CN115040557A - 一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法 - Google Patents
一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供了一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法,属于植物黄酮提取技术领域。本发明通过特定的酶解、灭酶、超声、离心等步骤,克服了现有技术中提取方法得率较低、活性成分损失等问题。本发明提供的中亚苦蒿总黄酮提取方法得到的总黄酮得率可达4.75%,提取得到的总黄酮中含有41种有效化合物,能够有效抑制肿瘤细胞生长、促进肿瘤细胞凋亡。
Description
技术领域
本发明涉及植物黄酮提取技术领域,尤其涉及一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法。
背景技术
中亚苦蒿,属桔梗目,菊科,俗称艾草。它是一种重要的多年生药用植物,在我国主要分布在新疆、四川、云南等地。此外,中亚苦蒿中含有丰富的次生代谢产物,包括黄酮类、生物碱、酚类、萜类及衍生物等。具有多种药理活性(例如抗菌、抗炎、抗病毒、保肝、降血糖和心血管疾病等),它还显示出广泛的抗氧化和抗癌作用。
生物总黄酮也称黄酮类化合物,是一种天然的植物成分。已从植物中鉴定和分离出8000多种,其结构通过两个酚羟基的苯环(A环和B环),以三碳键相互连接所形成的一系列(C6-C3-C6)化合物。依据结构多样性可分为6类黄酮类、异黄酮类、萜类、生物碱类、花青素类。越来越多的研究报道,黄酮类化合物在肿瘤的治疗与预防方面具有显著作用。这归因于它们多样的结构和广泛的活性(如抗炎、抗氧化、抗高血脂等)。目前,黄酮类化合物提取方法主要包括加热回流提取法、有机溶剂萃取法、微波辅助提法、超声辅助法、酶解法等。
发明人日前研究发现,传统提取方法工艺设备虽然比较简单,但提取的时间长、效率不高,且易在高温下破坏热不稳定成分使其降解,并且由于中亚苦蒿中总黄酮的含量较低且及其复杂,不能实现较高得率,提取出的总黄酮活性较低。
发明内容
本发明的目的在于提供一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法,用以解决现有技术中提取方法得率较低、活性成分损失等问题。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法,包括如下步骤:
将中亚苦蒿粉末与乙醇水溶液、复合酶混合,进行酶解,得到酶解液;
将酶解液依次进行灭酶、超声、离心,所得上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
优选的,所述中亚苦蒿粉末的粒径为90以下μm。
优选的,所述中亚苦蒿粉末与乙醇水溶液的质量体积比为1g:20~30mL;
所述乙醇水溶液的质量体积浓度为80~100%。
优选的,所述复合酶的添加量为中亚苦蒿粉末质量的1.5~2.5%。
优选的,所述复合酶的种类为纤维素酶和果胶酶;
所述纤维素酶和果胶酶的添加比例为1:0.5~0.7。
优选的,所述纤维素酶的酶活为40~60U/mg,所述果胶酶的酶活为400~600U/mg。
优选的,所述酶解的pH为3~4,所述酶解的温度为40~50℃,所述酶解的时间为100~110min。
优选的,所述灭酶的温度为80~120℃,所述灭酶的时间为3~8min。
优选的,所述超声的功率为50~150W,所述超声的温度为20~40℃,所述超声的时间为10~30min。
优选的,所述离心的转速为10000~14000r/min,所述离心的时间为5~15min。
本发明的技术效果和优点:
本发明提供的中亚苦蒿总黄酮提取方法得到的总黄酮得率可达4.75%,提取得到的总黄酮生物活性更高,其中含有41种有效化合物,能够有效抑制肿瘤细胞生长、促进肿瘤细胞凋亡。
附图说明
图1为标准曲线;
图2为不同超声温度组比较结果图;
图3为不同纤维素酶和果胶酶比例组比较结果图;
图4为不同复合酶用量组比较结果图;
图5为不同酶解pH组比较结果图;
图6为不同乙醇体积百分数组比较结果图;
图7为不同料液比组比较结果图;
图8为不同酶解温度组比较结果图;
图9为不同酶解时间组比较结果图;
图10为中亚苦蒿总黄酮的离子流色谱图;
图11为总黄酮中各化合物结构式;
图12为不同浓度总黄酮处理H8、HeLa和SiHa细胞24h后的细胞活力图;
图13为不同浓度总黄酮处理HeLa细胞24h后的细胞形态图;
图14为不同浓度总黄酮处理HeLa细胞24h后细胞凋亡图A;
图15为不同浓度总黄酮处理HeLa细胞24h后细胞凋亡图B。
具体实施方式
本发明提供了一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法,包括如下步骤:
将中亚苦蒿粉末与乙醇水溶液、复合酶混合,进行酶解,得到酶解液;
将酶解液依次进行灭酶、超声、离心,所得上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
在本发明中,中亚苦蒿粉末优选由中亚苦蒿常温干燥后粉碎制得,所述中亚苦蒿粉末的粒径优选为90μm以下,进一步优选为70μm以下,以过筛目数计算粒径优选为200目以下,所述粉碎优选采用高速万能粉碎机进行。
