CN113930473B - 一种无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种无机‑微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180‑240rpm下培养24‑72h,得到种子培养液;摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为0.2‑6g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180‑240rpm下培养48‑108h,其中,发酵培养过程置于全程有光或完全黑暗的条件下。该方法通过光驱动氮化碳纳米片与红法夫酵母组装成的杂化体系的方法,可显著提高红法夫酵母虾青素的产量。
Description
技术领域
本发明涉及虾青素的技术领域,具体涉及一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法。
背景技术
天然虾青素全称是3,3’-二羟基-4,4’-二酮基-β,β’-胡萝卜素,是含有多个共轭双键的萜烯类不饱和化合物。其具有极强的猝灭单线态氧和清除自由基的能力,能够增强机体免疫力和巨噬细胞吞噬功能,并且对癌症具有一定的化学预防能力。因此虾青素在医药,保健品,化妆品,食品养殖等行业具有极大的应用价值和广阔的开发前景。
相较于人工合成虾青素,天然虾青素具有安全稳定,生物活性高等优点。并且以微生物发酵方法生产天然虾青素具有成本低,可以大规模生产的优势。红法夫酵母(Phaffiarhdozyma)是虾青素产量最高的一种真菌,可以利用多种碳源氮源进行异养代谢。野生红法夫酵母菌株虾青素产量很低,实际生产中通过诱变育种筛选,原生质体融合,基因工程等方法来获得高产红法夫酵母菌株进而提高虾青素产量,但是这些方法在生产前期需要投入大量的人力和资金进行高产菌株的筛选,而且后期还需要不断优化生产和培养条件。
发明内容
本发明的目的在于提供一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,解决上述现有技术问题中的一个或者多个。
本发明提供一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为0.2-6g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程有光或完全黑暗的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557。
进一步的,所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然。
进一步的,所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然。
进一步的,所述摇瓶种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过高压灭菌处理。
进一步的,所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550℃,保温2-5h;然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80℃干燥4h,研磨成粉状。
进一步的,所述发酵培养过程置于全程有光的光照条件下进行。
进一步的,全程光照的光源为大于400nm的可见连续光谱。
进一步的,将所述种子培养液接种于含有浓度为5g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中。
本发明的有益效果:
本发明通过光驱动氮化碳纳米片与红法夫酵母组装成的杂化体系的方法,可显著提高红法夫酵母虾青素的产量,不仅对于工业上采用红法夫酵母生产天然虾青素具有良好的应用前景,而且对于红法夫酵母生产虾青素的代谢机理研究的完善具有重要的意义。
附图说明
图1为红法夫酵母进行光照培养时白光光源波长与强度的关系图;
图2为红法夫酵母与氮化碳纳米片的Zeta电位对比图;
图3为合成的氮化碳纳米片的TEM图;
图4为红法夫酵母与氮化碳纳米片自组装成杂化体系的SEM图;
图5为虾青素标准品HPLC测定下特征峰面积与对应浓度拟合的标准曲线。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步描述。以下实施例只是用于更加清楚地说明本发明的性能,而不能仅局限于下面的实施例。
实施例1:
一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为0.2g/L氮化碳纳米片发酵培养基(如图4所示,红法夫酵母与氮化碳纳米片自组装成杂化体系的SEM图)的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程完全黑暗的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557;所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然;所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然;所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550℃,保温2-5h,然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80℃干燥4h,研磨成粉状,备用(其TEM图如图3所示);所述摇瓶种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过121℃,20min灭菌,达到无菌状态。
为了检测了所得发酵液中红法夫酵母虾青素产量,本发明所提供的实施例均采用此检测方法,具体检测方法如下:
①虾青素的提取
取3ml的发酵液于离心管中,在4℃下,10000rpm离心5min,菌泥用pH=7.2的PBS缓冲液清洗三次,彻底倒去上清液;后在离心管中加入3ml pH=4.8的醋酸-醋酸铵缓冲液,旋涡混匀成为均匀的浊液,超声破壁处理1h(95%功率,开40s,关8s);紧接着加入50mg纤维素酶(10,000U/g),在40℃环境中振荡处理30~36h;收集全部液体集中于同一个离心管中,在4℃下,12000rpm离心10~15min,完全倒去上层液体,向固体中加入4ml DMSO,充分旋涡混匀,后在12℃,12000rpm离心10min,取上清液,并将上清液经过0.22μm的有机滤头进行过滤,作为HPLC测试样品。
②虾青素含量的测定
将提取的样品进行高效液相色谱(HPLC)分析,所述的高效液相色谱分析的条件见下表:
其次,绘制标准曲线:
准确称取0.0010g虾青素标准品,用DMSO完全溶解并定容至100ml容量瓶中,得到10mg/L标准液的母液,对该母液按照0.2mg/L、0.1mg/L、0.05mg/L、0.025mg/L、0.01mg/L进行梯度稀释,各梯度的标准液按照上述HPLC分析方法进行测定,使用上述各浓度及对应测定的峰面积绘制标准曲线,测定拟合得到的标准曲线Y=aX+b(如图5所示),相关系数的平方为R2=0.999。
③虾青素产量的计算
虾青素产量的计算如公式I所示
其中,C表示样品中虾青素的含量,单位为mg/L,Area表示样品在HPLC测试中对应的峰面积,单位为mV*min,a表示线性回归方程标准曲线中的斜率,b表示线性回归方程标准曲线的截距,4/3表示单位换算系数。
每个样品取3个平行样进行测定,以其算数平均值为结果。
基于红法夫酵母虾青素产量的检测方法,经测实施例1中样品最终虾青素的产量为0.0605mg/L。
实施例2:
一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为1g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程完全黑暗的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557;所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然;所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然;所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550℃,保温2-5h,然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80℃干燥4h,研磨成粉状备用;所述摇瓶种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过121℃,20min灭菌,达到无菌状态。
