CN114377152B - 一种生物标志物响应型荧光示踪剂及其制备方法和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种生物标志物响应型荧光示踪剂及其制备方法和应用。该生物标志物响应型荧光示踪剂具有如式(Ⅰ)~式(Ⅳ)所示结构:本发明提供的生物标志物响应型荧光示踪剂以特定的主体结构作为荧光团,然后在两端分别连接生物标志物响应基团和靶向基团,不仅具有高特异性和灵敏度,还具有较好的安全性、生物相容性和光学稳定性,制备成荧光分子探针,可更为精准地指导肿瘤及微小转移灶(如淋巴结)可视化切除,提高手术疗效和患者预后,有望为人类疾病诊断和治疗中提供一种新的辅助方法。

Description

一种生物标志物响应型荧光示踪剂及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及医疗领域,特别涉及一种生物标志物响应型荧光示踪剂及其制备方法和应用。
背景技术
在世界范围内肿瘤病人数目不断增加,尽管诊疗水平和治疗手段都有所提高,但是对高发病率和高死亡率的恶性肿瘤的治愈是远远不足的。手术切除实体肿瘤仍是目前癌症治疗的金标准和首选的策略。然而,术中触诊和目视检查难以确切界定恶性肿瘤与正常的组织,给手术切除肿瘤及淋巴结清扫范围的确定带来很大困难。由于传统的术前成像检查(CT/MRI/PET)具有一定局限性,不适用于外科医生在手术中的成像。因此,迫切需要解决如何对肿瘤进行早期诊断、术前评估以及在术中可视化区分肿瘤及正常组织,以及分辨有无淋巴结转移以及转移范围,实现肿瘤精准切除和转移性淋巴结清扫的问题;以达到最小创伤、最大脏器保护的术中效果。
随着精准外科理念的提出和推广以及体内医学成像技术的发展,特别是荧光成像具有即时性、高分辨率、高特异性等优势,通过在术中对肿瘤及微小转移灶进行实时荧光成像,直观引导肿瘤精准切除和转移性淋巴结的清扫,在精准手术导航技术领域有着可观的应用前景。然而荧光成像术中导航技术的发展和普及使用很大程度依赖于荧光示踪剂的开发。
目前,只有极少数荧光示踪剂如吲哚菁绿和亚甲基蓝应用于外科手术(HuangJiaguo,Pu Kanyi,Near-infrared fluorescent molecular probes for imaging anddiagnosis of nephro-urological diseases.Chem.Sci.2021,12,3379-3392.吲哚菁绿近红外光成像在腹腔镜胃癌根治术中应用中国专家共识(2019版),中国实用外科杂志,2020,40(2),139-144),但其在临床使用中存在诸多缺点:(1)信噪比高,灵敏度低;(2)特异性和靶向性差,体内循环时间短,导致吲哚菁绿显影存在假阴性;(3)光稳定性差,容易导致荧光漂白。以上缺陷导致了现有的示踪剂在手术实时导航中的应用受到较大限制,研发新型高靶向性高灵敏度的生物标志物智能响应型荧光示踪剂十分必要。
发明内容
本发明的目的在于克服现有荧光示踪剂存在的缺陷或不足,提供一种生物标志物响应型荧光示踪剂。本发明提供的生物标志物响应型荧光示踪剂以特定的主体结构作为荧光团,然后在两端分别连接生物标志物响应基团和靶向基团,不仅具有高特异性和灵敏度,还具有较好的安全性、生物相容性和光学稳定性,制备成荧光分子探针,可更为精准地指导肿瘤及微小转移灶可视化切除,提高手术疗效和患者预后,有望为人类疾病诊断和治疗中提供一种新的辅助方法。
本发明的另一目的在于提供上述生物标志物响应型荧光示踪剂的制备方法。
本发明的另一目的在于提供上述生物标志物响应型荧光示踪剂或其药学上可以接受的盐或溶剂合物在制备荧光分子探针中的应用。
