CN115895908B - 一株哈茨木霉及其在防治辣椒根腐病中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一株哈茨木霉及其在防治辣椒根腐病中的应用，属于生物技术领域。本发明从健康辣椒根际土壤中分离纯化得到一株哈茨木霉(Trichoderma harzianum)M20210527‑2，保藏于中国典型微生物保藏管理中心，保藏编号为CCTCC NO:M 20221631。通过实验验证，所述哈茨木霉的菌丝能够缠绕重寄生于茄镰刀菌(Fusarium solani)菌丝上，显著抑制茄镰刀菌菌丝生长，同时其代谢产物也可高效抑制茄镰刀菌的生长。所述哈茨木霉对茄镰刀菌引起的辣椒根腐病具有良好的防治效果，并且对辣椒根部无致病性，安全性好，为辣椒根腐病的生物防治提供新的生防菌菌种。

Description

一株哈茨木霉及其在防治辣椒根腐病中的应用

技术领域

本发明涉及生物技术领域，特别是一株哈茨木霉及其在防治辣椒根腐病中的应用。

背景技术

辣椒根腐病是典型的土传病害，可引起辣椒根系和近地面茎部的木质部和韧皮部坏死，导致辣椒不能输送水分和营养物质，在发病初期植株叶片会出现白天萎蔫，晚上恢复状态的现象，后期地下部分根系和茎秆全部坏死，地上部分干枯死亡，引起辣椒严重减产甚至绝收。多种病原菌可引起辣椒根腐病，其中镰刀菌属(Fusarium)病原菌最多，如串珠镰刀菌(F.moniliforme)、半裸镰刀菌(F.semitectum)、茄镰刀菌(F.solani)、尖孢镰刀菌(F.oxysporum)、爪哇镰刀菌(F.javanicum)等。

目前农业生产上主要运用化学农药和土壤改良方法来防控辣椒根腐病，但长期大量施用化学杀菌剂极易造成土壤污染、农作物农残超标、土壤菌群失调和病原菌抗药性增强等诸多问题。生物防治相较传统的化学防治方法具有安全、环保、高效等优点，是辣椒根腐病防治领域研究的重点，因此，深入发掘新的生防菌种，对辣椒根腐病的生物防治具有重要意义。

发明内容

本发明的目的是提供一株哈茨木霉及其在防治辣椒根腐病中的应用，以解决现有技术中存在的问题。本发明从健康辣椒根际土壤中分离纯化得到一株哈茨木霉M20210527-2，通过实验验证，所述哈茨木霉M20210527-2对茄镰刀菌有较强的抑制作用，能够预防由茄镰刀菌引起的辣椒根腐病，对辣椒根腐病的生物防治具有重要意义。

为实现上述目的，本发明提供了如下方案：

本发明提供一株哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2，保藏于中国典型微生物保藏管理中心，保藏编号为CCTCCNO:M20221631。

本发明还提供一种病原菌抑制剂，有效成分包括所述的哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2和/或其代谢产物，所述病原菌为茄镰刀菌(Fusariumsolani)。

本发明还提供一种防治辣椒根腐病的药剂，有效成分包括所述的哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2的菌液。

本发明还提供一种所述的哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2在制备病原菌抑制剂中的应用，所述病原菌为茄镰刀菌(F.solani)。

进一步地，所述哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2能够抑制病原菌的菌丝生长。

进一步地，所述哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2的菌丝通过缠绕重寄生于所述病原菌的菌丝上、分泌抑菌物质和快速争夺病原菌生长空间，从而抑制所述病原菌的菌丝生长。

本发明还提供一种所述的哈茨木霉(Trichodermaharzianum)M202100527-2在防治辣椒根腐病中的应用，所述辣椒根腐病的病原菌为茄镰刀菌(F.solani)。

本发明公开了以下技术效果：

1.本发明提供的哈茨木霉M20210527-2的菌丝能够缠绕重寄生于茄镰刀菌菌丝上，抑制茄镰刀菌菌丝生长，对茄镰刀菌(F.solani)抑制率高达79.29％，并能快速占据平板的大部分空间；同时哈茨木霉M20210527-2无菌发酵滤液也能显著抑制茄镰刀菌(F.solani)生长，其菌落随哈茨木霉M20210527-2无菌发酵滤液添加量的增大而显著减小，无菌发酵液添加量为15％和20％时，对茄镰刀菌抑制率达到55.97％和75.51％。说明哈茨木霉M20210527-2代谢产物对茄镰刀菌也具有较强的抑制作用。

