CN113584073A - 一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法,涉及植物高效遗传转化技术领域。本发明包括以下步骤:以埃塞俄比亚芥子叶作为外植体,放入预培养基进行预培养,取出进行农杆菌侵染,再次利用预培养基进行共培养,完成后进行愈伤组织诱导、增殖及生根培养,获得再生植株。本发明以子叶为外植体,相较于下胚轴具有更高的转化效率;通过预培养及共培养,进一步提高遗传转化效率及植株的再生。
Description
技术领域
本发明属于植物高效遗传转化技术领域,尤其涉及一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法。
背景技术
栽培油菜主要包括甘蓝型油菜(Brassica napus)、白菜型油菜(B.rapa或B.campestris)、芥菜型油菜(B.juncea)和埃塞俄比亚芥(B.carinata)。其中,埃塞俄比亚芥由于起源于非洲,虽具有一些不良性状,如产量低、生育期长,低油酸、高芥酸、高硫苷,菜籽品质较差,但埃塞俄比亚芥不需要低温春化,耐热、耐干旱,其分枝旺盛,根系深,抗倒伏,还具有很多优良的农艺性状,如抗黑胫病、霜霉病等多种病害,抗蚜虫、跳甲等多种害虫,且种质资源十分丰富。因此,随着埃塞俄比亚芥的利用,围绕其有利性状改良的品种越来越多。
转基因技术作为现代生物技术中改良农作物品质的有效手段之一,其在农业生产中具有广泛的应用前景。有关十字花科作物开展转基因的研究报道较多,大多数研究者主要采用农杆菌导入法,采用此法成功的关键是如何建立一个稳定高效的遗传转化体系。目前,已经在白菜高频再生体系、甘蓝和甘蓝型油菜、芥菜等作物的高效稳定遗传转化体系建立等方面进行了探讨,而对埃塞俄比亚芥高效遗传转化体系的建立研究较为少见。影响植物农杆菌高效遗传转化的因素较多,如外植体的选择、农杆菌浸染过程、再生体系培养基的组成等。如对于外植体,一般认为子叶与下胚轴具有较高的细胞全能性,或者说其全能性能够得到较好的发挥,在遗传转化中,下胚轴外植体能形成高频率的遗传转化再生体系,而子叶外植体则具有较低的遗传转化频率。
目前十字花科芸苔属作物的遗传转化体系主要为甘蓝型油菜遗传转化体系,且以下胚轴为外植体较多,缺少更适合埃塞俄比亚芥的遗传转化体系。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的在于提供一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法,以子叶为外植体,并配合更加适合埃塞俄比亚芥的遗传转化体系,可显著提高其遗传转化效率。
为了实现上述发明目的,本发明提供了以下技术方案:
一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法,包括以下步骤:以埃塞俄比亚芥子叶作为外植体,放入预培养基进行预培养,取出进行农杆菌侵染,再次利用预培养基进行共培养,完成后进行愈伤组织诱导、增殖及生根培养,获得再生植株。
优选的是,所述子叶外植体的获取方法包括:取埃塞俄比亚芥无菌苗,在叶柄与下胚轴结合尖端切下叶柄,不包括茎尖分生组织。
优选的是,所述农杆菌菌液OD600=1.8-2.0。
优选的是,所述预培养基包括:MS 4.4-4.5g/L+乙酰丁香酮0.08-0.1g/L+蔗糖28-30g/L+琼脂糖5.5-6.0g/L+甘露醇18-20g/L+NAA 0.0005-0.001g/L+GA30.001-0.003g/L。
优选的是,所述预培养为常温培养18-30h。
优选的是,所述农杆菌侵染包括:将所述外植体叶柄切断处浸入农杆菌菌液浸染8-12s。
优选的是,所述共培养为在22-28℃下暗培养36-60h。
优选的是,所述愈伤组织诱导培养基包括:MS 4.4-4.5mg/L+甘露醇18-20mg/L+蔗糖28-30mg/L+NAA 0.0005-0.001mg/L+GA30.001-0.003mg/L+特美汀0.25-0.3mg/L+卡那霉素0.005-0.01mg/L+琼脂糖5.5-6.0mg/L。
优选的是,所述继代增殖培养基包括:MS 4.4-4.5mg/L+葡萄糖9-10mg/L+木糖0.2-0.3mg/L+2-吗啉乙磺酸0.5-0.6mg/L+NAA 0.0005-0.001mg/L+GA30.001-0.003mg/L+特美汀0.1-0.3mg/L+卡那霉素0.005-0.01mg/L+琼脂糖5.5-6.0mg/L。
优选的是,所述生根培养基包括:MS 2.2-3.0mg/L+蔗糖10-12mg/L。