在本发明中,所述乙醇水溶液的体积浓度优选为80~100%,进一步优选为85~95%,所述中亚苦蒿粉末与乙醇水溶液的质量体积比优选为1g:20~30mL,进一步优选为1g:24~28mL;所述复合酶的种类优选为纤维素酶和果胶酶,所述纤维素酶和果胶酶的添加比例优选为1:0.5~0.7,进一步优选为1:0.65~0.68,所述纤维素酶的酶活优选为40~60U/mg,进一步优选为45~55U/mg,所述果胶酶的酶活为400~600U/mg,进一步优选为450~550U/mg,还优选为480~520U/mg;所述复合酶的添加量优选为中亚苦蒿粉末质量的1.5~2.5%,进一步优选为中亚苦蒿粉末质量的1.8~2.2%;本发明所述酶解的pH优选为3~4,进一步优选为3.2~3.6,所述酶解的温度优选为40~50℃,进一步优选为43~47℃,所述酶解的时间优选为100~110min,进一步优选为103~107min;本发明在酶解过程中优选每20~40min混匀一次。
在本发明中,酶解后进行灭酶,所述灭酶的温度优选为80~120℃,进一步优选为90~110℃,所述灭酶的时间优选为3~8min,进一步优选为5~7min,所述灭酶优选采用水浴法进行。
在本发明中,灭酶后进行超声,所述超声的功率优选为50~150W,进一步优选为80~120W,所述超声的温度优选为20~40℃,进一步优选为25~35℃,所述超声的时间优选为10~30min,进一步优选为15~25min;所述超声之后进行离心,所述离心的转速优选为10000~14000r/min,进一步优选为11000~13000r/min,所述离心的时间优选为5~15min,进一步优选为8~12min,离心所得上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入30mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在45℃、pH3.5条件下进行水浴酶解105min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
实施例2
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取4.0g中亚苦蒿粉末,加入120mL的无水乙醇,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2.2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在50℃、pH4.0条件下进行水浴酶解110min,期间每30min混匀一次,然后120℃水浴灭酶8min,在120W、30℃条件下对样品进行超声处理30min,最后对超声处理的样品溶液以14000r/min的转速离心15min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
实施例3
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取1.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入20mL浓度为80%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入1.8%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在40℃、pH3.0条件下进行水浴酶解100min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶3min,在50W、20℃条件下对样品进行超声处理10min,最后对超声处理的样品溶液以10000r/min的转速离心5min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例1
其他步骤参数与实施例1保持一致,将超声温度替换为10℃。
对比例2
其他步骤参数与实施例1保持一致,将超声温度替换为20℃。
对比例3
其他步骤参数与实施例1保持一致,将超声温度替换为40℃。
对比例4
其他步骤参数与实施例1保持一致,将超声温度替换为50℃。
对比例5
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入20mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入1%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=1:3,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在50℃、pH4.0条件下进行水浴酶解90min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例6
其他步骤参数与对比例5保持一致,将纤维素酶和果胶酶的比例替换为2:3。
对比例7
其他步骤参数与对比例5保持一致,将纤维素酶和果胶酶的比例替换为1:1。
对比例8
其他步骤参数与对比例5保持一致,将纤维素酶和果胶酶的比例替换为3:2。
对比例9
其他步骤参数与对比例5保持一致,将纤维素酶和果胶酶的比例替换为3:1。
