CN115851748A - β2-MG截短体的制备方法及应用 - Google Patents

Abstract

本申请公开了一种β2‑MG截短体的制备方法及应用。本发明提供的基于原核表达体系的β2‑MG截短体的制备方法，表达效率高，可溶性蛋白表达量大，便于分离纯化。制备获得的β2‑MG截截短体保留了与β2‑MG蛋白相当的活性高，且稳定性好。

Description

β2-MG截短体的制备方法及应用

技术领域

本发明涉及生物医药领域，特别涉及β2-MG截短体的制备方法及应用。

背景技术

β2-微球蛋白，简称β2-MG，是一种源自淋巴细胞、血小板及多行核白细胞分泌的含有血红素的小分子球蛋白，由99个氨基酸组成的单链线性，分子量为11.8KD。正常人血清中β2-MG的浓度处于0.5～2.0mg/L范围，肾脏是β2-MG排泄到体外的唯一脏器，当发生肾功能不全时，因β2-MG的排泄障碍致患者体内血清β2-MG浓度为正常人的60倍，β2-MG在组织中过度沉积容易诱发β2-MG相关淀粉样病变。研究发现血清中β2-MG的水平与肾β2-MG小球过滤率(GRF)呈显著负相关，通过血清或尿液中β2-MG浓度可以为临床肾功能测定、成活、重金属镉、某些病毒感染、自身免疫性疫病的临床诊断提供较早、可靠和灵敏的指标，同时也为性质肾小球或肾小管等部位提供依据。

现有技术中，在应用基因工程技术原核表达人β2-MG时，其表达的重组人β2-MG大多以包涵体形式为主，如文献中记载了朴文花等构建的rhβ2M表达载体，可溶性目的蛋白仅占总蛋白量的4％，经济效益不高。虽然包涵体蛋白可以通过变性、复性方法最终获得可溶性的rhβ2M，但是包涵体蛋白变性、复性过程复杂，同时大多数包涵体蛋白不能实现完全复性，有的复性率极低，影响了活性蛋白产量和稳定性。因此，本领域尚需开发一种基于基因工程技术的生产可溶性人β2-MG的方法。

