CN114657237A - 一种pcr终点可视化检测核酸的方法 - Google Patents
一种pcr终点可视化检测核酸的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN114657237A CN114657237A CN202210245216.9A CN202210245216A CN114657237A CN 114657237 A CN114657237 A CN 114657237A CN 202210245216 A CN202210245216 A CN 202210245216A CN 114657237 A CN114657237 A CN 114657237A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- pcr
- quadruplex
- nucleic acid
- sequence
- primer
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明涉及一种基于硫磺素T和G‑四链体的不开盖就能实现现场可视化快速检测的PCR终点核酸检测方法。该方法可以准确检测核酸,特异性和灵敏度高、适用性广、检出限低,且不易污染。PCR完成后用实时蓝光观测仪进行肉眼观察,就能直接进行结果检测。整个过程快速、简便,可以大量推广使用,应用前景良好。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学领域,涉及核酸分析检测,具体涉及一种PCR终点可视化检测核酸的方法。
背景技术
随着人类在分子生物学领域越来越深入的探索,核酸检测除了在医疗卫生领域受到广泛重视,在食品安全、农业、环境等领域也颇受青睐。由于生物样本中可获取的DNA含量通常比较低,用普通方法很难检出,因此需要先对含有待检测基因的DNA片段进行富集扩增。目前应用最广泛的DNA扩增手段是聚合酶链式反应(PCR),PCR利用加热的方法打开扩增过程中产生的双链DNA,并通过升降温的循环过程实现产物的指数累积。由于PCR方法灵敏度非常高,适用于微量DNA的检测。但是传统的PCR方法用于DNA检测,需要对反应产物进行琼脂糖凝胶电泳,操作很繁琐,检测通量非常低,并且容易出现PCR产物的气溶胶污染。以PCR方法为基础开发的荧光定量TaqMan探针技术、数字PCR、基因芯片等方法很大程度上解决了传统PCR方法的一些缺陷。然而,TaqMan、数字PCR、基因芯片等方法需要精密的仪器作为辅助检测手段,导致开展相关实验的要求较高,检测试剂盒大多价格高昂,从而使得检测成本居高不下。另外,对特殊设备和专业人员的要求也限制了这些方法的应用。此外,这些方法还且不适应于现场快速检测。可视化核酸检测是一种很有前景的现场快速检测方法。但是目前已有的可视化核酸检测方法大多需要在反应后,开盖加入荧光染料或显色试剂,才能发生该荧光或颜色的变化,从而进行可视化检测,由于需要开盖,这种方法极易发生PCR产物污染。因此,开发一种PCR反应后不开盖、就能实现现场可视化快速检测的技术具有很重要的现实意义。
G-四链体是一种富含鸟嘌呤的序列,由四对胡斯坦配对(Hoogsteen-paired)形成的共面鸟嘌呤,通过堆叠作用形成。目前已经报道了很多能结合G-四链体并产生颜色或荧光变化的小分子,如结晶紫,原卟啉,锌卟啉和硫黄素T等。其中硫磺素T是一种能够与特定序列的G-四链体结构结合,并且产生荧光的有机小分子,目前有大量研究报道了硫磺素T及其衍生物与不同序列的G-四链体结合能够产生荧光,并且将其应用于核酸检测中。但是目前还没有报道基于硫磺素T和G-四链体在PCR反应后不开盖、就能实现现场可视化快速检测的方法。
发明内容
本发明提供了一种PCR终点可视化检测核酸的方法:在PCR体系中加入引物1和引物2、G-四链体序列、硫磺素T或硫磺素T衍生物、核酸聚合酶及其他常规PCR反应组分。其中引物1和/或引物2包含两部分:3’端能与目标核酸模板杂交的部分以及5’端能与G-四链体互补的部分;在观察检测结果所处温度下,引物1和/或引物2的5’端序列能通过碱基互补作用与G-四链体序列形成双链,使G-四链体处于封闭状态,不能与硫磺素T或硫磺素T衍生物结合产生荧光(图1A)。PCR时,高温变性使待测核酸双链解开,退火和延伸时引物1和2结合到待测核酸链上,在核酸聚合酶的作用下开始延伸,形成一端含有G-四链体互补序列或两端均含有G-四链体互补序列的延长模板(图1B和C)。