2.本发明提供的哈茨木霉M20210527-2对辣椒根腐病具有良好的防治效果。先接哈茨木霉M202100527-2，7d后接种辣椒根腐病病原菌，病株率为16.67％，病情指数为4.81％，相对防效为94.25％；但先接种辣椒根腐病病原菌，7d后接种哈茨木霉M202100527-2，其病株率为56.67％，相对防效为83.63％，说明哈茨木霉M202100527-2对辣椒根腐病预防效果最佳，发病前使用可显著降低辣椒根腐病病株率和发病程度。单独接种哈茨木霉M202100527-2于辣椒根部后植株生长正常，说明哈茨木霉M202100527-2对辣椒根部无致病性，安全性好，为辣椒根腐病的生物防治提供新的生防菌菌种。

附图说明

为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。

图1为菌株M20210527-2的形态特征，其中，A为菌株M20210527-2在PDA平板培养后的菌落形态，B为分生孢子头，C～D为分生孢子梗和分生孢子的显微结构；

图2为软件MEAG11构建的NJ发育树；

图3为菌株M20210527-2对茄镰刀菌(F.solani)的生长抑制效果，其中，A和B分别为菌株M20210527-2对茄镰刀菌拮抗效果的正面和反面，C为显微镜下观察的菌株M20210527-2对茄镰刀菌菌丝的重寄生结构；

图4为不同浓度的菌株M20210527-2无菌发酵滤液对茄镰刀菌菌丝生长的抑制效果；

图5为不同培养条件对菌株M20210527-2菌丝生长量的影响，其中A为不同pH条件对菌株M20210527-2生长的影响，B为不同温度条件对菌株M20210527-2生长的影响，C为不同碳源对菌株M20210527-2生长的影响，D为不同氮源对菌株M20210527-2生长的影响。

具体实施方式

现详细说明本发明的多种示例性实施方式，该详细说明不应认为是对本发明的限制，而应理解为是对本发明的某些方面、特性和实施方案的更详细的描述。

应理解本发明中所述的术语仅仅是为描述特别的实施方式，并非用于限制本发明。另外，对于本发明中的数值范围，应理解为还具体公开了该范围的上限和下限之间的每个中间值。在任何陈述值或陈述范围内的中间值以及任何其他陈述值或在所述范围内的中间值之间的每个较小的范围也包括在本发明内。这些较小范围的上限和下限可独立地包括或排除在范围内。

除非另有说明，否则本文使用的所有技术和科学术语具有本发明所述领域的常规技术人员通常理解的相同含义。虽然本发明仅描述了优选的方法和材料，但是在本发明的实施或测试中也可以使用与本文所述相似或等同的任何方法和材料。本说明书中提到的所有文献通过引用并入，用以公开和描述与所述文献相关的方法和/或材料。在与任何并入的文献冲突时，以本说明书的内容为准。

在不背离本发明的范围或精神的情况下，可对本发明说明书的具体实施方式做多种改进和变化，这对本领域技术人员而言是显而易见的。由本发明的说明书得到的其他实施方式对技术人员而言是显而易见的。本申请说明书和实施例仅是示例性的。

关于本文中所使用的“包含”、“包括”、“具有”、“含有”等等，均为开放性的用语，即意指包含但不限于。

本发明实施例中的辣椒根腐病病原菌为茄镰刀菌(F.solani)，由六盘水师范学院微生物研究中心提供。将4℃保藏的茄镰刀菌单点接种于PDA培养基内，在25℃下活化培养3d，备用。