发明内容

本发明的目的在于提供一种重组β2-MG截短体制备方法。

本发明的另一目的在于提供一种编码β2-MG截短体的多核苷酸序列。

本发明的另一目的在于提供与编码β2-MG截短体的多核苷酸序列适配的载体。

本发明的另一目的在于提供含有编码β2-MG截短体的多核苷酸序列的试剂盒。

为解决上述技术问题，本发明第一方面，提供了一种编码β2-MG截短体的多核苷酸，所述多核苷酸经密码子优化，且所述多核苷酸选自以下任一种：

(i)具有如SEQ ID NO.3-5所示序列的多核苷酸；

(ii)具有与如SEQ ID NO.3-5所示序列的同源性大于95％的多核苷酸；和

(iii)具有与(i)或(ii)中所述的多核苷酸序列互补的多核苷酸。

本发明第二方面，提供了一种表达载体，所述表达载体包括本发明第一方面提供的多核苷酸。

在一些优选的方案中，所述表达载体包括表达His×6标签的多核苷酸序列，更优选地，所述表达载体中，所述的多核苷酸的3’端连接有表达His×6标签的多核苷酸序列。

在一些优选的方案中，所述表达载体为大肠杆菌表达载体，更优选为pET-28a(+)。

本发明第三方面，提供了一种宿主细胞，所述宿主细胞包括本发明第二方面提供的表达载体；或者

所述宿主细胞的基因组中整合有如本发明第一方面提供的多核苷酸。

在一些优选的方案中，所述宿主细胞为大肠杆菌(Escherichia coli)。

在一些优选的方案中，所述宿主细胞为大肠杆菌Rosetta(DE3)菌株。

本发明第四方面提供了一种制备β2-MG截短体的方法，所述方法包括步骤：培养本发明第三方面所述的宿主细胞，以表达出目的蛋白；和

分离所述目的蛋白，即得所述β2-MG截短体；

其中，所述目的蛋白截短体具有如氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列。

在一些优选的方案中，所述宿主细胞通过含有本发明第一方面所述多核苷酸的质粒转化大肠杆菌获得。

在一些优选的方案中，在振荡的环境中培养所述的宿主细胞。

在一些优选的方案中，培养所述的宿主细胞时，所用培养基中含有卡那霉素抗性基因。

在一些优选的方案中，培养所述的宿主细胞时，使用IPTG进行诱导，以表达出目的蛋白。

在一些优选的方案中，培养所述的宿主细胞时，培养至OD600在0.6至0.8，后使用IPTG进行诱导，以表达出目的蛋白。

在一些优选的方案中，所述分离所述目的蛋白的步骤包括：

将经破碎的目的蛋白上清液通过层析柱，进行洗脱，收集洗脱液。

在一些优选的方案中，所述层析柱为Ni-柱亲和层析柱，例如HisTrapTMFF。

本发明第五方面提供了一种试剂盒，所述试剂盒包括：如本发明第一方面提供的多核苷酸；或者

如本发明第二方面提供的表达载体；或者

如本发明第三方面所述的宿主细胞；或者

或者根据本发明第四方面所述的方法制备的β2-MG截短体。

本发明相对于现有技术而言，至少具有下述优点：

本发明提供的基于原核表达体系的β2-MG截短体的制备方法，表达效率高，可溶性蛋白表达量大，便于分离纯化。制备获得的β2-MG截截短体保留了与β2-MG蛋白相当的活性高，且稳定性好。

应理解，在本发明范围内中，本发明的上述各技术特征和在下文(如实施例)中具体描述的各技术特征之间都可以互相组合，从而构成新的或优选的技术方案。限于篇幅，在此不再一一累述。

附图说明

一个或多个实施例通过与之对应的附图中的图片进行示例性说明，这些示例性说明并不构成对实施例的限定。

图1是根据本发明实施例中目的蛋白截短体SDS-PAGE鉴定结果示意图；

图2是根据本发明实施例中目的蛋白截短体电泳图。

具体实施方式

现有技术中，基于原核系统表达所得到的β2-MG大多是包涵体，实用价值低。本发明人经过广泛而深入的研究，开发了基于原核表达系统的β2-MG表达体系，首先对β2-MG进行截短，并通过对编码截短体的基因序列进行同义密码子偏好性优化提高了表达效率和可溶性蛋白的表达量，便于工业化生产，所表达的目的蛋白截短体保留了与目的蛋白相当的活性，且稳定性好。

获取目的基因/获取目的蛋白有关的核酸序列

本发明中目的蛋白或其元件的核苷酸全长序列或其片段通常可以用PCR扩增法、重组法或人工合成的方法获得。对于PCR扩增法，可根据已公开的有关核苷酸序列，尤其是开放阅读框序列来设计引物，并用市售的cDNA库或按本领域技术人员已知的常规方法所制备的cDNA库作为模板，扩增而得有关序列。当序列较长时，常常需要进行两次或多次PCR扩增，然后再将各次扩增出的片段按正确次序拼接在一起。

一旦获得了有关的序列，就可以用重组法来大批量地获得有关序列。这通常是将其克隆入载体，再转入细胞，然后通过常规方法从增殖后的宿主细胞中分离得到有关序列。

此外，还可用人工合成的方法来合成有关序列，尤其是片段长度较短时。通常，通过先合成多个小片段，然后再进行连接可获得序列很长的片段。

应用PCR技术扩增DNA/RNA的方法被优选用于获得本发明的基因。用于PCR的引物可根据本文所公开的本发明的序列信息适当地选择，并可用常规方法合成。可用常规方法如通过凝胶电泳分离和纯化扩增的DNA/RNA片段。

在本发明的一个实施方式中，通过NCBI数据库对目的蛋白的氨基酸序列，并对其进行截短，获得β2-MG截短体序列(SEQ ID NO:1)，对目的蛋白截短体进行分析，获得编码目的蛋白截短体的基因序列信息(SEQ ID NO:2)。

同义密码子偏好性优化

为克服在大肠杆菌中表达异源蛋白时产量降低的潜在问题，本发明涉及经同义密码子偏好性优化的多核苷酸序列。对获取基因序列(SEQ ID NO:2)进行同义密码子偏好性优化，经同义密码子偏好性优化的目的基因序列(SEQ ID NO:3-5)可表达与目的蛋白截短体相同的氨基酸序列。

