CN114787363A - 对真菌进行遗传工程化以调节色胺表达 - Google Patents

对真菌进行遗传工程化以调节色胺表达 Download PDF

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Abstract

本文提供了用于调节真菌或其它生物体中的裸盖菇素生物合成途径的方法。还提供了通过所提供的方法产生的具有诱导的和/或增加的裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素表达的经遗传修饰的真菌和生物体以及裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素组合物。

Description

对真菌进行遗传工程化以调节色胺表达
相关申请的交叉引用
本申请要求2019年10月1日提交的美国临时申请号62/909,159的权益，所述临时申请以引用的方式整体并入本文。
背景技术
色胺衍生的物质，如真菌中的裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素是具有已知的致幻和其它药用效果的天然药物。药理学作用由经修饰的色胺引起，其中裸盖菇素是这些真菌的主要化学成分。这种前药样天然产物在口服摄入后变得迅速去磷酸化，从而产生实际精神药物脱磷酸裸盖菇素，它也由真菌少量产生。色胺衍生的物质引起了制药业的关注，因为临床研究显示在治疗晚期癌症患者的存在性焦虑和尼古丁成瘾方面有积极趋势。最近，正在进行研究以探讨裸盖菇素用于治疗抑郁症的用途。具有经修饰的治疗组分谱的真菌可用于生产色胺衍生的物质和/或还可用于生产提供所需药物谱的经遗传修饰的真菌。
发明内容
本文提供了一种包含遗传修饰的经遗传修饰的生物体或其细胞或组织，所述遗传修饰导致选自以下的化合物：
Figure BDA0003676072500000011
Figure BDA0003676072500000021
它们的衍生物或类似物的产生与没有所述遗传修饰的可比对照生物体中所述相同化合物的产生相比增加。本文还提供了一种包含核酸内切酶介导的遗传修饰的经遗传修饰的生物体，所述遗传修饰导致化合物
Figure BDA0003676072500000022
其衍生物或类似物的量与没有所述遗传修饰的可比对照生物体中所述相同化合物的量相比增加。在一些情况下，所述生物体是真菌、酵母、细菌、动物或昆虫。在本文所述的实施方案中，所述式I化合物是二甲基色胺(DMT)，所述式II化合物是裸盖菇素，所述式III化合物是脱磷酸裸盖菇素，并且所述式IV化合物是色胺。
本文提供了一种用于增加生物体中
Figure BDA0003676072500000023
DMT)、
Figure BDA0003676072500000024
(式III，脱磷酸裸盖菇素)或它们的衍生物或类似物的产生的方法，所述方法包括向所述生物体引入遗传修饰，其中所述遗传修饰导致与没有所述修饰的可比对照生物体相比，所述相同化合物的产生增加。本文提供了一种用于增加生物体中
Figure BDA0003676072500000025
(式I，DMT)、
Figure BDA0003676072500000026
(式II，裸盖菇素)、
Figure BDA0003676072500000031
(式III，脱磷酸裸盖菇素)、
Figure BDA0003676072500000032
(式IV，色胺)或它们的衍生物或类似物的产生的方法，所述方法包括引入对所述生物体的遗传修饰，其中所述遗传修饰导致与没有所述修饰的可比对照生物体相比，所述相同化合物的产生增加，其中所述生物体是真菌，并且其中所述真菌来自担子菌门。
在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的生物体是植物。在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的生物体是细菌。在一些情况下，细菌是农杆菌。在一些情况下，本文提供的经遗传修饰的生物体是真菌。在一些情况下，所述真菌是担子菌门真菌。在一些情况下，所述担子菌门真菌可选自由以下组成的组：裸盖菇属、锥盖伞属、裸伞属、斑褶菇属、光柄菇属和球盖菇属。在一些情况下，真菌是暗蓝斑褶菇。在一些情况下，真菌是古巴斑褶菇。在一些情况下，真菌是白灵侧耳。
在一个方面，本文所述的经遗传修饰的生物体包含遗传修饰，所述遗传修饰是基因或基因的启动子或增强子中或邻近的改变，并且其中所述基因编码非PLP依赖性磷脂酰丝氨酸脱羧酶、色氨酸脱羧酶(TDC)、5-甲基硫代核糖家族小分子激酶、4-羟色胺激酶、I类甲基转移酶、易化子型转运蛋白PsiT1或易化子型转运蛋白PsiT2。
在一个方面，本文所述的生物体中的遗传修饰导致以下至少一者：与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中(a)色氨酸脱羧增加，(b)色胺4-羟基化增加，(c)4-羟色胺O-磷酸化增加，以及(d)通过连续N-甲基化的裸盖菇素产生增加且脱磷酸裸盖菇素中间体的表达降低。在一些情况下，遗传修饰导致与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中(i)色氨酸脱羧酶基因、裸盖菇素相关的羟化酶基因、裸盖菇素相关的N-甲基转移酶基因或裸盖菇素相关的磷酸转移酶基因的表达上调；(ii)非裸盖菇素色胺的合成减少；或(iii)色氨酸的产生增加。
在一个方面，遗传修饰可位于目标基因的启动子或增强子区域中，或与目标基因相关。在一些情况下，所述遗传修饰导致基因的表达上调。在一个方面，本文所述的目标基因编码非PLP性磷脂酰丝氨酸脱羧酶、色氨酸脱羧酶(TDC)、5-甲基硫代核糖家族小分子激酶、4-羟色胺激酶或I类甲基转移酶。一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:1的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:2的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:3的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因编码I类甲基转移酶。在一些情况下，I类甲基转移酶包含罗斯曼折叠(Rossmann-fold)。在一些情况下，I类甲基转移酶可以是去甲芽孢杆菌素(norbaeocystin)甲基转移酶。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:4的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:5的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:6的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:7的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:8的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:9的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:10的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:11的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:12的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:13的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。在一些情况下，本文所述的目标基因包含与SEQ ID NO:14的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
在一些情况下，基因可以是PsiD基因、PsiM基因、PsiH基因、PsiK基因、PsiR基因、PsiT1基因或PsiT2基因，或它们的任何部分。在一些情况下，与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，在经遗传修饰的生物体中基因的表达被上调至少1.1倍、至少1.2倍、至少1.5倍、至少2倍、至少2.5倍、至少3倍、至少3.5倍、至少4倍或至少5倍。在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的生物体中的遗传修饰包括选自由以下组成的组的基因的改变：吲哚胺2,3-双加氧酶(IDO)、色氨酸2,3-双加氧酶(TDO)和TrpM。在一些情况下，遗传修饰可位于所述基因的编码区中。在一些情况下，遗传修饰包括选自由以下组成的组的基因的改变：磷酸-2-脱氢-3-脱氧庚酸醛缩酶、3-脱氢奎尼酸合酶、3-脱氢奎尼酸脱水酶、莽草酸脱氢酶、3-磷酸莽草酸1-羧基乙烯基转移酶、莽草酸激酶1、莽草酸激酶2、分支酸合酶、色氨酸合酶α链、色氨酸合酶β链、邻氨基苯甲酸磷酸核糖基转移酶和邻氨基苯甲酸合酶。
在一个方面，遗传修饰可位于基因的启动子区域中。在一些情况下，经遗传修饰的生物体包含与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，按干重测量的多25％的
Figure BDA0003676072500000051
(式IV)。在一些情况下，经遗传修饰的生物体包含与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，按干重测量的多25％的裸盖菇素。在一些情况下，经遗传修饰的生物体包含与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，按干重测量的多10％的脱磷酸裸盖菇素。
在一些情况下，可通过使生物体的细胞与核酸内切酶系统接触来进行遗传修饰。在一个方面，核酸内切酶系统包含CRISPR酶、TALE-核酸酶、基于转座子的核酸酶、锌指核酸酶、大范围核酸酶、argonaute、Mega-TAL或DNA引导的核酸酶。在一个方面，DNA引导的核酸酶包含argonaute。在一些情况下，核酸内切酶系统包含CRISPR酶和引导多核苷酸，所述引导多核苷酸与所述基因或与所述基因相关的启动子或增强子中或邻近的靶序列杂交。在一些情况下，靶序列的长度可以是至少18个核苷酸、至少19个核苷酸、至少20个核苷酸、至少21个核苷酸或至少22个核苷酸。在一些情况下，靶序列的长度是至多17个核苷酸。在一些情况下，靶序列可与SEQ ID NO:1-14中的至少一个或其互补序列杂交。在一些情况下，引导多核苷酸可以是经化学修饰的。在一个方面，引导多核苷酸是单引导RNA(sgRNA)。在一个方面，引导多核苷酸可以是包含RNA和DNA的嵌合单引导。在一些情况下，引导多核苷酸可与SEQ ID NO:1-14中的至少一个或其互补序列杂交。
在一些情况下，CRISPR酶可以是Cas蛋白或其变体或衍生物。在一些情况下，Cas蛋白包括Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas5d、Cas5t、Cas5h、Cas5a、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Csy4、Cse1、Cse2、Cse3、Cse4、Cse5e、Csc1、Csc2、Csa5、Csn1、Csn2、Csm1、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx1S、Csf1、Csf2、CsO、Csf4、Csd1、Csd2、Cst1、Cst2、Csh1、Csh2、Csa1、Csa2、Csa3、Csa4、Csa5、C2c1、C2c2、C2c3、Cpf1、CARF、DinG、它们的同系物或它们的经修饰型式。在一些情况下，Cas蛋白可以是Cas9。在一些情况下，Cas9是与规范PAM结合的经修饰的Cas9。在一些情况下，Cas9识别非规范PAM。在一些情况下，引导多核苷酸结合距PAM 3-10个核苷酸的靶序列。在一些情况下，与引导多核苷酸偶联的CRISPR酶可作为RNP递送至经遗传修饰的生物体中。在一些情况下，与引导多核苷酸偶联的CRISPR酶可通过编码所述CRISPR酶和所述引导多核苷酸的mRNA递送至经遗传修饰的生物体中。
在一些情况下，与引导多核苷酸偶联的CRISPR酶可通过包含编码所述CRISPR酶和所述引导多核苷酸的核酸的载体递送至经遗传修饰的生物体中。在一个方面，载体可以是二元载体或Ti质粒。在一个方面，载体还包含选择标记物或报告基因。在一些情况下，RNP、复合物或载体可通过电穿孔、显微注射、机械细胞变形、脂质纳米粒子、AAV、慢病毒、农杆菌介导的转化、生物射弹粒子轰击或原生质体转化进行递送。在一些情况下，RNP、mRNA或载体还包含供体多核苷酸或编码所述供体多核苷酸的核酸。在一个方面，供体多核苷酸包含与位于靶序列侧翼的序列的同源性。在一个方面，供体多核苷酸还包含条形码、报告基因或选择标记物。
在另一个方面，所述经遗传修饰的生物体包含外源核苷酸。在一些情况下，所述外源核苷酸包含顺式作用启动子序列。在一些情况下，所述外源核苷酸导致与不含所述外源核苷酸的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中色氨酸脱羧、色胺4-羟基化、4-羟色胺O-磷酸化或在没有脱磷酸裸盖菇素中间体的情况下通过连续N-甲基化的裸盖菇素产生增加。在一些情况下，所述外源核苷酸导致与没有所述外源核苷酸的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中(i)色氨酸脱羧酶基因、裸盖菇素相关的羟化酶基因、裸盖菇素相关的N-甲基转移酶基因或裸盖菇素相关的磷酸转移酶基因的表达上调；(ii)非裸盖菇素色胺的合成减少；或(iii)色氨酸的产生增加。在一些情况下，所述外源核苷酸编码非PLP依赖性磷脂酰丝氨酸脱羧酶、色氨酸脱羧酶(TDC)、推定单加氧酶、5-甲基硫代核糖家族小分子激酶或4-羟色胺激酶。
在一些情况下，所述核苷酸并入质粒中。在一些情况下，所述质粒是pGWB5或pGHGWY。在一些情况下，所述质粒通过电穿孔、显微注射、机械细胞变形、脂质纳米粒子、AAV、慢病毒、农杆菌介导的转化、生物射弹粒子轰击或原生质体转化递送至所述经遗传修饰的生物体中。在一些情况下，所述质粒还包含条形码、报告基因或选择标记物。在一些情况下，所述质粒还包含启动子。在一些情况下，所述启动子是35S、GPD、EF1a、肌动蛋白或CcDED1。
在本文所述的实施方案中，经遗传修饰的生物体可以是多细胞或单细胞生物体。在某些实施方案中，所述生物体可以是单个植物或真菌细胞。本文所述的实施方案还包括细胞群体，例如来自本文所述的真菌物种的细胞群体。
本文提供了一种用于基因组编辑的药盒，所述药盒包括本文提供的组合物。本文还提供了一种包含本文提供的组合物的细胞。细胞可以是植物细胞。在一些情况下，细胞是真菌细胞。在一些情况下，细胞是细菌细胞。在一些情况下，细胞是动物细胞。在一些情况下，细胞是昆虫细胞。本文提供了一种药物组合物，所述药物组合物包含经遗传修饰的生物体的提取物、经遗传修饰的细胞、组合物或细胞。在一个方面，药物组合物还包含药学上可接受的赋形剂、稀释剂或载体。在一些情况下，药学上可接受的赋形剂是脂质。
本文提供了一种营养食品组合物，所述营养食品组合物包含经遗传修饰的生物体的提取物、经遗传修饰的细胞、组合物或细胞。本文提供了一种食品补充剂组合物，所述食品补充剂组合物包含经遗传修饰的生物体的提取物、经遗传修饰的细胞、组合物或细胞。在一个方面，营养食品组合物或食品补充剂可呈口服形式、透皮形式、油制剂、可食用食品、食品基质、水性分散液、乳液、溶液、悬浮液、酏剂、凝胶、糖浆、气雾剂、喷雾剂、粉末、片剂、锭剂、凝胶、洗剂、糊剂、配制棒、香膏、乳膏或软膏形式。
本文提供了一种治疗疾病或疾患的方法，所述方法包括向受试者施用药物组合物、营养食品组合物或食品补充剂。在一个方面，疾病或疾患选自由以下组成的组：抑郁、焦虑、创伤后应激障碍、成瘾或分离相关的副作用、心理困扰以及精神障碍和疾患。
在某些实施方案中，如本文所述的经遗传修饰的生物体可以是真菌、酵母、植物、动物、细菌。在一些情况下，真菌是蘑菇。在一些情况下，蘑菇可产生以下中的至少一者：二甲基色胺(DMT)、裸盖菇素、脱磷酸裸盖菇素和/或它们的任何组合。
以引用的方式并入
本说明书中提及的所有公布、专利和专利申请以引用的方式并入本文，就如每个单独的公布、专利或专利申请被具体地和单独地指出以引用的方式并入的程度一样。
附图说明
本发明的新颖特征在随附权利要求书中具体阐述。通过参考以下阐述使用本发明原理的说明性实施方案的详细描述和附图将获得对本发明的特征和优点的更好理解，在附图中：
图1示出用于古巴裸盖菇(I)和暗蓝裸盖菇(II)中的生物合成的同线基因座(Psi)的示意图。参与酶促合成的基因以粗体标记。簇包括激酶(PsiK)、甲基转移酶(PsiM)、色氨酸脱羧酶(PsiD)和P450单加氧酶(PsiH)的基因。此外，编码并示出两种易化子型转运蛋白(PsiT1和PsiT2)和推定转录调控因子(PsiR)。假定基因以浅灰色示出。内含子未示出。
图2描绘代表性的裸盖菇素体外生物合成途径。
图3示出用于本文所述的经遗传修饰的生物体和细胞的代表性载体构建体，所述载体构建体在35S启动子控制下过表达Psi基因：图3A示出在35S启动子控制下过表达PsiD基因的代表性载体；图3B示出在35S启动子控制下过表达PsiH基因的代表性载体；图3C示出在35S启动子控制下过表达PsiK基因的代表性载体；图3D示出在35S启动子控制下过表达PsiM基因的代表性载体。
图4示出用于本文所述的经遗传修饰的生物体和细胞的代表性载体构建体，所述载体构建体在真菌特异性过表达启动子的控制下过表达基因：图4A示出具有CcDED1启动子的代表性载体；图4B示出具有GPD启动子的代表性载体。
图5示出古巴裸盖菇中Psi基因过表达的策略和工作流程。图5A示出一组具有不同强度的不同启动子的表达载体。图5B示出分离的原生质体和提取的菌褶组织。图5C示出用质粒DNA或农杆菌并入选择转化。图5D示出成体蘑菇的再生。图5E示出分析经遗传修饰的蘑菇的裸盖菇素含量。
图6示出用于组织提取和转化的生长古巴裸盖菇：将古巴裸盖菇在室温下在PDA琼脂(图6A和图6B)以及还在大麦-珍珠岩堆肥(图6C)中生长7天。
具体实施方式
除非上下文另外明确规定，否则如在说明书和权利要求中所用，单数形式“一个/种(a/an)”和“所述”包括复数个提及物。例如，术语“嵌合跨膜受体多肽”包括多个嵌合跨膜受体多肽。
术语“约”或“大约”意指由本领域普通技术人员测定的特定值处于可接受的误差范围内，所述误差范围可部分取决于所述值的测量或测定方式，即测量系统的限制。例如，根据本领域的实践，“约”可意指在1个或超过1个标准偏差内。可替代地，“约”可意指给定值的至多20％、至多10％、至多5％或至多1％的范围。可替代地，特别是关于生物系统或方法，所述术语可意指在值的一个数量级以内，优选在5倍以内，且更优选在2倍以内。当特定值在申请和权利要求书中描述时，除非另外规定，否则应假定术语“约”意指在特定值的可接受误差范围内。