实施例1哈茨木霉M20210527-2的筛选和分离

从健康辣椒根际取土壤样品，将土样放置于室内自然风干，随机称取1.0g土样加入盛有9mL无菌水的小三角瓶中，加入10粒3.5mm灭菌小玻璃珠，于150r/min、25℃的摇床中震荡60min获得10^-1的土壤悬浊液，再对悬浊液进行梯度稀释后获得10^-4的稀释液。将稀释液静置10min后，取上清液100μL加入双抗PDA(马铃薯去皮200g，葡萄糖20g，琼脂粉15g，水1000mL，自然pH，待灭菌冷却至60℃时加入100μg/mL的硫酸链霉素和青霉素)平板，用涂布棒将上清液均匀涂布后置于25℃下培养，24～48h后用无菌解剖刀挑取小菌落边缘菌块至PDA平板中进行纯化，获得拮抗菌株M20210527-2。

实施例2哈茨木霉M20210527-2的鉴定

1.哈茨木霉M20210527-2的形态学鉴定

将菌株M20210527-2接种于PDA平板上，25℃、自然光照下培养，待菌落表面产孢后，以乳酸酚棉兰染液为载浮剂制作临时装片，用奥林巴斯(Olympus)BX53显微成像系统拍摄拮抗菌形态特征并测量大小。菌株M20210527-2的形态特征如图1所示。其在PDA培养基上生长速率为30mm/d，前期菌落白色，蓬松，有明显的放射状纹，中央略隆起，老化产孢后表面呈青绿色(图1中A)；分生孢子梗直接在顶端形成瓶梗或二次分枝，瓶梗轮状排列，安瓿瓶状，直或略弯曲，基部膨大，顶端尖细，长6.6～18.0μm，宽2.0～4.7μm；分生孢子单生，球形或卵圆形，在瓶梗顶端聚合成分生孢子头，(2.5～3.5)μm×(2.2～3.4)μm，平均(3.0±0.2)μm×(2.6±0.2)μm(n＝40)(图1中B-D)。

2.哈茨木霉M20210527-2的分子生物学鉴定

以菌株M20210527-2的DNA为模板，利用真菌内部转录间隔区(ITS)引物进行PCR扩增，扩增引物为：

ITS1(SEQ ID NO.1)：5’-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3’，

ITS4(SEQ ID NO.2)：5’-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’。

扩增条件为：94℃预变性3min，94℃变性30s，50℃退火20s，72℃延伸30s，循环35次后于72℃延伸7min。

扩增体系为：10×反应缓冲液(10×PCRbuffer)2.5μL，MgCl₂(25mmol/L)2.0μL，dNTP(2.5mmol/L)1.5μL，Taq(5U/μL)0.2μL,ITS1(10μmol/L)2.0μL，ITS4(10μmol/L)2.0μL，模板2.0μL，ddH2O12.8μL，总体积25.0μL。

扩增产物经1.5％琼脂糖凝胶电泳检测后，由北京擎科生物科技有限公司进行纯化和双向测序。测序结果如SEQ ID NO.3所示。

SEQ ID NO.3：

TCCGTAGGTGAACCTGCGGAGGGATCATTACCGAGTTTACAACTCCCAAACCCAATGTGAACGTTACCAAACTGTTGCCTCGGCGGGATCTCTGCCCCGGGTGCGTCGCAGCCCCGGACCAAGGCGCCCGCCGGAGGACCAACCAAAACTCTTATTGTATACCCCCTCGCGGGTTTTTTTATAATCTGAGCCTTCTCGGCGCCTCTCGTAGGCGTTTCGAAAATGAATCAAAACTTTCAACAACGGATCTCTTGGTTCTGGCATCGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATAAGTAATGTGAATTGCAGAATTCAGTGAATCATCGAATCTTTGAACGCACATTGCGCCCGCCAGTATTCTGGCGGGCATGCCTGTCCGAGCGTCATTTCAACCCTCGAACCCCTCCGGGGGGTCGGCGTTGGGGATCGGCCCTGCCTTGGCGGTGGCCGTCTCCGAAATACAGTGGCGGTCTCGCCGCAGCCTCTCCTGCGCAGTAGTTTGCACACTCGCATCGGGAGCGCGGCGCGTCCACAGCCGTTAAACACCCAACTTCTGAAATGTTGACCTCGGATCAGGTAGGAATACCCGCTGAACTTAAGCATAT。