相对于现有技术,本发明具有如下有益效果:
本发明提供了一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法。对埃塞俄比亚芥而言,以下胚轴为外植体的遗传转化成苗率低,下胚轴易褐化;而以子叶为外植体,可显著提高转化效率。相对于传统的遗传转化方法切下的外植体浸泡悬浮液,再转化农杆菌,本发明将外植体切口端插入预培养基预培18-30h,一方面可以缓解传统方法中边切外植体边转农杆菌,工作量大时间紧的问题;另一方面预培养基预培1天后可以起到“壮苗”的作用,提高了遗传转化效率。在外植体感菌之后,本发明再次利用预培养基进行共培养,能够提高植物愈伤组织胚状体的发生和植株的再生。
具体实施方式
本发明提供了一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法,包括以下步骤:以埃塞俄比亚芥子叶作为外植体,放入预培养基进行预培养,取出进行农杆菌侵染,再次利用预培养基进行共培养,完成后进行愈伤组织诱导、增殖及生根培养,获得再生植株。
本发明埃塞俄比亚芥子叶优选来自于埃塞俄比亚无菌幼苗。所述埃塞俄比亚无菌幼苗经过种子消毒及萌发培养获得。
本发明埃塞俄比亚种子消毒优选体积浓度75%酒精消毒20min+质量浓度2%次氯酸钠溶液消毒10min。传统遗传转化方法种子消毒通常采用2%次氯酸钠+0.1%升汞,本发明取消了升汞消毒的步骤,在酒精消毒后仅采用次氯酸钠溶液消毒10min,避免了升汞的毒性,消毒效果较好。作为一种可实施方式,本发明挑选籽粒饱满的埃芥种子放入培养皿,向培养皿中加入15-20ml 75%酒精,旋转20分钟,倒出溶液;再向培养皿中加入15-20ml的2%次氯酸钠溶液,旋转10分钟,倒出溶液;用20-30ml无菌ddH2O冲洗种子4-6次。
本发明埃芥种子萌发培养优选将种子放入萌发培养基,暗培养1天后移至光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养5天。进一步优选种子萌发培养基包括:MS 4.4-4.5g/L+蔗糖28-30g/L+琼脂糖5.5-6.0g/L;更优选MS 4.4g/L+蔗糖30g/L+琼脂糖6.0g/L。
本发明所述子叶外植体的获取方法包括:取埃塞俄比亚芥无菌苗,在叶柄与下胚轴结合尖端切下叶柄,不包括茎尖分生组织及其任何部分。
将子叶外植体直接浸入农杆菌菌液进行感染,会导致外植体在分化培养基上褐化死亡。本发明收集子叶后放入预培养基进行预培养,优选常温预培养18-30h,更优选预培养24h。本发明优选预培养基包括:MS 4.4-4.5g/L+乙酰丁香酮0.08-0.1g/L+蔗糖28-30g/L+琼脂糖5.5-6.0g/L+甘露醇18-20g/L+NAA 0.0005-0.001g/L+GA30.001-0.003g/L;进一步优选MS 4.4g/L+乙酰丁香酮0.1g/L+蔗糖30g/L+琼脂糖6.0g/L+甘露醇18g/L+NAA 0.001g/L+GA30.001g/L。
农杆菌菌液浓度过低,侵染时间过短,进行转化的外植体因为不能附着足够的菌体,从而导致转化率较低;农杆菌菌液浓度过高,侵染时间过长,农杆菌侵染过度,不利于外植体成活及后续的组织培养过程。本发明优选农杆菌菌液OD600=1.8-2.0,进一步优选OD600=2.0。作为一种可实施方式,本发明将重组载体农杆菌菌液加入到50mL LB液体培养基(含抗生素Kan 100ng/μL、Rif 100ng/μL、Gen100ng/μL),置于28℃,200rpm振荡培养至OD600=1.5-2.0,5000rpm离心15min,倒掉上清培养基,用DM缓冲液重悬,调节OD600=2.0;所述DM缓冲液为MS 2.2g/L+琼脂2.5g/L。
本发明优选侵染方式为将所述外植体叶柄切断处浸入农杆菌菌液浸染8-12s进行接种,进一步优选侵染时间为10s。
浸染完成后,将外植体再次放入预培养基,进行共培养。利用本发明利用预培养基进行共培养,甘露醇可提高培养基的渗透压,使组织细胞不会因为吸水过多而涨破;NAA+GA3对愈伤组织诱导培养,可提高植物愈伤组织胚状体的发生和植株的再生。作为一种可实施方式,共培养前,将接种后的外植体放在无菌滤纸盘上吸取多余的菌液。
共培养的时间长短则直接影响到目的基因的整合及转化细胞的数量,从而影响遗传转化率。本发明优选共培养为在22-28℃下暗培养36-60h;进一步优选温度为25℃,共培养时间为48h。
共培养完成后,将外植体依次置于愈伤组织诱导培养基、增殖培养基和生根培养基培养,以获得埃芥再生植株。本发明优选愈伤组织诱导、增殖、生根环境温度为22-28℃,16h/8h的光/暗培养,其中愈伤组织诱导2-3周,增殖培养3-4周,生根培养至植株长出根系。
