CN113403145A - 一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及食品加工技术领域,涉及一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,S1:向玫瑰花朵中加入生物酶,搅拌均匀并将玫瑰花朵粉碎;S2:在‑45℃至‑50℃,速冻,速冻后的玫瑰花朵转移至所述物料隔板上加热到40‑42℃;S3:压力在‑0.09至‑0.095Mpa,温度控制在‑45℃至‑50℃,并保持至玫瑰花朵干燥;随后在45℃±2℃下融化细胞原液冰晶,并收集所述细胞原液;S4将上述步骤S3收集的细胞原液于‑18℃以下速冻,随后转移至室温融化;S5:采用微孔滤膜过滤上述步骤S4融化的细胞原液;S6:醇化,过滤。在本发明中,对玫瑰花朵及细胞原液进行多次的冷冻‑融化,使得玫瑰花细胞中的细胞液能充分与玫瑰花朵分离,提高细胞液的收集效率。
Description
技术领域
本发明涉及食品加工技术领域,具体而言,涉及一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺。
背景技术
玫瑰花细胞液是玫瑰细胞中的液体,其在化妆品中应用广泛。目前提取玫瑰细胞液主要是通过蒸馏、干馏和真空提取等方式获得玫瑰细胞液。
专利CN109593610A公开了一种大马士革玫瑰花提炼精油的方法,其通过冷冻破壁、蒸馏、冷凝、油水分离后,得到玫瑰精油,在该专利中,在提取玫瑰精油时,需向玫瑰花瓣中加入水,再加热蒸馏得到细胞液和水的混合物,后序还需要进行分离操作,玫瑰细胞液的提取率低,得到的玫瑰细胞液中还含有其他的杂质。
专利CN111721073A公开了一种真空冷冻干燥玫瑰花工艺,该方案中,将玫瑰花进行冷冻、升温干燥,并收集干燥时的气体,在低温下进行冷凝,得到玫瑰纯露,在干专利中,提取玫瑰细胞液是虽然没有加入水,但玫瑰细胞液不能完全的从细胞中分离出来,玫瑰细胞液的提取率低。
发明内容
本发明的目的在于提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其对玫瑰花朵和细胞液进行多次冷冻-融化,使得玫瑰细胞壁充分破壁,充分收集玫瑰细胞液,提高细胞液的收集效率。
本发明的通过以下技术方案实现:
先在-45℃至-50℃下,将玫瑰花朵速冻,细胞液凝结成冰,将玫瑰花中的精油和芳香物质、留活性成分及天然营养截留在玫瑰花朵的细胞内,随后,在真空下升温,使得细胞液气化,
一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,包括以下步骤,
S1:向玫瑰花朵中加入生物酶,搅拌均匀并将玫瑰花朵粉碎;
S2:在-45℃至-50℃,对上述步骤S1处理后的玫瑰花朵速冻,并同时将低温真空提取仓的物料隔板加热到40-42℃;将速冻后的玫瑰花朵转移至所述物料隔板上;
S3:控制低温真空提取仓内的压力在-0.09至-0.095Mpa,低温真空提取仓内的冷凝分布器的温度控制在-45℃至-50℃,并保持,至玫瑰花朵干燥;随后加热所述冷凝分布器的温度至45℃±2℃,至所述冷凝分布器的细胞原液冰晶全部融化,并收集所述细胞原液;
S4:将上述步骤S3收集的细胞原液于-18℃以下速冻,至细胞原液全部凝固,随后转移至室温融化;
S5:采用微孔滤膜过滤上述步骤S4融化的细胞原液;
S6:将上述步骤S5过滤后的细胞原液静置冷藏,进行醇化,随后用滤布过滤,得到玫瑰冻干细胞液成品。
进一步的,所述生物酶包括纤维素酶和果胶酶。
进一步的,所述生物酶的加入量为玫瑰花朵重量的千分之五。
进一步的,所述微孔滤膜的孔径为0.22um
进一步的,所述步骤S6中,醇化的时间为60天,滤布的孔径为300-400目。
