离心30m in。取出上清液，测定其多糖的含量，即游离山药多糖量；向沉淀中加入0.5m L正丙醇溶解破乳，加入3m L磷酸盐缓冲液，测定其多糖含量，即包封山药多糖量；
多糖含量的测定：精密吸取200μL样品加入2m L具塞塑料离心管中，加入100μL6％重蒸苯酚溶液、500μL浓硫酸，迅速摇匀，室温静置15min，精密吸取各反应液200μL加入96孔酶标板，每个样品重复3个孔。以蒸馏水为空白，采用酶标仪在490n m波长下测定OD值，代入到标准曲线求出多糖含量。
包封率＝(Cin/Call)×100％，其中，Cin为脂质体中包封的多糖含量；Call为脂质体中包封的多糖与游离多糖含量之和。
实施例2
本实施例是在上述实施例1的基础上进行的，与上述实施例1相同之处不予赘述。
本实施例取蛋黄卵磷脂、胆固醇加入无水乙醇，其中蛋黄卵磷脂在无水乙醇中的浓度为10mg/m L，蛋黄卵磷脂和胆固醇的质量浓度比为1.7:1，超声溶解，作为脂质相溶液；取山药多糖加入磷酸盐缓冲液(PH＝7.4)中超声溶解，用0.45μm有机尼龙膜过滤，形成山药多糖缓冲液作为水相溶液；
取2个30m L注射器吸取水相溶液，固定在多通道微量注射泵上，分别通过导管如图1所示的微流控芯片装置的山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口A001、山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口B003连接；取1个10m L注射器吸取脂质相相溶液，固定在多通道微量注射泵上，通过导管与微流控芯片装置的脂质相入口002连接；设定总流速为800μL/min，山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口A001和山药多糖磷酸盐缓冲溶液入口B003注射速度保持一致，与脂质相入口002入口注射速度的流速比为6:1；产物在微流控芯片的产物出口004通过导管流出，用15mL离心管收集产物。通过40℃旋蒸6min去除乙醇，用磷酸盐缓冲溶液定容至原溶液体积，得到目标山药多糖脂质体(YPL)，置于4℃保存。
得到的脂质体包封率为79.02％。使用马尔文粒径分析仪测得山药多糖脂质体纳米制剂平均粒径154.2nm，PDI为0.083，单一分散。用透射电镜观察，如图4所示，山药脂质体均匀圆整，近似为球形，图中可见明显的双层结构。
实施例3
本实施例是在上述实施例1或2的基础上进行的，与上述实施例相同之处不予赘述。
本实施例涉及山药多糖脂质体的体外释放研究，具体包括：
取3m L山药多糖脂质体(YPL)和3m L山药多糖缓冲液(YP)分别置于透析袋中密封。选择PBS(PH＝7.4)作为释放介质，取30m L于50m L离心管中，放入密封好的透析袋，密封瓶口，置于37℃摇床中恒温振荡。分别于1h，2h，3h，4h，6h，8h，24h取样，取出释放介质1mL，并补加1m L的PBS于释放介质中，利用苯酚-硫酸法测定多糖含量，计算药物累计释放率。
由图5显示的体外释放结果可知，YP在前8h药物累积释放百分率为93.39％，几乎释放完全。而YPL在前8h药物累积释放百分率为42.84％，24h药物累积释放百分率为76.41％，随时间的增加，药物累积释放百分率呈逐渐上升趋势。对比两条曲线可知，YPL较YP有明显的缓释效果，这是由于脂质体的纳米级的粒径使其具有特殊的表面效应和小尺寸效应，从而减缓了药物的释放。
实施例4
本实施例是在上述实施例1或2的基础上进行的，与上述实施例相同之处不予赘述。
本实施例涉及山药多糖脂质体对小鼠脾淋巴细胞增值的影响。
以根据最佳制备条件制备的山药多糖脂质体(YPL)为研究对象，以山药多糖缓冲液(YP)和空白脂质体(BP)作为对照，探索其体外对小鼠脾淋巴细胞增殖的影响。
(1)YPL单独刺激小鼠脾淋巴细胞增殖的影响
取小鼠脾淋巴细胞，调整细胞密度为5x106个/m L，每孔100μL加入96孔细胞培养板中。用小鼠脾淋巴细胞完全培养基将YPL倍比稀释9个不同浓度，每孔加入100μL不同浓度的YPL至96孔板，每个浓度重复4孔，同时加入小鼠脾淋巴细胞完全培养基设为细胞对照组(BC)，置于细胞培养箱中37℃、5％CO2条件下连续培养48h后，每孔加入100μL含有10％CCK8的小鼠脾淋巴细胞完全培养基，在培养箱中静置60min。随后取出，在450n m处用酶标仪检测细胞培养板各孔的OD值。
由图6所示，当YPL浓度3.90615μg/m L～1000μg/m L范围内A450值均大于细胞对照组，对小鼠脾淋巴细胞均有促进增值作用。在7.8125μg/m L～500μg/m L的浓度范围与对照组A450值差异显著(P>0.05)；在31.25μg/m L～250μg/m L浓度范围，YPL显著促进小鼠脾淋巴细胞增殖。
(2)YPL协同刀豆蛋白(ConA)刺激T淋巴细胞增殖的影响
取小鼠脾淋巴细胞，调整细胞密度为5x106个/m L，每孔80μL加入96孔细胞培养板中，每孔加入20μLConA(终浓度为10μg/m L)，刺激T淋巴细胞转化增殖，随后加入100μL不同浓度的YPL，YP和BL，每个浓度重复4孔，另设加入小鼠脾淋巴细胞完全培养基设为ConA对照组以及不含ConA的细胞对照组(BC)，置于细胞培养箱中37℃、5％CO2条件下连续培养48h后，每孔加入20μLCCK8，在培养箱中静置60min取出，用酶标仪检测细胞培养板在450nm处各孔的OD值。