本发明优选愈伤组织诱导培养基包括:MS 4.4-4.5mg/L+甘露醇18-20mg/L+蔗糖28-30mg/L+NAA 0.0005-0.001mg/L+GA30.001-0.003mg/L+特美汀0.25-0.3mg/L+卡那霉素0.005-0.01mg/L+琼脂糖5.5-6.0mg/L;进一步优选MS 4.4mg/L+甘露醇18mg/L+蔗糖30mg/L+NAA 0.001mg/L+GA30.001mg/L+特美汀0.3mg/L+卡那霉素0.01mg/L+琼脂糖6.0mg/L。本发明在预培养基的基础上添加特美汀和卡那霉素,特美汀对农杆菌的生长繁殖起到抑制作用,卡那霉素起到筛选作用,避免假阳性苗的产生。
本发明优选增殖培养基包括:MS 4.4-4.5mg/L+葡萄糖9-10mg/L+木糖0.2-0.3mg/L+2-吗啉乙磺酸0.5-0.6mg/L+NAA 0.0005-0.001mg/L+GA30.001-0.003mg/L+特美汀0.1-0.3mg/L+卡那霉素0.005-0.01mg/L+琼脂糖5.5-6.0mg/L;进一步优选MS 4.4mg/L+葡萄糖10mg/L+木糖0.25mg/L+2-吗啉乙磺酸0.6mg/L+NAA 0.001mg/L+GA30.001mg/L+特美汀0.3mg/L+卡那霉素0.01mg/L+琼脂糖6.0mg/L。本发明通过在增殖培养基中添加2-吗啉乙磺酸,调节氢离子浓度,促进愈伤组织生长、增殖。
本发明优选生根培养基包括:MS 2.2-3.0mg/L+蔗糖10-12mg/L;进一步优选MS2.2mg/L+蔗糖10mg/L,以促进生根。
下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化体系:
(1)准备无菌种子:挑选籽粒饱满的埃芥种子300粒放入培养皿,向培养皿中加入18ml的75%酒精,旋转20分钟,倒出溶液;再向培养皿中加入18ml的2%次氯酸钠溶液,旋转10分钟,倒出溶液;用25ml无菌ddH2O冲洗种子5次。
(2)使用无菌镊子将灭菌后的种子转移至M0培养基中,每个播种盒放约50粒种子,暗光培养1天后移至光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养5天。M0培养基为:MS 4.4g/L+蔗糖30g/L+琼脂糖6.0g/L。
(3)在叶柄与下胚轴结合的尖端用锋利的手术刀切下叶柄,但不包括茎尖分生组织及其任何部分,收集子叶放入M1培养基预培养24h。M1培养基为:MS 4.4g/L+乙酰丁香酮0.1g/L+蔗糖30g/L+琼脂糖6.0g/L+甘露醇18g/L+NAA0.001g/L+GA30.001g/L。
(4)农杆菌菌液准备:重组载体农杆菌菌液加入到50mL LB液体培养基(含抗生素Kan 100ng/μL、Rif 100ng/μL、Gen100ng/μL),置于28℃,200rpm振荡培养至OD600=1.5-2.0,5000rpm离心15min,倒掉上清培养基,用DM缓冲液重悬,调节OD600=2.0。DM缓冲液为:MS 2.2g/L+琼脂2.5g/L。
(5)通过将叶柄的切端浸入农杆菌悬液10秒钟,接种外植体。将接种后的外植体放在无菌滤纸盘上吸取多余的菌液,之后将外植体摆放到M1培养基,在暗光中于25℃培养48h。
(6)将M1中的外植体移入M2培养基,25℃,16h/8h的光/暗培养2-3周。M2培养基为:MS 4.4mg/L+甘露醇18mg/L+蔗糖30mg/L+NAA0.001mg/L+GA30.001mg/L+特美汀0.3mg/L+卡那霉素0.01mg/L+琼脂糖6.0mg/L。
(7)将M2中的外植体移入M3培养基,25℃,16h/8h的光/暗培养3-4周。M3培养基为:MS 4.4mg/L+葡萄糖10mg/L+木糖0.25mg/L+2-吗啉乙磺酸0.6mg/L+NAA 0.001mg/L+GA30.001mg/L+特美汀0.3mg/L+卡那霉素0.01mg/L+琼脂糖6.0mg/L
(8)用无菌手术刀切去愈伤组织的褐化部分,保留再生苗并移入M4培养基,放入光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养至长出根。M4培养基为:MS 2.2mg/L+蔗糖10mg/L。
实施例2
一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化体系:
(1)准备无菌种子:挑选籽粒饱满的埃芥种子300粒放入培养皿,向培养皿中加入15ml的75%酒精,旋转20分钟,倒出溶液;再向培养皿中加入15ml的2%次氯酸钠溶液,旋转10分钟,倒出溶液;用20ml无菌ddH2O冲洗种子4次。
(2)使用无菌镊子将灭菌后的种子转移至M0培养基中,每个播种盒放约50粒种子,暗光培养1天后移至光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养5天。M0培养基为:MS 4.4g/L+蔗糖29g/L+琼脂糖5.8g/L。
(3)在叶柄与下胚轴结合的尖端用锋利的手术刀切下叶柄,但不包括茎尖分生组织及其任何部分,收集子叶放入M1培养基预培养18h。M1培养基为:MS 4.4g/L+乙酰丁香酮0.09g/L+蔗糖29g/L+琼脂糖5.8g/L+甘露醇19g/L+NAA0.0008g/L+GA30.003g/L。
(4)农杆菌菌液准备:重组载体农杆菌菌液加入到50mL LB液体培养基(含抗生素Kan 100ng/μL、Rif 100ng/μL、Gen100ng/μL),置于28℃,200rpm振荡培养至OD600=1.5-2.0,5000rpm离心15min,倒掉上清培养基,用DM缓冲液重悬,调节OD600=1.9。DM缓冲液为:MS 2.2g/L+琼脂2.5g/L。
(5)通过将叶柄的切端浸入农杆菌悬液8秒钟,接种外植体。将接种后的外植体放在无菌滤纸盘上吸取多余的菌液,之后将外植体摆放到M1培养基,在暗光中于25℃培养36h。
(6)将M1中的外植体移入M2培养基,25℃,16h/8h的光/暗培养2-3周。M2培养基为:MS 4.4mg/L+甘露醇19mg/L+蔗糖29mg/L+NAA 0.0008mg/L+GA30.003mg/L+特美汀0.28mg/L+卡那霉素0.008mg/L+琼脂糖5.8mg/L。
(7)将M2中的外植体移入M3培养基,25℃,16h/8h的光/暗培养3-4周。M3培养基为:MS 4.4mg/L+葡萄糖10mg/L+木糖0.2mg/L+2-吗啉乙磺酸0.6mg/L+NAA 0.0008mg/L+GA30.003mg/L+特美汀0.28mg/L+卡那霉素0.008mg/L+琼脂糖5.8mg/L。
(8)用无菌手术刀切去愈伤组织的褐化部分,保留再生苗并移入M4培养基,放入光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养至长出根。M4培养基为:MS 2.6mg/L+蔗糖11mg/L。
实施例3
一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化体系:
(1)准备无菌种子:挑选籽粒饱满的埃芥种子300粒放入培养皿,向培养皿中加入20ml的75%酒精,旋转20分钟,倒出溶液;再向培养皿中加入20ml的2%次氯酸钠溶液,旋转10分钟,倒出溶液;用30ml无菌ddH2O冲洗种子6次。
(2)使用无菌镊子将灭菌后的种子转移至M0培养基中,每个播种盒放约50粒种子,暗光培养1天后移至光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养5天。M0培养基为:MS 4.5g/L+蔗糖28g/L+琼脂糖5.5g/L。
(3)在叶柄与下胚轴结合的尖端用锋利的手术刀切下叶柄,但不包括茎尖分生组织及其任何部分,收集子叶放入M1培养基预培养30h。M1培养基为:MS 4.5g/L+乙酰丁香酮0.08g/L+蔗糖28g/L+琼脂糖5.5g/L+甘露醇20g/L+NAA0.0005g/L+GA30.0015g/L。
(4)农杆菌菌液准备:重组载体农杆菌菌液加入到50mL LB液体培养基(含抗生素Kan 100ng/μL、Rif 100ng/μL、Gen100ng/μL),置于28℃,200rpm振荡培养至OD600=1.5-2.0,5000rpm离心15min,倒掉上清培养基,用DM缓冲液重悬,调节OD600=1.8。DM缓冲液为:MS 2.2g/L+琼脂2.5g/L。
(5)通过将叶柄的切端浸入农杆菌悬液12秒钟,接种外植体。将接种后的外植体放在无菌滤纸盘上吸取多余的菌液,之后将外植体摆放到M1培养基,在暗光中于25℃培养60h。
(6)将M1中的外植体移入M2培养基,25℃,16h/8h的光/暗培养2-3周。M2培养基为:MS 4.5mg/L+甘露醇20mg/L+蔗糖28mg/L+NAA 0.0005mg/L+GA30.0015mg/L+特美汀0.25mg/L+卡那霉素0.005mg/L+琼脂糖5.5mg/L。