进一步的,所述步骤S6中,冷藏温度为2-8℃。
本发明还提供一种大马士革玫瑰细胞液,由上述提取工艺制得。
本发明至少具有如下优点和有益效果:
1.本发明的提取工艺,先将玫瑰花朵与生物酶混合,在生物酶的作用下,对玫瑰花朵进行生物催化,加快芳香玫瑰分子的释放,通过对玫瑰花朵的破碎,使得玫瑰花朵的汁液、细胞液释放出来,进而提高细胞液的收集效率。
2.在本发明中,对玫瑰花朵及细胞原液进行多次的冷冻-融化,第一次冷冻-融化,将玫瑰花的膜结构达到部分破裂,一方面能使细胞膜的疏水键结构破裂,从而增加细胞的亲水性能,另一方面细胞内的液体结晶,形成冰晶粒,使得细胞膨胀而破裂;第二次冷冻-融化,使得细胞壁菌体大部分破裂,第三次冷冻-融化,使得细胞结构完全破裂,通过3次的冷冻-融化,使得玫瑰花细胞中的细胞液能充分与玫瑰花朵分离,提高细胞液的收集效率。
3.在本发明中,细胞液的提取与玫瑰花的干燥同时进行,既能得到纯正的细胞液,还能得到干燥的玫瑰花粉,提高玫瑰花的利用率。
4.在本发明中,在提取玫瑰花细胞液的过程中,不额外加入水,其得到的细胞液纯正,香气浓郁,并且,细胞液的有效提取率可到达95%以上,冷冻干燥速率相较于直接冷冻工艺,干燥玫瑰花的时间可加快8-10h。
具体实施方式
实施例1:
本实施例提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,具体步骤如下;
S1选取新鲜的大马士革玫瑰花朵,要求采摘时间不超过4h,并将采摘的玫瑰花朵进行清洁,得到干净的玫瑰花朵;将清洁干净的玫瑰花朵静置在不锈钢搅拌设备中,各加入鲜花重量千分之五的生物酶A和生物酶B,搅拌5min至均匀;将搅拌均匀的鲜花静置于不锈钢粗碎设备中,粗碎成≦5mm的鲜花碎片;
S2将玫瑰花碎按照2cm的高度置于提取盘内,转入速冻库,速冻库温度控制在-45℃之间,速冻2h。并在速冻的同时,将低温真空提取仓内物料隔板加热到40℃之间,将速冻后的玫瑰花朵放置物料隔板上;
S3将低温真空提取仓内的压力控制在在-0.09至-0.095Mpa之间,冷凝分布器温度控制在-50℃,并保持该条件12h,在低温真空冷凝仓中,物料隔板上的玫瑰花朵中的细胞液不断的气化,芳香玫瑰分子挥发到空气中,当玫瑰芳香分子附着在冷凝分布器上,凝结成冰晶,在提取12h后,玫瑰花朵中的细胞液几乎完全被气化-凝固在冷凝分布器上,而玫瑰花朵也达到干燥状态。提取结束后加热冷凝分布器至45℃,循环2h至仓内芳香分子冰晶体完全融化,收集玫瑰细胞原液;
S4将玫瑰细胞原液放置于-18℃的冷冻库内静置速冻48h,冻住后转出至室温融化,使用10吨不锈钢储罐进行混合,
S5并使用0.22um微孔滤膜进行过滤;
S6将过滤后玫瑰细胞原液放置于2-8℃的冷藏库低温静置60天进行醇化,醇化完成后使用400目滤布过滤,得到大马士革玫瑰细胞液成品。
实施例2:
本实施例提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,具体步骤如下;
S1选取新鲜的大马士革玫瑰花朵,要求采摘时间不超过4h,并将采摘的玫瑰花朵进行清洁,得到干净的玫瑰花朵;将清洁干净的玫瑰花朵静置在不锈钢搅拌设备中,各加入鲜花重量千分之五的生物酶A和生物酶B,搅拌5min至均匀;将搅拌均匀的鲜花静置于不锈钢粗碎设备中,粗碎成≦5mm的鲜花碎片;
S2将玫瑰花碎按照2cm的高度置于提取盘内,转入速冻库,速冻库温度控制在-50℃之间,速冻2h。并在速冻的同时,将低温真空提取仓内物料隔板加热到42℃之间,将速冻后的玫瑰花朵放置物料隔板上;