为了实现本发明的上述目的,本发明提供了如下技术方案:
一种生物标志物响应型荧光示踪剂,具有如式(Ⅰ)~式(Ⅳ)所示结构:
其中,R1为生物标志物响应基团-A或A-B-,B为自消除基团;
R2为靶向基团;
n为0~10的整数。
本发明以特定的主链结构作为发色团/荧光团,然后两端分别连接生物标志物响应基团和靶向基团,来得到生物标志物响应型荧光示踪剂。其中,荧光团具有较好的量子产率,靶向基团可实现生物标志物响应型荧光示踪剂特异性靶向肿瘤细胞,生物标志物响应基团可被生物标志物激活发生分子结构和光学性能的改变,进而发出较强的荧光信号,并利用荧光成像技术实时监测;本发明提供的生物标志物响应型荧光示踪剂不仅具有高特异性和灵敏度,还具有较好的安全性、生物相容性和光学稳定性。另外,该示踪剂可制备成多种给药方式(静脉注射,腹腔注射或者喷晒)的制剂。以静脉注射方式为例,本发明的生物标志物响应型荧光示踪剂经静脉注射入后,在健康组织中由于组织没有发生病变,生物标志物表达含量非常低,生物标志物响应型荧光示踪剂则不会被生物标志物激活发生分子结构和光学性能的改变,因此正常组织种不会检测到明显的荧光信号;当出现癌变部位时,由于示踪剂具有高靶向性,能够高效的靶向至肿瘤组织,生物标志物响应型荧光示踪剂上的响应基团会被癌变部位高表达的肿瘤生物标志物切除并释放荧光信号,通过荧光成像可实时监测荧光信号,实现不同部位肿瘤组织实时检测和肿瘤手术引导以及转移淋巴结可视化识别,可更为精准地指导肿瘤及微小转移灶可视化切除,提高手术疗效和患者预后,有望为人类疾病诊断和治疗中提供一种新的辅助方法。
根据生物标志物的不同,R1基团可进行对应选取。本发明在此也提供一系列生物标志物相应基团。
优选地,所述生物标志物响应基团A为
经研究,上述生物标志物响应基团与生物标志物之间的特异性激发对应关系如下:
优选地,所述自消除基团为
应当理解的是,自消除基团为时,左侧连接位点与A-连接;自消除基团为/>时,左侧连接位点与A-连接;自消除基团为/>时,右侧连接位点与A-连接。
根据靶向部分的不同,R2基团可进行对应选取。本发明在此也提供一系列靶向基团。
优选地,所述靶向基团为
具体地,靶向基团的具体信息如下:
优选地,所述生物标志物响应型荧光示踪剂具有如下所示结构:
上述生物标志物响应型荧光示踪剂的制备方法,包括如下步骤:
S1:式(1)所示结构的化合物1(4-氨基苯基)甲醇)与R1-H发生缩合反应,得式(2)所示的化合物2;化合物2经溴代反应,得式(3)所示的化合物3,备用;
S2:式(4)所示的化合物4和式(5)所示的化合物5发生取代反应得式(6)所示的化合物6;
S3:化合物6、式(7)所示的化合物7和醋酸酐发生缩合反应得式(8)所示的化合物8;
S4:化合物8发生成环反应得式(9)所示的化合物9,备用;
S5:化合物9和化合物3发生取代反应得到式(10)所示的化合物10;
S6:化合物10和R2-H反应,即得所述生物标志物响应型荧光示踪剂;
反应过程为:
优选地,S1中所述缩合反应的温度为10~30℃,时间为3~24h。
优选地,S1中所述化合物1与R1-H的摩尔比为1:1.1。
优选地,S1的缩合反应的缩合剂为N-乙氧羰基-2-乙氧基-1,2-二氢喹啉、EDC/NHS或HOBT/HBTU中的一种或几种;所述溶剂为乙腈、四氢呋喃或二氯甲烷中的一种或几种。
优选地,S1中所述溴代反应的反应温度为-4~10℃、时间为3~15h。
优选地,S1中所述溴代反应的溶剂为四氢呋喃,二氯甲烷或乙腈中的一种或几种。
优选地,S2中所述取代反应的温度为50~100℃,时间为0.5~3h。
优选地,S2中所述取代反应的溶剂为四氢呋喃或乙腈中的一种或两种。