与实施例1使用的红法夫酵母虾青素产量的检测方法相同,经测实施例2中样品最终虾青素的产量为0.0612mg/L。
实施例3:
一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为5g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程完全黑暗的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557;所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然;所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然;所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550℃,保温2-5h,然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80℃干燥4h,研磨成粉状备用;所述摇瓶种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过121℃,20min灭菌,达到无菌状态。
与实施例1使用的红法夫酵母虾青素产量的检测方法相同,经测实施例3中样品最终虾青素的产量为0.1321mg/L。
实施例4:
一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为5g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程白光照射(如图1所示,全程光照的光源为大于400nm的可见连续光谱)的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557;所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然;所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然;所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550℃,保温2-5h,然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80℃干燥4h,研磨成粉状备用;所述摇瓶种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过121℃,20min灭菌,达到无菌状态。
与实施例1使用的红法夫酵母虾青素产量的检测方法相同,经测实施例4中样品最终虾青素的产量为0.5291mg/L。
对比例1:
一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程完全黑暗的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557;所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然;所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然;所述摇瓶种子培养基、发酵培养基在接种之前均经过121℃,20min灭菌,达到无菌状态。
与实施例1使用的红法夫酵母虾青素产量的检测方法相同,经测对比例1中样品最终虾青素的产量为0.0580mg/L。
对比例2:
一种光驱动无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为6g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5℃、转速180-240rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程完全黑暗的条件下。
其中,红法夫酵母原始斜面菌株购置于中国科学院菌种保藏中心,菌株编号为2.1557;所述摇瓶种子培养基包括10-12g/L的葡萄糖、10-12g/L的蛋白胨以及5-8g/L的酵母提取物,所述摇瓶种子培养基pH自然;所述摇瓶发酵培养基包括20-25g/L的葡萄糖、20-25g/L的蛋白胨以及10-14g/L的酵母提取物,所述摇瓶发酵培养基pH自然;所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550℃,保温2-5h,然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80℃干燥4h,研磨成粉状备用;所述摇瓶种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过121℃,20min灭菌,达到无菌状态。
与实施例1使用的红法夫酵母虾青素产量的检测方法相同,经测对比例2中样品最终虾青素的产量为0.0362mg/L。
从实施例1-3与对比例1-2可知:氮化碳纳米片与红法夫酵母组装成的杂化体系的方法可提高红法夫酵母虾青素的产量,当氮化碳纳米片浓度提升时,红法夫酵母虾青素的产量随之提升,发酵培养基中含有浓度为5g/L氮化碳纳米片时,虾青素的产量最高,超过该浓度后,虾青素的产量反而呈下降趋势。
从实施例4与对比例1可知:在全程白光照射下,尤其是全程光照的光源为大于400nm的可见连续光谱,虾青素的产量显著提高。图2为红法夫酵母与氮化碳纳米片的Zeta电位对比图。野生红法夫酵母菌株和无机光响应材料组装成为杂化系统,光照下形成的光生电荷能够进入红法夫酵母细胞内部,影响代谢通路,最终达到提升虾青素产量的效果。
该光驱动氮化碳纳米片与红法夫酵母组装成的杂化体系的方法不仅对于工业上采用红法夫酵母生产天然虾青素具有良好的应用前景,而且对于红法夫酵母生产虾青素的代谢机理研究的完善具有重要的意义。
以上表述仅为本发明的优选方式,应当指出,对本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明创造构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些也应视为本发明的保护范围之内。
Claims (5)
1.一种无机-微生物杂化体系提高野生红法夫酵母菌株虾青素产量的方法,其特征在于,包括以下步骤:
摇瓶种子培养:从红法夫酵母原始斜面菌株斜面上取一接种环菌种接种于种子培养基中,摇瓶在22±5 ℃、转速180-240 rpm下培养24-72h,得到种子培养液;
摇瓶发酵培养:按10%的体积比,将所述种子培养液接种于含有浓度为5g/L氮化碳纳米片发酵培养基的摇瓶中,摇瓶在22±5 ℃、转速180-240 rpm下培养48-108h,其中,发酵培养过程置于全程有光的条件下,全程光照的光源为大于400 nm的可见连续光谱。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述种子培养基包括10-12 g/L的葡萄糖、10-12 g/L的蛋白胨以及5-8 g/L的酵母提取物,所述种子培养基pH自然。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述发酵培养基包括20-25 g/L的葡萄糖、20-25 g/L的蛋白胨以及10-14 g/L的酵母提取物,所述发酵培养基pH自然。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述种子培养基、发酵培养基以及氮化碳纳米片在接种之前均经过高压灭菌处理。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述氮化碳纳米片通过以下步骤制备而成:以尿素为前驱体,以一定的升温速率从室温升至550 ℃,保温2-5h;然后自然冷却至室温;去离子水浸泡过夜,抽滤,洗涤,80 ℃干燥4 h,研磨成粉状。
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