本发明还涉及与SEQ ID NO:3-5所示序列的同源性大于95％的多核苷酸；和与SEQID NO:3-5所示序列互补的多核苷酸。

目的基因的载体

本发明还涉及包含本发明的多核苷酸的载体。本发明中“载体”表示线性或环状DNA分子，其包含编码目的蛋白的片段，所述目的蛋白可操作地连接到提供其转录的其它片段。这样的附加片段可以包括启动子和终止子序列，并且可以任选地包括一个或多个复制起点，一个或多个可选择标记，增强子，多腺苷酸化信号，载体等。载体片段可以衍生自宿主生物体，另一生物体，质粒或病毒DNA，或可以是合成的。载体可以是合成的或方便地进行重组DNA操作的任何表达载体，载体的选择通常取决于载体要导入的宿主细胞。因此，载体可以是自主复制载体，即载体，其作为染色体外实体存在，染色体外实体的复制与染色体复制无关，例如质粒。或者，载体可以是当引入宿主细胞时整合到宿主细胞基因组中并与其整合的染色体一起复制的载体。在一个实施方案中，本发明的载体是表达载体。本发明的一个实施例中选择pET-28a(+)作为载体，以获取更高效的表达效率。

本领域的技术人员熟知的方法能用于构建含本发明蛋白的编码DNA序列和合适的转录/翻译控制信号的表达载体。这些方法包括体外重组DNA技术、DNA合成技术、体内重组技术等。所述的DNA序列可有效连接到表达载体中的适当启动子上，以指导mRNA合成。表达载体还包括翻译起始用的核糖体结合位点和转录终止子。示例性地，使用DNA内切酶将载体DNA分子切割成可与外源基因连接的线性分子，然后将经密码子优化的目的基因片段连接于载体，可选用单酶切位点的黏端连接、双酶切片段的定向克隆、不同限制酶切位点的黏端连接、平端连接、人工接头连接或同寡核苷酸末端连接实现外源DNA片段的插入。

表达载体中，除包含必要的复制和筛选的元件，协助表达和翻译的元件外，还可以包括各类标签，例如促溶解标签。本发明的一个实施例中，载体还包含表达His×6标签的多核苷酸序列，优选地，表达His×6标签的多核苷酸序列连接在目的基因序列的3’端(C端)。

本发明中，“His×6标签”指的是六个组氨酸残基组成的融合标签，可以在非离子表面活性剂存在下或变性条件下纯化，当包涵体存在时，用高浓度的变性剂溶解后通过金属螯合亲和层析去除杂蛋白，使其复性不受其他蛋白干扰，纯度更高。

含有目的基因的载体转化宿主细胞

本发明还涉及用本发明的载体或融合蛋白编码序列经基因工程产生的宿主细胞。含有经密码子优化的目的基因的载体可以通过已知的方法插入、转染或以其他方式转化到宿主细胞中，从而获得含有本发明经密码子优化的目的基因并能够表达目的蛋白的转化体。本发明中“宿主细胞”是引入了外源多核苷酸和/或载体的细胞。宿主细胞可以是真核宿主细胞或原核宿主细胞，宿主细胞优选是细菌，并且优选是大肠杆菌，更优选是大肠杆菌ROSETTA(DE3)菌种(Escherichia coli Rosetta(DE3)strain)。

制备目的蛋白的方法

本发明还涉及制备目的蛋白截短体的方法，可利用本发明的多核苷酸序列表达或生产重组蛋白。一般来说有以下步骤：

(1)用本发明的编码本发明蛋白的多核苷酸(或变异体)，或用含有该多核苷酸的重组表达载体转化或转导合适的宿主细胞；

(2)在合适的培养基中培养的宿主细胞；

(3)从培养基或细胞中分离、纯化蛋白质。

其中，步骤(1)含有该多核苷酸的重组表达载体转化或转导合适的宿主细胞可通过本领域技术人员熟知的常规技术进行，当宿主是大肠杆菌时，可选用热击法和电转化法等。

获得的转化子可以用常规方法培养，表达本发明的基因所编码的多肽。根据所用的宿主细胞，培养中所用的培养基可选自各种常规培养基，优选为SB、TB或SOC培养基。在适于宿主细胞生长的条件下进行培养。当宿主细胞生长到适当的细胞密度后，用合适的方法(如温度转换或化学诱导)诱导选择的启动子，将细胞再培养一段时间。为促进目的蛋白的表达并提升可溶蛋白的表达量，本发明的一个优选的实施方式，使用TB培养基培养的宿主细胞，且所用培养基中含有卡那霉素抗性基因。