S3将低温真空提取仓内的压力控制在在-0.09至-0.095Mpa之间,冷凝分布器温度控制在-60℃,并保持该条件12h,在低温真空冷凝仓中,物料隔板上的玫瑰花朵中的细胞液不断的气化,芳香玫瑰分子挥发到空气中,当玫瑰芳香分子附着在冷凝分布器上,凝结成冰晶,在提取12h后,玫瑰花朵中的细胞液几乎完全被气化-凝固在冷凝分布器上,而玫瑰花朵也达到干燥状态。提取结束后加热冷凝分布器至50℃,循环2h至仓内芳香分子冰晶体完全融化,收集玫瑰细胞原液;
S4将玫瑰细胞原液放置于-18℃的冷冻库内静置速冻48h,冻住后转出至室温融化,使用10吨不锈钢储罐进行混合,
S5并使用0.22um微孔滤膜进行过滤;
S6将过滤后玫瑰细胞原液放置于8℃的冷藏库低温静置60天进行醇化,醇化完成后使用800目滤布过滤,得到大马士革玫瑰细胞液成品。
实施例3:
本实施例提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,具体步骤如下;
S1选取新鲜的大马士革玫瑰花朵,要求采摘时间不超过4h,并将采摘的玫瑰花朵进行清洁,得到干净的玫瑰花朵;将清洁干净的玫瑰花朵静置在不锈钢搅拌设备中,各加入鲜花重量千分之五的生物酶A和生物酶B,搅拌5min至均匀;将搅拌均匀的鲜花静置于不锈钢粗碎设备中,粗碎成≦5mm的鲜花碎片;
S2将玫瑰花碎按照2cm的高度置于提取盘内,转入速冻库,速冻库温度控制在-48℃,速冻2h。并在速冻的同时,将低温真空提取仓内物料隔板加热到42℃之间,将速冻后的玫瑰花朵放置物料隔板上;
S3将低温真空提取仓内的压力控制在在-0.09至-0.095Mpa之间,冷凝分布器温度控制在-55℃,并保持该条件12h,在低温真空冷凝仓中,物料隔板上的玫瑰花朵中的细胞液不断的气化,芳香玫瑰分子挥发到空气中,当玫瑰芳香分子附着在冷凝分布器上,凝结成冰晶,在提取12h后,玫瑰花朵中的细胞液几乎完全被气化-凝固在冷凝分布器上,而玫瑰花朵也达到干燥状态。提取结束后加热冷凝分布器至60℃,循环2h至仓内芳香分子冰晶体完全融化,收集玫瑰细胞原液;
S4将玫瑰细胞原液放置于-18℃的冷冻库内静置速冻48h,冻住后转出至室温融化,使用10吨不锈钢储罐进行混合,
S5并使用0.22um微孔滤膜进行过滤;
S6将过滤后玫瑰细胞原液放置于2-8℃的冷藏库低温静置60天进行醇化,醇化完成后使用600目滤布过滤,得到大马士革玫瑰细胞液成品。
实施例4:
本实施例提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,具体步骤如下;
S1选取新鲜的大马士革玫瑰花朵,要求采摘时间不超过4h,并将采摘的玫瑰花朵进行清洁,得到干净的玫瑰花朵;将清洁干净的玫瑰花朵静置在不锈钢搅拌设备中,各加入鲜花重量千分之五的生物酶A和生物酶B,搅拌5min至均匀;将搅拌均匀的鲜花静置于不锈钢粗碎设备中,粗碎成≦5mm的鲜花碎片;
S2将玫瑰花碎按照2cm的高度置于提取盘内,转入速冻库,速冻库温度控制在-50℃之间,速冻2h。并在速冻的同时,将低温真空提取仓内物料隔板加热到40℃之间,将速冻后的玫瑰花朵放置物料隔板上;
S3将低温真空提取仓内的压力控制在在-0.09至-0.095Mpa之间,冷凝分布器温度控制在-70℃,并保持该条件12h,在低温真空冷凝仓中,物料隔板上的玫瑰花朵中的细胞液不断的气化,芳香玫瑰分子挥发到空气中,当玫瑰芳香分子附着在冷凝分布器上,凝结成冰晶,在提取12h后,玫瑰花朵中的细胞液几乎完全被气化-凝固在冷凝分布器上,而玫瑰花朵也达到干燥状态。提取结束后加热冷凝分布器至50℃,循环2h至仓内芳香分子冰晶体完全融化,收集玫瑰细胞原液;
S4将玫瑰细胞原液放置于-18℃的冷冻库内静置速冻48h,冻住后转出至室温融化,使用10吨不锈钢储罐进行混合,
S5并使用0.22um微孔滤膜进行过滤;