优选地,S3中所述缩合反应的温度为50~100℃,时间为2~8h。
优选地,S3中所述缩合反应的溶剂为无水醋酐或无水乙醇中的一种或两种。
优选地,S4中所述成环反应的温度为40~70℃,时间为2~10h。
优选地,S 4中所述成环反应的活化剂为碳酸钾、碳酸铯、醋酸钠或醋酸钾中的一种或几种;溶剂为乙腈或N,N二甲基甲酰胺中的一种或几种。
优选地,S5中所述取代反应的温度为50~80℃,时间为2~8h。
优选地,S5中所述取代反应的活化剂为DIPEA,三乙胺、碳酸钾或碳酸铯中的一种或几种,溶剂为乙腈或四氢呋喃中的一种或两种。
优选地,S6中所述反应的温度为10~30℃,时间为3~24h。
优选地,S6中所述反应的溶剂为水、DMSO或四氢呋喃中的一种或几种,催化剂为抗坏血酸钠、硫酸铜或溴化亚铜中的一种或几种。
上述生物标志物响应型荧光示踪剂及其药学上可接受的盐或溶剂化物、对映异构体、非对映异构体、互变异构体在制备荧光分子探针中的应用也在本发明的保护范围内。
优选地,所述药学上可接受的盐为盐酸盐、氢溴酸盐、硝酸盐、甲基硝酸盐、硫酸盐、硫酸氢盐、氨基硫酸盐、磷酸盐、乙酸盐、羟基乙酸盐、苯基乙酸盐、丙酸盐、丁酸盐、异丁酸盐、戊酸盐、马来酸盐、羟基马来酸盐、丙烯酸盐、延胡索酸盐、苹果酸盐、酒石酸盐、柠檬酸盐、水杨酸盐、对氨基水杨酸盐、乙醇酸盐、乳酸盐、庚酸盐、邻苯二甲酸盐、草酸盐、琥珀酸盐、苯甲酸盐、邻乙酰氧基苯甲酸盐、氯苯甲酸盐、甲基苯甲酸盐、二硝基苯甲酸盐、羟苯酸盐、甲氧基苯甲酸盐、扁桃酸盐、丹宁酸盐、甲酸盐、硬脂酸盐、抗坏血酸盐、棕榈酸盐、油酸盐、丙酮酸盐、双羟奈酸盐、丙二酸盐、月桂酸盐、戊二酸盐、谷氨酸盐、丙酸酯月桂硫酸盐(estolate)、甲磺酸盐、乙磺酸盐、2-羟基乙磺酸盐、苯磺酸盐、对氨基苯磺酸盐、对甲苯磺酸盐(甲苯磺酸盐)和萘-2-磺酸盐等。
相对于现有技术,本发明具有如下的优点及效果:
本发明提供的生物标志物响应型荧光示踪剂以特定的主体结构作为荧光团,然后在两端分别连接生物标志物响应基团和靶向基团,不仅具有高特异性和灵敏度,还具有较好的安全性、生物相容性和光学稳定性,制备成荧光分子探针,可更为精准地指导肿瘤及微小转移灶可视化切除,提高手术疗效和患者预后,有望为人类疾病诊断和治疗中提供一种新的辅助方法。
附图说明
图1为实施例1~10中各化合物的合成示意图;
图2为荧光示踪剂CyOARGD在有和无丙氨酸氨基肽酶存在的情况下的紫外吸收光谱变化;
图3为荧光示踪剂CyOARGD在有和无丙氨酸氨基肽酶存在的情况下的荧光光谱变化;
图4为荧光示踪剂CyOARGD在有和无丙氨酸氨基肽酶存在的情况下的荧光成像变化;
图5为荧光示踪剂CyOARGD在其他分析物存在情况下的荧光光谱变化,显示其对丙氨酸氨基肽酶的特异性;
图6为荧光示踪剂CyOARGD在HepG2细胞中的荧光成像;
图7为荧光示踪剂CyOARGD在小鼠原位肝癌中的荧光成像;
图8为荧光示踪剂CyOARGD在小鼠原位肝癌中其他器官的荧光成像。
具体实施方式
以下结合实施例和附图进一步解释本发明,但实施例并不对本发明做任何形式的限定。除非特别说明,本发明采用的试剂、方法和设备为本技术领域常规试剂、方法和设备。
除非特别说明,本发明所用试剂和材料均为市购。
实施例1化合物2的合成
