CN115248272B - 一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法 - Google Patents

一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法 Download PDF

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Abstract

一种检测α‑酮戊二酸和手性2‑羟基戊二酸的方法,包括:样品预处理步骤,包括将待测样品与溶剂混合,提取处理,然后浓缩至干,然后加入含有N‑对甲苯磺酰基‑L‑苯丙氨酰氯的溶液以及吡啶,衍生反应后,固液分离,取第一上清液,加入水,再次混匀,固液分离,获得第二上清液;液相色谱‑串联质谱检测步骤,包括采用液相色谱‑串联质谱检测第二上清液,获得检测结果;计算步骤,根据检测结果,计算得到待测样品中α‑酮戊二酸、D‑2‑羟基戊二酸、L‑2‑羟基戊二酸的含量。本发明通过对样品进行手性衍生处理后,在HPLC‑MS/MS平台上,运用MRM检测方法,实现了对该三种物质的快速和精确的测定。

Description

一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法
技术领域
本发明涉及检测技术领域,具体涉及一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法。
背景技术
α-酮戊二酸(α-KG,α-Ketoglutaric acid,2-Oxoglutaric acid),CAS号328-50-7,是戊二酸的一种氧化物,即戊二酸α位的酮基化衍生物。它也是一种存在于生物体内的代谢物——是三羧酸(TCA)循环中的中间产物,是谷氨酸脱氨基的酮酸产物,也是最重要的氮素运载体之一,因此,α-KG在脂质合成、氧化应激、蛋白质修饰和细胞死亡等生理过程中具有十分重要的调控作用。
2-羟基戊二酸(2HG,2-Hydroxyglutaric acid,α-Hydroxyglutaric acid),CAS号2889-31-8,由戊二酸在α位羟基化而来,也是α-KG的还原产物。由于2-羟基戊二酸的α位的碳上连有四个不同的基团,这使得它是一个手性(即旋光性)分子,从而具有两种手性异构体(即光学异构体)——L-2HG(或S-2HG或[-]-2HG,CAS号13095-48-2)和D-2HG(或R-2HG或[+]-2HG,CAS号13095-47-1)。由于生物体内的蛋白质(包括酶)大部分都是具有手性特征的,即拥有不同的三维空间构型,所以L-2HG和D-2HG在生物体内的代谢途径和作用是十分不同的。例如L-2HG被认为是由L-苹果酸脱氢酶(MDH)或在缺氧条件下被乳酸脱氢酶A(LDH-A)由α-KG转化形成,并可被L-2-羟基戊二酸脱氢酶(L2HGDH)转化为α-KG;而D-2HG是由醇酸-酮酸转氢酶(Hydroxyacid oxoacid transhydrogenase,HOT)由α-KG转化而成,并可由D-2-羟基戊二酸脱氢酶(D2HGDH)转化为α-KG。可见它们具有不一样的代谢通路和生物学意义。
常规的检测手段很难区分手性异构体,因为手性异构体在绝大多数的物理和化学性质上都极度相似。但L-2HG和D-2HG的具体含量和比例对一些疾病的诊断具有重要影响,如胶质瘤(在L-2-羟基戊二酸尿症中连续出现明显的高级胶质瘤)和急性髓系白血病(R-2-羟基戊二酸足以促进白血病发生,其作用是可逆的)。因此,一种有效的、可以分别鉴定L-2HG、D-2HG和α-KG的检测方法是十分必需的。
发明内容
本发明主要解决的技术问题是如何同时检测α-酮戊二酸、D-2-羟基戊二酸和L-2-羟基戊二酸的含量。
一种实施例中提供一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法,包括:
样品预处理步骤,包括将待测样品与溶剂混合,提取处理,然后浓缩至干,然后加入含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液以及吡啶,衍生反应后,固液分离,取第一上清液,加入水,再次混匀,固液分离,获得第二上清液;
液相色谱-串联质谱检测步骤,包括采用液相色谱-串联质谱检测所述第二上清液,获得检测结果;
计算步骤,根据所述检测结果,计算得到待测样品中α-酮戊二酸、D-2-羟基戊二酸、L-2-羟基戊二酸的含量;
所述液相色谱-串联质谱检测步骤中,液相色谱的检测条件中,流动相有流动相A和流动相B组成,其中流动相A为乙酸铵水溶液,流动相B为乙酸铵甲醇溶液。
依据上述实施例的一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法,本发明通过对样品进行手性衍生处理后,在HPLC-MS/MS(超高效液相色谱-串联三重四极杆质谱仪)平台上,运用MRM检测方法,实现了对该三种物质的快速和精确的测定。