如图7所示，在在31.25μg/m L～250μg/m L浓度范围，YPL组的吸光度值随着浓度的增加先缓慢升高再缓慢下降，在浓度为125μg/m L时的A450值达到最高，此外YPL组的A450值均显著高于YP组，表明在此浓度范围，YPL比YP能更好地协同ConA促进小鼠脾T淋巴细胞的增殖。
(3)YPL协同脂多糖(LPS)刺激B淋巴细胞增殖的影响
取小鼠脾淋巴细胞，调整细胞密度为5x106个/m L，每孔80μL加入96孔细胞培养板中，每孔加入20μLLPS(终浓度为10μg/m L)，刺激B淋巴细胞转化增殖，随后加入100μL不同浓度的YPL，YP和BL，每个浓度重复4孔，另设加入小鼠脾淋巴细胞完全培养基设为LPS对照组以及不含LPS的细胞对照组(BC)，置于细胞培养箱中37℃、5％CO2条件下连续培养48h后，每孔加入20μLCCK8，在培养箱中静置60min取出，用酶标仪检测细胞培养板在450n m处各孔的OD值。
如图8所示，在31.25μg/m L～250μg/m L浓度范围，YPL组的吸光度值随着浓度的增加先缓慢升高再缓慢下降，在浓度为125μg/m L时的A450值达到最高。在31.25μg/m L～125μg/m L浓度范围，YPL组的A450值均显著高于YP组，表明在此浓度范围，YPL比YP能更好地协同LPS促进小鼠脾B淋巴细胞的增殖。
根据上述山药多糖脂质体体外刺激淋巴细胞增值试验结果可以得出山药多糖脂质体能够单独和协同ConA、LPS分别刺激T、B淋巴细胞增殖，结果显示均有增殖促进作用。说明本发明涉及的山药多糖脂质体能够提高山药多糖的免疫活性，可作为免疫增强剂或应用于疫苗佐剂提高动物疫苗的治疗效果。
对所公开的实施例的上述说明，使本领域专业技术人员能够实现或使用本发明。对这些实施例的多种修改对本领域的专业技术人员来说将是显而易见的，本文中所定义的一般原理可以在不脱离本发明的精神或范围的情况下，在其它实施例中实现。因此，本发明将不会被限制于本文所示的这些实施例，而是要符合与本文所公开的原理和新颖特点相一致的最宽的范围。
Claims (10)
1.一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂的制备方法，其特征在于，基于脂质体自组装机制，通过微流控装置调节流速及流速比控制粒径完成制备，所述微流控装置包括产物出口、溶液混合通道和若干注入口，所述注入口和产物出口上均设有与外部设备连接的导管；制备所述脂质体的原料包括山药多糖、蛋黄卵磷脂和胆固醇。
2.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于：所述注入口包括水相溶液入口和脂质相溶液入口，水相溶液入口和脂质相溶液入口均通过导管与外部微量注射泵连通；产物在产物出口处通过导管流入外部接收装置。
3.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于：溶液混合通道包括流体聚焦混合单元和具有栏板的直行剪切通道。
4.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于：具体包括如下步骤：
步骤一，取蛋黄卵磷脂、胆固醇加入无水乙醇，超声溶解，作为脂质相溶液；
步骤二，取山药多糖加入磷酸盐缓冲液中，超声溶解，用0.45μm有机尼龙膜过滤，作为水相溶液；
步骤三，将水相溶液，脂质相溶液分别加入外部微量注射泵，固定在微量注射泵上，通过导管与注入口连接，设定流速；
步骤四，水相溶液与脂质相溶液在流体聚焦混合单元汇合，乙醇扩散至缓冲液相，乙醇浓度降低，脂质分子自组装包裹山药多糖水相形成山药多糖粗脂质体，在直行剪切通道受剪切力的作用进一步减小粒径，产物通过产物出口上的导管流入接收装置；
步骤五，收集产物，通过旋蒸去除乙醇，用磷酸盐缓冲溶液定容至原溶液体积，得到目标山药多糖脂质体纳米制剂，低温保存。
5.根据权利要求4所述的制备方法，其特征在于：步骤一中，蛋黄卵磷脂和胆固醇的质量浓度比为1:1～10:1，蛋黄卵磷脂在无水乙醇中的浓度为5mg/m L～15mg/m L。
6.根据权利要求4所述的制备方法，其特征在于：步骤二中，山药多糖在磷酸盐缓冲液的浓度为0.02mg/m L～2mg/m L。
7.根据权利要求4所述的制备方法，其特征在于：步骤三中，步骤三中，可以通过调控脂质相和水相的流速来控制山药多糖脂质体的粒径、分散性以及包封率；山药多糖缓冲液相和脂质相的流速之和为400μL/min～1000μL/min，流速比为3:1～9:1。
8.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于：步骤五中，产物单次收集体积为10m L～20m L，旋蒸转速为30r/min～60r/min，旋蒸温度为30℃～50℃，旋蒸时间为5min～10min。
9.一种山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂，其特征在于：采用权利要求1～8任一项所述的制备方法制备而成。
10.一种如权利要求9所述的山药多糖脂质体纳米免疫增强佐剂在免疫增强药物以及疫苗佐剂中的应用。
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