将菌株M20210527-2的ITS序列输入GenBank的BLATS中进行同源性对比，下载17个模式菌株或公认菌株的ITS序列，用软件MEAG11构建NJ发育树(图2)，菌株M202100527-2与哈茨木霉TrichodermaharzianumCRC32、CRC7和AR75以100％的支持率聚为一支，且无支长差异。

结合形态学特征和分子生物学分析，将菌株M20210527-2鉴定为哈茨木霉Trichodermaharzianum。该菌株已于2022年10月21日保藏于中国典型微生物保藏管理中心，保藏号为CCTCCM20221631。

实施例3哈茨木霉M20210527-2对辣椒根腐病病原菌的抑菌效果

以辣椒根腐病病原菌茄镰刀菌(F.solani)作为指示菌，以三点对峙培养法筛选出对茄镰刀菌生长具有高效抑制效果的菌株。

用直径4mm的无菌打孔器打取活化的茄镰刀菌菌落边缘菌块，接种于直径为9cm的PDA平板的中央，在距离中央菌块的上、左、右3个方向，距离培养皿边缘1cm处分别接种菌株M20210527-2的直径4mm的小菌块。于25℃、自然光照下培养观察，待指示菌下侧菌丝长至平板的边缘后，测量对峙侧的菌落半径(mm)，并计算菌株M20210527-2对病原菌的抑制率，3次重复。

抑菌率(％)＝(对照侧半径-对峙侧半径)/对照侧半径×100。

在生防菌与茄镰刀菌菌丝对峙区域斜插1片灭菌的盖玻片，培养3d后在显微镜下观察菌株M20210527-2对茄镰刀菌的重寄生情况。

抑菌效果如图3所示，经计算，菌株M20210527-2对茄镰刀菌(F.solani)抑制率高达79.29％，并能快速占据平板的大部分空间，对茄镰刀菌菌丝生长形成高效的抑制(图3中A-B)，通过插片培养观察，菌株M20210527-2的菌丝能够缠绕重寄生于茄镰刀菌菌丝上，通过分泌抑菌物质、快速争夺生长空间和通过重寄生干扰病原菌生长，从而抑制茄镰刀菌菌丝生长(图3中C)。

实施例4哈茨木霉M20210527-2发酵滤液对茄镰刀菌(F.solani)菌丝生长的抑制效果

在250mL的三角瓶里加入100mLPD液体培养基(去皮的马铃薯200g，葡萄糖20g，水1000mL，自然pH)中，接入3块直径为4mm的菌株M20210527-2小菌块，于25℃、160r/min下震荡培养7d获得菌株M20210527-2的菌液；将菌液于10000r/min下离心10min，吸取上清液，再用0.22μm无菌微孔滤膜过滤2次得到无菌发酵滤液。待融化的PDA培养基冷却至60℃后依次在其中分别加入体积分数为5％、10％、15％、20％的菌株M20210527-2无菌发酵滤液，充分摇匀后倒成9cm平板，以不加发酵滤液的PDA培养基作为对照。在上述平板正中央接种1块直径4mm的茄镰刀菌小菌块，于25℃、自然光照下培养，待对照中茄镰刀菌长满平板时用十字交叉法测量各处理的菌落生长直径，3次重复。计算发酵滤液对茄镰刀菌菌丝生长的抑制率。

生长抑制率(％)＝(对照组菌落直径-处理组菌落直径)/对照组菌落直径×100。

菌株M20210527-2的无菌发酵滤液对茄镰刀菌菌丝抑制效果如图4和表1所示。

表1菌株M20210527-2无菌发酵滤液对病原菌的抑制效果

注：表中数值为平均值±标准差，不同小写字母表示处理间差异显著(P<0.05)，下同。

由图4可知，茄镰刀菌菌落随哈茨木霉M20210527-2无菌发酵液添浓度的增大而显著减小，由表1数据可知，无菌发酵滤液添浓度为15％和20％时，对茄镰刀菌抑制率达到55.97％和75.51％。说明菌株M20210527-2的代谢产物对茄镰刀菌具有较强的抑制作用。

实施例5菌株M20210527-2的发酵液对辣椒根腐病的防治效果

在100mL的PD液体培养基内分别接种3块直径为4mm的茄镰刀菌和菌株M20210527-2的小菌块，于25℃、160r/min下震荡培养3d，获得病原菌茄镰刀菌和菌株M20210527-2的发酵液；将茄镰刀菌和菌株M20210527-2的发酵液用无菌水分别稀释10倍后获得茄镰刀菌和哈茨木霉M20210527-2菌液。