(7)将M2中的外植体移入M3培养基,25℃,16h/8h的光/暗培养3-4周。M3培养基为:MS 4.5mg/L+葡萄糖9mg/L+木糖0.3mg/L+2-吗啉乙磺酸0.5mg/L+NAA 0.0005mg/L+GA30.0015mg/L+特美汀0.25mg/L+卡那霉素0.005mg/L+琼脂糖5.5mg/L。
(8)用无菌手术刀切去愈伤组织的褐化部分,保留再生苗并移入M4培养基,放入光照培养箱,25℃,16h/8h的光/暗培养至长出根。M4培养基为:MS 3.0mg/L+蔗糖12mg/L。
实施例4
不同类型的外植体对外源植物激素做出不同的反应,影响外植体的分化率及不定芽的再生。本发明以100粒种子为1个转化批次,分别以子叶和下胚轴为外植体,利用实施例1所述体系进行埃芥遗传转化,统计各外植体的分化率及转化率(见表1)。发现相对于下胚轴为外植体,埃塞俄比亚芥子叶的分化率及转化率均较高。
分化率=已分化外植体数/总外植体数
转化率=转化成苗数/总种子数
表1不同外植体分化率与转化率
实施例5
本发明以子叶为外植体,以NAA 0.001mg/L+GA30.001mg/L作为外源激素,分别添加到埃芥预培养基、愈伤组织诱导培养基及增殖培养基,统计子叶外植体各阶段生长情况(见表2)。发现以NAA 0.001mg/L+GA30.001mg/L作为外源激素,能够保证埃芥的较高的分化率、不定芽再生率,提前生根时间,及较高的生根率。
表2以子叶为外植体的各阶段生长情况
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (10)
1.一种埃塞俄比亚芥高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,包括以下步骤:以埃塞俄比亚芥子叶作为外植体,放入预培养基进行预培养,取出进行农杆菌侵染,再次利用预培养基进行共培养,完成后进行愈伤组织诱导、增殖及生根培养,获得再生植株。
2.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述子叶外植体的获取方法包括:取埃塞俄比亚芥无菌苗,在叶柄与下胚轴结合尖端切下叶柄,不包括茎尖分生组织。
3.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述农杆菌菌液OD600=1.8-2.0。
4.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述预培养基包括:MS 4.4-4.5g/L+乙酰丁香酮0.08-0.1g/L+蔗糖28-30g/L+琼脂糖5.5-6.0g/L+甘露醇18-20g/L+NAA 0.0005-0.001g/L+GA30.001-0.003g/L。
5.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述预培养为常温培养18-30h。
6.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述农杆菌侵染包括:将所述外植体叶柄切断处浸入农杆菌菌液浸染8-12s。
7.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述共培养为在22-28℃下暗培养36-60h。
8.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述愈伤组织诱导培养基包括:MS 4.4-4.5mg/L+甘露醇18-20mg/L+蔗糖28-30mg/L+NAA 0.0005-0.001mg/L+GA3 0.001-0.003mg/L+特美汀0.25-0.3mg/L+卡那霉素0.005-0.01mg/L+琼脂糖5.5-6.0mg/L。
9.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述继代增殖培养基包括:MS 4.4-4.5mg/L+葡萄糖9-10mg/L+木糖0.2-0.3mg/L+2-吗啉乙磺酸0.5-0.6mg/L+NAA 0.0005-0.001mg/L+GA30.001-0.003mg/L+特美汀0.1-0.3mg/L+卡那霉素0.005-0.01mg/L+琼脂糖5.5-6.0mg/L。
10.根据权利要求1所述的高效遗传转化系统建立的方法,其特征在于,所述生根培养基包括:MS 2.2-3.0mg/L+蔗糖10-12mg/L。
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20211102 |
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