如本文所用，“细胞”通常可指生物细胞。细胞可以是活生物体的基本结构、功能和/或生物单元。细胞可源自具有一个或多个细胞的任何生物体。一些非限制性实例包括：原核细胞、真核细胞、细菌细胞、古细菌细胞、单细胞真核生物的细胞、原生动物细胞、来自植物的细胞、藻类细胞、海藻、真菌细胞、动物细胞、来自无脊椎动物的细胞、来自脊椎动物的细胞、来自哺乳动物的细胞等。有时细胞并非源自天然生物体(例如，细胞可以是合成制造的，有时称为人工细胞)。
如本文所用，术语“基因”是指可参与编码RNA转录物的核酸(例如，DNA，如基因组DNA和cDNA)及其相应的核苷酸序列。如本文关于基因组DNA所用的术语包括插入非编码区以及调控区并且可包括5'和3'端。在一些使用中，所述术语涵盖转录序列，包括5'和3'非翻译区(5'-UTR和3'-UTR)、外显子和内含子。在一些基因中，转录区域可含有编码多肽的“开放阅读框”。在所述术语的一些使用中，“基因”仅包含编码多肽所必需的编码序列(例如，“开放阅读框”或“编码区”)。在一些情况下，基因不编码多肽，例如核糖体RNA基因(rRNA)和转移RNA(tRNA)基因。在一些情况下，术语“基因”不仅包括转录序列，而且此外还包括非转录区域，包括上游和下游调控区、增强子和启动子。基因可指“内源性基因”或生物体的基因组中的其天然位置的天然基因。基因可指“外源性基因”或非天然基因。非天然基因可指通常在宿主生物体中不存在、但可通过基因转移引入宿主生物体中的基因。非天然基因也可指不在生物体的基因组中的其天然位置的基因。非天然基因也可指包含突变、插入和/或缺失的天然存在的核酸或多肽序列(例如，非天然序列)。
如本文所用，术语“核苷酸”通常是指碱基-糖-磷酸组合。核苷酸可包含合成核苷酸。核苷酸可包含合成核苷酸类似物。核苷酸可以是核酸序列的单体单元(例如脱氧核糖核酸(DNA)和核糖核酸(RNA))。术语核苷酸可包括核糖核苷三磷酸腺苷三磷酸(ATP)、尿苷三磷酸(UTP)、胞嘧啶三磷酸(CTP)、鸟苷三磷酸(GTP)和脱氧核糖核苷三磷酸，如dATP、dCTP、dITP、dUTP、dGTP、dTTP或它们的衍生物。此类衍生物可包括例如[αS]dATP、7-脱氮-dGTP和7-脱氮-dATP，以及赋予含有它们的核酸分子核酸酶抗性的核苷酸衍生物。如本文所用的术语核苷酸可指双脱氧核糖核苷三磷酸(ddNTP)以及它们的衍生物。双脱氧核糖核苷三磷酸的说明性实例可包括但不限于ddATP、ddCTP、ddGTP、ddITP和ddTTP。核苷酸可未标记或通过众所周知的技术可检测地标记。也可用量子点进行标记。可检测标记可包括例如放射性同位素、荧光标记、化学发光标记、生物发光标记和酶标记。核苷酸的荧光标记可包括但不限于荧光素、5-羧基荧光素(FAM)、2'7'-二甲氧基-4'5-二氯-6-羧基荧光素(JOE)、罗丹明、6-羧基罗丹明(R6G)、N,N,N',N'-四甲基-6-羧基罗丹明(TAMRA)、6-羧基-X-罗丹明(ROX)、4-(4'二甲基氨基苯基偶氮基)苯甲酸(DABCYL)、瀑布蓝(Cascade Blue)、俄勒冈绿、德克萨斯红、花青和5-(2'-氨基乙基)氨基萘-1-磺酸(EDANS)。荧光标记的核苷酸的具体实例可包括可从Perkin Elmer,Foster City,Calif获得的[R6G]dUTP、[TAMRA]dUTP、[R110]dCTP、[R6G]dCTP、[TAMRA]dCTP、[JOE]ddATP、[R6G]ddATP、[FAM]ddCTP、[R110]ddCTP、[TAMRA]ddGTP、[ROX]ddTTP、[dR6G]ddATP、[dR110]ddCTP、[dTAMRA]ddGTP和[dROX]ddTTP；可从Amersham,Arlington Heights,Ill.获得的FluoroLink脱氧核苷酸、FluoroLink Cy3-dCTP、FluoroLink Cy5-dCTP、FluoroLink Fluor X-dCTP、FluoroLink Cy3-dUTP和FluoroLink Cy5-dUTP；可从Boehringer Mannheim,Indianapolis,Ind.获得的荧光素-15-dATP、荧光素-12-dUTP、四甲基-罗丹明-6-dUTP、IR770-9-dATP、荧光素-12-ddUTP、荧光素-12-UTP和荧光素-15-2'-dATP；以及可从Molecular Probes,Eugene,Oreg.获得的染色体标记的核苷酸、BODIPY-FL-14-UTP、BODIPY-FL-4-UTP、BODIPY-TMR-14-UTP、BODIPY-TMR-14-dUTP、BODIPY-TR-14-UTP、BODIPY-TR-14-dUTP、瀑布蓝7-UTP、瀑布蓝7-dUTP、荧光素-12-UTP、荧光素-12-dUTP、俄勒冈绿488-5-dUTP、罗丹明绿-5-UTP、罗丹明绿-5-dUTP、四甲基罗丹明-6-UTP、四甲基罗丹明-6-dUTP、德克萨斯红-5-UTP、德克萨斯红-5-dUTP和德克萨斯红-12-dUTP。核苷酸也可通过化学修饰进行标记或标示。化学修饰的单核苷酸可以是生物素-dNTP。生物素化dNTP的一些非限制性实例可包括生物素-dATP(例如，bio-N6-ddATP、生物素-14-dATP)、生物素-dCTP(例如，生物素-11-dCTP、生物素-14-dCTP)和生物素-dUTP(例如生物素-11-dUTP、生物素-16-dUTP、生物素-20-dUTP)。
提及两个核苷酸序列之间的序列同一性百分比是指当比对时，在比较两个序列时相同的核苷酸的百分比。这种比对和同源性或序列同一性百分比可使用本领域中已知的软件程序来确定，例如在Current Protocols in Molecular Biology(F.M.Ausubel等人编,1987)增刊30(以引用的方式并入)的第7.7.18节中描述的那些软件程序。通过Smith-Waterman同源性搜索算法使用仿射空位搜索，空位开放罚分为12和空位延伸罚分为2、BLOSUM矩阵为62来确定优选的比对。Smith-Waterman同源性搜索算法公开于Smith和Waterman(1981)Adv.Appl.Math.2:482-489(以引用的方式并入)中。
如本文所用，术语“植物”包括整株植物和植物的任何后代、细胞、组织或部分。可在本公开中使用的植物的类别通常可与适于诱变的高等植物和低等植物的类别一样广泛，包括被子植物(单子叶植物和双子叶植物)、裸子植物、蕨类植物和多细胞藻类。因此，“植物”包括双子叶植物和单子叶植物。术语“植物部分”包括植物的任何部分，包括例如但不限于：种子(包括成熟种子和未成熟种子)；植物插条；植物细胞；植物细胞培养物；植物器官(例如，花粉、胚、花、果实、芽、叶、根、茎和外植体)。植物组织或植物器官可以是种子、原生质体、愈伤组织或可组构成结构或功能单元的任何其它植物细胞组。植物细胞或组织培养物可能能够再生具有从其获得细胞或组织的植物的生理学和形态学特征的植物，以及再生具有与所述植物基本相同基因型的植物。相比之下，一些植物细胞不能再生来产生植物。植物细胞或组织培养物中的可再生细胞可以是胚、原生质体、分生组织细胞、愈伤组织、花粉、叶、花药、根、根尖、穗丝、花、籽粒、穗、穗轴、外壳或茎。
如本文所用，术语“转基因”是指已经并入宿主基因组中或能够在宿主细胞中自主复制并且能够引起一个或多个编码序列的表达的DNA区段。示例性转基因将为宿主细胞或从所述宿主细胞再生的植物提供相对于对应的非转化细胞或植物新颖的表型。转基因可通过遗传转化直接引入植物中，或者可从用所述DNA区段转化的任何上一代植物继承。在一些情况下，转基因可以是条形码。在一些情况下，转基因可以是标记物。
如本文所用，转基因生物体通常是指重组生物体，其中通过插入、缺失、取代或其它核苷酸序列操作来修饰生物体的基因组内的所需DNA序列或遗传基因座。
如本文所用，术语“转基因植物”是指源自其的任何后代的植物或子代植物，其中所述植物或其子代的DNA含有不是天然存在于同一品系的非转基因植物中的引入的外源性DNA区段。所述转基因植物此外可含有对被转化植物来说天然的序列，但是其中已经改变了“外源性”基因以改变所述基因的表达水平或模式，例如，通过使用一个或多个异源调控或其它元件。
载体可以是用作将遗传物质人工携带至细胞中的媒介物的多核苷酸(例如，DNA或RNA)，在细胞中它可复制和/或表达。在一些方面，载体是二元载体或Ti质粒。这样的多核苷酸可呈例如质粒、YAC、粘粒、噬菌粒、BAC、病毒或线性DNA(例如，线性PCR产物)，或可用于将多核苷酸序列转移至另一个细胞中的任何其它类型的构建体的形式。载体(或其部分)可瞬时地(即，未整合到基因组中)或稳定地(即，整合到基因组中)存在于靶细胞中。在一些方面，载体还可包含选择标记物或报告基因。
除非另有说明，否则本文公开的一些方法的实施采用免疫学、生物化学、化学、分子生物学、微生物学、细胞生物学、基因组学和重组DNA的常规技术，所述技术在本领域的技术范围内。参见例如Sambrook和Green,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,第4版(2012)；系列Current Protocols in Molecular Biology(F.M.Ausubel,等人编辑)；系列Methods In Enzymology(Academic Press,Inc.),PCR 2:A Practical Approach(M.J.MacPherson,B.D.Hames和G.R.Taylor编辑(1995))；Harlow和Lane,编辑(1988)Antibodies,A Laboratory Manual,and Culture of Animal Cells:A Manual of BasicTechnique and Specialized Applications,第6版(R.I.Freshney,编辑(2010))。
本公开提供了产生增加量的色胺衍生的物质(如裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素)的经遗传修饰的生物体，以及用于产生所述经遗传修饰的生物体的表达盒、载体、组合物和材料以及方法。本文还提供了利用成簇规律间隔的短回文重复序列(CRISPR)、Argonaut、锌指、TALEN或其它基于核酸酶的技术制造经遗传修饰的生物体的方法和用于产生所述经遗传修饰的生物体的试剂。本文提供的组合物和方法可用于产生具有增加的色胺衍生的物质产生的真菌或植物。本文提供的组合物可用于各种用途，包括但不限于治疗性用途、预防性用途、姑息治疗用途和娱乐性用途。
裸盖菇属蘑菇含有痕量的裸盖菇素(0.1–1.7％)(表1)。由于在蘑菇中的稀有性和昂贵的合成生产过程，裸盖菇素的生产是昂贵的。裸盖菇素的研究价格是每克7,000美元至10,000美元。
表1.裸盖菇素在裸盖菇属蘑菇中以痕量(0.1-1.7％)存在。
Figure BDA0003676072500000161
平均含量并且可能在不同地区因环境条件而异
裸盖菇素的结构已经已知了60年，但直到最近才鉴定了裸盖菇素生物合成酶。这促进了现在增强蘑菇内的这种精神药物化合物的产生的机会，以推进对裸盖菇素的医疗用途的研究。可通过现有技术植物CRISPR工程化平台提高裸盖菇素生产的产率、效力和功效。证明蘑菇中裸盖菇素产生从1％至10％的10倍增加(菌丝体干质量％)将对所述行业具有重要价值。
经遗传修饰的生物体
本文提供了用于修饰生物体中的生物合成途径以增加所述生物体中裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素的产生的方法和组合物。在本文提供的实施方案中，使用基因编辑，增加早期、中间和/或后期前体化合物如色胺和色胺衍生物(如二甲基色胺)的产生以产生所需的最终产物如裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素。
此外，提供了用于使用基因编辑关闭色氨酸消耗的特异性途径，以产生具有较高色胺和/或色胺相关物质如裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素表达水平的经遗传修饰的生物体的方法和组合物。
如本文所述的经遗传修饰的生物体可以是植物、动物、细菌、酵母或真菌。在一些情况下，真菌是蘑菇。裸盖菇属、锥盖伞属、裸伞属、斑褶菇属、光柄菇属和球盖菇属的特定蘑菇产生精神活性色胺衍生的物质(例如如本文所述的裸盖菇素或脱磷酸裸盖菇素)，所述色胺衍生的物质的产生通过本文所述的遗传修饰而增强。在一些情况下，如本文所述的经遗传修饰的生物体是选自暗蓝斑褶菇、古巴斑褶菇和白灵侧耳的蘑菇。
在本文所述的实施方案中是增强L-色氨酸或4-羟基-L-色氨酸转化为色胺的经遗传修饰的细胞或生物体。在一些情况下，经遗传修饰的细胞或生物体包含遗传修饰，所述遗传修饰抑制或最小化4-羟基-L-色氨酸或色氨酸的替代消耗途径，从而增强色胺和任选的色胺下游衍生物如裸盖菇素和脱磷酸裸盖菇素的形成。在一些情况下，这种增强是通过引入或上调与色氨酸脱羧酶PsiD的表达或活性相关的基因来实现的。
在一些情况下是经遗传修饰的细胞或生物体，其中通过引入或上调与色胺转化为4-羟色胺相关的基因(例如P450单加氧酶PsiH)来实现脱磷酸裸盖菇素或裸盖菇素的产生增强。在一些情况下，是通过上调与色胺、色氨酸或4-羟色胺转化为去甲芽孢杆菌素相关的基因而具有增强的去甲芽孢杆菌素产生的经遗传修饰的细胞或生物体。在一些情况下，这种上调是通过上调或引入4-羟色胺激酶PsiK、通过修饰与所述基因相关的启动子或增强子序列或将所述基因敲入所述细胞或生物体中来实现的。
在一些情况下是经遗传修饰的细胞或生物体，其中通过引入或上调与去甲芽孢杆菌素转化为芽孢杆菌素(baeocystin)相关的基因或通过增加芽孢杆菌素的产生来实现脱磷酸裸盖菇素或裸盖菇素的产生增强。在一些情况下，通过修饰与所述基因相关的启动子或增强子序列或将所述基因敲入所述细胞或生物体中来增加去甲芽孢杆菌素甲基转移酶基因的合成而实现所述上调。
在某些实施方案中，如本文所述的色氨酸脱羧酶基因可以是PsiD(表3中提供了代表性mRNA序列)。在一些情况下，编码色氨酸脱羧酶的基因可包含与SEQ ID NO:1的约50％、60％、70％、80％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或高达约100％序列同一性。酶PsiD可以是49.6kDa的酶并且属于非PLP依赖性磷脂酰丝氨酸脱羧酶家族。在某些实施方案中，通过对所述基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子序列进行遗传编辑来上调细胞或生物体中的PsiD。在某些实施方案中，通过使用本文所述的基因编辑技术将PsiD基因引入经遗传修饰的细胞或生物体中来在所述细胞或生物体中上调或合成PsiD。
在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的细胞或生物体包含P450单加氧酶PsiH基因表达的上调(表3中提供了代表性mRNA序列)。在一些情况下，编码单加氧酶的基因可包含与SEQ ID NO:2的约50％、60％、70％、80％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或高达约100％序列同一性。在某些实施方案中，通过对所述基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子序列进行遗传编辑来上调细胞或生物体中的PsiH。在某些实施方案中，通过使用本文所述的基因编辑技术将PsiH基因引入经遗传修饰的细胞或生物体中来在所述细胞或生物体中上调或合成PsiH。
在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的细胞或生物体包含4-羟色胺激酶PsiK基因表达的上调(表3中提供了代表性mRNA序列)。在一些情况下，编码4-羟色胺激酶的基因可包含与SEQ ID NO:3的约50％、60％、70％、80％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或高达约100％序列同一性。在某些实施方案中，通过对所述基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子序列进行遗传编辑来上调细胞或生物体中的PsiK。在某些实施方案中，通过使用本文所述的基因编辑技术将PsiK基因，例如Seq ID NO:3的基因引入经遗传修饰的细胞或生物体中来在所述细胞或生物体中上调或合成PsiK。
在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的细胞或生物体包含去甲芽孢杆菌素甲基转移酶PsiM基因表达的上调(表3中提供了代表性mRNA序列)。在一些情况下，编码所述甲基转移酶的基因可包含与SEQ ID NO:4中的任一个的约50％、60％、70％、80％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或高达约100％序列同一性。在某些实施方案中，通过对所述基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子序列进行遗传编辑来上调细胞或生物体中的PsiM。在某些实施方案中，通过使用本文所述的基因编辑技术将PsiM基因，例如Seq ID NO:4的基因引入经遗传修饰的细胞或生物体中来在所述细胞或生物体中上调或合成PsiM。在某些情况下，将具有氨基序列GVDIGTGAS的包含罗斯曼折叠的I类甲基转移酶基因或其衍生物引入所述细胞或生物体中以增加裸盖菇素产生。
可在本文所述的生物体和细胞中修饰影响真菌或其它生物体中所产生的裸盖菇素的产生和累积的其它推定转录调控因子和转运蛋白。在一些情况下，推定转录调控因子可促进本文所述的甲基转移酶、羟化酶、单加氧酶、激酶或脱羧酶(例如PsiD、PsiH、PsiK或PsiM)的转录或翻译。在一些情况下，推定转录调控因子可促进下调酶，如本文所述的甲基转移酶、羟化酶、单加氧酶、激酶或脱羧酶(例如PsiD、PsiH、PsiK或PsiM)的转录或翻译。
在某些实施方案中，本文公开的遗传修饰技术可用于通过对基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子序列进行遗传编辑或通过引入一种或多种所述基因或其同源物的额外拷贝来增强易化子家族转运蛋白(PsiT1和PsiT2，或螺旋-环-螺旋(HLH)-结构域转录调控因子(PsiR)的表达。它还可在确保所合成的裸盖菇素在真菌和其它生物体中正确地转运和定位方面发挥作用。在某些实施方案中，通过对基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子序列进行遗传编辑来上调细胞或生物体中的PsiR、PsiT1或PsiT2。在某些实施方案中，通过使用本文所述的基因编辑技术将PsiR、PsiT1或PsiT2基因，例如Seq ID NO:5的基因引入经遗传修饰的细胞或生物体中来在所述细胞或生物体中上调或合成PsiR、PsiT1或PsiT2。
编码PsiT2的基因的代表性序列在表3中列出。在一些情况下，编码PsiT2的基因可包含与SEQ ID NO:5中的任一个的约50％、60％、70％、80％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或高达约100序列同一性。
上述基因可通过本文中所公开的遗传修饰技术进行修饰，以增加参与裸盖菇素生物合成途径的酶、推定调控因子和推定转运蛋白的产生，或在本文所述的经遗传修饰的细胞或生物体中从头产生此类酶、调控因子和转运蛋白。例如，可增加沿裸盖菇素生物合成途径的特异性酶的表达水平以增加色胺、4-羟基色胺、芽孢杆菌素、去甲芽孢杆菌素和裸盖菇素中的一者或多者的产生。在一些情况下，遗传修饰位于本文所述的一种或多种基因的或与所述一种或多种基因相关的启动子或增强子区域中。
在某些实施方案中，通过本文所述的遗传修饰技术对与还利用色氨酸和/或4-羟基-L-色氨酸的途径相关的基因进行修饰以下调或敲除这些基因，从而减少这些途径的色氨酸消耗和/或4-羟基-L-色氨酸消耗。下调或敲除的基因可包括例如吲哚胺2,3-双加氧酶(IDO)、色氨酸2,3-双加氧酶(TDO)和TrpM。TrpM是对色氨酸具有单甲基化和二甲基化活性、但不是裸盖菇素生物合成途径的一部分的甲基转移酶。本文所述的经遗传修饰的生物体或细胞中诸如IDO、TDO、TrpM的基因的下调或敲除导致色氨酸和/或4-羟基-L-色氨酸用于裸盖菇素生产的可用性增加。
在某些实施方案中是包含修饰的经遗传修饰的细胞或生物体，所述修饰导致色氨酸和/或4-羟基-L-色氨酸的产生增加。这些修饰包括编码磷酸-2-脱氢-3-脱氧庚酸醛缩酶、3-脱氢奎尼酸合酶、3-脱氢奎尼酸脱水酶、莽草酸脱氢酶、3-磷酸莽草酸1-羧基乙烯基转移酶、莽草酸激酶1、莽草酸激酶2、分支酸合酶、色氨酸合酶α链、色氨酸合酶β链、邻氨基苯甲酸磷酸核糖基转移酶或邻氨基苯甲酸合酶组分的基因的上调。这些基因的上调是通过修饰基因中的或与所述基因相关的启动子或增强子或通过增加所述生物体或细胞中所述基因的拷贝数来增加所述基因的产生而实现的。
通过增加这些酶的表达，产生更多的底物色氨酸和/或4-羟基-L-色氨酸，从而增加裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素产生。
本文提供了用于表征裸盖菇素生物合成途径和酶的方法和组合物。在本文提供的实施方案中，通过对三种不同的裸盖菇素阳性(PS+)蘑菇同核体基因组进行测序来鉴定候选裸盖菇素基因：暗蓝裸盖菇(Ps.cyanescens)、暗蓝斑褶菇(Pa.(＝灰斑褶菇属(Copelandia))cyanescens)和变色龙裸伞(Gy.Dilepis)。在某些实施方案中，五种基因全部簇集在PS+基因组中：色氨酸脱羧酶(PsiD)；裸盖菇素相关的N-甲基转移酶(PsiM)；裸盖菇素相关的羟化酶(PsiH)；裸盖菇素相关的磷酸转移酶(PsiK)；裸盖菇素相关的转运蛋白(PsiT)。在某些实施方案中，PsiD(反应中的第一个关键步骤且唯一一个不产生药物预定化合物的步骤)对产生色氨酸的色胺具有特异性脱羧酶活性。在某些实施方案中，簇之间的基因复制涉及用于遗传修饰的替代或网状途径。
在本文所述的实施方案中，PS+簇内的基因的编码序列已从数种蘑菇中鉴定并如本文所提供。在某些实施方案中，还存在关于这些基因的内含子或外显子结构的信息(表2中提供了基因的代表性列表)。
表2：古巴裸盖菇和暗蓝裸盖菇中裸盖菇素生物合成基因的长度和内含子数量。如果一个单元格中存在两个值，则第一个值是指古巴裸盖菇的相应基因，并且第二个值是指暗蓝裸盖菇的相应基因。使用Augustus算法预测暗蓝裸盖菇基因和古巴裸盖菇的PsiR、PsiT1和PsiT2的值。
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表3：在本文所述的经遗传修饰的细胞或生物体中表达增强的基因的基因序列。通过修饰基因中的或与基因相关的启动子或增强子或通过在所述细胞或生物体中引入基因拷贝来增强表达。
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在一些情况下，使用本文所述的任何核酸递送平台，真菌或任何其它生物体(包括但不限于细胞)的基因组破坏的效率可导致如通过核酸或蛋白质分析测量的基因或其部分的约20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、91％，92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、99.5％、99.9％或高达约100％破坏。
在一些情况下，经遗传修饰的真菌和其它生物体包含与没有遗传修饰的可比对照相比，通过真菌的干重测量的多约10％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、100％、125％、150％、175％、200％和高达400％的式I-IV中任一者的化合物。
在一些情况下，经遗传修饰的真菌和其它生物体包含与没有遗传修饰的可比对照相比，通过真菌的干重测量的多约10％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、100％、125％、150％、175％、200％和高达400％的二甲基色胺(DMT)。
在一些情况下，经遗传修饰的真菌和其它生物体包含与没有遗传修饰的可比对照相比，通过真菌的干重测量的多约10％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、100％、125％、150％、175％、200％和高达400％的裸盖菇素。
在一些情况下，经遗传修饰的真菌和其它生物体包含与没有遗传修饰的可比对照相比，通过真菌的干重测量的多约10％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、100％、125％、150％、175％、200％和高达400％的脱磷酸裸盖菇素。
可使用各种方法来鉴定用于裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素生物合成途径中的基因编辑的潜在靶标。在一些情况下，可使用以下中的任一者：生物信息学、gRNA设计、CRISPR试剂构建、植物转化、植物再生和/或基因分型。生物信息学可包括基因作图、基因比对和拷贝数分析以及基因注释。gRNA设计可包括gRNA分组，以基于大麻基因组内的靶基因特异性和脱靶来设计用于预期功能、等级和选择的引导簇。CRISPR试剂构建可包括产生可感染的AGRO试剂，以共同递送已进行了大麻密码子优化的Cas9和gRNA。植物转化和再生可包括用CRISPR AGRO(例如愈伤组织)感染植物组织，分离大麻原生质体和转化RNP试剂的技术，和/或开发从转化组织获得生长中小植株的技术。基因分型可包括分离植物DNA和分析靶序列。功能分析可包括分析植物组织中的大麻素含量和定量相关的大麻素。
上文公开的不同的遗传修饰方法可用于其它生物体，如不同的植物、大肠杆菌和其它合适的细菌或酵母，以产生裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素的最终产物。在所公开的遗传工程化的真菌和其它生物体中，裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素的量与没有这种公开的遗传修饰的可比对照真菌或生物体相比增加约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％、125％、150％、175％、200％、300％或高达400％。
遗传工程化
本文提供的可以是基因组工程化系统。基因组工程化系统可包括以下中的任一者：成簇规律间隔的短回文重复序列(CRISPR)酶、转录激活因子样效应物(TALE)-核酸酶、基于转座子的核酸酶、锌指核酸酶、大范围核酸酶、argonaute或Mega-TAL。在一些方面，基因组编辑系统可利用包含DNA、RNA或它们的组合的引导多核酸。在一些情况下，引导可以是引导DNA或引导RNA。
I.成簇规律间隔的短回文重复序列(CRISPR)
在一些情况下，可使用CRISPR系统或其部分进行遗传工程化。CRISPR系统可以是包含引导多核苷酸或编码所述引导多核苷酸的核酸和CRISPR酶或编码所述CRISPR酶的核酸的多组分系统。CRISPR系统还可包含对CRISPR组分或CRISPR组分中的任一者的任何部分的任何修饰。
本文所述的方法可利用CRISPR系统。存在至少五种类型的CRISPR系统，其全部并入引导RNA和Cas蛋白和编码多核苷酸。CRISPR系统的一般机制和最新进展在Cong,L.等人,“Multiplex genome engineering using CRISPR systems,”Science,339(6121):819-823(2013)；Fu,Y.等人,“High-frequency off-target mutagenesis induced by CRISPR-Casnucleases in human cells,”Nature Biotechnology,31,822–826(2013)；Chu,VT等人“Increasing the efficiency of homology-directed repair for CRISPR-Cas9-induced precise gene editing in mammalian cells,”Nature Biotechnology 33,543–548(2015)；Shmakov,S.等人,“Discovery and functional characterization ofdiverse Class 2CRISPR-Cas systems,”Molecular Cell,60,1-13(2015)；Makarova,KS等人,“An updated evolutionary classification of CRISPR-Cas systems,”,NatureReviews Microbiology,13,1-15(2015)中进行了论述。靶DNA的位点特异性裂解在通过1)引导RNA与靶DNA(也称为原型间隔区)之间的碱基配对互补性和2)靶DNA中称为原型间隔区相邻基序(PAM)的短基序确定的位置处发生。PAM可以是规范PAM或非规范PAM。例如，工程化的细胞(如植物细胞)可使用CRISPR系统，例如II型CRISPR系统产生。本文公开的方法中使用的Cas酶可以是催化DNA裂解的Cas9。源自酿脓链球菌的Cas9或任何密切相关的Cas9的酶促作用可在靶位点序列处产生双链断裂，所述靶位点序列与引导序列的约20个核苷酸杂交并且在靶序列的约20个核苷酸之后具有原型间隔区相邻基序(PAM)。在一些方面，可杂交少于20个核苷酸。在一些方面，可杂交多于20个核苷酸。本文提供的可以是在基因组上破坏THCA合酶的活性，包括将包含至少一种核定位信号的至少一种RNA引导的核酸内切酶或编码包含至少一种核定位信号的至少一种RNA引导的核酸内切酶的核酸、编码至少一种引导RNA的至少一种引导核酸引入大麻和/或火麻植物或其细胞中。在一些方面，可培养经修饰的植物或其部分。
成簇规律间隔的短回文重复序列(CRISPR)酶
CRISPR酶可包含或者可以是Cas酶。在一些方面，编码Cas蛋白或其部分的核酸可用于本文提供的实施方案中。Cas酶的非限制性实例包括Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas5d、Cas5t、Cas5h、Cas5a、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Csy4、Cse1、Cse2、Cse3、Cse4、Cse5e、Csc1、Csc2、Csa5、Csn1、Csn2、Csm1、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx1S、Csf1、Csf2、CsO、Csf4、Csd1、Csd2、Cst1、Cst2、Csh1、Csh2、Csa1、Csa2、Csa3、Csa4、Csa5、C2c1、C2c2、C2c3、Cpf1、CARF、DinG、它们的同系物或它们的经修饰型式。在一些情况下，可使用催化性死亡Cas蛋白，例如dCas9。未修饰的CRISPR酶可具有DNA裂解活性，如Cas9。CRISPR酶可指导一条或两条链在靶序列处，如靶序列内和/或靶序列的互补序列内裂解。在一些方面，靶序列的长度是至少约18个核苷酸、至少19个核苷酸、至少20个核苷酸、至少21个核苷酸或至少22个核苷酸。在一些情况下，靶序列的长度是至多17个核苷酸。在一些方面，靶标可选自包含与SEQ ID NO:1至SEQ ID NO:7中的任一个的约50％、60％、70％、80％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或高达约100％同源性的序列。
在一些方面，靶序列可存在于基因的内含子或外显子内。在一些情况下，CRISPR系统可靶向参与大麻素生物合成途径的基因的外显子。例如，CRISPR酶可指导一条或两条链在距靶序列的第一个或最后一个核苷酸1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、50、100、200、500个或更多个碱基对内或约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、50、100、200、500个或更多个碱基对内裂解。例如，CRISPR酶可指导一条或两条链在距PAM序列1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、50、100、200、500个或更多个碱基对内或约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、50、100、200、500个或更多个碱基对内裂解。在一些情况下，引导多核苷酸结合距PAM 3至10个核苷酸的靶序列。可使用编码相对于相应的野生型酶突变的CRISPR酶的载体，使得突变的CRISPR酶缺乏裂解含有靶序列的靶多核苷酸的一条或两条链的能力。Cas蛋白可以是高保真Cas蛋白，如Cas9HiFi。在一些情况下，可对Cas蛋白进行修饰。例如，Cas蛋白修饰可包含N7-甲基-Gppp(2'-O-甲基-A)。
Cas9可指与野生型示例性Cas9多肽(例如，来自酿脓链球菌的Cas9)具有至少或至少约50％、60％、70％、80％、90％、100％序列同一性和/或序列相似性的多肽。Cas9可指与野生型示例性Cas9多肽(例如，来自酿脓链球菌)具有至多或至多约50％、60％、70％、80％、90％、100％序列同一性和/或序列相似性的多肽。Cas9可指Cas9蛋白的野生型或修饰形式，其可包含氨基酸变化，如缺失、插入、取代、变体、突变、融合、嵌合体或它们的任何组合。在一些情况下，可对CRISPR酶(如Cas)进行密码子优化以在植物中表达。
可对编码核酸内切酶(例如，Cas蛋白，如Cas9)的多核苷酸进行密码子优化以在特定细胞如植物细胞中表达。这种类型的优化可能需要外源(例如重组)DNA的突变以模拟预期宿主生物体或细胞的密码子偏好，同时编码相同蛋白质。
核酸内切酶可包含与野生型示例性位点定向多肽(例如，来自酿脓链球菌的Cas9)的核酸酶结构域具有至少或至少约50％、60％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、99％或100％氨基酸序列同一性的氨基酸序列。
酿脓链球菌Cas9(SpCas9)可用作基因组工程化的CRISPR核酸内切酶。在一些情况下，可使用不同的核酸内切酶来靶向某些基因组靶标。在一些情况下，可使用具有非NGGPAM序列的合成SpCas9来源的变体。此外，已经鉴定了来自不同物种的其它Cas9直向同源物，并且这些“非SpCas9”结合也可用于本发明的多种PAM序列。例如，相对较大的SpCas9(大约4kb编码序列)意味着携带SpCas9 cDNA的质粒可能不能在细胞中有效表达。相反，金黄色葡萄球菌Cas9(SaCas9)的编码序列比SpCas9短大约1千碱基，可能使其能够在细胞中有效表达。
酿脓链球菌Cas9的替代方案可包括来自Cpf1家族的RNA引导的核酸内切酶。与Cas9核酸酶不同，Cpf1介导的DNA裂解的结果是具有短3'突出端的双链断裂。Cpf1的交错裂解模式可开辟定向基因转移的可能性，类似于传统的限制酶克隆，这可提高基因编辑的效率。与上述Cas9变体和直向同源物一样，Cpf1也可将可被CRISPR靶向的位点数量扩展至缺乏SpCas9所偏爱的NGG PAM位点的富含AT的区域或富含AT的基因组。
在一些方面，Cas序列可含有核定位序列(NLS)。核定位序列可来自SV40。NLS可来自以下中的至少一者：SV40、核质蛋白、输入蛋白α、C-myc、EGL-13、TUS、hnRNPA1、Mata2或PY-NLS。NLS可位于Cas蛋白的C末端或N末端。在一些情况下，Cas蛋白可含有1至5个NLS序列。Cas蛋白可含有1、2、3、4、5、6、7、8、9或多达10个NLS序列。Cas蛋白(如Cas9)可含有两个NLS序列。Cas蛋白可含有SV40和核质蛋白NLS序列。Cas蛋白还可含有至少一个非翻译区。
在一些方面，编码CRISPR酶的载体可含有核定位序列(NLS)序列。在一些方面，载体可包含一个或多个NLS。在一些情况下，载体可含有约1、2、3、4、5、6、7、8、9或10个NLS。例如，CRISPR酶可包含在氨基末端处或附近的多于或多于约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10个NLS，在羧基末端处或附近的多于或多于约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10个NLS，或这些的任何组合(例如，在氨基末端的一个或多个NLS和在羧基末端的一个或多个NLS)。当存在多于一个NLS时，每个NLS可独立于其它NLS选择，使得单个NLS可存在于多于一个拷贝中和/或与一个或多个其它NLS组合存在于一个或多个拷贝中。
NLS可以是单分的或二分的。在一些情况下，与单分NLS相比，二分NLS可具有间隔区序列。NLS可来自以下中的至少一者：SV40、核质蛋白、输入蛋白α、C-myc、EGL-13、TUS、hnRNPA1、Mata2或PY-NLS。NLS可位于多肽链内的任何位置，例如靠近N或C末端。例如，NLS可在距N或C末端沿多肽链的1、2、3、4、5、10、15、20、25、30、40、50个氨基酸内或约1、2、3、4、5、10、15、20、25、30、40、50个氨基酸内。有时NLS可在距N或C末端的50个氨基酸或更多个氨基酸内或约50个氨基酸或更多个氨基酸内，例如100、200、300、400、500、600、700、800、900或1000个氨基酸。
可将任何功能浓度的Cas蛋白引入细胞。例如，可将15微克的Cas mRNA引入细胞。在其它情况下，可引入0.5微克至100微克的Cas mRNA。可引入0.5、5、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95或100微克的Cas mRNA。
在一些情况下，双切口酶方法可用于引入双链断裂或基因组断裂。Cas蛋白可在任一核酸酶结构域内的已知氨基酸处发生突变，从而缺失一个核酸酶结构域的活性并产生能够产生单链断裂的切口酶Cas蛋白。切口酶连同靶向相对链的两种不同引导RNA可用于在靶位点内产生双链断裂(DSB)(通常称为“双切口”或“双切口酶”CRISPR系统)。这种方法可显著提高靶标特异性，因为在足够接近的距离内产生两个脱靶切口以引起DSB是不太可能的。
可在使用前测试核酸酶(如Cas9)的身份和效力。例如，可使用分光光度分析、RNA琼脂糖凝胶分析、LC-MS、内毒素分析和无菌试验中的至少一者来确定身份和效力。在一些情况下，可对核酸酶序列(如Cas9序列)进行测序以确认其身份。在一些情况下，可在临床或治疗性使用之前对Cas蛋白(如Cas9蛋白)进行测序。例如，可通过聚丙烯酰胺凝胶电泳评估纯化的体外转录产物，以验证临床产品中除Cas9外不存在其它mRNA种类或基本上不存在其它mRNA种类。此外，编码Cas蛋白(如Cas9)的纯化mRNA可通过逆转录、随后测序步骤进行验证，以在核苷酸水平下验证身份。可通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)评估纯化的体外转录产物，以验证mRNA是对于Cas9所预期的大小，并且临床或治疗产品中基本上不存在其它mRNA种类。
在一些情况下，可确定核酸酶(如Cas9)的内毒素水平。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于3EU/mL。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于2EU/mL。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于1EU/mL。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于0.5EU/mL。
在一些情况下，诸如Cas9的核酸酶可进行无菌试验。无菌试验的临床上/治疗上可接受的水平可以是0或由培养物上无生长表示。无菌试验的临床上/治疗上可接受的水平可以是小于0.5％、0.3％、0.1％或0.05％生长。
引导多核酸
引导多核酸可以是DNA或RNA。引导多核酸可以是单链的或双链的。在一些情况下，引导多核酸可含有单链区域和双链区域的区。引导多核酸也可形成二级结构。如本文所用，术语“引导RNA(gRNA)”及其语法等效物可指可对靶DNA具有特异性并且可与Cas蛋白形成复合物的RNA。引导RNA可包含指定靶位点并将RNA/Cas复合物引导至指定的靶DNA以进行裂解的引导序列或间隔区序列。例如，引导RNA可使CRISPR复合物靶向靶基因或其部分并进行靶向双链断裂。靶DNA的位点特异性裂解在通过1)引导RNA与靶DNA(也称为原型间隔区)之间的碱基配对互补性和2)靶DNA中称为原型间隔区相邻基序(PAM)的短基序确定的位置处发生。在一些情况下，可使用算法来设计gRNA，所述算法可鉴定位于常见表达的转录物内的早期外显子中的gRNA。
在一些情况下，引导多核苷酸可与编码以下的基因的靶序列互补：甲基转移酶、羟化酶、单加氧酶、激酶、脱羧酶、转录调控因子、转运蛋白、吲哚胺2,3-双加氧酶(IDO)、色氨酸2,3-双加氧酶(TDO)、TrpM、磷酸-2-脱氢-3-脱氧庚酸醛缩酶、3-脱氢奎尼酸合酶、3-脱氢奎尼酸脱水酶、莽草酸脱氢酶、3-磷酸莽草酸1-羧基乙烯基转移酶、莽草酸激酶1、莽草酸激酶2、分支酸合酶、色氨酸合酶α链、色氨酸合酶β链、邻氨基苯甲酸磷酸核糖基转移酶和邻氨基苯甲酸合酶组分。在一些情况下，gRNA或gDNA可结合与SEQ ID NO:1-5或任何上述基因同源或互补的靶序列。
将功能基因拷贝、基因变体和假基因进行作图和比对，以产生用于CRISPR设计的序列模板。在一些情况下，多个引导RNA靶向序列在THCA合酶的所比对拷贝中保守，并且被设计为破坏早期编码序列并在所述编码序列中引入突变，如移码突变插入缺失。在一些情况下，可选择在大麻和火麻基因组中其它地方的脱靶位点发生率较低的引导RNA。
在一个方面，可产生CRISPR gRNA文库并用于通过DNA分析筛选变体植物。多重CRISPR工程化可产生多种基因型的新型大麻素生产大麻植物。在一些情况下，这些植物产生升高水平的少量、稀有和/或研究不足的大麻素。
在一些情况下，gRNA可被设计为靶向参与大麻素生物合成途径的基因的外显子。在一些情况下，gRNA可被设计为破坏早期编码序列。在一个方面，主题引导RNA可分为两类：旨在通过靶向在这些基因中具有早期位置的编码序列以引入移码突变插入缺失来破坏功能性蛋白质的产生的那些(KO引导)；以及靶序列散布在基因调控区域内的那些(表达调节引导)。此外，可选择在大麻和火麻基因组中其它地方的脱靶位点发生率最低的引导RNA。
在一些情况下，可基于其插入靶基因中的插入缺失模式来选择gRNA。候选gRNA可使用评分系统按脱靶潜力进行排序，所述评分系统可考虑：(a)gRNA序列与任何紧密匹配的基因组序列之间的错配总数；(b)相对于PAM位点的错配位置，其与靠近PAM位点的错配对活性的负面影响相关；(c)错配之间的距离，以解释相邻错配在破坏引导DNA相互作用中的累积效应；以及它们的任何组合。在一些情况下，gRNA与基因组靶位点之间的更多错配可产生CRISPR介导的对所述位点的裂解的较低可能性。在一些情况下，错配位置与PAM位点直接相邻。在其它情况下，错配位置可距PAM位点1个核苷酸至100千碱基。在一些情况下，包含错配的候选gRNA可能不与PAM相邻。在其它情况下，包含错配的至少两种候选gRNA可彼此相距1个核苷酸至100千碱基结合基因组。错配可以是核苷酸的取代。例如，在一些情况下，将用G取代T。gRNA与基因组之间的错配可允许降低的CRISPR基因编辑保真度。在一些情况下，阳性评分gRNA的长度可以是约110个核苷酸，并且可能不含与互补基因组序列的错配。在其它情况下，阳性评分gRNA的长度可以是约110个核苷酸，并且可含有与互补基因组序列的至多3个错配。在其它情况下，阳性评分gRNA的长度可以是约110个核苷酸，并且可含有与互补基因组序列的至多20个错配。在一些情况下，引导多核酸可含有可以是硫代磷酸酯的核苷酸间键联。可存在任何数量的硫代磷酸酯。例如，引导多核酸序列中可存在1至约100个硫代磷酸酯。在一些情况下，存在1至10个硫代磷酸酯。在一些情况下，引导多核酸序列中存在8个硫代磷酸酯。
在一些情况下，可设计和选择最高得分gRNA，并且可在植物细胞中通过实验方式评估每种gRNA的中靶编辑效率。在一些情况下，如通过TiDE分析确定的编辑效率可超过至少约20％。在其它情况下，编辑效率可以是约20％至约50％、约50％至约80％、约80％至约100％。在一些情况下，可在试验GMP运行中确定插入缺失百分比。例如，可通过桑格测序和TIDE分析来分析最终细胞产物的中靶插入缺失形成。基因组DNA可从来自对照和实验样品的约1x106个细胞中提取，并使用位于已被破坏的基因(如参与大麻素生物合成途径的基因)侧翼的引物进行PCR。可使用TIDE软件程序分析桑格测序色谱图，所述软件程序可通过比较对照样品和敲除样品来定量插入缺失频率和插入缺失的大小分布。
本文公开的方法还可包括将至少一种引导RNA或核酸(例如编码至少一种引导RNA的DNA)引入细胞或植物胚中。引导RNA可与RNA引导的核酸内切酶相互作用以将核酸内切酶导向至特定靶位点，在所述位点处，引导RNA的5'端与染色体序列中的特定原型间隔区序列碱基配对。
引导RNA可包含两种RNA，例如CRISPR RNA(crRNA)和反式激活crRNA(tracrRNA)。引导RNA有时可包含由crRNA和tracrRNA的一部分(例如，功能部分)融合形成的单引导RNA(sgRNA)。引导RNA也可以是包含crRNA和tracrRNA的双RNA。引导RNA可包含crRNA并且缺少tracrRNA。此外，crRNA可与靶DNA或原型间隔区序列杂交。
如上所述，引导RNA可以是表达产物。例如，编码引导RNA的DNA可以是包含编码引导RNA的序列的载体。通过用分离的引导RNA或包含编码引导RNA的序列和启动子的质粒DNA转染细胞或植物胚，可将引导RNA转移至细胞或生物体中。在一些方面，启动子可选自由以下组成的组：叶特异性启动子、花特异性启动子、THCA合酶启动子、CaMV35S启动子、FMV35S启动子和tCUP启动子。引导RNA也可以其它方式(如使用粒子轰击)转移至细胞或植物胚中。
可分离引导RNA。例如，引导RNA可以分离的RNA的形式转染到细胞或植物胚中。可使用任何体外转录系统通过体外转录制备引导RNA。引导RNA可以分离的RNA的形式而不是以包含引导RNA的编码序列的质粒的形式转移至细胞中。
引导RNA可包含DNA靶向区段和蛋白质结合区段。DNA靶向区段(或DNA靶向序列，或间隔区序列)包含可与靶DNA内的特定序列(例如，原型间隔区)互补的核苷酸序列。蛋白质结合区段(或“蛋白质结合序列”)可与定点修饰多肽，例如RNA引导的核酸内切酶如Cas蛋白相互作用。“区段”意指分子的区段/部分/区域，例如RNA中的一段连续核苷酸。区段还可意指复合物的区域/部分，以使得区段可包含多于一个分子的区域。例如，在一些情况下，靶向DNA的RNA的蛋白质结合区段是一个RNA分子并且因此蛋白质结合区段包含所述RNA分子的区域。在其它情况下，靶向DNA的RNA的蛋白质结合区段包含沿着具有互补性的区域杂交的两个分开的分子。
引导RNA可包含两个分开的RNA分子或单个RNA分子。示例性单分子引导RNA包含DNA靶向区段和蛋白质结合区段两者。
示例性两分子靶向DNA的RNA可包含crRNA样(“CRISPR RNA”或“靶向物-RNA”或“crRNA”或“crRNA重复”)分子和对应的tracrRNA样(“反式作用CRISPR RNA”或“激活物-RNA”或“tracrRNA”)分子。第一RNA分子可以是crRNA样分子(靶向物-RNA)，其可包含DNA靶向区段(例如，间隔区)和可形成包含引导RNA的蛋白质结合区段的双链RNA(dsRNA)双链体的一半的核苷酸序列段。第二RNA分子可以是对应的tracrRNA样分子(激活物-RNA)，其可包含可形成引导RNA的蛋白质结合区段的dsRNA双链体的另一半的核苷酸序列段。换言之，crRNA样分子的核苷酸序列段与tracrRNA样分子的核苷酸序列段可互补并且可杂交以形成引导RNA的蛋白质结合结构域的dsRNA双链体。因此，每个crRNA样分子均可被称作具有对应的tracrRNA样分子。crRNA样分子另外可提供单链DNA靶向区段或间隔区序列。因此，crRNA样和tracrRNA样分子(作为对应的一对)可杂交以形成引导RNA。主题两分子引导RNA可包含任何对应的crRNA和tracrRNA对。
引导RNA的DNA靶向区段或间隔区序列可与染色体序列中的靶位点处的序列(例如原型间隔区序列)互补，使得引导RNA的DNA靶向区段可与靶位点或原型间隔区碱基配对。在一些情况下，引导RNA的DNA靶向区段可包含10个核苷酸或约10个核苷酸至25个核苷酸或约25个核苷酸或更多个核苷酸。例如，引导RNA的第一区与染色体序列中的靶位点之间的碱基配对区的长度可以是或可以是约10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、22、23、24、25个或超过25个核苷酸。有时，引导RNA的第一区的长度可以是或可以是约19、20或21个核苷酸。
引导RNA可靶向20个核苷酸或约20个核苷酸的核酸序列。靶核酸可少于或少于约20个核苷酸。靶核酸可以是至少或至少约5、10、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30个或更多个核苷酸。靶核酸可以是至多或至多约5、10、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30个或更多个核苷酸。靶核酸序列可以是紧邻PAM的第一个核苷酸的5'的20个碱基或可以是紧邻PAM的第一个核苷酸的5'的约20个碱基。引导RNA可靶向编码参与大麻素生物合成途径的蛋白质的基因的核酸序列。在一些情况下，引导多核酸(如引导RNA)可结合距PAM约1个碱基对至约20个碱基对的基因组区域。引导可结合距PAM约1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19或高达约20个碱基对的基因组区域。
引导核酸(例如引导RNA)可指可与另一种核酸，例如细胞基因组中的靶核酸或原型间隔区杂交的核酸。引导核酸可以是RNA。引导核酸可以是DNA。引导核酸可被编程或设计为与核酸序列位点特异性地结合。引导核酸可包含多核苷酸链并且可被称为单引导核酸。引导核酸可包含两个多核苷酸链并且可被称为双引导核酸。
引导核酸可包含一种或多种修饰以提供具有新的或增强的特征的核酸。引导核酸可包含核酸亲和标签。引导核酸可包含合成核苷酸、合成核苷酸类似物、核苷酸衍生物和/或经修饰的核苷酸。引导核酸可例如在5'端或3'端处或附近包含可与靶核酸中的序列(例如，原型间隔区)杂交的核苷酸序列(例如，间隔区)。引导核酸的间隔区可经由杂交(即，碱基配对)以序列特异性方式与靶核酸相互作用。间隔区序列可与位于原型间隔区相邻基序(PAM)的5'或3'的靶核酸杂交。间隔区序列的长度可以是至少或至少约5、10、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30个或更多个核苷酸。间隔区序列的长度可以是至多或至多约5、10、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30个或更多个核苷酸。
引导RNA还可包含形成二级结构的dsRNA双链体区域。例如，由引导RNA形成的二级结构可包含茎(或发夹)和环。环和茎的长度可变化。例如，环的长度可在约3至约10个核苷酸的范围内，并且茎的长度可在约6至约20个碱基对的范围内。茎可包含一个或多个1至约10个核苷酸的凸起。第二区域的总长度可在约16至约60个核苷酸长度的范围内。例如，环的长度可以是或可以是约4个核苷酸，并且茎可以是或可以是约12个碱基对。dsRNA双链体区域可包含可与RNA结合蛋白，如RNA引导的核酸内切酶，例如Cas蛋白形成复合物的蛋白质结合区段。
引导RNA还可在5'或3'端包含尾区，所述尾区可基本上是单链的。例如，尾区有时与目标细胞中的任何染色体序列不互补，并且有时与引导RNA的其余部分不互补。此外，尾区的长度可变化。尾区的长度可多于或多于约4个核苷酸。例如，尾区的长度可在5或约5至60或约60个核苷酸的范围内。
引导RNA可以RNA分子形式引入细胞或胚中。例如，RNA分子可在体外转录和/或可化学合成。引导RNA然后可以RNA分子形式引入细胞或胚中。引导RNA也可以非RNA核酸分子，例如DNA分子的形式引入细胞或胚中。例如，编码引导RNA的DNA能够可操作地连接至启动子控制序列，以用于在目标细胞或胚中表达所述引导RNA。RNA编码序列能够可操作地连接至由RNA聚合酶III(Pol III)识别的启动子序列。
编码引导RNA的DNA分子还可以是线性的。编码引导RNA的DNA分子还可以是环状的。编码引导RNA的DNA分子还可以是载体的一部分。载体的一些实例可包括质粒载体、噬菌粒、粘粒、人工/微型染色体、转座子和病毒载体。例如，编码RNA引导的核酸内切酶的DNA存在于质粒载体中。合适的质粒载体的其它非限制性实例包括pUC、pBR322、pET、pBluescript以及它们的变体。此外，载体可包含另外的表达控制序列(例如，增强子序列、Kozak序列、聚腺苷酸化序列、转录终止序列等)、选择性标记物序列(例如，抗生素抗性基因)、复制起点等。
当RNA引导的核酸内切酶和引导RNA以DNA分子的形式引入细胞时，各自可以是单独分子(例如，含有融合蛋白编码序列的一个载体和含有引导RNA编码序列的第二载体)的一部分，或者两者可以是同一分子(例如，含有融合蛋白和引导RNA两者的编码(和调控)序列的一个载体)的一部分。
Cas蛋白(如Cas9蛋白或其任何衍生物)可与引导RNA预先复合以形成核糖核蛋白(RNP)复合物。RNP复合物可被引入植物细胞中。RNP复合物的引入可为时控的。细胞可在细胞周期的G1、S和/或M期与其它细胞同步。RNP复合物可在细胞阶段递送，使得HDR增强。RNP复合物可促进同源定向修复。
还可对引导RNA进行修饰。修饰可包括化学改变、合成修饰、核苷酸添加和/或核苷酸消减。所述修饰还可增强CRISPR基因组工程化。修饰可改变gRNA的手性。在一些情况下，在修饰后手性可以是均一的或立体纯的。可合成引导RNA。合成的引导RNA可增强CRISPR基因组工程化。还可截短引导RNA。截短可用于减少不合需要的脱靶诱变。截短可包含任何数量的核苷酸缺失。例如，截短可包含1、2、3、4、5、10、15、20、25、30、40、50个或更多个核苷酸。引导RNA可包含任何长度的靶互补性区域。例如，靶互补性区域的长度可小于20个核苷酸。靶互补性区域的长度可多于20个核苷酸。靶互补性区域可靶向与PAM序列直接相邻的约5bp至约20bp。靶互补性区域可靶向与PAM序列直接相邻的约13bp。如本文所述的多核酸可经修饰。可在多核酸的任何位置进行修饰。可对单一多核酸进行超过一种修饰。多核酸可在修饰后进行质量控制。在一些情况下，质量控制可包括PAGE、HPLC、MS或它们的任何组合。修饰可以是取代、插入、缺失、化学修饰、物理修饰、稳定化、纯化或它们的任何组合。多核酸也可通过以下各项进行修饰：5'腺苷酸、5'鸟苷-三磷酸帽、5’N7-甲基鸟苷-三磷酸帽、5'三磷酸帽、3'磷酸、3'硫代磷酸、5'磷酸、5'硫代磷酸、Cis-Syn胸苷二聚体、三聚体、C12间隔区、C3间隔区、C6间隔区、dSpacer、PC间隔区、rSpacer、间隔区18、间隔区9,3’-3’修饰、5'-5'修饰、无碱基、吖啶、偶氮苯、生物素、生物素BB、生物素TEG、胆固醇基TEG、脱硫生物素TEG、DNPTEG、DNP-X、DOTA、dT-生物素、双重生物素、PC生物素、补骨脂素C2、补骨脂素C6、TINA、3’DABCYL、黑洞淬灭剂1、黑洞淬灭剂2、DABCYL SE、dT-DABCYL、IRDye QC-1、QSY-21、QSY-35、QSY-7、QSY-9、羧基接头、硫醇接头、2'脱氧核糖核苷类似物嘌呤、2'脱氧核糖核苷类似物嘧啶、核糖核苷类似物、2'-0-甲基核糖核苷类似物、糖修饰的类似物、摆动/通用碱基、荧光染料标记、2'氟RNA、2'O-甲基RNA、膦酸甲酯、磷酸二酯DNA、磷酸二酯RNA、硫代磷酸酯DNA、硫代磷酸酯RNA、UNA、假尿苷-5'-三磷酸、5-甲基胞苷-5'-三磷酸或它们的任何组合。在一些情况下，修饰可以是永久性的。在其它情况下，修饰可以是短暂的。在一些情况下，对多核酸进行多种修饰。多核酸修饰可改变核苷酸的物理化学性质，如它们的构象、极性、疏水性、化学反应性、碱基配对相互作用或它们的任何组合。在一些方面，gRNA可经修饰。在一些情况下，修饰是在5'端上、3'端上、从5'端至3'端、单碱基修饰、2'-核糖修饰或它们的任何组合。修饰可选自由以下组成的组：碱基取代、插入、缺失、化学修饰、物理修饰、稳定化、纯化以及它们的任何组合。在一些情况下，修饰是化学修饰。
在一些情况下，修饰是表示为“m”的2-O-甲基3硫代磷酸酯添加。硫代磷酸酯主链可表示为“(ps)”。可从1个碱基至150个碱基进行2-O-甲基3硫代磷酸酯添加。可从1个碱基至4个碱基进行2-O-甲基3硫代磷酸酯添加。可在2个碱基上进行2-O-甲基3硫代磷酸酯添加。可在4个碱基上进行2-O-甲基3硫代磷酸酯添加。修饰也可以是截短。截短可以是5个碱基的截短。在一些情况下，修饰可位于C末端和N末端核苷酸。
修饰也可以是硫代磷酸酯替代物。在一些情况下，天然磷酸二酯键可易于被细胞核酸酶快速降解，并且；使用硫代磷酸酯(PS)键替代物对核苷酸间键联的修饰对于通过细胞降解水解可更稳定。修饰可增加多核酸的稳定性。修饰还可增强生物活性。在一些情况下，硫代磷酸酯增强的RNA多核酸可抑制RNA酶A、RNA酶T1、小牛血清核酸酶或它们的任何组合。这些性质可允许PS-RNA多核酸用于在体内或体外暴露于核酸酶的可能性较高的应用中。例如，可在多核酸的5'或3'端的最后3-5个核苷酸之间引入硫代磷酸酯(PS)键，其可抑制核酸外切酶降解。在一些情况下，可在整个多核酸中添加硫代磷酸酯键以减少核酸内切酶的攻击。
在另一个实施方案中，对真菌进行遗传修饰包括将(i)包含至少一种核定位信号的至少一种RNA引导的核酸内切酶或编码包含至少一种核定位信号的至少一种RNA引导的核酸内切酶的核酸、(ii)至少一种引导RNA或编码至少一种引导RNA的DNA和任选地(iii)至少一种供体多核苷酸如条形码引入真菌或其细胞中以增加色胺衍生的物质，如二甲基色胺、裸盖菇素或脱磷酸裸盖菇素；并且培养所述真菌或其细胞，使得每种引导RNA将RNA引导的核酸内切酶导向至染色体序列中的靶向位点，其中所述RNA引导的核酸内切酶在所述靶向位点中引入双链断裂，并且通过DNA修复过程修复所述双链断裂，从而修饰所述染色体序列，其中所述靶向位点位于编码甲基转移酶、羟化酶、单加氧酶、激酶、脱羧酶、推定转录调控因子和推定转运蛋白的基因中的任一者中，并且所述染色体修饰中断或干扰所述基因的转录和/或翻译。
在一些情况下，可进行GUIDE-Seq分析以确定工程化引导RNA的特异性。通过CRISPR系统核酸酶进行的脱靶裂解的GUIDE-Seq谱分析的一般机制和方案在Tsai,S.等人,“GUIDE-Seq enables genome-wide profiling of off-target cleavage by CRISPRsystem nucleases,”Nature,33:187-197(2015)中进行了论述。为了通过下一代测序评估脱靶频率，可用Cas9 mRNA和引导RNA转染细胞。可在转染后约72小时从经转染细胞中分离基因组DNA，并在潜在脱靶位点进行PCR扩增。可使用威康信托基金会桑格研究所(WellcomeTrust Sanger Institute)基因组编辑数据库(WGE)算法预测潜在脱靶位点。可基于与中靶位点的序列同源性来选择候选脱靶位点。在一些情况下，可使用在gRNA与基因组靶位点之间具有约4个或更少错配的位点。对于每个候选脱靶位点，可设计两个引物对。PCR扩增子可从未处理的(对照)细胞和Cas9/gRNA处理的细胞两者获得。可合并PCR扩增子。可使用TruSeq Nano DNA文库制备试剂盒(Illumina)制备NGS文库。可使用250bp配对末端工作流程在Illumina HiSeq机器上分析样品。在一些情况下，可从每个gRNA文库中获取约4000万个可映射NGS读数。这可相当于对于gRNA的每个候选脱靶位点约450,000个读数的平均数量。在一些情况下，在任何基因组基因座处CRISPR介导的破坏的检测可处于低至0.1％的频率。
计算预测可用于选择可能是靶向基因的最安全选择的候选gRNA。然后可使用由潜在脱靶位点的计算预测操纵的聚焦方法对候选gRNA进行经验性测试。在一些情况下，对gRNA脱靶安全性的评估可采用下一代深度测序方法以分析通过CRISPR设计工具针对每种gRNA预测的潜在脱靶位点。在一些情况下，可选择与基因组中的任何序列具有少于3个错配的gRNA(完美匹配的预期靶标除外)。在一些情况下，可选择与基因组中的任何序列具有少于50、40、30、20、10、5、4、3、2或1个错配的gRNA。在一些情况下，可使用计算机系统或软件来提供候选gRNA的建议与低脱靶潜力的预测。
在一些情况下，可通过以下中的至少一者来鉴定潜在脱靶位点：GUIDE-Seq和靶向PCR扩增以及下一代测序。此外，可对经修饰的细胞(如Cas9/gRNA处理的细胞)进行核型分析，以鉴定任何染色体重排或易位。
可以任何功能浓度引入gRNA。例如，gRNA可以10微克引入细胞。在其它情况下，可引入0.5微克至100微克的gRNA。可引入0.5、5、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95或100微克的gRNA。
引导多核酸可具有任何碱基频率。例如，引导多核酸可具有29As、17Cs、23Gs、23Us、3mGs、1mCs和4mUs。引导多核酸可具有约1至约100个核苷酸。引导多核酸可具有约1至30个单一多核苷酸。引导多核酸可具有约1至10、10至20或20至30个单核苷酸。
可在使用前测试引导多核酸的身份和效力。例如，可使用分光光度分析、RNA琼脂糖凝胶分析、LC-MS、内毒素分析和无菌试验中的至少一者来确定身份和效力。在一些情况下，身份测试可确定临床/治疗性使用的可接受水平。例如，可接受的分光光度分析结果可以是在5.0±0.5mg/mL下14±2μL/瓶。可接受的分光光度分析结果也可以是在5.0±0.5mg/mL下约10-20±2μL/瓶或在约3.0至7.0±0.5mg/mL下约10-20±2μL/瓶。引导多核酸的可接受的临床/治疗大小可以是约100个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约5个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约20个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约40个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约60个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约80个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约100个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约110个碱基至约150个碱基。引导多核酸的临床/治疗大小可以是约120个碱基至约150个碱基。
在一些情况下，可确定引导多核酸的质量。质量可通过LC-MS测定来确定。质量可以是约32,461.0amu。引导多核酸可具有约30,000amu至约50,000amu的质量。引导多核酸可具有约30,000amu至40,000amu、约40,000amu至约50,000amu的质量。质量可以是引导多核酸的钠盐。
在一些情况下，可确定引导多核酸的内毒素水平。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于3EU/mL。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于2EU/mL。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于1EU/mL。临床上/治疗上可接受的内毒素水平可小于0.5EU/mL。
在一些情况下，引导多核酸可进行无菌试验。无菌试验的临床上/治疗上可接受的水平可以是0或由培养物上无生长表示。无菌试验的临床上/治疗上可接受的水平可以是小于0.5％生长。
引导多核酸可通过多种方法，例如通过自动化固相合成组装。可使用标准固相DNA/RNA合成构建多核酸。也可使用合成程序构建多核酸。也可手动或以全自动方式合成多核酸。在一些情况下，合成程序可包括5'-羟基寡核苷酸可首先转化为相应的5'-H-膦酸酯单酯，随后在咪唑存在下氧化为激活的5'-phosphorimidazolidate，并且最后在固相载体上与焦磷酸酯反应。此程序可包括合成后的纯化步骤，如PAGE、HPLC、MS或它们的任何组合。
供体序列
在一些情况下，可将供体序列引入真菌、酵母、植物或其部分的基因组中。在一些情况下，将供体插入基因组断裂中。在一些方面，供体包含与位于靶序列侧翼的序列的同源性。引入供体序列的方法是本领域技术人员已知的，但可包括使用同源臂。例如，供体序列可包含与包含基因组断裂的基因组的至少一部分的同源臂。在一些情况下，将供体序列随机插入大麻或火麻植物细胞基因组的基因组中。
在一些情况下，可使用同源重组以定点方式引入供体序列。同源重组允许内源性基因中的位点特异性修饰，并且因此可校正遗传性或获得性突变，和/或可将新的改变工程化到基因组中。植物中的同源重组和定点整合在例如美国专利号5,451,513、5,501,967和5,527,695中进行了论述。
在一些方面，供体序列包含启动子序列。增加设计的基因产物的表达可通过调节启动子区域或在所需基因序列上游插入更强的启动子来综合地增加表达而实现。在一些方面，可引入在拟南芥和其它植物中具有高度功能性的启动子如35s和Ubi10。在一些情况下，引入在大麻和/或火麻中具有高度功能性的启动子。
在一些情况下，条形码可包含非天然序列。在一些方面，条形码含有天然序列。在一些方面，条形码可用于允许通过基因分型鉴定转基因生物体。在一些方面，供体序列可以是标记物。选择性标记物基因可包括例如光合作用基因(atpB、tscA、psaA/B、petB、petA、ycf3、rpoA、rbcL)、抗生素抗性基因(rrnS、rrnL、aadA、nptII、aphA-6)、除草剂抗性基因(psbA、bar、AHAS(ALS)、EPSPS、HPPD、sul)和代谢基因(BADH、codA、ARG8、ASA2)。来自细菌的sul基因具有除草剂磺胺类药物不敏感的二氢蝶酸合酶活性，并且当使蛋白质产物靶向植物线粒体时可用作选择性标记物(美国专利号US 6121513)。在一些实施方案中，可将编码标记物的序列并入经遗传修饰的细胞或生物体，例如本文所述的真菌、酵母或植物中。在一些实施方案中，可随后从转化的基因组中除去编码标记物的并入序列。在编码标记物的区域之前和之后存在同向重复序列可促进编码标记物的序列的除去。编码标记物的序列的除去可通过细胞器的内源性同源重组系统或通过使用位点特异性重组酶系统(如cre-lox或FLP/FRT)进行。
在一些情况下，标记物可指能够检测的标记，例如放射性同位素、荧光化合物、生物发光化合物、化学发光化合物、金属螯合剂或酶。可检测标记物的实例包括但不限于以下：荧光标记(例如，FITC、罗丹明、镧系元素磷光体)、酶标记(例如，辣根过氧化物酶、β-半乳糖苷酶、荧光素酶、碱性磷酸酶)、化学发光基团、生物素基团、由二级报告基因识别的预定多肽表位(例如，亮氨酸拉链对序列、二级抗体的结合位点、金属结合结构域、表位标签)。
选择性或可检测标记物通常包含允许通常在特定条件下鉴定细胞或目标细胞内用“标签”标记的分子的DNA区段。此类标记物可编码选自但不限于RNA、肽或蛋白质的产生的活性，或者标记物可为RNA、肽、蛋白质、无机和有机化合物或复合物等提供键合位点。例如，选择性标记物包括但不限于包含限制酶裂解点的DNA区段；包含荧光探针的DNA区段；编码提供对另外有毒的化合物(包括抗生素，例如壮观霉素、氨苄青霉素、卡那霉素、四环素)的抗性的产物的DNA区段；BASTA；新霉素-磷酸转移酶II(NEO)和潮霉素-磷酸转移酶(HPT)；编码目标植物靶细胞在自然条件下不具有的产物的DNA区段，例如tRNA基因、营养缺陷型标记物等；编码可容易鉴定的产物的DNA区段，特别是光学可观察到的标记物，例如表型标记物，如-半乳糖苷酶、GUS、荧光蛋白，例如绿色荧光蛋白(GFP)和其它荧光蛋白，例如蓝色(CFP)、黄色(YFP)或红色(RFP)荧光蛋白，以及表面蛋白，其中表现出高荧光强度的那些荧光蛋白特别令人感兴趣，因为如果可分析复杂植物靶结构或植物材料或包含多种类型组织或细胞的植物而不是单个细胞，则这些蛋白质也可在更深的组织层中鉴定；用于PCR的新的引物位点；根据本公开不能通过限制性核酸内切酶或其它DNA修饰的酶或效应结构域修饰的DNA序列的记录；用于特定修饰(例如表观遗传修饰，例如甲基化)的DNA序列；和携带可通过根据本公开的合适CRISPR系统鉴定的PAM基序的DNA序列；以及还有不具有PAM基序，如可天然存在于内源性植物基因组序列中的DNA序列。
在一个实施方案中，供体包含可选择、可筛选或可评分标记物基因或其部分。在一些情况下，充当选择或筛选装置的标记物可在可再生的经遗传修饰的生物体中发挥作用以产生将赋予所述生物体中的组织对另外有毒的化合物的抗性的化合物。用作可选择、可筛选或可评分标记物的目标基因将包括但不限于gus；绿色荧光蛋白(gfp)；荧光素酶(lux)；赋予对诸如卡那霉素(Dekeyser等人，1989)或壮观霉素的抗生素的耐受性的基因(例如壮观霉素氨基糖苷腺苷酰转移酶(aadA)；编码给予对诸如草甘膦(例如5-烯醇丙酮酰莽草酸-3-磷酸合酶(EPSPS)；草甘膦氧化还原酶(GOX)；草甘膦脱羧酶；或草甘膦N-乙酰转移酶(GAT))、茅草枯(例如赋予对2,2-二氯丙酸的耐受性的编码2,2-二氯丙酸脱卤素酶的dehI)、溴苯腈(用于赋予对溴苯腈的耐受性的卤芳基腈水解酶(Bxn))、磺酰基除草剂(例如乙酰羟基酸合酶或乙酰乳酸合酶，赋予对诸如磺酰脲、咪唑啉酮、三唑并嘧啶、嘧啶基氧基苯甲酸酯和苯酞的乙酰乳酸合酶抑制剂的耐受性；编码ALS、GST-II)、双丙氨膦或草丁膦或衍生物(例如赋予对草丁膦或草铵膦、阿特拉津的耐受性的草丁膦乙酰转移酶(bar)(编码GST-III))、麦草畏(麦草畏单加氧酶)或稀禾定(用于赋予对环己二酮(稀禾定)和芳氧基苯氧基丙酸酯(吡氟氯禾灵)的耐受性的经修饰的乙酰辅酶A羧化酶)的除草剂的耐受性的酶的基因等。也可实施其它选择程序，包括阳性选择机制(例如使用大肠杆菌的manA基因，从而允许在甘露糖存在下生长)和双重选择(例如同时使用75-100ppm壮观霉素和3-10ppm草铵膦，或75ppm壮观霉素和0.2-0.25ppm麦草畏)。也可考虑使用浓度为约25-1000ppm，如约150ppm的壮观霉素。在一个实施方案中，可检测标记物可通过各种长度的间隔臂连接以降低潜在位阻。
在一些情况下，供体多核苷酸包含与位于靶序列侧翼的序列的同源性。在一些情况下，供体多核苷酸将终止密码子引入本文提供的基因中，例如以阻断非裸盖菇素色胺的合成。在一些情况下，供体多核苷酸包含条形码、报告基因或选择标记物。
转化
适当的转化技术可包括但不限于：真菌原生质体的电穿孔；脂质体介导的转化；聚乙二醇(PEG)介导的转化；使用病毒进行的转化；细胞的显微注射；细胞的微粒轰击；真空渗入；和根癌农杆菌介导的转化。转化意指将核苷酸序列以引起所述序列的稳定或瞬时表达的方式引入细胞中。
在转化之后，可使用并入转化载体中的显性选择性标记物来选择真菌或其它生物体。在某些实施方案中，此类标记物赋予经转化的真菌或其它生物体抗生素或除草剂抗性，并且可通过将所述真菌或其它生物体暴露于适当浓度的抗生素或除草剂来完成转化体的选择。在选择经转化的真菌或其它生物体并使其生长至成熟后，鉴定表现出经修饰的性状的那些真菌和其它生物体。经修饰的性状可以是上述那些性状中的任一者。此外，本发明的多肽或多核苷酸的表达水平或活性可通过使用RNA印迹、RT-PCR、RNA seq或微阵列分析mRNA表达，或使用免疫印迹或蛋白质印迹或凝胶迁移测定分析蛋白质表达来确定。
用于与本发明一起使用的用于转化真菌或其它细胞的合适方法被认为实际上包括可将DNA引入细胞中的任何方法，如通过直接递送DNA，如通过PEG介导的原生质体转化、通过干燥/抑制介导的DNA摄取、通过电穿孔、通过用碳化硅纤维搅拌、通过农杆菌介导的转化以及通过DNA包被颗粒的加速。尽管应用了诸如这些的技术，但是实际上可稳定地转化任何真菌物种的细胞，并且这些细胞发育成转基因真菌。
农杆菌介导的转化
农杆菌介导的转移是用于将基因引入真菌细胞的广泛适用的系统，因为可将DNA引入完整真菌组织中，从而避免从原生质体再生完整植物的需要。使用农杆菌介导的真菌整合载体来将例如包含CRISPR系统或供体序列的DNA引入真菌细胞中是本领域公知的。
此外，农杆菌介导的转化在其它生物体如双子叶植物中可以是有效的，并且可用于转化双子叶植物，包括拟南芥、烟草、番茄、苜蓿和马铃薯。事实上，虽然农杆菌介导的转化已常规用于双子叶植物多年。在一些情况下，农杆菌介导的转化可用于单子叶植物。例如，农杆菌介导的转化技术现已应用于水稻、小麦、大麦、苜蓿和玉米。
现代农杆菌转化载体能够在大肠杆菌以及农杆菌中复制，从而允许如所描述的方便操作。此外，用于农杆菌介导的基因转移的载体的最新技术进步改进了载体中基因和限制性位点的排列，以促进能够表达各种多肽编码基因的载体的构建。在一些方面，载体可具有方便的多接头区域，所述多接头区域侧接启动子和聚腺苷酸化位点以用于直接表达插入的多肽编码基因并且适用于本文所述的目的。此外，含有武装的(armed)和解除的(disarmed)Ti基因的农杆菌可用于转化。
电穿孔
在一些方面，可使用电穿孔来修饰真菌、酵母、植物或其细胞。为了通过电穿孔进行转化，可使用易碎组织，如细胞或胚性愈伤组织的悬浮培养物，或者可替代地可直接转化未成熟胚或其它有组织的组织。在这项技术中，将部分降解所选细胞的细胞壁，这通过使它们暴露于果胶降解酶(果胶裂解酶)或以受控方式机械损伤进行。
可使用任何转染系统。在一些情况下，可使用Neon转染系统。Neon系统可以是三组件电穿孔仪，其包括中央控制模块、可通过3英尺长的电线连接至中央控制模块的电穿孔室和专用移液器。在一些情况下，专用移液器可配备有可更换和/或一次性无菌尖端。在一些情况下，电穿孔室可配备有可更换/一次性无菌电穿孔比色皿。在一些情况下，可用GMP合格的溶液和缓冲液替代由系统(如Neon系统)的制造商提供的标准电穿孔缓冲液。在一些情况下，可用GMP级磷酸盐缓冲盐水(PBS)替代标准电穿孔缓冲液。在开始样品电穿孔之前，可对控制模块执行自诊断系统检查，以确保Neon系统正常运行。在一些情况下，可在cGMP设施中的10,000级洁净室内的1,000级生物安全柜中进行转染。在一些情况下，可改变电穿孔脉冲电压以优化转染效率和/或细胞活力。在一些情况下，可改变电穿孔脉冲宽度以优化转染效率和/或细胞活力。在一些情况下，可改变电穿孔脉冲数以优化转染效率和/或细胞活力。在一些情况下，电穿孔可包括单脉冲。在一些情况下，电穿孔可包括多于一个脉冲。在一些情况下，电穿孔可包括2个脉冲、3个脉冲、4个脉冲、5个脉冲、6个脉冲、7个脉冲、8个脉冲、9个脉冲或10个或更多个脉冲。
在一些方面，真菌和/或植物的原生质体可用于电穿孔转化。
微粒轰击
根据本发明用于将转化DNA区段递送至真菌细胞和源自其它生物体的细胞的另一种方法是微粒轰击。在这种方法中，颗粒可用核酸包被并通过推进力递送至细胞中。示例性颗粒包括含有钨、铂且优选金的那些颗粒。考虑在一些情况下，DNA沉淀到金属颗粒上对于使用微粒轰击将DNA递送至受体细胞将不是必要的。然而，考虑颗粒可含有DNA而不是被DNA包被。在一些方面，DNA包被的颗粒可通过粒子轰击增加DNA递送的水平。对于轰击，将悬浮的细胞在过滤器或固体培养基上浓缩。可替代地，可将未成熟胚或其它靶细胞排列在固体培养基上。待轰击的细胞位于微粒挡板下方的适当距离处。
通过加速将DNA递送至真菌物细胞中的方法的说明性实施方案是生物射弹粒子递送系统，所述系统可用于推动用DNA包被的颗粒或细胞通过筛网(如不锈钢或Nytex筛网)到覆盖有悬浮培养的单子叶植物细胞的过滤器表面上。筛网使颗粒分散，以使得它们不会以大的聚集体形式递送至受体细胞。
其它转化方法
其它转化方法包括但不限于磷酸钙沉淀、聚乙二醇处理、电穿孔以及这些处理的组合。
为了转化不能从原生质体成功再生的真菌，可使用将DNA引入完整细胞或组织中的其它方式。例如，从未成熟胚或外植体再生植物可如所述实现。此外，碳化硅纤维介导的转化可在有或没有原生质体的情况下使用。使用这种技术的转化可通过将碳化硅纤维与细胞一起在DNA溶液中搅拌来完成。当细胞被刺穿时，DNA被动地进入。
在一些情况下，可改变用于基因组编辑的起始细胞密度以优化编辑效率和/或细胞活力。在一些情况下，用于基因组编辑的起始细胞密度可小于约1x105个细胞。在一些情况下，用于电穿孔的起始细胞密度可以是至少约1x105个细胞、至少约2x105个细胞、至少约3x105个细胞、至少约4x105个细胞、至少约5x105个细胞、至少约6x105个细胞、至少约7x105个细胞、至少约8x105个细胞、至少约9x105个细胞、至少约1x106个细胞、至少约1.5x106个细胞、至少约2x106个细胞、至少约2.5x106个细胞、至少约3x106个细胞、至少约3.5x106个细胞、至少约4x106个细胞、至少约4.5x106个细胞、至少约5x106个细胞、至少约5.5x106个细胞、至少约6x106个细胞、至少约6.5x106个细胞、至少约7x106个细胞、至少约7.5x106个细胞、至少约8x106个细胞、至少约8.5x106个细胞、至少约9x106个细胞、至少约9.5x106个细胞、至少约1x107个细胞、至少约1.2x107个细胞、至少约1.4x107个细胞、至少约1.6x107个细胞、至少约1.8x107个细胞、至少约2x107个细胞、至少约2.2x107个细胞、至少约2.4x107个细胞、至少约2.6x107个细胞、至少约2.8x107个细胞、至少约3x107个细胞、至少约3.2x107个细胞、至少约3.4x107个细胞、至少约3.6x107个细胞、至少约3.8x107个细胞、至少约4x107个细胞、至少约4.2x107个细胞、至少约4.4x107个细胞、至少约4.6x107个细胞、至少约4.8x107个细胞或至少约5x107个细胞。
使用本文所述的任何核酸递送平台，植物或其任何部分(包括但不限于细胞)的基因组破坏的效率可导致如通过核酸或蛋白质分析测量的基因或其部分的约20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、91％，92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、99.5％、99.9％或高达约100％破坏。
生物体育种
在一些实施方案中，本公开的真菌、酵母或植物可用于产生新的植物品种。在一些实施方案中，所述植物用于开发具有所需表型的新的、独特的且优良的品种或杂种。在一些实施方案中，选择方法(例如分子标记物辅助选择)可与育种方法组合以加速所述过程。在一些实施方案中，方法包括(i)将本文提供的包含表达盒的任何生物体作为供体与受体生物体品系杂交以产生FI群体；(ii)选择具有表达盒的后代。任选地，可通过测试目标基因的表达来进一步选择后代。在一些实施方案中，转移供体生物体的完整染色体。例如，具有表达盒的转基因生物体可充当异花授粉中的父本或母本，以通过从供体接受转基因来产生后代，从而产生具有表达盒的后代。在用于产生具有表达盒的生物体的方法中，原生质体融合也可用于将转基因从供体转移至受体。原生质体融合是两个或更多个原生质体(通过酶处理除去细胞壁的细胞)之间的诱导或自发结合，如体细胞杂交，以产生单个双核或多核细胞。将甚至可用在自然界中不能混种的物种获得的融合细胞组织培养成表现出合乎需要的性状组合的杂种生物体。更具体地，可从具有表达盒的生物体获得第一原生质体。可从第二生物体，任选地从另一种物种或品种，或从同一物种或品种获得第二原生质体，所述物种或品种包含商业上合乎需要的特征，如但不限于抗病性、抗虫性等。然后使用本领域已知的传统原生质体融合程序使所述原生质体融合以产生杂交。可替代地，胚挽救可用于将表达盒从供体转移至受体。胚挽救可用作分离胚和对所述胚进行组织培养的程序。
在一些情况下，可使用群体改良方法。群体改良方法自然分为两类，基于纯粹表型选择的那些(通常称为混合选择)和基于用后代测试进行选择的那些。群体间改良利用开放育种群体的概念；从而允许基因从一个群体流向另一个群体。通过从两种来源分离包含合乎需要的性状的植物，可应用选择来改良一个(或有时两个)群体。
在另一方面，可利用混合选择。在混合选择中，选择、收获合乎需要的个体植物，并在没有后代测试的情况下使种子复合以产生下一代。由于选择仅基于母本，并且不存在对授粉的控制，因此混合选择相当于随机交配与选择形式。如本文所述，混合选择的目的是增加优良基因型在群体中的比例。虽然有时使用混合选择，但多杂交通常优选后代测试，因为它们操作简单并且与目标明显相关，即在合成物中利用一般配合力。
在一些实施方案中，育种可利用分子标记物。基于本申请的植物的基因组设计和制造分子标记物。在一些实施方案中，分子标记物选自同工酶电泳、限制性片段长度多态性(RFLP)、随机扩增多态性DNA(RAPD)、任意引物聚合酶链反应(AP-PCR)、DNA扩增指纹分析(DAF)、特征序列扩增区域(SCAR)。扩增片段长度多态性(AFLP)和简单序列重复序列(SSR)，其也称为微卫星等。开发分子标记物的方法及其应用由Avise(Molecular markers,natural history,and evolution,Publisher:Sinauer Associates,2004,ISBN0878930418,9780878930418)、Snvastava等人(Plant biotechnology and molecularmarkers,Publisher:Springer,2004,ISBN1402019114,9781402019111)和Vienne(Molecular markers in plant genetics and biotechnology,Publisher:SciencePublishers,2003)描述，所述文献出于所有目的各自以引用的方式整体并入。分子标记物可用于分子标记物辅助育种。
本文提供的还可以是用于产生转基因真菌的方法。在一些方面，本文提供的方法可包括(a)使真菌细胞与核酸内切酶或编码核酸内切酶的多肽接触。在一些情况下，核酸内切酶在真菌细胞的基因组中引入遗传修饰，所述遗传修饰导致式I-IV、其衍生物或类似物的量与没有遗传修饰的可比对照中所述相同化合物的量相比增加。在一些方面，方法还可包括培养已如前所述进行遗传修饰的真菌细胞以产生转基因真菌。制造转基因真菌的方法可包括电穿孔、农杆菌介导的转化、生物射弹粒子轰击或原生质体转化。在一些方面，方法还可包括培养真菌细胞以产生真菌。
在一些方面，本文提供的还可以是用于产生转基因植物的方法，所述方法包括使植物细胞与核酸内切酶或编码核酸内切酶的多肽接触。核酸内切酶可引入遗传修饰，所述遗传修饰导致裸盖菇素、脱磷酸裸盖菇素或二甲基色胺(DMT)、其衍生物或类似物的量与没有遗传修饰的可比对照中所述相同化合物的量相比增加。
在一些方面，本文提供的还可以是用于产生转基因动物的方法，所述方法包括使动物细胞与核酸内切酶或编码核酸内切酶的多肽接触。核酸内切酶可引入遗传修饰，所述遗传修饰导致裸盖菇素、脱磷酸裸盖菇素或二甲基色胺(DMT)、其衍生物或类似物的量与没有遗传修饰的可比对照中所述相同化合物的量相比增加。
在一些方面，本文提供的还可以是用于产生转基因昆虫的方法，所述方法包括使昆虫细胞与核酸内切酶或编码核酸内切酶的多肽接触。核酸内切酶可引入遗传修饰，所述遗传修饰导致裸盖菇素、脱磷酸裸盖菇素或二甲基色胺(DMT)、其衍生物或类似物的量与没有遗传修饰的可比对照中所述相同化合物的量相比增加。
在一些方面，本文提供的还可以是用于产生转基因酵母的方法，所述方法包括使酵母细胞与核酸内切酶或编码核酸内切酶的多肽接触。核酸内切酶可引入遗传修饰，所述遗传修饰导致裸盖菇素、脱磷酸裸盖菇素或二甲基色胺(DMT)、其衍生物或类似物的量与没有遗传修饰的可比对照中所述相同化合物的量相比增加。
在一些方面，本文提供的还可以是用于产生转基因大肠杆菌的方法，所述方法包括使大肠杆菌细胞与核酸内切酶或编码核酸内切酶的多肽接触。核酸内切酶可引入遗传修饰，所述遗传修饰导致裸盖菇素、脱磷酸裸盖菇素或二甲基色胺(DMT)、其衍生物或类似物的量与没有遗传修饰的可比对照中所述相同化合物的量相比增加。
包括真菌细胞基因组的修饰的方法可导致：与没有基因组修饰的可比对照相比，转基因真菌中按干重测量的多5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％或高达约80％的
Figure BDA0003676072500000671
(式IV)。包括修饰的方法还可导致与没有修饰的可比对照相比，转基因真菌中按干重测量的多约1％、5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、80％、90％、100％或高达约200％的
Figure BDA0003676072500000672
(式I)。此外，包括修饰的方法还可导致与没有修饰的可比对照相比，转基因真菌中按干重测量的多约1％、5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、80％、90％、100％或高达约200％的裸盖菇素或脱磷酸裸盖菇素。
本文提供的还可以是包含基因的破坏的经遗传修饰的细胞，所述破坏导致化合物
Figure BDA0003676072500000673
(式IV)、其衍生物或类似物的量与没有所述遗传修饰的可比对照细胞中所述相同化合物的量相比增加。此外，本文提供的还可以是包含基因的破坏的经遗传修饰的细胞，所述破坏导致化合物
Figure BDA0003676072500000674
(式I)、其衍生物或类似物的量与没有所述遗传修饰的可比对照细胞中所述相同化合物的量相比增加。此外，本文提供的还可以是包含基因的破坏的经遗传修饰的细胞，所述破坏导致裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素、其衍生物或类似物的量与没有所述遗传修饰的可比对照细胞中所述相同化合物的量相比增加。可替代地，经遗传修饰的细胞是植物细胞、真菌细胞、细菌细胞、动物细胞或昆虫细胞。
另外，本文提供的还可以是包含核酸内切酶或编码能够引入遗传修饰的所述核酸内切酶的多核苷酸的组合物，其中所述遗传修饰导致与没有所述遗传修饰的可比对照细胞相比，裸盖菇素或脱磷酸裸盖菇素、它们的衍生物或类似物的量增加。
裸盖菇素合成基因转基因方法和组合物
本文提供的可以是用裸盖菇素合成基因转化蘑菇的方法。在一些实施方案中，合成4种主要裸盖菇素合成基因的编码序列并克隆到在35S启动子控制下的过表达载体系统pGWB5中。在一些实施方案中，还产生了具有驱动这些基因的表达的不同启动子(包括Gpd、EF1a和肌动蛋白)的另外载体。
在一些情况下，使用pGWB5转化担子菌纲真菌，以测试转化效率并制定方案。在一些情况下，转化包括单独和组合的不同Psi基因，以观察裸盖菇素产生增加的潜力。在一些情况下，产生并测试多顺反子载体内串联的四种Psi基因的一体化表达载体。
在一些实施方案中，能够在不同的底物上繁殖和生长古巴裸盖菇，以产生成熟的结实蘑菇和菌丝体。在一些实施方案中，从蘑菇菌褶中提取组织并通过农杆菌介导的转化来转化Psi基因。在一些实施方案中，由菌丝体产生原生质体，并且进行PEG介导的Psi基因转化以及农杆菌介导的菌丝体转化。在一些实施方案中，使古巴裸盖菇在室温下在PDA琼脂或大麦-珍珠岩堆肥中生长7天。在一些情况下，在转化前收获菌丝体和子实体以用于组织提取和细胞分离。
在一些实施方案中，Psi基因过表达是在两种不同启动子类型(35S启动子、广泛使用的植物过表达启动子)和两种真菌特异性过表达启动子GPD和CcDED1的控制下(表4，图3，图4)。
表4.基因表达载体
Figure BDA0003676072500000681
在一些实施方案中，PsiD基因过表达包括在35S启动子控制下表达PsiD基因的载体(表5：SEQ ID NO:18，17,647bp；图3A)。在一些实施方案中，PsiH基因过表达包括在35S启动子控制下表达PsiH基因的载体(表5：SEQ ID NO:17，18,494bp；图3B)。在一些实施方案中，PsiK基因过表达包括在35S启动子控制下表达PsiK基因的载体(表5：SEQ ID NO:16，17,420bp；图3C)。在一些实施方案中，PsiM基因过表达包括在35S启动子控制下表达PsiM基因的载体(表5：SEQ ID NO:15，17,267bp；图3D)。
在一些实施方案中，Psi基因过表达包括在GcDED1启动子控制下表达Psi基因的载体(表5：SEQ ID NO:19，9,462bp；图4A)。在一些实施方案中，Psi基因过表达包括在GPD启动子控制下表达Psi基因的载体(表5：SEQ ID NO:20，8,067bp；图4B)。
药物和营养食品组合物以及方法
本文提供的可以是药物或营养食品组合物，所述药物或营养食品组合物包含本文所述的经遗传修饰的细胞、生物体、真菌或植物或它们的提取物或产物。本文提供的还可以是药物或营养食品试剂，使用所述药物或营养食品试剂的方法，以及制备包含本文所述的经遗传修饰的细胞、生物体、真菌或植物或它们的提取物或产物的药物或营养食品组合物的方法。本文还提供了本文所述的药学上和营养食品适合的细胞、生物体或植物或它们的提取物、衍生物或产物。
在一些情况下，本文所述的经遗传修饰的细胞、生物体、真菌或植物或它们的提取物或产物可用作药物或营养食品剂。在一些情况下，包含此类药物或营养食品剂的组合物可用于治疗或稳定疾患或与疾患相关的症状，所述疾患如抑郁、焦虑、创伤后应激、成瘾或戒断相关的副作用(如戒烟)和心理困扰(包括癌症相关的心理困扰)。具体而言，本文所述的经遗传修饰的细胞、生物体、真菌或植物或它们的提取物、衍生物或产物可用于缓解与精神障碍和疾患相关的各种症状。
在一些方面，本文所述的细胞、生物体或植物或它们的提取物或产物可用于治疗特定症状。例如，疼痛、恶心、体重减轻、消瘦、多发性硬化症、过敏、感染、血管收缩、抑郁症、偏头痛、高血压、中风后神经保护以及抑制肿瘤生长、抑制血管生成和抑制转移、抗氧化剂和神经保护剂。在一些方面，本文所述的细胞、生物体或植物或它们的提取物或产物可用于治疗另外的症状。例如，持续性肌肉痉挛(包括为多发性硬化症的特征的那些)、严重关节炎、周围神经病变、顽固性疼痛、偏头痛、需要临终照护的终末疾病、伴有顽固性头痛的脑积水、顽固性头痛综合征、神经性面部疼痛、带状疱疹、慢性非恶性疼痛、灼性神经痛、慢性炎症性脱髓鞘性多发性神经病、膀胱痛、肌阵挛、脑震荡后综合征、残肢疼痛、阻塞性睡眠呼吸暂停、创伤性脑损伤(TBI)、眼内压升高、阿片类药物(opioid)或阿片剂(opiate)戒断和/或食欲不振。
在一些情况下，本文所述的细胞、生物体或植物或它们的提取物或产物还可包含其它药学上或营养食品上相关的化合物和提取物，包括类黄酮、单胺氧化酶抑制剂和植物甾醇(例如，芹菜素、槲皮素、大麻黄素(cannflavin)A、β-谷固醇等)。
在一些情况下，它们的提取物或产物可经受包括保存裸盖菇素(psilocybene)、二甲基色胺或脱磷酸裸盖菇素(psilocene)的提取物的方法。本公开的提取物被设计为产生供人或动物通过吸入(通过燃烧、汽化和雾化)、口腔内颊吸收、口服施用和局部施加递送方法消耗的产品。本公开教导了一种优化方法，在所述方法中通过在干燥收获植物或真菌达到5％、10％或15％水重时进行提取来提取目标化合物。由于发生蒸发，茎通常仍然“凉爽”且“橡胶状”。此时间范围(或者如果在过程中的这一点冷冻)允许提取器最大限度地减少活性剂蒸发损失。凉爽/缓慢、-干燥与精油保存之间存在直接关联。因此，与干燥过快、或过热条件或简单地干燥过度(<10％H20)的花中的EO损失存在直接关联。本文所述的细胞、生物体或植物或它们的提取物或产物的化学提取可在不同压力和温度下使用不同相的极性和非极性溶剂来完成以选择性地或完全地提取其它具有风味、香味或药理价值的化合物，以单独或组合用于产品的配制中。提取物可成型并形成单剂量或多剂量包装，例如大麻浓缩物(dab)、小丸和load。用于选择性提取我们的栽培品种的溶剂可包括水、二氧化碳、1,1,1,2-四氟乙烷、丁烷、丙烷、乙醇、异丙醇、己烷和柠檬烯，组合或系列。本公开的提取物也可与提取物的目标纯化合物(例如大麻素或萜)组合，以进一步增强或改变所得制剂的香味、风味或药理学。在一些实施方案中，提取物补充有萜或大麻素以针对提取过程中这些化合物的任何损失进行调整。
在一些方面，本公开的经遗传修饰的生物体、衍生物或提取物可用于蒸发、生产用于电子烟的电子烟油或酊剂，或用于生产其它消费品，如食用品、香膏或局部涂抹物。在一个方面，本文提供的经修饰的组合物可用作补充剂，例如食品补充剂。在一些实施方案中，本文所述的细胞、生物体或植物或它们的提取物或产物可用于制造食用品。可食用食谱可从提取大麻素和萜开始，所述大麻素和萜然后用作各种可食用食谱的成分。用于食用品的提取方法包括提取到食用油、牛奶、奶油、香树油、面粉和黄油中。富含脂质的提取介质/食用品被认为有助于吸收到血流中。脂质可作为赋形剂与本文提供的各种组合物组合使用。在其它方面，本文提供的组合物可包括：口服形式、透皮形式、油制剂、可食用食品或食品基质、水性分散液、乳液、溶液、悬浮液、酏剂、凝胶、糖浆、气雾剂、喷雾剂、粉末、片剂、锭剂、凝胶、洗剂、糊剂、配制棒、香膏、乳膏或软膏。
本文还提供了包括本文提供的组合物的药盒。药盒可包括包装、说明书和本文提供的各种组合物。在一些方面，药盒还可含有用于产生本文提供的各种植物和植物部分的另外组合物，如花盆、土壤、肥料、水和培养工具。
虽然本文已经显示和描述了本公开的优选实施方案，但是对于本领域技术人员显而易见的是，此类实施方案仅以举例的方式提供。在不偏离本公开的情况下，本领域技术人员现在将想到许多变化、改变和替代。应理解的是，本文所述的本公开的实施方案的各种替代方案可用于实施本公开。这意味着以下权利要求书限定本公开的范围并且因此涵盖这些权利要求及其等效物范围内的方法和结构。
实施例
实施例1：在古巴裸盖菇中过表达Psi基因的策略
步骤1.构建裸盖菇素途径表达载体。
正在构建具有不同强度的不同启动子的一组表达载体。一些启动子是蘑菇特异性的，而其它启动子来自高表达植物系统等(图5A)。然后将由这些表达载体产生农杆菌。
步骤2.制备用于转化的蘑菇材料。
如实施例3-7所示，分离原生质体、分生孢子、菌褶组织和菌丝体以用于转化。适当方案的选择取决于待转化的蘑菇。在此，如实施例3-5和图5B所例示，分离原生质体和提取物菌褶组织。如实施例4所示从菌丝体中提取原生质体。使用农杆菌共培养的菌褶组织转化的方法在实施例6中示出。
步骤3.转化
使用各种方案用来自步骤1的质粒DNA转染来自步骤2的培养的原生质体。参见实施例3-5。此外，使用各种方案用来自步骤1的农杆菌转化来自步骤2的菌褶组织。参见实施例6-7。将选择具有质粒DNA或农杆菌并入的转化体，如图5C所示。
步骤4.再生。
将从步骤3的转化体再生成体蘑菇，如图5D所示。
步骤5.裸盖菇素分析。
将通过气相色谱/质谱分析经遗传修饰的蘑菇的裸盖菇素含量，如图5E所示。裸盖菇素占未修饰的古巴裸盖菇干重的0.63％。遗传工程化的目标是将裸盖菇素的含量提高至>6％。
实施例2：过表达Psi基因的载体构建体
已经合成了4种主要裸盖菇素合成基因(psiD/psiH/psiK/psiM)的编码序列并克隆到在35S启动子控制下的过表达载体系统(pGWB5)中。35S启动子是广泛使用的植物过表达启动子。参见表4。例如，将PsiD基因克隆到在35S启动子控制下表达PsiD基因的载体中(表5：SEQ ID NO:18，17,647bp；图3A)，将PsiH基因克隆到在35S启动子控制下表达PsiH基因的载体中(表5：SEQ ID NO:17，18,494bp；图3B)，将PsiK基因克隆到在35S启动子控制下表达PsiK基因的载体中(表5：SEQ ID NO:16，17,420bp；图3C)，将PsiM基因克隆到在35S启动子控制下表达PsiM基因的载体中(表5：SEQ ID NO:15，17,267bp；图3D)。
此外，还产生了多顺反子载体内串联的四种Psi基因的一体化表达载体，并且目前正在进行测试。
产生了具有不同启动子(包括GPD、EF1a和肌动蛋白)的其它载体，并且4种主要裸盖菇素合成基因(psiD/psiH/psiK/psiM)将被克隆到这些载体中。例如，GPD和CcDED1启动子是两种真菌特异性过表达启动子。参见表4。Psi基因将被克隆到在GcDED1启动子控制下表达Psi基因的载体中(载体主链表5：SEQ ID NO:19，9,462bp；图4A)，或克隆到在GPD启动子控制下表达Psi基因的载体中(表5：SEQ ID NO:20，8,067bp；图4B)。
实施例3：载体介导的原生质体转染：方案A
材料
将白灵侧耳菌株在25℃下在PDSA培养基(20％马铃薯、2％右旋糖、0.3％KH2PO4、0.15％MgSO4、0.0005％维生素B1、2％琼脂)上生长并保持在4℃。
菌丝体的营养培养在25℃下在PDSB培养基(不含琼脂的PDSA培养基)中进行1周。
原生质体提取。
通过尼龙网渗透，收集在PDSB培养基中生长7天的1gr菌丝体。
在0.6M的MgSO4中洗涤两次。
重悬于含有1.5％溶壁酶(lywallzyme)(广东省微生物研究所)和0.6M的MgSO4的3ml裂解缓冲液中，然后在32℃下孵育2.5小时，轻轻振荡以释放原生质体。
将原生质体通过具有一层1mm松散脱脂棉的玻璃注射器过滤进行纯化，并通过在4℃下以2000gf离心20分钟收集。
用含有0.5M甘露醇和50mM马来酸缓冲液(pH 5.5)的3ml MM缓冲液洗涤两次。
在2-3ml的MMC缓冲液(0.5M甘露醇、50mM pH 5.5的马来酸缓冲液、5mM CaCl2)中重悬至108–109个原生质体ml-1的浓度。
原生质体转化
将3ug的所需质粒、12.5ul的PTC缓冲液(25％PEG4000、10mM pH 7.5的Tris-HCl、25mM CaCl2)添加至50ul冷却的原生质体悬浮液中并充分混合。
将混合物在冰上保持20分钟。
将0.5ml的PTC缓冲液添加至混合物中并轻轻混合，然后在室温下孵育5分钟。
原生质体混合物准备好用于涂铺在再生和筛选培养基上。
原生质体再生
将原生质体混合物用1ml STC缓冲液(18.2％山梨糖醇、10mM pH 7.5的Tris-HCl、25mM CaCl2)稀释，并在25℃下涂铺在再生培养基(PDSA加1.0M山梨糖醇)上持续24小时。
在25℃下再生培养24小时后，向每个板中添加20ml筛选培养基(PDSA加0.8M山梨糖醇、80ug/ml潮霉素B、0.8％琼脂)并在25℃下在黑暗中孵育2周。
将出现在筛选培养基上的推定转化体在含有80ug/ml潮霉素B的PDSA培养基上进行进一步的五轮继代培养以筛选稳定的转化体。一些再生原生质体在直径1-2mm时停止生长。只有通过1-2mm直径尺寸的那些才被转移至进一步的选择轮次。
平均转化效率是每微克质粒pAN7-1 DNA约3个转化体。
DNA提取和分析
通过真菌DNA提取(FDE)方法从白灵侧耳的推定稳定转化体和非转化对照的菌丝体分离基因组DNA。将1克菌丝体在液氮中粉碎成粉末并在68℃下在10ml TESN缓冲液(50mMpH 7.5的Tris-HCl、100mM pH 8.0的EDTA、0.5％SDS、300mM pH 5.2的NaOAc)中消化1小时。添加3.5ml 3M NaOAc(pH 5.2)并在冰上孵育20分钟后，将消化混合物在4℃下以8000g离心20分钟。通过苯酚/氯仿提取方法提取上清液中的DNA。
实施例4：载体介导的原生质体转化：方案B
原生质体提取和收集：
步骤1：将小块单核菌丝体接种到CYM培养基(1％麦芽糖、2％葡萄糖、0.2％酵母提取物、0.2％胰蛋白胨、0.05％MgSO47H2O、0.46％KH2PO4)中，并在25℃下生长5天，同时在230rpm下振荡。
步骤2：通过离心收获菌丝体，用0.7M NaCl洗涤两次，并在25℃下用酶溶液(在1MMgSO4和0.6M磷酸盐缓冲液中的50mg/ml来自哈茨木霉[Sigma-Aldrich]的裂解酶，pH 6.0)处理2.0至2.5小时。
步骤3：孵育后，通过无菌Miracloth过滤将原生质体与菌丝碎片分离，并通过以3,000×g离心10分钟收集。
步骤4：将原生质体用1M山梨糖醇洗涤两次，并用1M山梨糖醇将原生质体密度调整至108/ml。
PEG介导的转化：
步骤1：将50微升原生质体(108/ml)与10μg每种质粒DNA和12.5μl的PEG溶液(40％PEG 4000，10mM Tris-HCl，pH 8.0，25mM CaCl2；过滤器灭菌)混合。
步骤2：将原生质体在冰上孵育20分钟。
步骤3：添加500微升PEG溶液，轻轻混合，并在室温下孵育5分钟。
步骤4：添加1毫升的冰冷STC缓冲液(1M山梨糖醇，10mM Tris-HCl，pH 8.0，25mMCaCl2)，然后将混合物铺展在含有20ml PDAS再生琼脂培养基(PDA加0.6M蔗糖，pH 6.5)的板上。
步骤5：将板在25℃下孵育48小时，然后添加5ml含有600μg/ml潮霉素B(Duchefa,The Netherlands)、600μg/ml腐草霉素(Invitrogen)或60μg/ml萎锈灵(Duchefa,TheNetherlands)的PDAS培养基作为覆盖层，并将板在25℃下进一步孵育，直到出现转化体(5至7天)。
原生质体再生：
步骤1：将转化体单独继代培养到含有50μg/ml潮霉素、50μg/ml腐草霉素或5μg/ml萎锈灵的新鲜PDA板上。
步骤2：在MMP培养基(1％麦芽提取物、0.5％真菌蛋白胨、1.5％琼脂)上与相应的选择剂一起在25℃下培养20至22天后，获得古巴裸盖菇的成熟子实体。
实施例5：农杆菌介导的原生质体转化。
材料：菌褶组织
从杏鲍菇的子实体切割菌幕，并无菌切除暴露的菌褶组织并切成1.0×0.5cm的片。
农杆菌制备
将携带目标质粒载体的GV3101在补充有卡那霉素(50μg/ml)的50ml LB培养基中在28℃下生长2天至600nm处1.6的光密度。通过以4,000g离心30分钟收集细菌，然后用含有100mM MgCl2和100μM乙酰丁香酮的50ml洗涤溶液洗涤一次。在以4,000g再离心30分钟后，将细菌团块重悬于洗涤溶液中至600nm处1.0的光密度。
转化(这种黑暗培养方法对于生长菌丝体和消除农杆菌非常有效)。
将这些片(来自##)真空渗入农杆菌悬浮培养物中两次，持续10分钟。
将抽真空的组织用三次蒸馏水洗涤，并在无菌条件下在无菌Whatman滤纸上干燥10分钟。
然后将组织转移至没有培养基的无菌培养皿中，并在黑暗中在25℃下孵育7-14天。
为了选择，将黑暗培养的活性组织转移至含有50μg/ml潮霉素和100μg/ml头孢噻肟的PDA(马铃薯右旋糖琼脂)培养基(20％马铃薯提取物、2％右旋糖和1.5％琼脂)中并在25℃下在黑暗中培养2-3周。
然后将推定转化体在25℃下在黑暗中继代培养到PDA培养基上持续1周。最后，菌丝体将在振荡孵育箱中在25℃和130g下在含有PDB(不含琼脂的PDA)的液体培养基上培养2周。
然后将通过Whatman滤纸过滤来分离菌丝体并用于进一步加工。
DNA提取：将从推定转基因和未转化的蘑菇收集菌丝体，并使用预冷的研钵和研杵在液氮中研磨。在十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)后，DNA将从菌丝体中分离出来。
实施例6：农杆菌介导的菌丝体转化。
将古巴裸盖菇菌丝体在马铃薯右旋糖琼脂(PDA)上常规保持在25℃。在MMP培养基(1％麦芽提取物、0.5％真菌蛋白胨、1.5％琼脂)上在25℃下培养20至22天后，获得古巴裸盖菇的成熟子实体。
将含有所需表达载体的根癌农杆菌菌株AGL1在补充有适当抗生素的LB培养基中生长24小时。
随后在200μM乙酰丁香酮存在下用农杆菌诱导培养基(AIM)(诱导培养基(IM)[含有0.5％(w/v)甘油、0.2mM乙酰丁香酮(AS)、40mM2-(N-吗啉代)乙磺酸(MES)，pH 5.3的MM])将细菌培养物稀释至在660nm处0.15的光密度并且再生长5至6小时。
使用Ultra-Turrax均质器将从通用生长培养基获得的5天龄的古巴裸盖菇菌丝体均质化，并将菌丝片段转移至新鲜的通用生长培养基中并生长24小时以得到均匀的菌丝体浆液。
将100-μl菌丝体悬浮液与100μl的细菌培养物混合，然后铺展在玻璃纸盘上，覆盖在AIM琼脂板上，并在25℃下孵育48小时。
共培养后，将玻璃纸盘转移至含有200μg/ml特美汀的PDA培养基中以杀死残余农杆菌细胞和含有100μg/ml潮霉素的PDA培养基中以选择真菌转化体。
将这些在25℃下孵育直到出现潮霉素抗性菌落。随后将单独菌落转移至含有50μg/ml潮霉素的PDA培养基中。
在MMP培养基(1％麦芽提取物、0.5％真菌蛋白胨、1.5％琼脂)上与相应的选择剂一起在25℃下培养20至22天后，获得古巴裸盖菇的成熟子实体。
实施例7：农杆菌介导的子实体转化。
将古巴裸盖菇在马铃薯右旋糖琼脂(PDA)上常规保持在25℃。在MMP培养基(1％麦芽提取物、0.5％真菌蛋白胨、1.5％琼脂)上在25℃下培养20至22天后，获得古巴裸盖菇的成熟子实体。
将含有所需表达载体的根癌农杆菌菌株AGL-1在补充有适当抗生素的LB培养基中生长24小时。
随后在200μM乙酰丁香酮存在下用农杆菌诱导培养基(AIM)将细菌培养物稀释至在660nm处0.15的光密度并且再生长5至6小时。
使用解剖刀从MMP板上切下成熟子实体(成熟但在菌褶暴露之前)并切成小切片。
将子实体菌褶组织片与诱导的根癌农杆菌培养物混合并真空渗入，直到不再出现气泡。
将渗入的菌褶片转移至覆盖在AIM琼脂板上的纤维素盘上。如实施例6所述进行转化体的共培养和选择。
共培养后，将玻璃纸盘转移至含有200μg/ml特美汀的PDA培养基中以杀死残余农杆菌细胞和含有100μg/ml潮霉素的PDA培养基中以选择真菌转化体。
将这些在25℃下孵育直到出现潮霉素抗性菌落。随后将单独菌落转移至含有50μg/ml潮霉素的PDA培养基中。
在MMP培养基(1％麦芽提取物、0.5％真菌蛋白胨、1.5％琼脂)上与相应的选择剂一起在25℃下培养20至22天后，获得古巴裸盖菇的成熟子实体。
实施例8：转化、转染和再生
将古巴裸盖菇在不同的底物上繁殖和生长，以产生成熟的结实蘑菇和菌丝体，如图6所示。将古巴裸盖菇在室温下在PDA琼脂(图6A和图6B)以及还在大麦-珍珠岩堆肥(图6C)中生长7天。
使用实施例3-7中描述的转化或转染方案，使用实施例2中描述的pGWB5载体转化担子菌纲真菌。转化包括单独和组合的不同Psi基因(使用多个不同的载体，或具有多个Psi基因的载体)。
例如，从蘑菇菌褶中提取组织并通过实施例3-7中描述的农杆菌介导的转化来转化Psi基因。
原生质体由菌丝体产生并用PEG介导的转染转化Psi基因。用农杆菌介导的转化来转化菌丝体。
在多个转化真菌再生后，将进行多核苷酸分析以确认基因整合并测定RNA表达水平。此外，将测定被破坏的基因的mRNA和蛋白质水平。还将测定植物组织中一种或多种生物活性代谢物如萜或大麻素的含量。例如，裸盖菇素和/或脱磷酸裸盖菇素中的一者或多者的含量将通过本领域普通技术人员已知的程序测定。
表5.裸盖菇素表达载体序列。
Figure BDA0003676072500000811
Figure BDA0003676072500000821
Figure BDA0003676072500000831
Figure BDA0003676072500000841
Figure BDA0003676072500000851
Figure BDA0003676072500000861
Figure BDA0003676072500000871
Figure BDA0003676072500000881
Figure BDA0003676072500000891
Figure BDA0003676072500000901
Figure BDA0003676072500000911
Figure BDA0003676072500000921
Figure BDA0003676072500000931
Figure BDA0003676072500000941
Figure BDA0003676072500000951
Figure BDA0003676072500000961
Figure BDA0003676072500000971
Figure BDA0003676072500000981
Figure BDA0003676072500000991
Figure BDA0003676072500001001
Figure BDA0003676072500001011
Figure BDA0003676072500001021
Figure BDA0003676072500001031
Figure BDA0003676072500001041
Figure BDA0003676072500001051
Figure BDA0003676072500001061
Figure BDA0003676072500001071
Figure BDA0003676072500001081
Figure BDA0003676072500001091
Figure BDA0003676072500001101
Figure BDA0003676072500001111
Figure BDA0003676072500001121
Figure BDA0003676072500001131
Figure BDA0003676072500001141
Figure BDA0003676072500001151
Figure BDA0003676072500001161
Figure BDA0003676072500001171
Figure BDA0003676072500001181
Figure BDA0003676072500001191
Figure BDA0003676072500001201
Figure BDA0003676072500001211
Figure BDA0003676072500001221
Figure BDA0003676072500001231
Figure BDA0003676072500001241
Figure BDA0003676072500001251
Figure BDA0003676072500001261

Claims (107)

1.一种包含遗传修饰的经遗传修饰的生物体，所述遗传修饰导致选自以下的化合物：
Figure FDA0003676072490000011
(式I，二甲基色胺(DMT))、
Figure FDA0003676072490000012
(式III，脱磷酸裸盖菇素)以及它们的衍生物或类似物的产生与没有所述遗传修饰的可比对照生物体中所述相同化合物的产生相比增加。
2.一种包含遗传修饰的经遗传修饰的生物体，所述遗传修饰导致选自以下的化合物：
Figure FDA0003676072490000013
(式I，二甲基色胺(DMT))、
Figure FDA0003676072490000014
(式II，裸盖菇素)、
Figure FDA0003676072490000021
(式III，脱磷酸裸盖菇素)、
Figure FDA0003676072490000022
(式IV，色胺)以及它们的衍生物或类似物的产生与没有所述遗传修饰的可比对照生物体中所述相同化合物的产生相比增加，其中所述经遗传修饰的生物体是真菌，并且其中所述真菌来自担子菌门。
3.如权利要求1所述的经遗传修饰的生物体，其中所述生物体是真菌。
4.如权利要求2或3所述的经遗传修饰的生物体，其中所述真菌选自由以下组成的组：裸盖菇属、锥盖伞属、裸伞属、斑褶菇属、光柄菇属和球盖菇属。
5.如权利要求4所述的经遗传修饰的生物体，其中所述真菌是暗蓝斑褶菇。
6.如权利要求4所述的经遗传修饰的生物体，其中所述真菌是古巴斑褶菇。
7.如权利要求4所述的经遗传修饰的生物体，其中所述真菌是白灵侧耳。
8.如权利要求1或2所述的经遗传修饰的生物体，其中所述遗传修饰导致以下至少一者：
a.色氨酸脱羧增加，
b.色胺4-羟基化增加，
c.4-羟色胺O-磷酸化增加，以及
d.通过连续N-甲基化的裸盖菇素产生增加。
9.如权利要求8所述的经遗传修饰的生物体，其中所述遗传修饰导致基因的表达上调。
10.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因是色氨酸脱羧酶基因、裸盖菇素相关的羟化酶基因、裸盖菇素相关的N-甲基转移酶基因或裸盖菇素相关的磷酸转移酶基因。
11.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因是PsiD、PsiM、PsiH或PsiK。
12.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:1的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
13.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:2的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
14.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:3的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
15.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:4的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
16.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:5的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
17.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:6的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