当以延长模板为PCR扩增模板后,越来越多的引物1和2参与扩增并被封闭在双链PCR产物中,无法再对原有的外加G-四链体序列进行封闭,致使越来越多的外加G-四链体序列处于游离状态(图1D)。PCR结束后,在观察检测结果所处温度下,游离的G-四链体与PCR体系中已加入的硫磺素T或硫磺素T衍生物结合能产生肉眼能观测到的荧光(图1E);没有目标DNA模板存在的情况下,由于PCR反应不会发生,在观察检测结果所处温度下,外加G-四链体序列被引物1和/或引物2封闭,从而不能与硫磺素T或硫磺素T衍生物结合产生荧光。反应结束后,通过肉眼观察有无荧光的产生就能判断是否有目标核酸的存在。
其中引物1和/或引物2的5’端的G-四链体互补序列碱基数为5-40个,可以与G-四链体序列部分互补或完全互补,其作用为封闭G-四链体。
其中G-四链体序列是指一种富含G、能够与硫磺素T或硫磺素T衍生物结合产生荧光或颜色信号的序列。
其中PCR终点可视化检测核酸的方法中,当G-四链体封闭序列的Tm值所处温度条件可使G-四链体序列在PCR反应退火-延伸阶段与引物的封闭序列互补,核酸聚合酶需是一种缺乏5’-3’外切酶活性且具有5’-3’链置换活性的耐热性核酸聚合酶;反之,能满足普通PCR反应的耐热性核酸聚合酶即可。PCR的反应程序为92-98℃预变性0-5min;92-98℃,0-30s;45-65℃,0-30s;72℃,0-30s;共20-45个循环。当进行结果观察时,需采用能够激发硫磺素T或硫磺素T衍生物产生荧光的光源对反应产物进行照射,优选为对眼睛友好的蓝光光源。PCR体系中所含G-四链体互补序列的引物与PCR体系中的G-四链体序列的原始浓度比值范围为0.3-3。
本发明方法对待测核酸样本的来源没有限制,所有生物体来源的DNA或RNA等都可用本发明的方法进行检测。
本发明方法可以准确检测核酸,特异性和灵敏度高、适用性广、检出限低,且不易污染。用DNA提取试剂直接对待测样本进行DNA的提取,PCR完成后用实时蓝光观测仪进行肉眼观察,就能直接进行结果检测。整个过程快速、简便,可以大量推广使用,应用前景良好。
本发明所公开的方法关键在于:利用缺乏5’-3’外切酶活性的DNA聚合酶的性质;利用G-四链体能与硫磺素T及其衍生物结合产生荧光的性质;
本发明具有明显优于现有技术的优点,其主要优点包括:
1.创新性。本发明首次实现基于硫磺素T和G-四链体在PCR反应后不开盖、就能现场可视化快速检测的方法。
2.经济性。现有的实时荧光PCR技术,试剂和探针的合成费用都较高,设备昂贵,而本发明中所涉及的作为探针的引物由普通的核苷酸组成,不用荧光基团修饰,合成方便,荧光显色试剂廉价,因此,大大降低了检测成本。
3.不开盖。本发明所涉及的PCR终点可视化检测方法为封闭操作,与传统的终点检测方法相比,无需在反应过程中或反应后开盖加入染料或进行电泳,不易造成PCR产物污染,增强了方法的准确性。
4.实用性。现有的实时荧光PCR技术通常对检测设备具有较高的要求,从而使检测具有一定的局限性,而本发明检测方法仅需要普通PCR仪,因此,核酸检测变得更加广泛、实用、方便。
5.普适性。本发明所涉及的PCR终点可视化检测方法,针对不同样品中的待测核酸,只需改变引物中的与目标核酸序列互补的特异性序列。针对RNA的检测,只需要在PCR前加逆转录反应。因此本发明的应用包括并不限于动物、植物、微生物的DNA或RNA的检测。并且由于能够与硫磺素T及其衍生物结合的G-四链体种类繁多,它们在不同的缓冲液条件下能够有不同的荧光强度,能够给本发明涉及的PCR终点可视化检测方法提供丰富的可供选择的G-四链体,使得本发明拥有很高的普适性。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
本发明还提供了所述方法的应用,将其应用于食品中猪肉源成分、人类乙型肝炎病毒的检测中。以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1是PCR终点可视化检测法的原理示意图。
图2是具体实施例1用正反引物1检测食品中猪肉源成分的结果图。
图3是具体实施例2用正反引物2检测人类乙型肝炎病毒基因的结果图。
图4是具体实施例3用正反引物3检测食品中猪肉源成分的结果图。
图5是具体实施例4对正向引物4和反向引物3的引物特异性检测结果图。
图6是具体实施例5特异性检测结果图。
图7是具体实施例6灵敏度检测结果图。