对比例10
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入20mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入0.5%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在50℃、pH4.0条件下进行水浴酶解90min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例11
其他步骤参数与对比例10保持一致,将复合酶用量替换为中亚苦蒿粉末的1%。
对比例12
其他步骤参数与对比例10保持一致,将复合酶用量替换为中亚苦蒿粉末的1.5%。
对比例13
其他步骤参数与对比例10保持一致,将复合酶用量替换为中亚苦蒿粉末的2%。
对比例14
其他步骤参数与对比例10保持一致,将复合酶用量替换为中亚苦蒿粉末的2.5%。
对比例15
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入20mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在50℃、pH3.0条件下进行水浴酶解90min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例16
其他步骤参数与对比例15保持一致,将酶解pH替换为3.5。
对比例17
其他步骤参数与对比例15保持一致,将酶解pH替换为4.0。
对比例18
其他步骤参数与对比例15保持一致,将酶解pH替换为4.5。
对比例19
其他步骤参数与对比例15保持一致,将酶解pH替换为5.0。
对比例20
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入20mL浓度为10%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在50℃、pH3.5条件下进行水浴酶解90min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例21
其他步骤参数与对比例20保持一致,将乙醇的体积百分数替换为30%。
对比例22
其他步骤参数与对比例20保持一致,将乙醇的体积百分数替换为50%。
对比例23
其他步骤参数与对比例20保持一致,将乙醇的体积百分数替换为70%。
对比例24
其他步骤参数与对比例20保持一致,将乙醇的体积百分数替换为85%。
对比例25
其他步骤参数与对比例20保持一致,将乙醇的体积百分数替换为100%。
对比例26
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入20mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在50℃、pH3.5条件下进行水浴酶解90min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例27
其他步骤参数与对比例26保持一致,将中亚苦蒿粉末与乙醇的料液比替换为1g:12mL。
对比例28
其他步骤参数与对比例26保持一致,将中亚苦蒿粉末与乙醇的料液比替换为1g:15mL。
对比例29
其他步骤参数与对比例26保持一致,将中亚苦蒿粉末与乙醇的料液比替换为1g:18mL。
对比例30
其他步骤参数与对比例26保持一致,将中亚苦蒿粉末与乙醇的料液比替换为1g:20mL。
对比例31
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入30mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在35℃、pH3.5条件下进行水浴酶解90min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例32
其他步骤参数与对比例31保持一致,将酶解温度替换为40℃。
对比例33
其他步骤参数与对比例31保持一致,将酶解温度替换为45℃。
对比例34
其他步骤参数与对比例31保持一致,将酶解温度替换为50℃。
对比例35
其他步骤参数与对比例31保持一致,将酶解温度替换为55℃。
对比例36
将中亚苦蒿常温干燥后,采用高速万能粉碎机粉碎为200目,称取2.0g中亚苦蒿粉末置于50mL离心管中,加入30mL浓度为85%的乙醇溶液,根据中亚苦蒿粉末的质量比例加入2%的复合酶(纤维素酶和果胶酶=3:2,纤维素酶的酶活为50U/mg,果胶酶的酶活为500U/mg),在45℃、pH3.5条件下进行水浴酶解60min,期间每30min混匀一次,然后100℃水浴灭酶5min,在100W、30℃条件下对样品进行超声处理20min,最后对超声处理的样品溶液以12000r/min的转速离心10min,得到的上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
对比例37
其他步骤参数与对比例36保持一致,将酶解时间替换为75min。
对比例38
其他步骤参数与对比例36保持一致,将酶解时间替换为90min。
对比例39
其他步骤参数与对比例36保持一致,将酶解时间替换为105min。
对比例40