选取健康饱满的‘8899’线椒种子，用1％次氯酸钠浸泡1min，无菌水清洗5次后播种至经高温灭菌的草炭土中，后放置在25℃、光照时间10h/d的光照室内进行隔离培养。待辣椒幼苗株高长至15cm时，移栽至盛有灭菌草炭土的16×18cm育苗钵内，每钵6株。待幼苗成活后设置4个处理(表2)来测定菌株M20210527-2对辣椒根腐病的防治效果和安全性，每个处理设置5次重复，处理后置于25℃、自然光照条件下进行培养。表2中接种部位均为辣椒根部。

表2对辣椒幼苗的不同处理

	初步处理	7d后的处理
			处理1	接种100mL茄镰刀菌菌液	接种100mL无菌水
处理2	接种100mL茄镰刀菌菌液	接种100mL菌株M20210527-2菌液
			处理3	接种100mL菌株M20210527-2菌液	接种100mL茄镰刀菌菌液
处理4	接种100mL菌株M20210527-2菌液	接种100mL无菌水

15d后统计各处理下辣椒植株根腐病病株率(％)，并采用0～9级标准统计4个处理下各株辣椒植株根腐病发病级别，0级：根系正常生长；1级：部分须根坏死变褐色；3级：须根和主根部分坏死变褐色；5级：坏死根系占30％～50％，植株叶片轻度萎蔫，傍晚可恢复；7级：坏死的根系占50％～80％，植株地上部分萎蔫且不可恢复；9级：根系全部坏死并扩展至近地面茎部，地上部分全株枯萎。病情指数＝∑(各级病株数×病害级别值)/(各处理总株数×9)。相对防效(％)＝(对照区病情指数－处理区病情指数)/对照区病情指数×100，其中以处理1为对照区，处理2～4为处理区。

菌株M20210527-2的菌液对辣椒根腐病的防治效果如表3所示。

表3菌株M20210527-2的菌液对辣椒根腐病的防治效果

处理	处理1	处理2	处理3	处理4
					病株率(％)	86.67±13.94a	56.67±9.13b	16.67±11.78c	0.00±0.00d
病情指数	83.70±14.07a	13.70±2.81b	4.81±1.42c	0.00±0.00d
					相对防效(％)	—	83.63	94.25	—

根据表3可知，直接接种茄镰刀菌菌液(处理1)病株率为86.67％，病情指数为83.7；先接种茄镰刀菌菌液，7d后接种菌株M202100527-2的菌液(处理2)，病株率为56.67％，相对防效为83.63％；先接种菌株M202100527-2的菌液(处理3)，7d后接种辣椒根腐病病原菌的病株率为16.67％，病情指数为4.81％，相对防效为94.25％。说明菌株M202100527-2对辣椒根腐病预防效果最佳，发病前使用可显著降低辣椒根腐病病株率和发病程度；但治疗效果一般，发病后使用虽可显著降低辣椒根腐病的发病程度，但仍有超过50％的植株发病。单独接种菌株M202100527-2的菌液于辣椒根部后(处理4)植株生长正常，说明菌株M202100527-2对辣椒根部无致病性，安全性好。

实施例6菌株M202100527-2的最佳培养条件研究

设计不同培养条件研究菌株M20210527-2的最佳生长温度、pH值条件以及最适生长碳源和氮源。

1.pH对菌株M20210527-2生长的影响

用1.0mol/L的HCl或NaOH将察氏液体培养基(硝酸钠3.0g，磷酸氢二钾1.0g，硫酸镁0.5g，氯化钾0.5g，硫酸亚铁0.01g，蔗糖30.0g，加热溶解于1000mL蒸馏水中，121℃灭菌15min)的pH值分别调节为3、4、5、6、7、8、9和10共8个梯度，然后分装入250mL三角瓶中，每瓶100mL；在每瓶培养基中接入4块直径4mm的菌株M20210527-2的小菌块，于25℃、160r/min中震荡培养4d。将纱布裁剪成10×10cm小块，放入烘箱中烘至恒重后称量纱布干重；将培养后的菌株M20210527-2的菌液倒在3层纱布上进行过滤后，收集菌丝和纱布一起放在60℃下烘干至恒重并称量总干重。菌丝生长量(g)＝纱布和菌丝总干重-纱布干重。