具体实施方式
下面以实施例作进一步说明,但本发明不局限于这些实施例。
实施例1用正反引物1检测食品中猪肉源成分
(1)正反引物1、G-四链体序列1、猪细胞色素B基因部分序列,其中两条正反引物均在5’端包含有能与G-四链体完全互补的片段。
正向引物1:5’-CCCCTCTTCCCTCTTCCCACACCGCCCGCTGATAGTAGATTTGTGATGACCGTA-3’
反向引物1:5’-CCCCTCTTCCCTCTTCCCACACCGCCCCCTCAAACATCTCATCATGATGAAA-3’
G-四链体序列1:5’-GGGCGGTGTGGGAAGAGGGAAGAGGGG-3’
猪细胞色素B基因部分序列:
5’-GCTGATAGTAGATTTGTGATGACCGTAGCTCCTCAGAATGATATTTGTCCTCAGGGCAGGACGTAGCCTATGAAGGCTGTTGCTATAACGGTAAATAGTAGGACTACTCCAATGTTTCATGTTTCTAGGAATATATAGGATCCGTAGTATAGGCCTCGGCCTACGTGGATGAATAGGCAAATAAAGAACATGGATGCTCCGTTTGCATGTAGGTAGCGAATAACTCATCCGTAATTTACGTCTCGACAGATGTGTGTAACTGATGAGAAAGCTGTTGTTGTGTCTGATGTGTAATGTATTGCTAAGAACAGGCCTGTTAGGATTTGCAAGATTAGGCAGATGCCTAAGAGGGAACCGAAGTTTCATCATGATGAGATGTTTGATGGGGCTGGGAGGTC-3’
(2)反应体系及PCR条件
PCR方案是:94℃1min预变性;94℃10s,65℃30s,72℃30s,35个循环;72℃1min。
(3)检测方法
将PCR反应后的PCR管降温至室温,直接置于波长为440-485nm的蓝光实时观测仪下肉眼观测荧光。
(4)检测结果
结果如图2所示,用肉眼可观察到,猪肉全基因组DNA(阳性)组显示荧光,阴性对照组无荧光。
实施例2用正反引物2检测人类乙型肝炎病毒基因
(1)正反引物2、G-四链体序列2、人类乙型肝炎病毒基因部分序列,其中两条正反引物均在5’端包含有能与G-四链体完全互补的片段。
正向引物2:5’-CCCTAAACCCTAAACCCTAAACCCTGTGTCTGCGGCGTTTTATCAT-3’
反向引物2:5’-CCCTAAACCCTAAACCCTAAACCCTGGACAAACGGGCAACATACCT-3’
G-四链体序列2:5’-AGGGTTAGGGTTAGGGTTAGGG-3’
人类乙型肝炎病毒基因部分序列:5′-GTGTCTGCGGCGTTTTATCATCTTCCTYTGCATCCTGCTGCTATGCCTCATCTTCTTGTTGGTTCTTCTGGACTATCRAGGTATGTTGCCCGTTTGTCC-3′
(2)反应体系及PCR条件
PCR方案是:94℃1min预变性;94℃10s,55℃30s,72℃30s,35个循环;72℃1min。
(3)检测方法
将PCR反应后的PCR管降温至室温,直接置于波长为440-485nm的蓝光实时观测仪下肉眼观测荧光。
(4)检测结果
结果如图3所示,用肉眼可观察到,人类乙型肝炎患者血清全基因组DNA提取液(阳性)组显示荧光,阴性对照无荧光。
实施例3用正反引物3检测食品中猪肉源成分
(1)正反引物3、G-四链体序列2、猪细胞色素B基因部分序列,其中两条正反引物中只有正向引物在5’端包含有能与G-四链体完全互补的片段。
正向引物3:5’-CCCTAAACCCTAAACCCTAAACCCTGCTGATAGTAGATTTGTGATGACCGTA-3’
反向引物3:5’-GACCTCCCAGCCCCATCAAACATCTCATCATGATGAAA-3’
G-四链体序列2:5’-AGGGTTAGGGTTAGGGTTAGGG-3’
猪细胞色素B基因部分序列:
5′-GCTGATAGTAGATTTGTGATGACCGTAGCTCCTCAGAATGATATTTGTCCTCAGGGCAGGACGTAGCCTATGAAGGCTGTTGCTATAACGGTAAATAGTAGGACTACTCCAATGTTTCATGTTTCTAGGAATATATAGGATCCGTAGTATAGGCCTCGGCCTACGTGGATGAATAGGCAAATAAAGAACATGGATGCTCCGTTTGCATGTAGGTAGCGAATAACTCATCCGTAATTTACGTCTCGACAGATGTGTGTAACTGATGAGAAAGCTGTTGTTGTGTCTGATGTGTAATGTATTGCTAAGAACAGGCCTGTTAGGATTTGCAAGATTAGGCAGATGCCTAAGAGGGAACCGAAGTTTCATCATGATGAGATGTTTGATGGGGCTGGGAGGTC-3′
(2)反应体系及PCR条件
PCR方案是:94℃1min预变性;94℃10s,65℃30s,72℃30s,35个循环;72℃1min。
(3)检测方法
将PCR反应后的PCR管降温至室温,直接置于波长为440-485nm的蓝光实时观测仪下肉眼观测荧光。
(4)检测结果
结果如图4所示,用肉眼可观察到,猪肉全基因组DNA(阳性)组显示荧光,阴性对照组无荧光。
实施例4正向引物4反向引物3检测猪肉的特异性考察
分别以猪肉、牛肉、羊肉、兔肉、鸡肉和鸭肉共计6种肉类已验证的基因组DNA为模板进行普通PCR扩增。
(1)正向引物4、反向引物3、猪细胞色素B基因部分序列
正向引物4:5’-GCTGATAGTAGATTTGTGATGACCGTA-3’
反向引物3:5’-GACCTCCCAGCCCCATCAAACATCTCATCATGATGAAA-3’
猪细胞色素B基因部分序列:
5’-GCTGATAGTAGATTTGTGATGACCGTAGCTCCTCAGAATGATATTTGTCCTCAGGGCAGGACGTAGCCTATGAAGGCTGTTGCTATAACGGTAAATAGTAGGACTACTCCAATGTTTCATGTTTCTAGGAATATATAGGATCCGTAGTATAGGCCTCGGCCTACGTGGATGAATAGGCAAATAAAGAACATGGATGCTCCGTTTGCATGTAGGTAGCGAATAACTCATCCGTAATTTACGTCTCGACAGATGTGTGTAACTGATGAGAAAGCTGTTGTTGTGTCTGATGTGTAATGTATTGCTAAGAACAGGCCTGTTAGGATTTGCAAGATTAGGCAGATGCCTAAGAGGGAACCGAAGTTTCATCATGATGAGATGTTTGATGGGGCTGGGAGGTC-3’
(2)反应体系及PCR条件
PCR方案是:94℃1min预变性;94℃10s,65℃30s,72℃30s,35个循环;72℃1min。
(3)检测方法
将DNA产物进行琼脂糖凝胶电泳,并置于激光扫描成像仪下观察荧光条带。
(4)检测结果
结果如图5所示。泳道1为DNA Marker,泳道2-7分别为以猪肉、牛肉、羊肉、兔肉、鸡肉、鸭肉DNA模板的PCR产物,泳道8为空白对照。琼脂糖凝胶电泳结果显示仅以猪肉DNA为模板时出现扩增条带。可见该引物仅仅对猪肉DNA产生特异性扩增,特异性良好。
实施例5正反引物1可视化检测猪肉的特异性考察
分别以猪肉、牛肉、羊肉、兔肉、鸡肉和鸭肉共计6种肉类已验证的基因组DNA为模板,用实施例1的方法,进行PCR终点可视化检测。
扩增结束后,通过观察对不同模板DNA的PCR管在实时蓝光观测仪下是否有荧光来判定其特异性。若仅猪肉DNA能产生荧光,其他肉类DNA扩增后产生的荧光与空白组一致,判定检测体系无非特异性扩增。反之则认为检测体系与其他物种具有交叉反应。
实验结果见图6。结果显示,6种肉类DNA中,仅有猪肉DNA样本有荧光,判定为含有猪肉DNA,其它肉类均与空白组一样未见荧光,特异性验证结果理想。
实施例6正反引物1可视化检测猪肉的灵敏度考察
取已验证的猪肉DNA模板与牛肉DNA模板以不同比例混合制成猪肉DNA占比不同的混合样品,用实施例1的方法,进行灵敏度测试。猪肉DNA模板占比分别为100%、50%、10%、5%、1%、0%六种不同的梯度,扩增结束后,通过观察对不同占比模板DNA的PCR管在实时蓝光观测仪下是否有荧光来判定其灵敏度。如果PCR管中观测到荧光,当猪肉DNA模板占比越小则说明该方法能够在大量的牛肉DNA干扰下检测出猪肉DNA,灵敏度越高;当猪肉DNA模板占比越高,说明该方法容易越容易受到牛肉DNA干扰,灵敏度越低。
实验结果见图7。结果显示,猪肉DNA模板占比为1%-100%的六个不同的梯度均有荧光,且占比越高,荧光强度越大,而含猪肉DNA模板0%,即纯牛肉DNA模板的实验组无荧光,与空白对照一致。该试验说明该方法能在混合猪牛肉DNA检出仅1%猪肉DNA模板含量的样本,灵敏度高。