((9H-芴-9-基)甲氧基)羰基)丙氨酸(0.62g,2.0mmol)溶解在乙腈(20mL)中,然后添加(4-氨基苯基)甲醇(0.98g,8.0mmol,化合物1)和N-乙氧羰基-2-乙氧基-1,2-二氢喹啉(2.0g,8.0mmol)。在25℃下搅拌混合物24小时,然后在真空下进行浓缩。用用二氯甲烷萃取的蒸馏水洗涤残渣,并在真空下浓缩,然后进行HPLC纯化,得到化合物2(0.66g,81%)。1HNMR(300MHz,CDCl3):δ1.47(d,J=9Hz,3H),4.23(t,1H),4.45(d,J=9Hz,2H),4.66(s,2H),7.30(d,J=9Hz,4H),7.32(t,2H),7.49(d,J=9Hz,2H),7.58(d,J=6Hz,2H),7.75(d,J=6Hz,2H)。ESI-MS(m/z):计算值:416.17,谱图显示:416.84。
实施例2化合物3的合成
将化合物2(0.42g,1.0mmol)溶解于四氢呋喃(15mL)中,然后添加三溴化磷(PBr3)(0.54g,2.0mmol)。反应混合物在0℃下搅拌12h,然后用蒸馏水淬灭,然后用二氯甲烷萃取并在真空下浓缩。通过制备性HPLC纯化残留物,得到化合物3(0.38g,80%产率)。1HNMR(300MHz,CDCl3):δ1.46(d,J=6Hz,3H),4.17(t,1H),4.44(m,4H),4.65(s,2H),7.30(t,4H),7.31(t,2H),7.47(d,J=6Hz,2H),7.55(t,2H),7.76(d,J=6Hz,2H)。ESI-MS(m/z):计算值:478.09,谱图显示[m-溴]:399.50。
实施例3化合物5的合成
将2,3,3-三甲基-3H-吲哚(化合物4,640mg,4mmol)和1-叠氮-4-碘代丁烷(900mg,4mmol)的混合物在25mL圆底烧瓶中,90℃无溶剂条件下加热1小时。将混合物冷却至室温并在乙醚中沉淀。粗产物用乙醚洗涤以获得化合物5(化合物5,1220mg),在下一步中使用,无需进一步纯化。薄层色谱(硅胶、乙酸乙酯/石油醚;1/5)Rf=0.52。1HNMR(300MHz,CDCl3):δ1.67(s,6H),1.83(m,2H),2.14(m,2H),3.20(s,3H),3.50(t,2H),4.80(t,2H),7.62(m,3H),7.81(dd,1H)。LRMS(m/z):计算值:257.1,谱图显示:257.2。
实施例4化合物7的合成
将溴盐(化合物5,780mg,2.0mmol)、化合物6(270mg,1.0mmol)和无水乙酸钠(250mg,3.0mmol)在10mL醋酸酐中的混合物回流(80℃)6小时。反应混合物冷却至室温,然后减压浓缩,得到棕绿色残渣。用二氯甲烷/甲醇(20/1)通过硅胶柱层析纯化残余物。获得绿色固体(化合物7,1300mg,产率85%)。薄层色谱(硅胶、二氯甲烷/甲醇;20/1)Rf=0.43。1HNMR(300MHz,CDCl3):δ1.70(s,12H),1.85(m,4H),2.00(m,6H),2.80(t,4H),3.48(t,4H),4.31(t,4H),6.32(d,2H),7.20(m,2H),7.25(d,1H),7.30(d,1H),7.40(m,4H),8.30(d,2H)。LRMS(m/z):计算值:649.3,谱图显示:649.3。
实施例5化合物8的合成
将间苯二酚(220mg,2.0mmol)和碳酸钾(276mg,2.0mmol)在乙腈(10mL)中的混合物在50℃下搅拌20min。然后,通过注射器将化合物7(776mg,1.0mmol)在乙腈(10mL)中的溶液加入到上述混合物中,并在55℃下加热反应混合物3h。在减压下蒸发溶剂,并使用二氯甲烷/甲醇(10/1,v/v)作为洗脱剂通过硅胶柱层析纯化粗产物,以得到绿色固体的所需化合物8。薄层色谱(硅胶、二氯甲烷/甲醇;20/1)Rf=0.51。1HNMR(300MHz,CDCl3):δ1.75(s,6H),1.98(m,8H),2.70(m,2H),3.45(t,2H),4.20(t,2H),5.30(s,1H),6.10(d,1H),7.15(m,3H),7.42(m,4H),7.73(d,1H),8.50(d,1H)。LRMS(m/z):计算值:467.2,谱图显示:467.2。