附图说明
图1为使用实施例1的表1、表2的参数获得的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图;
图2为α-KG的标准曲线图;
图3为D-2HG衍生物的标准曲线图;
图4为L-2HG衍生物的标准曲线图;
图5为实施例1中D-2HG、L-2HG的衍生化反应原理图;
图6为对比例1中,其中一个样品(sample15)中L-2HG和D-2HG的LC-MS图;
图7为使用表3所示流动相比例得到的其中一个样品(sample5)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图;
图8为使用表4所示流动相比例得到的其中一个样品(sample22)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图;
图9为实施例2中,其中一个样品(sample74)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图。
具体实施方式
下面通过具体实施方式结合附图对本发明作进一步详细说明。在以下的实施方式中,很多细节描述是为了使得本申请能被更好的理解。然而,本领域技术人员可以毫不费力的认识到,其中部分特征在不同情况下是可以省略的,或者可以由其他材料、方法所替代。在某些情况下,本申请相关的一些操作并没有在说明书中显示或者描述,这是为了避免本申请的核心部分被过多的描述所淹没,而对于本领域技术人员而言,详细描述这些相关操作并不是必要的,他们根据说明书中的描述以及本领域的一般技术知识即可完整了解相关操作。
另外,说明书中所描述的特点、操作或者特征可以以任意适当的方式结合形成各种实施方式。同时,方法描述中的各步骤或者动作也可以按照本领域技术人员所能显而易见的方式进行顺序调换或调整。因此,说明书和附图中的各种顺序只是为了清楚描述某一个实施例,并不意味着是必须的顺序,除非另有说明其中某个顺序是必须遵循的。
本文中为部件所编序号本身,例如“第一”、“第二”等,仅用于区分所描述的对象,不具有任何顺序或技术含义。
本文中,“α-酮戊二酸”亦称α-KG、A-KG。
本文中,“L-2-羟基戊二酸”简称L-2HG。
本文中,“D-2-羟基戊二酸”简称D-2HG。
针对现有技术存在的一些不足,本发明的目的是提供一种可以同时检测α-KG、L-2HG和D-2HG的检测手段,以期实现对这三种物质的准确定性和精确定量的检测。
基于上述目的,在一实施例中,本发明通过对样品进行手性衍生处理后,在HPLC-MS/MS(超高效液相色谱-串联三重四极杆质谱仪)平台上,运用MRM检测方法,实现了对该三种物质的快速和精确的测定。
在一实施例中,从最开始的样品预处理到最后获得检测结果,所需时间大约在3h以内。
在一实施例中,提供一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法,包括:
样品预处理步骤,包括将待测样品与溶剂混合,提取处理,然后浓缩至干,然后加入含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液以及吡啶,衍生反应后,固液分离,取第一上清液,加入水,再次混匀,固液分离,获得第二上清液;
液相色谱-串联质谱检测步骤,包括采用液相色谱-串联质谱检测第二上清液,获得检测结果;
计算步骤,根据检测结果,计算得到待测样品中α-酮戊二酸、D-2-羟基戊二酸、L-2-羟基戊二酸的含量;
液相色谱-串联质谱检测步骤中,液相色谱的检测条件中,流动相有流动相A和流动相B组成,流动相A、B选自如下组合中的任意一种:
1)流动相A为含有乙酸铵的水溶液(亦称乙酸铵水溶液),流动相B为含有乙酸铵的甲醇溶液(亦称乙酸铵甲醇溶液);
2)流动相A为含有甲酸铵的水溶液(亦称甲酸铵水溶液),流动相B为含有甲酸铵的甲醇溶液(亦称甲酸铵甲醇溶液)。
在一实施例中,含有乙酸铵的水溶液中,乙酸铵的浓度为5~10mmol/L。
在一实施例中,含有乙酸铵的甲醇溶液中,乙酸铵的浓度为5~10mmol/L。
在一实施例中,含有甲酸铵的水溶液中,甲酸铵的浓度为5~10mmol/L。
在一实施例中,含有甲酸铵的甲醇溶液中,甲酸铵的浓度为5~10mmol/L。
在一实施例中,液相色谱的洗脱程序如下:
时间(min) A(%(v/v)) B(%(v/v))
0 80 20
0.5 80 20
6 55 45
7 30 70
8 30 70
8.1 80 20
10 80 20
在一实施例中,液相色谱为高效液相色谱。
在一实施例中,液相色谱的检测条件中,色谱柱为C18色谱柱。
在一实施例中,液相色谱的检测条件中,C18色谱柱为Waters ACQUITY UPLC BEHC18色谱柱,规格为100mm*2.1mm,1.7μm粒径。