18.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:7的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
19.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:8的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
20.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:9的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
21.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:10的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
22.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:11的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
23.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:12的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
24.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:13的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
25.如权利要求9所述的经遗传修饰的生物体，其中所述基因包含与SEQ ID NO:14的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
26.如权利要求9-25中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，在所述经遗传修饰的生物体中所述基因的表达被上调至少1.1倍、至少1.2倍、至少1.5倍、至少2倍、至少2.5倍、至少3倍、至少3.5倍、至少4倍或至少5倍。
27.如权利要求1或2所述的经遗传修饰的生物体，其中所述经遗传修饰的生物体包含外源核苷酸。
28.如权利要求27所述的经遗传修饰的生物体，其中所述外源核苷酸包含顺式作用启动子序列。
29.如权利要求27所述的经遗传修饰的生物体，其中所述外源核苷酸导致与不含所述外源核苷酸的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中色氨酸脱羧、色胺4-羟基化、4-羟色胺O-磷酸化或在没有脱磷酸裸盖菇素中间体的情况下通过连续N-甲基化的裸盖菇素产生增加。
30.如权利要求27所述的经遗传修饰的生物体，其中所述外源核苷酸导致与不含所述外源核苷酸的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中(i)色氨酸脱羧酶基因、裸盖菇素相关的羟化酶基因、裸盖菇素相关的N-甲基转移酶基因或裸盖菇素相关的磷酸转移酶基因的表达上调；(ii)非裸盖菇素色胺的合成减少；或(iii)色氨酸的产生增加。
31.如权利要求27所述的经遗传修饰的生物体，其中所述外源核苷酸编码非PLP依赖性磷脂酰丝氨酸脱羧酶、色氨酸脱羧酶(TDC)、推定单加氧酶、5-甲基硫代核糖家族小分子激酶或4-羟色胺激酶。
32.如权利要求27-31中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述核苷酸并入质粒中。
33.如权利要求32所述的经遗传修饰的生物体，其中所述质粒是pGWB5或pGHGWY。
34.如权利要求32所述的经遗传修饰的生物体，其中所述质粒通过电穿孔、显微注射、机械细胞变形、脂质纳米粒子、AAV、慢病毒、农杆菌介导的转化、生物射弹粒子轰击或原生质体转化递送至所述经遗传修饰的生物体中。
35.如权利要求32所述的经遗传修饰的生物体，其中所述质粒还包含条形码、报告基因或选择标记物。
36.如权利要求32所述的经遗传修饰的生物体，其中所述质粒还包含启动子。
37.如权利要求36所述的经遗传修饰的生物体，其中所述启动子是35S、GPD、EF1a、肌动蛋白或CcDED1。
38.一种药物组合物，所述药物组合物包含权利要求1-37中任一项所述的经遗传修饰的生物体的提取物。
39.如权利要求38所述的药物组合物，所述药物组合物还包含药学上可接受的赋形剂、稀释剂或载体。
40.一种营养食品组合物，所述营养食品组合物包含权利要求1-37中任一项所述的经遗传修饰的生物体的提取物。
41.一种食品补充剂组合物，所述食品补充剂组合物包含权利要求1-37中任一项所述的经遗传修饰的生物体的提取物。
42.一种用于增加生物体中
Figure FDA0003676072490000071
(式I，DMT)、
Figure FDA0003676072490000072
(式III，脱磷酸裸盖菇素)或它们的衍生物或类似物的产生的方法，所述方法包括向所述生物体引入遗传修饰，其中所述遗传修饰导致与没有所述修饰的可比对照生物体相比，所述相同化合物的产生增加。
43.一种用于增加生物体中
Figure FDA0003676072490000073
(式I，DMT)、
Figure FDA0003676072490000074
(式II，裸盖菇素)、
Figure FDA0003676072490000075
(式III，脱磷酸裸盖菇素)、
Figure FDA0003676072490000076
(式IV，色胺)或它们的衍生物或类似物的产生的方法，所述方法包括引入对所述生物体的遗传修饰，其中所述遗传修饰导致与没有所述修饰的可比对照生物体相比，所述相同化合物的产生增加，其中所述生物体是真菌，并且其中所述真菌来自担子菌门。
44.如权利要求42所述的方法，其中所述生物体是真菌。
45.如权利要求43或44所述的方法，其中所述真菌选自由以下组成的组：裸盖菇属、锥盖伞属、裸伞属、斑褶菇属、光柄菇属和球盖菇属。
46.如权利要求45所述的方法，其中所述真菌是暗蓝斑褶菇。
47.如权利要求45所述的方法，其中所述真菌是古巴斑褶菇。
48.如权利要求45所述的方法，其中所述真菌是白灵侧耳。
49.如权利要求42或43所述的方法，其中所述遗传修饰导致以下至少一者：
a.色氨酸脱羧增加，
b.色胺4-羟基化增加，
c.4-羟色胺O-磷酸化增加，以及
d.通过连续N-甲基化的裸盖菇素产生增加。
50.如权利要求49所述的方法，其中所述遗传修饰导致基因的表达上调。
51.如权利要求50所述的方法，其中所述基因是色氨酸脱羧酶基因、裸盖菇素相关的羟化酶基因、裸盖菇素相关的N-甲基转移酶基因或裸盖菇素相关的磷酸转移酶基因。
52.如权利要求50所述的方法，其中所述基因是PsiD、PsiM、PsiH或PsiK。
53.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:1的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
54.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:2的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
55.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:3的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
56.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:4的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
57.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:5的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
58.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:6的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
59.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:7的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
60.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:8的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
61.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:9的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
62.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:10的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
63.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:11的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
64.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:12的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
65.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:13的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
66.如权利要求50所述的方法，其中所述基因包含与SEQ ID NO:14的至少75％、至少85％、至少90％、至少95％或至少99％同一性。
67.如权利要求50-66中任一项所述的方法，其中与没有所述遗传修饰的可比对照生物体相比，在所述经遗传修饰的生物体中所述基因的表达被上调至少1.1倍、至少1.2倍、至少1.5倍、至少2倍、至少2.5倍、至少3倍、至少3.5倍、至少4倍或至少5倍。
68.如权利要求42或43所述的方法，其中所述引入所述遗传修饰包括引入外源核苷酸。
69.如权利要求68所述的方法，其中所述外源核苷酸包含顺式作用启动子序列。
70.如权利要求68所述的方法，其中所述外源核苷酸导致与不含所述外源核苷酸的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中色氨酸脱羧、色胺4-羟基化、4-羟色胺O-磷酸化或在没有脱磷酸裸盖菇素中间体的情况下通过连续N-甲基化的裸盖菇素产生增加。
71.如权利要求68所述的方法，其中所述外源核苷酸导致与不含所述外源核苷酸的可比对照生物体相比，所述经遗传修饰的生物体中(i)色氨酸脱羧酶基因、裸盖菇素相关的羟化酶基因、裸盖菇素相关的N-甲基转移酶基因或裸盖菇素相关的磷酸转移酶基因的表达上调；(ii)非裸盖菇素色胺的合成减少；或(iii)色氨酸的产生增加。
72.如权利要求68所述的方法，其中所述外源核苷酸编码非PLP依赖性磷脂酰丝氨酸脱羧酶、色氨酸脱羧酶(TDC)、推定单加氧酶、5-甲基硫代核糖家族小分子激酶或4-羟色胺激酶。
73.如权利要求68-72中任一项所述的方法，其中所述核苷酸并入质粒中。
74.如权利要求73所述的方法，其中所述质粒是pGWB5或pGHGWY。
75.如权利要求73所述的方法，其中所述质粒通过电穿孔、显微注射、机械细胞变形、脂质纳米粒子、AAV、慢病毒、农杆菌介导的转化、生物射弹粒子轰击或原生质体转化递送至所述经遗传修饰的生物体中。
76.如权利要求73所述的方法，其中所述质粒还包含条形码、报告基因或选择标记物。
77.如权利要求73所述的方法，其中所述质粒还包含启动子。
78.如权利要求77所述的方法，其中所述启动子是35S、GPD、EF1a、肌动蛋白或CcDED1。
79.如权利要求1-26中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述遗传修饰通过使所述生物体的细胞与核酸内切酶系统接触来进行。
80.如权利要求79所述的经遗传修饰的生物体，其中所述核酸内切酶系统包含CRISPR酶、TALE-核酸酶、基于转座子的核酸酶、锌指核酸酶、大范围核酸酶、Mega-TAL或DNA引导的核酸酶。
81.如权利要求80所述的经遗传修饰的生物体，其中所述DNA引导的核酸酶包含argonaute。
82.如权利要求79所述的经遗传修饰的生物体，其中所述核酸内切酶系统包含CRISPR酶和引导多核苷酸，所述引导多核苷酸与所述基因或与所述基因相关的所述启动子或增强子中或邻近的靶序列杂交。
83.如权利要求82所述的经遗传修饰的生物体，其中所述靶序列的长度是至少18个核苷酸、至少19个核苷酸、至少20个核苷酸、至少21个核苷酸或至少22个核苷酸。
84.如权利要求82所述的经遗传修饰的生物体，其中所述靶序列的长度是至多17个核苷酸。
85.如权利要求82-84中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述靶序列能够与SEQ ID NO:1-14中的至少一个或其互补序列杂交。
86.如权利要求82-85中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述引导多核苷酸是经化学修饰的。
87.如权利要求82-85中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述引导多核苷酸是单引导RNA(sgRNA)。
88.如权利要求82-85中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述引导多核苷酸是包含RNA和DNA的嵌合单引导。
89.如权利要求82-85中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述引导多核苷酸能够与SEQ ID NO:1-14中的至少一个或其互补序列杂交。
90.如权利要求82-90中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述CRISPR酶是Cas蛋白或其变体或衍生物。
91.如权利要求90所述的经遗传修饰的生物体，其中所述Cas蛋白包括Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas5d、Cas5t、Cas5h、Cas5a、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Csy4、Cse1、Cse2、Cse3、Cse4、Cse5e、Csc1、Csc2、Csa5、Csn1、Csn2、Csm1、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx1S、Csf1、Csf2、CsO、Csf4、Csd1、Csd2、Cst1、Cst2、Csh1、Csh2、Csa1、Csa2、Csa3、Csa4、Csa5、C2c1、C2c2、C2c3、Cpf1、CARF、DinG、它们的同系物或它们的经修饰型式。
92.如权利要求90或91所述的经遗传修饰的生物体，其中所述Cas蛋白是Cas9。
93.如权利要求92所述的经遗传修饰的生物体，其中所述Cas9是与规范PAM结合的经修饰的Cas9。
94.如权利要求92所述的经遗传修饰的生物体，其中所述Cas9识别非规范PAM。
95.如权利要求82-94中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述引导多核苷酸结合距PAM 3-10个核苷酸的所述靶序列。
96.如权利要求95所述的经遗传修饰的生物体，其中与所述引导多核苷酸偶联的所述CRISPR酶通过RNP递送至所述经遗传修饰的生物体中。
97.如权利要求95所述的经遗传修饰的生物体，其中与所述引导多核苷酸偶联的所述CRISPR酶通过编码所述CRISPR酶和所述引导多核苷酸的mRNA递送至所述经遗传修饰的生物体中。
98.如权利要求95所述的经遗传修饰的生物体，其中与所述引导多核苷酸偶联的所述CRISPR酶通过包含编码所述CRISPR酶和所述引导多核苷酸的核酸的载体递送至所述经遗传修饰的生物体中。
99.如权利要求98所述的经遗传修饰的生物体，其中所述载体是二元载体或Ti质粒。
100.如权利要求98所述的经遗传修饰的生物体，其中所述载体还包含选择标记物或报告基因。
101.如权利要求96-100中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述RNP、复合物或载体通过电穿孔、显微注射、机械细胞变形、脂质纳米粒子、AAV、慢病毒、农杆菌介导的转化、生物射弹粒子轰击或原生质体转化进行递送。
102.如权利要求96-100中任一项所述的经遗传修饰的生物体，其中所述RNP、mRNA或载体还包含供体多核苷酸或编码所述供体多核苷酸的核酸。
103.如权利要求102所述的经遗传修饰的生物体，其中所述供体多核苷酸包含与位于所述靶序列侧翼的序列的同源性。
104.如权利要求102或103所述的经遗传修饰的生物体，其中所述供体多核苷酸还包含条形码、报告基因或选择标记物。
105.一种来自权利要求1-26中任一项所述的经遗传修饰的生物体的分离的细胞，其中所述经遗传修饰的生物体是多细胞生物体。
106.一种包含遗传修饰的经遗传修饰的担子菌门真菌细胞，所述遗传修饰导致选自以下的化合物：
Figure FDA0003676072490000141
(式I，二甲基色胺(DMT))、
Figure FDA0003676072490000142
(式II，裸盖菇素)、
Figure FDA0003676072490000151
(式III，脱磷酸裸盖菇素)、和
Figure FDA0003676072490000152
(式IV，色胺)以及它们的衍生物或类似物的产生与没有所述遗传修饰的可比对照担子菌门真菌细胞中所述相同化合物的产生相比增加。
107.如权利要求106所述的经遗传修饰的担子菌门真菌细胞，其中所述细胞属于选自由以下组成的组的真菌：裸盖菇属、锥盖伞属、裸伞属、斑褶菇属、光柄菇属和球盖菇属。
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