S6将过滤后玫瑰细胞原液放置于2-8℃的冷藏库低温静置60天进行醇化,醇化完成后使用600目滤布过滤,得到大马士革玫瑰细胞液成品。
实施例5
本实施例提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,具体步骤如下;
S1选取新鲜的大马士革玫瑰花朵,要求采摘时间不超过4h,并将采摘的玫瑰花朵进行清洁,得到干净的玫瑰花朵;将清洁干净的玫瑰花朵静置在不锈钢搅拌设备中,各加入鲜花重量千分之五的生物酶A和生物酶B,搅拌5min至均匀;将搅拌均匀的鲜花静置于不锈钢粗碎设备中,粗碎成≦5mm的鲜花碎片;
S2将玫瑰花碎按照2cm的高度置于提取盘内,转入速冻库,速冻库温度控制在-45℃,速冻2h。并在速冻的同时,将低温真空提取仓内物料隔板加热到42℃之间,将速冻后的玫瑰花朵放置物料隔板上;
S3将低温真空提取仓内的压力控制在在-0.09至-0.095Mpa之间,冷凝分布器温度控制在-50℃,并保持该条件12h,在低温真空冷凝仓中,物料隔板上的玫瑰花朵中的细胞液不断的气化,芳香玫瑰分子挥发到空气中,当玫瑰芳香分子附着在冷凝分布器上,凝结成冰晶,在提取12h后,玫瑰花朵中的细胞液几乎完全被气化-凝固在冷凝分布器上,而玫瑰花朵也达到干燥状态。提取结束后加热冷凝分布器至45℃,循环2h至仓内芳香分子冰晶体完全融化,收集玫瑰细胞原液;
S4将玫瑰细胞原液放置于-18℃的冷冻库内静置速冻48h,冻住后转出至室温融化,使用10吨不锈钢储罐进行混合,
S5并使用0.22um微孔滤膜进行过滤;
S6将过滤后玫瑰细胞原液放置于2-8℃的冷藏库低温静置60天进行醇化,醇化完成后使用700目滤布过滤,得到大马士革玫瑰细胞液成品。
实施例6
本实施例提供一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,具体步骤如下;
S1选取新鲜的大马士革玫瑰花朵,要求采摘时间不超过4h,并将采摘的玫瑰花朵进行清洁,得到干净的玫瑰花朵;将清洁干净的玫瑰花朵静置在不锈钢搅拌设备中,各加入鲜花重量千分之五的生物酶A和生物酶B,搅拌5min至均匀;将搅拌均匀的鲜花静置于不锈钢粗碎设备中,粗碎成≦5mm的鲜花碎片;
S2将玫瑰花碎按照2cm的高度置于提取盘内,转入速冻库,速冻库温度控制在-50℃,速冻2h。并在速冻的同时,将低温真空提取仓内物料隔板加热到41℃,将速冻后的玫瑰花朵放置物料隔板上;
S3将低温真空提取仓内的压力控制在在-0.09至-0.095Mpa之间,冷凝分布器温度控制在-50℃,并保持该条件12h,在低温真空冷凝仓中,物料隔板上的玫瑰花朵中的细胞液不断的气化,芳香玫瑰分子挥发到空气中,当玫瑰芳香分子附着在冷凝分布器上,凝结成冰晶,在提取12h后,玫瑰花朵中的细胞液几乎完全被气化-凝固在冷凝分布器上,而玫瑰花朵也达到干燥状态。提取结束后加热冷凝分布器至55℃,循环2h至仓内芳香分子冰晶体完全融化,收集玫瑰细胞原液;
S4将玫瑰细胞原液放置于-18℃的冷冻库内静置速冻48h,冻住后转出至室温融化,使用10吨不锈钢储罐进行混合,
S5并使用0.22um微孔滤膜进行过滤;
S6将过滤后玫瑰细胞原液放置于7℃的冷藏库低温静置60天进行醇化,醇化完成后使用800目滤布过滤,得到大马士革玫瑰细胞液成品。
对比例1:
与实施例1的不同之处在于,在该对比例中,第二步是直接将酶处理后的玫瑰花朵进行蒸馏提取玫瑰液,第一步与实施例1的处理方式相同。
对比例2:
与实施例1不同之处在于,在本对比例中,第二步是直接将酶处理后的玫瑰花朵进行真空提取玫瑰液,第一步与实施例1的处理方式相同。