2.温度对哈茨木霉M20210527-2生长的影响

在100mL的pH值为7.0的察氏液体培养基中接种4块直径4mm的菌株M20210527-2的小菌块，并分别置于15℃、20℃、25℃、30℃、35℃和40℃的摇床中，160r/min震荡培养4d，菌丝生长量测定方法同1。

3.不同碳源对菌株M20210527-2生长的影响

以察氏液体培养基为基础培养基，将液体培养基中的蔗糖分别同质量替换为淀粉、葡萄糖、果糖、麦芽糖、乳糖和甘油，pH值调节至7，在100mL不同碳源液体培养基中接种4块直径4mm的菌株M20210527-2的小菌块，于160r/min、25℃中震荡培养4d。菌丝生长量测定方法同1。

4.不同氮源对菌株M20210527-2生长的影响

以察氏液体培养基为基础培养基，将液体培养基中的硝酸钠分别同质量替换为尿素、蛋白胨、硝酸铵、酵母粉、牛肉膏和氯化铵，并将pH值调节至7，在100mL不同碳源液体培养基中接种4块直径4mm的菌株M20210527-2的小菌块，于160r/min、25℃中震荡培养4d。菌丝生长量测定方法同1。

不同pH、温度、碳源和氮源对菌株M20210527-2菌丝生长量的影响如图5所示。菌株M20210527-2在pH6～7时菌丝生长量显著高于其他处理，pH在3～6时，其生长量随着pH的增大而增大，超过7后又随着pH的增大而显著减少；在温度为20～25℃之间生长最佳，在温度为15～25℃时菌丝生长量随着温度的升高而增大，超过25℃后菌丝生长量随着温度的升高而显著降低；菌株M20210527-2在蔗糖、葡萄糖和淀粉下菌丝生长量显著高于其他碳源处理，果糖和麦芽糖次之，甘油最差；在蛋白胨，酵母粉和牛肉膏处理下菌丝生长量最高，硝酸钠、硝酸铵、氯化铵次之，尿素最差。说明菌株M20210527-2最佳培养pH值为6～7，最佳培养温度为20～25℃，最适生长碳源为蔗糖、葡萄糖和淀粉，最适氮源为蛋白胨，酵母粉和牛肉膏。

以上所述的实施例仅是对本发明的优选方式进行描述，并非对本发明的范围进行限定，在不脱离本发明设计精神的前提下，本领域普通技术人员对本发明的技术方案做出的各种变形和改进，均应落入本发明权利要求书确定的保护范围内。

Claims (7)

1.一株哈茨木霉(Trichoderma harzianum)M202100527-2，其特征在于，保藏于中国典型微生物保藏管理中心，保藏编号为CCTCC NO:M 20221631。

2.一种病原菌抑制剂，其特征在于，有效成分包括权利要求1所述的哈茨木霉M202100527-2和/或其代谢产物；所述病原菌为茄镰刀菌(Fusarium solani)。

3.一种防治辣椒根腐病的药剂，其特征在于，有效成分包括权利要求1所述的哈茨木霉M202100527-2的菌液。

4.一种如权利要求1所述的哈茨木霉(Trichoderma harzianum)M202100527-2在制备病原菌抑制剂中的应用，其特征在于，所述病原菌为茄镰刀菌(Fusarium solani)。

5.根据权利要求4所述的应用，其特征在于，所述哈茨木霉M202100527-2能够抑制病原菌的菌丝生长。

6.根据权利要求5所述的应用，其特征在于，所述哈茨木霉M202100527-2的菌丝通过缠绕重寄生于所述病原菌的菌丝上、分泌抑菌物质和快速争夺病原菌生长空间，从而抑制所述病原菌的菌丝生长。

7.一种如权利要求1所述的哈茨木霉M202100527-2在防治辣椒根腐病中的应用，其特征在于，所述辣椒根腐病的病原菌为茄镰刀菌(Fusarium solani)。