在一实施例中,液相色谱的检测条件中,色谱柱温度为30~50℃,优选为38~42℃,更优选为40℃。
在一实施例中,液相色谱-串联质谱检测步骤中,还包括如下A)至J)中的至少一项:
A)串联质谱为三重四级杆质谱;
B)串联质谱的检测条件中,离子源为电喷雾离子源;
C)串联质谱的检测条件中,电离模式为负离子模式;
D)串联质谱的检测条件中,扫描方式为多反应监测(MRM)或选择反应监测(SIM);
E)串联质谱的检测条件中,雾化帘气压为30~40psi;
F)串联质谱的检测条件中,离子化电压为-3500~-4500V;
G)串联质谱的检测条件中,雾化温度为400~600℃;
H)串联质谱的检测条件中,辅助气压为40~60psi;
I)串联质谱的检测条件中,引入电压(EP)为-5~-10V;
J)串联质谱的检测条件中,碰撞池出口电压(CXP)为-5~-10V。
在一实施例中,液相色谱-串联质谱检测步骤中,串联质谱的检测条件中,检测参数如下:
Figure BDA0003684745400000041
在一实施例中,样品预处理步骤中,溶剂包括但不限于甲醇水溶液。
在一实施例中,样品预处理步骤中,甲醇水溶液中甲醇的体积百分浓度为50~80%,优选为80%。
在一实施例中,提取处理的方法包括超声提取。
在一实施例中,浓缩至干的方法包括冷冻蒸干。
在一实施例中,含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液中,N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的浓度≥1mmol/L,优选为1.5mmol/L。
在一实施例中,含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液中的溶剂包括但不限于乙腈。
在一实施例中,含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液的体积与吡啶的体积之比为(15~50):1,包括但不限于15:1、16:1、17:1、18:1、19:1、20:1、30:1、40:1、50:1。
在一实施例中,待测样品包括但不限于来源于人或动物体的血液、细胞、组织,优选为人的血液。
在一实施例中,待测样品为来源于人或动物体的血清或血浆,具体是从血液中分离得到。
实施例1
本实施例的具体检测方法如下:
1、样品的制备
取有代表性的样品,本实施例具体为来自人的血液,制成待测样品。对于不同时间下抽取的同一人的血样,则合并处理。
2、样品前处理
D-2HG、L-2HG的衍生化反应原理如图5所示。取待测液体50μL,加入2mL离心管中,再加入500μL 80%甲醇水溶液(甲醇水溶液可以使样品中的蛋白变性,并破坏一些细胞的细胞膜,因此,甲醇水溶液是作为提取液,有效地将样品中的目标检测物提取到提取液中),涡旋5min混匀,超声提取30min,放入冷冻蒸干仪浓缩至干(冷冻温度为4℃,时间为溶剂完全挥发为止,约10~60min)。加入245μL浓度为1.5mmol/L的N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯(CAS:29739-88-6)-乙腈溶液,再加入5μL吡啶(吡啶的作用是催化衍生化反应),涡旋混匀,衍生10min后,9500r/min 4℃离心10min,取75μL上清液,加入75μL一级水。涡旋混匀后离心10min,取100μL上清液到内衬管中,装入2mL LC进样瓶,供HPLC-MS/MS测试。加标样品在加入2mL离心管中以后,首先加入适量的待测物质标准溶液(即含有α-KG、L-2HG、D-2HG的溶液),之后处理方法同普通样品。
3、液相条件
液相柱:Waters ACQUITY UPLC BEH C18,规格为100mm*2.1mm,1.7μm粒径;
柱温:40℃;样品盘温度:10℃;
进样量:5μL。
流动相及洗脱程序如表1所示。
表1
时间(min) 5mM乙酸铵水溶液 5mM乙酸铵甲醇溶液
0 80%(v/v) 20%(v/v)
0.5 80%(v/v) 20%(v/v)
6 55%(v/v) 45%(v/v)
7 30%(v/v) 70%(v/v)
8 30%(v/v) 70%(v/v)
8.1 80%(v/v) 20%(v/v)
10 80%(v/v) 20%(v/v)
4、质谱条件:
离子源:电喷雾离子源(ESI源);
电离模式:负离子模式;
监测模式:多反应监测模式(MRM);
雾化帘气压(CUR):30psi;
离子化电压(IS):-4500V;
碰撞室强度(CAD):9;
雾化温度(TEM):600℃;
辅助气压1(GS1):60.0psi;
辅助气压2(GS2):60.0psi;