其他步骤参数与对比例36保持一致,将酶解时间替换为120min。
实验例1检测总黄酮得率
1.1标准曲线绘制
以槲皮素作为黄酮共轭体系结构的代表,进行标准曲线绘制,方法如下:
精密称取槲皮素5.0mg,用甲醇定容至25mL,得到质量浓度为0.2mg/mL标准溶液,置于冰箱中,4℃保存待用。精密量取槲皮素对照溶液0.1mL、0.2mL、0.3mL、0.4mL、0.5mL,分别置于10mL容量瓶中,采用三氯化铝-乙酸钾显色法,各加入0.1mol/mLAlCl3溶液2mL,放置6min,再加入1mol/mL KAc溶液3mL,最后用甲醇溶液定容至刻度后混匀,静置15min。以不含槲皮素的相应溶液作为空白对照,吸取100μL,测定溶液在415nm处吸光度。以吸光度(y)为纵坐标、槲皮素浓度(x)为横坐标绘制标准曲线,如图1所示。所得中亚苦蒿中总黄酮的线性回归方程为:y=9.7675x-0.0164,线性相关系数R2=0.9974,由数据分析得出标准品具有良好的线性关系。
1.2总黄酮得率检测
将实施例1、对比例1~40得到的上清液转移到5mL的新的离心管中,并通过三氯化铝-乙酸钾法在415nm下检测总黄酮提取液的吸光度值(A),带入标准曲线回归方程计算总黄酮浓度,再换算成黄酮提取量以及提取率:
总黄酮提取量(mg/g)=C×V×N/M
C:测得总黄酮的浓度(mg/mL);
V:提取液体积(mL);
N:稀释倍数;
M:原料质量(g)。
按照单一变量的不同,以实施例1、对比例1~4为一组;对比例5~9为一组;对比例10~14为一组;对比例15~19为一组;对比例20~25为一组;对比例26~30为一组;对比例31~35为一组;对比例36~40为一组,将其得率进行对比,绘制为折线图,结果如图2~9所示(为方便比较,横坐标按照对应单一变量大小排序)。
由图2可知,采用本发明技术方案参数得到的总黄酮得率达最高,可达到4.75%。其中,超声温度的提高对中亚苦蒿总黄酮提取有一定的促进作用。随着超声温度的延长,中亚苦蒿总黄酮提取率先增加后减小,这可能因为温度升高加快了分子间的运动,总黄酮类物质在提取溶剂中的扩散、溶解能力增强。其次,升高超声温度,能更好地破坏细胞壁,使得细胞内容物总黄酮溶出增加,随之总黄酮得率逐渐提高。然而,温度过高时,加剧了提取溶剂的挥发,使乙醇浓度降低,从而影响提取效果。另外,过高的温度导致总黄酮等物质的结构被破坏,同时加快了黄酮类物质的分解速率,使得总黄酮得率减少。
由图3可知,采用本发明提供的纤维素酶和果胶酶的配比,总黄酮得率最高,纤维素酶添加比例继续增加时,总黄酮得率呈下降趋势。可能是随着纤维素酶的比例增加,能更好地破坏中亚苦蒿的细胞壁及细胞间质,使得细胞中的总黄酮等活性成分更好地溶出,但随着纤维素酶比例的增加,底物浓度不能对复合酶达到饱和,复合酶的作用受到抑制,导致中亚苦蒿总黄酮得率并没有增加。
由图4可知,采用本发明提供的复合酶用量,总黄酮得率最高,复合酶用量进一步提高,总黄酮得率呈现下降趋势。可能是随着复合酶用量的增加能更好地破坏细胞壁,有助于总黄酮的溶出,总黄酮得率逐渐增加;随着复合酶的用量的进一步增加,底物浓度不能使酶达到饱和,导致了酶的作用受到抑制,总黄酮得率不再增加。
由图5可知,采用本发明提供的酶解pH,黄酮得率最高,pH为3.5时,纤维素酶和果胶酶的复合酶活力为最佳值,使得细胞壁及细胞间质破坏率高,总黄酮等活性成分能更好地溶出,总黄酮得率相对较大。
由图6可知,采用本发明提供的乙醇体积分数,黄酮得率最高,一般较低的乙醇适用于极性黄酮类化合物的提取,较高浓度的乙醇适用于非极性黄酮类化合物的提取。但在本发明中亚苦蒿总黄酮提取过程中,85%的乙醇实现了最高提取率,可能是因为总黄酮类物质溶出与提取溶剂的极性有关,随着乙醇浓度的升高,中亚苦蒿总黄酮与乙醇的极性逐渐接近,总黄酮类物质溶出较多,同时总黄酮与溶剂间的浓度梯度变大使得总黄酮的溶出更加顺利。当乙醇浓度超过85%后,再增加溶剂用量并未实现提升总黄酮得率的效果。相反,总黄酮的得率呈现下降趋势,可能是因为此时总黄酮已溶出完全,而其他杂质溶出较多,影响提取得率。
由图7可知,采用本发明提供的料液比,黄酮得率最高,料液比过低可能由于物料难以完全浸入溶剂中造成提取不完全。本发明提供的溶剂量能够满足总黄酮溶出需求,使得酶与底物反应更充分,酶解效果较好,总黄酮得率逐渐增加,中亚苦蒿中总黄酮得率达最大。
由图8可知,采用本发明提供的酶解温度,黄酮得率最高,可能由于此时复合酶活力较高,使得酶与底物反应速率较高,总黄酮得率较大。
由图9可知,采用本发明提供的酶解时间,黄酮得率最高,可能是随着酶解时间的增加,酶活力得到充分的利用,酶解反应更完全,总黄酮溶出增加,总黄酮得率逐渐增加;当酶解时间过长,不但不会提高提取效率,可能还会导致黄酮类物质遭到破坏。
实验例2中亚苦蒿总黄酮LC-MS分析
2.1代谢物提取
取实施例1所得中亚苦蒿总黄酮,涡旋30s,取200μL样本氮吹干燥;加入200μL提取液B(50%甲醇含0.1%甲酸)复溶;涡旋30s后冰水浴超声15min,4℃,12000rpm(离心力13800(×g),半径8.6cm)离心15min;上清过0.22μm滤膜后,小心地取于2mL进样瓶;上机检测。
2.2色谱仪条件
使用的色谱柱为购自Waters的UPLC BEH C18色谱柱(1.7μm,2.1*150mm)。柱温箱温度设为40℃,自动进样器温度设为8℃,进样体积为2μL。液相色谱流动相及色谱梯度。