表1为实施例1-6和对比例1-2中,玫瑰细胞液的提取率等数据。从表1中可以看出实施例1-6中,玫瑰细胞液的提取率在96%以上,提取后的玫瑰花呈紫红色,玫瑰花朵没有损失,整个提取过程中没有废弃物产生,即提取了玫瑰细胞液,又能够得到完整的玫瑰花朵,极大的提高了玫瑰花的利用率,降低了企业的生产成本。并且,在实施例1-6的提取物中,玫瑰精油的含量在0.01%-0.02%,较常规的提取方式提取出的精油含量高。
表1实施例1-6和对比例1-2的提取物相关数据
表2为实施例1-6和对比例1-2中,玫瑰细胞液的成分数据。从表2中可以得出,实施例1-6提取的细胞液中,乙醇、α-松油醇的含量少,而香茅醇、橙花醇、香叶醇的含量却较对比例1-2的多,是因为在实施例1-6中,提取玫瑰细胞液的加热温度低,醇类芳香成分损失少,真空度高,将玫瑰花中的易挥发芳香成分完全提取出来;对鲜花进行了生物酶催化及粉碎处理,使得鲜花中芳香成分极好的释放,低温、高真空度和酶处理共同作用,促使醇类芳香成分含量增加。
表2实施例1-6和对比例1-2的提取成分
以上仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (7)
1.一种大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其特征在于:包括以下步骤,
S1:向玫瑰花朵中加入生物酶,搅拌均匀并将玫瑰花朵粉碎;
S2:在-45℃至-50℃下,对上述步骤S1处理后的玫瑰花朵速冻,并将低温真空提取仓的物料隔板加热到40-42℃;将速冻后的玫瑰花朵转移至所述物料隔板上;
S3:控制低温真空提取仓内的压力在-0.09至-0.095Mpa,低温真空提取仓内的冷凝分布器的温度控制在-45℃至-50℃并保持;随后加热所述冷凝分布器的温度至45℃±2℃,至所述冷凝分布器的细胞原液冰晶全部融化,并收集所述细胞原液;
S4:将上述步骤S3收集的细胞原液于-18℃以下速冻,至细胞原液全部凝固,随后转移至室温融化;
S5:采用微孔滤膜过滤上述步骤S4融化的细胞原液;
S6:将上述步骤S5过滤后的细胞原液静置冷藏,进行醇化,随后用滤布过滤,得到玫瑰冻干细胞液成品。
2.根据权利要求1所述的大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其特征在于:所述生物酶包括纤维素酶和果胶酶。
3.根据权利要求1所述的大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其特征在于:所述微孔滤膜的孔径为0.22um 。
4.根据权利要求1所述的大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其特征在于:所述步骤S6中,醇化的时间为60天,滤布的孔径为300-400目。
5.根据权利要求1所述的大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其特征在于:所述步骤S6中,冷藏温度为2-8℃。
6.根据权利要求1所述的大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺,其特征在于:所述生物酶的加入量为玫瑰花朵重量的千分之五。
7.一种大马士革玫瑰细胞液,其特征在于,由上述权利要求1所述的大马士革玫瑰冻干细胞液的提取工艺制得。
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Legal Events
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20210917 |
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