实施例6化合物9的合成
向化合物8(46.80mg,0.1mmol)在乙腈(8mL)中的溶液中添加化合物3(1.44g,0.3mmol)和N,N-二异丙基乙胺(80μl,0.62mmol)。在70℃下搅拌反应混合物6h后,将其倒入蒸馏水中,用二氯甲烷萃取并在真空下浓缩以得到产物。向残渣中添加哌啶(0.8mL)和二甲基甲酰胺(2mL),并在25℃下搅拌15分钟,然后在真空下进行浓缩。通过制备性HPLC进一步纯化,得到蓝色固体的化合物9(48mg,76%)。1HNMR(300MHz,CD3OD):δ1.56(s,3H),1.85(m,8H),1.94(m,4H),2.80(t,4H),3.30(t,2H),4.06(m,1H),4.40(m,2H),5.26(s,2H),6.50(d,J=15Hz,1H),7.15(m,1H),7.45(m,1H),7.55(m,7H),7.70(m,3H),8.75(d,J=15Hz,1H)。
实施例7化合物10(CyOARGD)的合成
将化合物9(24mg,0.038mmol)和丙炔基RGD(64mg,0.04mmol)溶解于二甲基亚砜/水(4ml/4ml)中。加入抗坏血酸钠(8.20mg,0.04mmol)和五水硫酸铜(16.60mg,0.066mmol)在水中的溶液。在25℃下,在氮气气氛下和黑暗中搅拌混合物16h后,在丙酮中进行沉淀。通过制备性HPLC进一步纯化,得到蓝色固体示踪剂CyOARGD(化合物10,89mg,90%产率)。(300MHz,CD3OD):δ0.90(m,4H),0.92(m,4H),0.92(m,4H),0.92(m,2H),0.92(m,2H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6H),1.6,(m,6H),1.32(m,6H),1.32(m,6,(m,6H),1.6,(m,6,(m,6),1.6),1.6,(1.6,(1.6,(1.6),1.32(m,6H),1.6),1.32(m,6),1.6,(m,6,(1.51(d,J=15,1H),7.14-7.44(m,2H),7.56(m,7H),7.67(m,3H),8.78(d,J=15Hz,1H)。ESI-MS(m/z):计算值:1326.68,谱图显示:1326.96。
CyOARGD的结构式如下:
实施例1~10中各化合物的反应过程如图1。
性能测试:
光谱测试:
将10μM的CyOARGD溶液与丙氨酸氨基肽酶溶液在37℃的缓冲溶液中孵育。孵育后测定溶液的紫外可见光谱和荧光光谱。采用IVIS系统采集荧光图像,激发波长为675±10nm,发射波长为720±10nm,采集时间为0.1s。
测试结果如图2,从图2可知,CyOARGD的最大吸收波长在600nm,CyOARGD溶液与丙氨酸氨基肽酶溶液孵育后的最大吸收波长在690nm。
测试结果如图3,从图3可知,CyOARGD的最大发射波长在720nm,CyOARGD溶液与丙氨酸氨基肽酶溶液孵育后的最大吸收波长720nm有明显增长,增长倍数达到12倍。
测试结果如图4,从图4可知,CyOARGD基本无荧光成像信号,CyOARGD溶液与丙氨酸氨基肽酶溶液孵育后有很强的荧光成像信号。
测试结果如图5,从图5可知,CyOARGD与其他分析物存在情况下的荧光光谱基本无变化,仅与丙氨酸氨基肽酶溶液孵育后有明显荧光变化,显示其对丙氨酸氨基肽酶的特异性。