2.3质谱仪条件
数据采集时,以多反应监测(MRM)模式进行质谱分析。离子源参数如下:IonSprayVoltage:+5000/-4500V,Curtain Gas:35psi,Temperature:500℃,Ion Source Gas 1:55psi,Ion Source Gas 2:60psi。
2.4检测结果
中亚苦蒿总黄酮的离子流色谱图如图10所示,各化合物结构式如图11所示。
总黄酮中化合物的MS参数如表1所示:
表1总黄酮中化合物MS参数
实验例3中亚苦蒿总黄酮活性检测
以实施例1所得中亚苦蒿总黄酮作为样品进行以下实验。
3.1MTT检测细胞活力
选择对数期的HeLa、SiHa和H8细胞(购自ATCC细胞库)以5×103个/mL接种96孔板,用不同浓度(100~800μg/mL)的总黄酮处理细胞。设置Control(空白)、0.6%DMSO(阴性对照)及Cisplatin(阳性对照),每组6个重复,孵育24h后,离心弃废液,各加入100μL MTT(0.5mg/mL)37℃避光孵育4h。离心去上清,使用150μL DMSO溶解后,检测490nm各孔OD值。按以下公式计算细胞存活率:细胞生存率(%)=(实验组OD/Control组OD)×100%。
结果如图12所示,当用100~800μg/mL的提取物处理时,总黄酮能够以剂量依赖性方式抑制HeLa,SiHa和H8细胞的生长。24h半抑制浓度(IC50)值分别为396.0±54.2μg/mL和449.0±54.8μg/mL。
3.2细胞凋亡
HeLa细胞以2.5×105个/皿接种于60mm培养皿,通过不同浓度总黄酮处理细胞24h后,通过倒置显微镜观察细胞的形态变化,结果如图13所示,并收集消化后的各组细胞,以1200r/min离心7min,PBS(4~5mL)冲洗2次,弃上清,向每组细胞加入100μL结合缓冲液(1×binding buffer)重悬细胞,加入2.5μLAnnenxin V-FITC和5μL PI混合摇匀后冰浴避光10min,300μL1×binding buffer重悬细胞,FASC检测,数据采用FlowJo7.6软件进行分析,结果如图14~15所示。
由图12可知,24h后HeLa细胞显示出小而圆的形态,细胞数量显著减少。
由图14~15可知,低浓度和高浓度的中亚苦蒿总黄酮都抑制了HeLa细胞的增殖。与对照组相比,总黄酮处理组凋亡细胞的百分比显著增加。
由以上实施例可知,本发明提供了一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法,与其他方法相比得到的总黄酮得率最高,可达4.75%,提取得到的总黄酮中含有41种有效化合物,能够有效抑制肿瘤细胞生长、促进肿瘤细胞凋亡。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (10)
1.一种中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,包括如下步骤:
将中亚苦蒿粉末与乙醇水溶液、复合酶混合,进行酶解,得到酶解液;
将酶解液依次进行灭酶、超声、离心,所得上清液即为中亚苦蒿总黄酮。
2.根据权利要求1所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述中亚苦蒿粉末的粒径为90μm以下。
3.根据权利要求2所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述中亚苦蒿粉末与乙醇水溶液的质量体积比为1g:20~30mL;
所述乙醇水溶液的体积浓度为80~100%。
4.根据权利要求3所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述复合酶的添加量为中亚苦蒿粉末质量的1.5~2.5%。
5.根据权利要求4所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述复合酶的种类为纤维素酶和果胶酶;
所述纤维素酶和果胶酶的添加比例为1:0.5~0.7。
6.根据权利要求5所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述纤维素酶的酶活为40~60U/mg,所述果胶酶的酶活为400~600U/mg。
7.根据权利要求6所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述酶解的pH为3~4,所述酶解的温度为40~50℃,所述酶解的时间为100~110min。
8.根据权利要求7所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述灭酶的温度为80~120℃,所述灭酶的时间为3~8min。
9.根据权利要求8所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述超声的功率为50~150W,所述超声的温度为20~40℃,所述超声的时间为10~30min。
10.根据权利要求9所述的中亚苦蒿总黄酮的提取方法,其特征在于,所述离心的转速为10000~14000r/min,所述离心的时间为5~15min。
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