在上面的方法中的蛋白质可在细胞内、或在细胞膜上表达、或分泌到细胞外。如果需要，可利用其物理的、化学的和其它特性通过各种分离方法分离和纯化蛋白。这些方法是本领域技术人员所熟知的。这些方法的例子包括但并不限于：常规的复性处理、用蛋白沉淀剂处理(盐析方法)、离心、渗透破菌、超处理、超离心、分子筛层析(凝胶过滤)、吸附层析、离子交换层析、高效液相层析(HPLC)和其它各种液相层析技术及这些方法的结合。在本发明的一个实施方式中，使用亲和层析法分子目的蛋白。

在本发明中，使用针对本文中的某些实施例提供的任何示例性或示例性措辞(例如，“”)只是为了更好地呈现本发明，而不限制以其它方式要求权利的本发明的范围。本文中的任何措辞都不应被解释为表示本发明实施中不可缺少的权利要求中未描述的要素。

如果引用文献中的术语的定义或使用与本文中描述的术语的定义不一致或不一致，则使用本文中描述的术语的定义，而不使用引用文献中的术语的定义。

本文中使用的各种术语如下所示。如果权利要求中使用的术语未在下文中定义，则应给出本领域技术人员给出的该术语的最广泛定义，以反映在申请时印刷的出版物或所发布的专利中。

如本文中所用的，术语“分离的”是指与核酸或多肽在其天然来源中存在的至少一种其它组分(例如核酸或多肽)分离的核酸或多肽。在一个实施方案中，发现核酸或多肽仅存在(如果有的话)通常存在于其溶液中的溶剂，缓冲液，离子或其它组分。术语“分离的”和“纯化的”不包括存在于其天然来源中的核酸或多肽。

如本文中所用的，术语“多核苷酸”和“多核苷酸序列”可以是DNA形式或RNA形式。DNA形式包括cDNA、基因组DNA或人工合成的DNA。DNA可以是单链的或是双链的。DNA可以是编码链或非编码链。

本发明还涉及上述多核苷酸的变异体，其编码与本发明有相同的氨基酸序列的蛋白质片段、类似物和衍生物。此多核苷酸的变异体可以是天然发生的等位变异体或非天然发生的变异体。这些核苷酸变异体包括取代变异体、缺失变异体和插入变异体。如本领域所知的，等位变异体是一个多核苷酸的替换形式，它可能是一个或多个核苷酸的取代、缺失或插入，但不会从实质上改变其编码多肽的功能。

如本文中所用的，术语“密码子优化”是指根据实际做蛋白表达或生产的生物(包括大肠杆菌、酵母、哺乳动物血细胞、植物细胞、昆虫细胞等)表现出的密码子利用差异，避免使用低利用率或稀有的密码子，来提高基因合成效率的方式。

如本文中所用的，术语“同源性”和“同一性”可互换使用，是指两个或更多个多核苷酸或多肽之间相同(即相同)核苷酸或氨基酸的百分比。可以通过以下方法测量两个或多个多核苷酸或多肽之间的序列同一性。排列多核苷酸或多肽的核苷酸或氨基酸序列，对排列的多核苷酸或多肽中含有相同核苷酸或氨基酸残基的位置的数量进行评分，并将其与排列的多核苷酸或多肽中含有不同核苷酸或氨基酸残基的位置的数量进行比较。多核苷酸可以在一个位置上不同，例如，根据包含不同的核苷酸(即，替换或变异)或核苷酸的缺失(即，在多核苷酸中插入或缺失一个或两个核苷酸)。多肽可以例如通过含有氨基酸(即，取代或变异)或氨基酸的缺失(即，插入一个或两个多肽中的氨基酸或氨基酸的缺失)在一个位置上不同。可以通过将含有相同核苷酸或氨基酸残基的位置的数量除以多核苷酸或多肽中氨基酸残基的总数来计算序列同一性。例如，百分比同一性可通过将含有相同核苷酸或氨基酸残基的位置的数量除以多核苷酸或多肽中核苷酸或氨基酸残基的总数，然后乘以100来计算。

如本文中所用的，术语“序列互补”和“反向序列互补”可互换使用，指的是与原多核苷酸序列的方向相反，且与原多核苷酸序列互补的序列。例如，如果原始多核苷酸序列是ACTGAAC，则其反向互补序列是GTTCAT。

如本文中所用的，术语“表达”包括涉及宿主细胞中多肽产生的任何步骤，包括但不限于转录，翻译，翻译后修饰和分泌。表达后可收获，即回收宿主细胞或表达产物。

为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚，下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数是重量百分比和重量份数。以下实施例中所用的实验材料和试剂如无特别说明均可从市售渠道获得。

除非另有指明，本文所用的技术和科学术语具有与本申请所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义，需要注意的是，本文所用的术语仅为了描述具体实施方式，而非意图限制本申请的示例性实施方式。

实施例1

本实施例中，对截短后的β2-MG基因序列进行密码子优化，并将含有优化后的密码子序列的质粒导入大肠杆菌，制备得到单克隆。具体方法如下：

(1)制备含有不同优化后的密码子序列的表达质粒A-1、A-2和A-3

对原始β2-MG氨基酸序列进行截短，得到截短的β2-MG氨基酸序列(SEQ ID NO:1)。

对截短的β2-MG氨基酸序列(SEQ ID NO:1)进行分析获得编码其的基因序列SEQID NO:2。

以SEQ ID NO:2为基础，进行大肠杆菌的同义密码子偏好性优化，得到若干优化后的密码子序列。典型地例如：优化密码子Ⅰ(SEQ ID NO:3)，优化密码子Ⅱ(SEQ ID NO:4)，优化密码子Ⅲ(SEQ ID NO:5)。将优化后的密码子分别连接pET-28a(+)载体，C端(His)6标签得到3个表达质粒A-1(包含优化密码子Ⅰ)、A-2(包含优化密码子Ⅱ)和A-3(包含优化密码子Ⅲ)。

表1

(2)重组质粒导入宿主大肠杆菌

取1μL上述制备的表达质粒A-1，在冰浴条件下，加入到30μL大肠杆菌感受态Rosetta(DE3)(购自天根公司)中，冰浴放置30min，热激90s，立刻冰上放置2min，加入400μL不含抗生素的SOC培养基，37℃、220rpm振荡培养50min。取100μL菌液分别均匀涂布到含100μg/mL卡那抗性的TB平板和SOC平板上，37℃培养箱培养过夜。

表达质粒A-2和A-3均以同样的方式导入大肠杆菌并培养。

实施例2

本实施例中，比较了实施例1中制备的表达质粒A-1、A-2和A-3导入大肠杆菌进行表达的表达效率。

挑取实施例1中的单克隆，无菌操作分别接种于含100μg/mL卡那抗性的TB培养基中，37℃220rpm振荡培养至OD₆₀₀在0.6-0.8之间，IPTG进行诱导，放置于18℃振荡培养过夜。

取等量不同质粒的菌液进行超声破碎进行SDS-PAGE鉴定，预测分子量11.8KD，结果见图1。图1中，1-2列：密码子优化的载体A-2导入大肠杆菌、TB培养基表达破碎的上清、沉淀；3-4列：密码子优化的载体A-3导入大肠杆菌、TB培养基表达破碎的上清、沉淀；5-6列：密码子优化后的载体A-1导入大肠杆菌、TB培养基表达破碎的上清、沉淀；7-8列：密码子优化后的载体A-1导入大肠杆菌、SOC培养基表达破碎的上清、沉淀。

根据图1，密码子优化的载体A-1目的蛋白的表达量明显高于载体A-2、A-3。

实施例3

本实施例中，对实施例2中不同载体所表达的目的蛋白进行纯化，并计算目的蛋白的表达量。

按照实施例2中的方法放大实验，将密码子优化后的载体A-1导入大肠杆菌，TB培养基中培养并破碎收集上清，培养1.5L菌液，离心收集菌体湿重为：28.8g。

称取约4g菌体，加入20ml Lysis Buffer在冰上重悬。超声破碎后离心，20000rpm，4℃离心30min，取上清，0.22μm针式过滤器过滤得到过滤后菌液。滤后过Ni-柱亲和层析，用50mM Tris-HCl、50mM NaCl、200mM咪唑pH 7.0洗脱目的蛋白，电泳图如图2所示。计算目的蛋白表达含量为69.1mg/L，纯度大于达到85％。

同样的方法将载体A-2、和A-3导入大肠杆菌，得到目的蛋白的表达量分别为22.4和61.6mg/L。

实施例4

本实施例中，采用化学发光法(竞争法)鉴定实施例3中所得的纯化后的目的蛋白的活性，测试所用试剂盒购自广州市达瑞生物技术股份有限公司，各测试试剂的配制和使用参照试剂盒说明书。具体步骤如下：