同时检测目标离子对以及内标离子对Q1/Q3,MRM监测参数包括:各离子对及其对应的驻留时间(Time)、保留时间(RT)、去簇电压(DP)、引入电压(EP)、碰撞电压(CE)和碰撞池出口电压(CXP),MRM监测参数如下;
表2MRM监测参数
Figure BDA0003684745400000061
单位“mesc”即为毫秒。“volts”即为伏特,简写为“V”。
测得样品中三种物质的峰面积以后,带入标准物质曲线,即可换算出样品中α-KG、L-2HG、D-2HG的精确含量。
图1为基于实施例1的表1、表2的参数,获得的检测结果中,其中一个样品(sample9)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图;可见,L-2HG衍生物和D-2HG衍生物的谱图做到了分离,可分别进行精确定量。并且,α-KG的峰形良好,可以精确定量。基于实施例1的表1、表2的参数,共检测了50个样品,结果与图1类似,均能对α-KG、L-2HG、D-2HG分别进行精确定量。
图2为α-KG的标准曲线图,图3为D-2HG衍生物的标准曲线图,图4为L-2HG衍生物的标准曲线图。
我们尝试了一些其他的流动相及洗脱程序(质谱条件不变,MRM监测参数同表2),如表3和表4所示。
表3
时间(min) 甲醇
0 50%(v/v) 50%(v/v)
0.5 50%(v/v) 50%(v/v)
4 20%(v/v) 80%(v/v)
5 20%(v/v) 80%(v/v)
5.1 50%(v/v) 50%(v/v)
6 50%(v/v) 50%(v/v)
表4
Figure BDA0003684745400000062
Figure BDA0003684745400000071
谱图分别如图7和图8所示,
图7为使用表3所示流动相比例得到的其中一个样品(sample5)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图;可见,峰型很差,三个物质均无法进行定量分析。
图8为使用表4所示流动相比例得到的其中一个样品(sample22)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图;可见,α-KG峰型较好,可对α-KG进行定量分析。但L-2HG和D-2HG的谱图没有分离,无法分别进行定量分析。
基于表3、表4的参数,共检测了10个样品,结果与图7、8类似,均无法对L-2HG、D-2HG进行精确定量。
实施例2
本实施例的具体检测方法如下:
1、样品的制备
取有代表性的样品,本实施例具体为细胞,制成待测样品。
2、样品前处理
取待测细胞,称取50mg,加入1.5mL 96孔板中,再加入400μL 60%甲醇水溶液,涡旋10min混匀,超声提取40min,放入冷冻蒸干仪浓缩至干。加入190μL浓度为2mmol/L的N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯(CAS:29739-88-6)-乙腈溶液,再加入10μL吡啶,涡旋混匀,衍生20min后,3000r/min离心20min,取60μL上清液,加入60μL一级水。涡旋混匀后离心10min,取100μL上清液到300μL 96孔板中,供HPLC-MS/MS测试。加标样品在加入1.5mL96孔板中以后,首先加入适量的待测物质标准溶液(即含有α-KG、L-2HG、D-2HG的溶液),之后处理方法同普通样品。
3、液相条件
液相柱:Waters ACQUITY UPLC BEH C18,规格为100mm*2.1mm,1.7μm粒径;
柱温:30℃;样品盘温度:4℃;
进样量:2μL。
流动相及洗脱程序如表5所示。
表5
时间(min) 10mM甲酸铵水溶液 10mM甲酸铵甲醇溶液
0 80%(v/v) 20%(v/v)
0.5 80%(v/v) 20%(v/v)
6 55%(v/v) 45%(v/v)
7 30%(v/v) 70%(v/v)
8 30%(v/v) 70%(v/v)
8.1 80%(v/v) 20%(v/v)
10 80%(v/v) 20%(v/v)
4、质谱条件:
离子源:电喷雾离子源(ESI源);
电离模式:负离子模式;
监测模式:多反应监测模式(MRM);
雾化帘气压(CUR):30psi;
离子化电压(IS):-4500V;
碰撞室强度(CAD):8;
雾化温度(TEM):600℃;
辅助气压1(GS1):60.0psi;
辅助气压2(GS2):60.0psi。
同时检测目标离子对以及内标离子对Q1/Q3,MRM监测参数包括:各离子对及其对应的驻留时间(Time)、保留时间(RT)、去簇电压(DP)、引入电压(EP)、碰撞电压(CE)和碰撞池出口电压(CXP),MRM监测参数如下。
表6 MRM监测参数
Figure BDA0003684745400000081