细胞成像:
HepG-2细胞培养于10%胎牛血清(FBS)、100U/ml青霉素和100μg/ml链霉素的DMEM培养基中,孵箱条件37℃,5%空气湿度。对于细胞荧光成像实验,将HepG-2细胞(每孔1×105个细胞于1ml DMEM细胞培养基中)接种到共聚焦细胞培养皿(直径35mm)中并培养过夜,细胞与CyOARGD(10μM)共孵育60分钟,然后弃培养基,用PBS缓冲液冲洗细胞三次;细胞用4%多聚甲醛溶液固定,并用4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)染色。使用激光扫描显微镜LSM800(蔡司)拍摄细胞荧光图像。CyOARGD的激发波长和发射波长为640/655-710nm,Hoechst的激发波长和发射波长为405/410-470nm。
原位肝肿瘤小鼠模型的建立:
随机选取Balb/c裸鼠,将含HepG-2细胞和PBS基质凝胶的混悬液注射至小鼠肝左外侧叶。肿瘤植入后14天后进行影像学检查。
活体小鼠肿瘤的实时体内NIRF成像:
对于原位肝肿瘤模型,在肿瘤植入14天后,再静脉注射CyOARGD(10μmol/kg)后6小时进行实时NIRF成像。使用IVIS spectrumCT系统采集荧光图像,激发波长为675±10nm,发射波长为720±10nm,采集时间为1s。小鼠在注射CyOARGD 6小时后被安乐死,处死后对小鼠切除的器官进行成像。
最后所应当说明的是,以上实施例仅用以说明本发明的技术方案而非对本发明保护范围的限制,对于本领域的普通技术人员来说,在上述说明及思路的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动,这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明权利要求的保护范围之内。

Claims (5)

1.一种生物标志物响应型荧光示踪剂,其特征在于,所述荧光示踪剂具有如下所示结构:
2.权利要求1所述生物标志物响应型荧光示踪剂的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
S1:式(1)所示结构的化合物1与R1-H发生缩合反应,得式(2)所示的化合物2;化合物2经溴代反应,得式(3)所示的化合物3,备用;
S2:式(4)所示的化合物4和式(5)所示的化合物5发生取代反应得式(6)所示的化合物6;
S3:化合物6、式(7)所示的化合物7和醋酸酐发生缩合反应得式(8)所示的化合物8;
S4:化合物8发生成环反应得式(9)所示的化合物9,备用;
S5:化合物9和化合物3发生取代反应得到式(10)所示的化合物10;
S6:化合物10和R2-H反应,即得所述生物标志物响应型荧光示踪剂;
其中,R1,n=0。
3. 根据权利要求2所述制备方法,其特征在于,S1中所述缩合反应的温度为10~30℃,时间为3~24 h;S1中所述溴代反应的反应温度为-4~10℃,时间为3~15 h。
4. 根据权利要求2所述制备方法,其特征在于,S2中所述取代反应的温度为50~100℃,时间为0.5~3 h;
S3中所述缩合反应的温度为50~100℃,时间为2~8 h;
S4中所述成环反应的温度为40~70℃,时间为2~10 h;
S5中所述取代反应的温度为50~80℃,时间为2~8 h;
S6中所述反应的温度为10~30℃,时间为3~24 h。
5.权利要求1所述生物标志物响应型荧光示踪剂及其药学上可接受的盐在制备荧光分子探针中的应用。
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