(1)制备抗原抗体复合物

分别将的A-1和A-3在TB表达的样本、包被Mb蛋白的磁珠混合，经过洗涤后，加入吖碇盐标记的另外一株Mb单克隆抗体在温育条件下反应，包被蛋白的磁珠与样本的抗原竞争结合Mb单克隆抗体。

(2)检测读数

温育结束后，去掉上清液，用清洗液清洗沉淀复合物，并吸干废液，除去未与磁性微粒结合的物质，加入两种激发液，使复合物产生化学发光信号，测量发光强度，发光强度低，说明样品阻碍作用越强，性能越好。

检测结果见表2，密码子优化的菌株A-1的检测结果较A-3的低，密码子优化后A-1样品浓度与RLU值的线性回归方程R2＝0.9553，而密码子优化后A-3样品浓度与RLU值的线性回归方程R2＝0.9465，可见优化后密码子A-1在TB表达的样品线性关系更好。

表2

实施例5

本实施例中，采用竞争法检测实施例3中所得的纯化后的目的蛋白的稳定性。检测前，将A-1在TB表达的样品分别为在4℃、37℃保存4天。并且市售的β2-MG的作为对照。参考广州市达瑞生物技术股份有限公司试剂盒说明书配制检测所需样品和试剂。

(1)制备抗原抗体复合物

将优化后的A-1在TB表达的样本、对照分别包被Mb蛋白的磁珠混合，经过洗涤后，加入吖碇盐标记的另外一株Mb单克隆抗体在温育条件下反应，包被蛋白的磁珠与样本的抗原竞争结合Mb单克隆抗体。

(2)检测读数：

温育结束后，去掉上清液，用清洗液清洗沉淀复合物，并吸干废液，除去未与磁性微粒结合的物质，加入两种激发液，使复合物产生化学发光信号，测量发光强度，发光强度越低，样品性能越好。检测结果见表3。

表3

根据表3，载体A-1在TB培养基中表达的β2-MG蛋白在4℃、37℃放4天整体发光值的相对偏差在±10％内，且置于37℃4天后的发光值与置4℃的无明显差异，而市售的β2-MG蛋白发光值显著上升，其他公司的产品中蛋白发生部分降解，热稳定性较差，由此可见本发明产品的稳定性更好。

本领域的普通技术人员可以理解，上述各实施方式是实现本发明的具体实施例，而在实际应用中，可以在形式上和细节上对其作各种改变，而不偏离本发明的精神和范围。

Claims (10)

1.一种编码β2-MG截短体的分离的多核苷酸，其特征在于，所述多核苷酸经密码子优化，且所述多核苷酸选自以下任一种：

(i)具有如SEQ ID NO.3-5所示序列的多核苷酸；

(ii)具有与如SEQ ID NO.3-5所示序列的同源性大于95％的多核苷酸；和

(iii)具有与(i)或(ii)中所述的多核苷酸序列互补的多核苷酸。

2.一种表达载体，其特征在于，所述表达载体包括如权利要求1所述的多核苷酸。

3.根据权利要求2所述的表达载体，其特征在于，所述表达载体包括表达His×6标签的多核苷酸序列。

4.根据权利要求3所述的表达载体，其特征在于，所述表达载体为大肠杆菌表达载体，优选为pET-28a(+)。

5.一种宿主细胞，其特征在于，所述宿主细胞包括如权利要求2至4中任一项所述的表达载体；或者

所述宿主细胞的基因组中整合有如权利要求1所述的多核苷酸。

6.根据权利要求5所述的宿主细胞，其特征在于，所述宿主细胞为大肠杆菌Rosetta(DE3)菌株。

7.一种制备β2-MG截短体的方法，其特征在于，所述方法包括步骤：

使含有如权利要求1所述的多核苷酸载体转化宿主细胞；

培养所述宿主细胞，以表达所述β2-MG截短体。

8.根据权利要求7所述的方法，其特征在于，用TB或SOC培养基培养所述的宿主细胞；

和/或，培养所述宿主细胞时，所用培养基中含有卡那霉素抗性基因。

9.根据权利要求7所述的方法，其特征在于，培养所述宿主细胞时，通过IPTG诱导以表达出目的蛋白。

10.一种试剂盒，其特征在于，所述试剂盒包括：如权利要求1所述的多核苷酸；或者

如权利要求2至4中任一项所述的表达载体；或者

如权利要求5或6所述的宿主细胞；或者

根据权利要求7至9中任一项所述的方法所制备的β2-MG截短体。

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