综上,本发明方法可以准确检测目标DNA,并且成功应用于实际样本的检测,检测快速、简便、成本低廉,可以大量推广使用,应用前景良好。
Claims (8)
1.一种PCR终点可视化检测核酸的方法,其特征是:在PCR体系中加入引物1和引物2、G-四链体序列、硫磺素T或硫磺素T衍生物、核酸聚合酶及其他常规PCR反应组分;PCR时,高温变性使待测核酸双链解开,退火和延伸时引物1和2结合到待测核酸链上,在核酸聚合酶的作用下开始延伸,形成一端含有G-四链体互补序列或两端均含有G-四链体互补序列的延长模板;当以延长模板为PCR扩增模板后,越来越多的引物1和2参与扩增并被封闭在双链PCR产物中,无法再对原有的外加G-四链体序列进行封闭,致使越来越多的外加G-四链体序列处于游离状态;PCR结束后,在观察检测结果所处温度下,游离的G-四链体与PCR体系中已加入的硫磺素T或硫磺素T衍生物结合能产生肉眼能观测到的荧光;没有目标DNA模板存在的情况下,由于PCR反应不会发生,在观察检测结果所处温度下,外加G-四链体序列被引物1和/或引物2封闭,从而不能与硫磺素T或硫磺素T衍生物结合产生荧光;反应结束后,通过肉眼观察有无荧光的产生就能判断是否有目标核酸的存在。
2.根据权利要求1中所述的引物1、引物2,其特征是:引物1和/或引物2包含两部分,3’端能与目标核酸模板杂交的部分以及5’端能与G-四链体互补的部分;在观察检测结果所处温度下,引物1和/或引物2的5’端序列能通过碱基互补作用与G-四链体序列形成双链,使G-四链体处于封闭状态,不能与硫磺素T或硫磺素T衍生物结合产生荧光。
3.根据权利要求1、2中所述的引物1、引物2,其特征是:5’端的G-四链体互补序列碱基数为5-40个,可以与G-四链体序列部分互补或完全互补,其作用为封闭G-四链体。
4.根据权利要求1~3中所述的G-四链体序列,其特征是:一种富含G、能够与硫磺素T或硫磺素T衍生物结合产生荧光或颜色信号的序列。
5.根据权利要求1中所述的PCR终点可视化检测核酸的方法,其特征是:当G-四链体封闭序列的Tm值所处温度条件可使G-四链体序列在PCR反应的退火-延伸阶段与引物的封闭序列互补,核酸聚合酶需是一种缺乏5’-3’外切酶活性且具有5’-3’链置换活性的耐热性核酸聚合酶;反之,能满足普通PCR反应的耐热性核酸聚合酶即可。
6.根据权利要求1所述的PCR终点可视化检测核酸的方法,其特征在于,PCR的反应程序为92-98℃预变性0-5min;92-98℃,0-30s;45-65℃,0-30s;72℃,0-30s;共20-45个循环。
7.根据权利要求1所述的PCR终点可视化检测核酸的方法,其特征在于,进行结果观察时,需采用能够激发硫磺素T或硫磺素T衍生物产生荧光的光源对反应产物进行照射,优选为对眼睛友好的蓝光光源。
8.根据权利要求1所述的PCR终点可视化检测核酸的方法,其特征在于,PCR体系中含G-四链体互补序列的引物与PCR体系中的G-四链体序列的原始浓度比值范围为0.5-3。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202210245216.9A CN114657237A (zh) | 2022-03-14 | 2022-03-14 | 一种pcr终点可视化检测核酸的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202210245216.9A CN114657237A (zh) | 2022-03-14 | 2022-03-14 | 一种pcr终点可视化检测核酸的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN114657237A true CN114657237A (zh) | 2022-06-24 |
Family
ID=82028870
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202210245216.9A Pending CN114657237A (zh) | 2022-03-14 | 2022-03-14 | 一种pcr终点可视化检测核酸的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN114657237A (zh) |
-
2022