单位“mesc”即为毫秒。“volts”即为伏特,简写为“V”。
测得样品中三种物质的峰面积以后,带入标准物质曲线,即可换算出样品中α-KG、L-2HG、D-2HG的精确含量。
图9为实施例2中,其中一个样品(sample74)的α-KG和2HG衍生物的LC-MS图。可见,L-2HG衍生物和D-2HG衍生物的谱图做到了分离,可分别进行精确定量。α-KG的峰形良好,也可以精确定量。
基于实施例2的表5、表6的参数,共检测了30个样品,结果与图9类似,均能对α-KG、L-2HG、D-2HG分别进行精确定量。
对比例1
本实施例的具体检测方法如下:
1、样品的制备
取有代表性的样品,本对比例具体为血液,制成待测样品。
2、样品前处理
取待测液体50μL,加入2mL离心管中,再加入200μL 80%甲醇水溶液,涡旋5min混匀,超声提取30min,离心10min,取100μL上清液到内衬管中,装入2mL LC进样瓶,供HPLC-MS/MS测试。加标样品在加入2mL离心管中以后,首先加入适量的待测物质标准溶液(即含有α-KG、L-2HG、D-2HG的溶液),之后处理方法同普通样品。
3、液相条件
液相柱:Waters ACQUITY UPLC BEH C18,规格为100mm*2.1mm,1.7μm粒径;
柱温:40℃;样品盘温度:10℃;
进样量:5μL。
流动相及洗脱程序如表7所示。
表7
时间(min) 甲醇
0 50%(v/v) 50%(v/v)
0.5 50%(v/v) 50%(v/v)
4 20%(v/v) 80%(v/v)
5 20%(v/v) 80%(v/v)
5.1 50%(v/v) 50%(v/v)
6 50%(v/v) 50%(v/v)
4、质谱条件:
离子源:电喷雾离子源(ESI源);
电离模式:负离子模式;
监测模式:多反应监测模式(MRM);
雾化帘气压(CUR):30psi;
离子化电压(IS):-4500V;
碰撞室强度(CAD):9;
雾化温度(TEM):600℃;
辅助气压1(GS1):60.0psi;
辅助气压2(GS2):60.0psi。
同时检测目标离子对以及内标离子对Q1/Q3,MRM监测参数包括:各离子对及其对应的驻留时间(Time)、保留时间(RT)、去簇电压(DP)、引入电压(EP)、碰撞电压(CE)和碰撞池出口电压(CXP),MRM监测参数如下;
表8 MRM监测参数
Figure BDA0003684745400000091
单位“mesc”即为毫秒。“volts”即为伏特,简写为“V”。
测得样品中物质的峰面积以后,带入标准物质曲线,只能换算出样品中L-2HG、D-2HG的总含量。
图6为对比例1中,其中一个样品(sample15)中L-2HG和D-2HG的LC-MS图;可见,L-2HG和D-2HG在谱图上仅显示为同一个色谱峰,无法进行分离,定量时只能确定总含量,而无法确定每一个手性分子的含量。同时因为没有整合α-KG,无法对α-KG进行定量。
基于对比例例1的表7、表8的参数,共检测了20个样品,结果与图6类似,均无法对α-KG、L-2HG、D-2HG分别进行精确定量。
在一实施例中,本发明成功提供一种精确检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法,可同时检测三种化合物,对α-KG、L-2HG、D-2HG的相关医学疾病的研究有很高的价值和意义。
以上应用了具体个例对本发明进行阐述,只是用于帮助理解本发明,并不用以限制本发明。对于本发明所属技术领域的技术人员,依据本发明的思想,还可以做出若干简单推演、变形或替换。

Claims (13)

1.一种检测α-酮戊二酸和手性2-羟基戊二酸的方法,其特征在于,包括:
样品预处理步骤,包括将待测样品与溶剂混合,提取处理,然后浓缩至干,然后加入含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液以及吡啶,衍生反应后,固液分离,取第一上清液,加入水,再次混匀,固液分离,获得第二上清液;
液相色谱-串联质谱检测步骤,包括采用液相色谱-串联质谱检测所述第二上清液,获得检测结果;
计算步骤,根据所述检测结果,计算得到待测样品中α-酮戊二酸、D-2-羟基戊二酸、L-2-羟基戊二酸的含量;
所述液相色谱-串联质谱检测步骤中,液相色谱的检测条件中,色谱柱为C18色谱柱,流动相由流动相A和流动相B组成,流动相A、B选自如下组合中的任意一种:
1)流动相A为含有乙酸铵的水溶液,流动相B为含有乙酸铵的甲醇溶液;
2)流动相A为含有甲酸铵的水溶液,流动相B为含有甲酸铵的甲醇溶液;
所述液相色谱的洗脱程序如下:
时间(min) A(%(v/v)) B(%(v/v)) 0 80 20 0.5 80 20 6 55 45 7 30 70 8 30 70 8.1 80 20 10 80 20
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述含有乙酸铵的水溶液中,乙酸铵的浓度为5~10mmol/L;
所述含有乙酸铵的甲醇溶液中,乙酸铵的浓度为5~10mmol/L;
所述含有甲酸铵的水溶液中,甲酸铵的浓度为5~10mmol/L;
所述含有甲酸铵的甲醇溶液中,甲酸铵的浓度为5~10mmol/L。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,液相色谱-串联质谱检测步骤中,所述液相色谱为高效液相色谱。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述C18色谱柱为Waters ACQUITY UPLC BEHC18色谱柱,规格为100mm*2.1mm,1.7μm粒径。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述液相色谱的检测条件中,色谱柱温度为30~50℃。
6.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述液相色谱的检测条件中,色谱柱温度为38~42℃。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述液相色谱的检测条件中,色谱柱温度为40℃。
8.如权利要求1所述的方法,其特征在于,液相色谱-串联质谱检测步骤中,还包括如下A)至J)中的至少一项:
A)所述串联质谱为三重四级杆质谱;
B)所述串联质谱的检测条件中,离子源为电喷雾离子源;
C)所述串联质谱的检测条件中,电离模式为负离子模式;
D)所述串联质谱的检测条件中,扫描方式为多反应监测或选择反应监测;
E)所述串联质谱的检测条件中,雾化帘气压为30~40psi;
F)所述串联质谱的检测条件中,离子化电压为-3500~-4500V;
G)所述串联质谱的检测条件中,雾化温度为400~600℃;
H)所述串联质谱的检测条件中,辅助气压为40~60psi;
I)所述串联质谱的检测条件中,引入电压为-5~-10V;
J)所述串联质谱的检测条件中,碰撞池出口电压为-5~-10V。
9.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述液相色谱-串联质谱检测步骤中,所述串联质谱的检测条件中,检测参数如下:
Q1 Mass(Da) Q3 Mass(Da) 驻留时间(msec) ID 定量/定性 去簇电压(volts) 引入电压(volts) 碰撞电压(volts) 碰撞池出口电压(volts) 145.1 101 50 α-KG 01 定量 -55 -10 -11 -10 145.1 57.1 50 α-KG 02 定性 -55 -10 -19 -10 448.2 318.1 50 D-2HG 01 定量 -100 -10 -20 -10 448.2 154.9 50 D-2HG 02 定性 -100 -10 -40 -10 448.2 318.1 50 L-2HG 01 定量 -100 -10 -20 -10 448.2 154.9 50 L-2HG 02 定性 -100 -10 -40 -10
10.如权利要求1所述的方法,其特征在于,样品预处理步骤中,还包括如下A)至H)中的至少一项:
A)所述溶剂包括甲醇水溶液;
B)样品预处理步骤中,所述甲醇水溶液中甲醇的体积百分浓度为50~80%;
C)提取处理的方法包括超声提取;
D)浓缩至干的方法包括冷冻蒸干;
E)所述含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液中,所述N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的浓度≥1 mmol/L;
F)所述含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液中的溶剂包括乙腈;
G)所述含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液的体积与所述吡啶的体积之比为(15~50):1;
H)所述待测样品包括来源于人或动物体的血液、细胞、组织。
11.如权利要求10所述的方法,其特征在于,样品预处理步骤中,所述甲醇水溶液中甲醇的体积百分浓度为80%。
12.如权利要求10所述的方法,其特征在于,所述含有N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的溶液中,所述N-对甲苯磺酰基-L-苯丙氨酰氯的浓度为1.5mmol/L。
13.如权利要求10所述的方法,其特征在于,所述待测样品包括人的血液。
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