- 2022-03-14 CN CN202210245216.9A patent/CN114657237A/zh active Pending
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN111235232B (zh) | 基于CRISPR-Cas12a系统的可视化快速核酸检测方法及应用 | |
Jalali et al. | The polymerase chain reaction: PCR, qPCR, and RT-PCR | |
DE602005025791D1 (de) | Verfahren zur nukleinsäureamplifikation | |
AU2006259383A1 (en) | Normalization of samples for amplification reactions | |
Safdar et al. | Simultaneous identification of pork and poultry origins in pet foods by a quick multiplex real-time PCR assay using EvaGreen florescence dye | |
TWI465572B (zh) | Method, composition and system of amplification and detection of target microbial DNA | |
Kumari et al. | Species-specific loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay for identification of tissue of cattle origin by targeting mitochondrial gene sequences | |
CN111926114A (zh) | 一种检测副流感病毒多重real-time PCR试剂盒、方法和应用 | |
CN112442548A (zh) | Lamp引物组包含其的用于烟草靶斑病检测的试剂盒及其应用和检测方法 | |
JP2002027993A (ja) | 特定の核酸を検出定量するための等長プライマー伸長法およびキット | |
CN114657237A (zh) | 一种pcr终点可视化检测核酸的方法 | |
US7267945B2 (en) | Methods of determining the presence of polynucleotides employing amplification | |
CN111004854B (zh) | 同时针对创伤弧菌和霍乱弧菌的快速恒温检测方法、引物组及试剂盒 | |
CN116287433A (zh) | 一种高灵敏度猴痘病毒检测试剂盒及检测方法 | |
CN110894532A (zh) | 细菌性败血症(fbs)的raa恒温荧光检测方法及试剂 | |
CN108642147A (zh) | 一种快速扩增核酸的方法 | |
CN111088377B (zh) | 金黄色葡萄球菌的快速恒温检测方法、引物组及应用 | |
CN110878380B (zh) | 一种检测水泡性口炎病毒印第安那型和新泽西型的引物组合物、试剂盒及方法 | |
JP5863162B2 (ja) | 標的核酸の検出方法 | |
KR101906217B1 (ko) | 돼지 젤라틴 검출 키트 및 이를 이용한 돼지 젤라틴 검출 방법 | |
JP6853523B2 (ja) | ヘリカーゼを用いたpcr | |
CN110894549A (zh) | 流行性造血器官坏死病毒(ehnv)的raa恒温荧光检测方法及试剂 | |
JP2013000060A5 (zh) | ||
CN110079607B (zh) | 一种引物组、检测血液样品种属的方法及应用 | |
KR20240058023A (ko) | 대장균의 O104, O124, O55, O157, O128ab, O76, O185, O130, O81, O11 또는 O153 혈청형 신속 동정용 프라이머 세트 및 이를 이용한 대장균의 혈청형 동정 방법 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination |