CN113355284A - 用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法 - Google Patents
用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN113355284A CN113355284A CN202110526358.8A CN202110526358A CN113355284A CN 113355284 A CN113355284 A CN 113355284A CN 202110526358 A CN202110526358 A CN 202110526358A CN 113355284 A CN113355284 A CN 113355284A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- chamber
- transwell
- simulating
- endothelial cells
- cell
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 title claims abstract description 31
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 title claims abstract description 31
- 230000003834 intracellular effect Effects 0.000 title claims abstract description 28
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 25
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 43
- 210000004881 tumor cell Anatomy 0.000 claims abstract description 31
- 108010082117 matrigel Proteins 0.000 claims abstract description 28
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 claims abstract description 27
- 210000005073 lymphatic endothelial cell Anatomy 0.000 claims abstract description 14
- 210000003556 vascular endothelial cell Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 claims abstract description 12
- 210000002751 lymph Anatomy 0.000 claims abstract description 12
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 13
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 9
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 claims description 8
- 206010027476 Metastases Diseases 0.000 claims description 5
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 5
- 230000009401 metastasis Effects 0.000 claims description 5
- 210000003606 umbilical vein Anatomy 0.000 claims description 5
- 230000002500 effect on skin Effects 0.000 claims description 4
- 210000003038 endothelium Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000001147 pulmonary artery Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 4
- 239000004017 serum-free culture medium Substances 0.000 claims description 4
- 230000035699 permeability Effects 0.000 claims description 3
- 230000001926 lymphatic effect Effects 0.000 claims description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 claims 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 abstract description 9
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 abstract description 4
- 238000004088 simulation Methods 0.000 abstract description 3
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 10
- 210000002469 basement membrane Anatomy 0.000 description 8
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 6
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 6
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 230000000149 penetrating effect Effects 0.000 description 4
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 description 3
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 description 3
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 3
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 description 3
- 230000009545 invasion Effects 0.000 description 3
- 210000001365 lymphatic vessel Anatomy 0.000 description 3
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 2
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 2
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 2
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 2
- OAWAZQITIZDJRB-UHFFFAOYSA-N 2-chloro-2,2-difluoroacetic acid Chemical compound OC(=O)C(F)(F)Cl OAWAZQITIZDJRB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000007433 Lymphatic Metastasis Diseases 0.000 description 1
- 206010033128 Ovarian cancer Diseases 0.000 description 1
- 206010061535 Ovarian neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000002457 bidirectional effect Effects 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0693—Tumour cells; Cancer cells
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pathology (AREA)
- Oncology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
本发明属于检测肿瘤细胞发生向血管或淋巴管内转移能力的模拟实验技术领域，公开了一种用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法，Transwell小室包括：肿瘤细胞、Matrigel、血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞；所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室需配合高度超过常规24孔板高度2倍的无菌密闭容器使用。本发明将两小室拼接，有利于接种内皮细胞，较直接滴于单独小室背面，细胞悬液的体积限制较小，接种＞400ul细胞悬液；Matrigel铺于A室中，观察细胞时内皮细胞与肿瘤细胞所处平面不受Matrigel干扰，有利于荧光显微镜下观察采图。
Description
技术领域
本发明属于检测肿瘤细胞发生向血管或淋巴管内转移能力的模拟实验技术领域，尤其涉及一种用于模拟细胞穿透血管或淋巴管壁(含内皮细胞和胞外基质)的Transwell小室及其使用方法。
背景技术
肿瘤细胞除了局部蔓延扩散，血行转移和淋巴道转移也是非常重要的转移方式，在模拟实验中，如何逼真地模拟肿瘤细胞穿透血管壁或淋巴管壁进入血管或淋巴管却是一件不容易的事情，最基本的穿壁过程的模型至少应该包含对血管内皮/淋巴管内皮细胞以及胞外基质的穿透。
通过上述分析，现有技术存在的问题及缺陷为：常规Transwell侵袭实验仅模拟了细胞穿透细胞外基质的过程，而无法满足实验的目的和需求。现有技术中关于用于模拟肿瘤细胞内渗的小室/模型尚未见报道。
解决以上问题及缺陷的难度为：常规单向Transwell小室仅能模拟肿瘤细胞穿越Matrigel基质的简单过程，而无法同时均匀载入血管或淋巴管内皮细胞的铺垫，因其膜面积过小，即使考虑培养基表面张力，仍无法承载超过150ul的液体，常规Transwell小室适用的24孔板也无法支持细胞悬液滴加后的继续培养。
解决以上问题及缺陷的意义为：通过改进Transwell小室为双向小室，使其可以通过A面或B面分别进行Matrigel的铺加和内皮细胞的种植，可以较为充分的模拟肿瘤细胞穿过细胞外及血管外基质和排列紧密的内皮细胞的过程(即肿瘤细胞血管内渗的过程)，且内皮细胞通过B面铺于小室膜上，生长于同一平面上，更有利于后续的图片采集。
发明内容
针对现有技术存在的问题，本发明提供了一种用于模拟细胞内渗的Transwell小室及其使用方法。
本发明是这样实现的，一种用于模拟细胞内渗的Transwell小室，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室自上而下为小室B，小室A；小室B，小室A在使用前粘合为一；小室A、小室B的中间部分自上而下依次为肿瘤细胞、Matrigel、血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞。
进一步，所述血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞为人脐静脉内皮细胞HUVEC、人肺动脉内皮细胞HPAEC或人真皮淋巴管细胞HDLEC中的一种。
进一步，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室可拆分为A、B两个transwell小室；A室具有完整Transwell膜，膜上孔径为8um；B室无此膜。
本发明的另一目的在于提供一种用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室需配合高度超过常规24孔板高度2倍的无菌密闭容器使用。
进一步，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法包括以下步骤：
步骤一，A室朝上，于A室中均匀平整铺入Matrigel并37℃静置使其凝固，以此模拟血管或淋巴管外基质；
步骤二，待Matrigel凝固后，于超净台中将小室翻转，B室朝上，均匀铺入内皮细胞；
步骤三，置于无菌密闭容器内，放置于细胞培养箱中培养过夜，待内皮细胞满度超过90％时，将此模型小室取出，拆分为两个独立小室，弃B室；
步骤四，将A室置于常规24孔细胞培养板中，向孔板中加入全血清培养基，A室中加入无血清培养基稀释的肿瘤细胞，即可模拟肿瘤细胞进入淋巴或血管时先后穿过基质和内皮的过程。
本发明的另一目的在于提供一种模拟肿瘤细胞向血管或淋巴管内转移的方法，所述模拟肿瘤细胞向血管或淋巴管内转移的方法使用所述的用于模拟细胞内渗的Transwell小室。
结合上述的所有技术方案，本发明所具备的优点及积极效果为：本发明提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室，将两小室拼接，有利于接种内皮细胞，较直接滴于单独小室背面，细胞悬液的体积限制较小，可接种＞400ul细胞悬液；Matrigel铺于A室中，最终观察细胞时内皮细胞与肿瘤细胞所处平面不受Matrigel干扰，有利于荧光显微镜下观察采图。
附图说明
图1是本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室结构示意图；
图中：1、肿瘤细胞；2、Matrigel；3、血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞。
图2是本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的具体操作示意图。
图3是本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法流程图。
图4是本发明实施例提供的内渗模型小室侧面示意图。
图5是本发明实施例提供的CDFA SE标记的人脐静脉内皮细胞HUVEC，CMTPX标记的人卵巢癌细胞SKOV3；比例尺为50um示意图。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白，以下结合实施例，对本发明进行进一步详细说明。应当理解，此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明，并不用于限定本发明。
针对现有技术存在的问题，本发明提供了一种用于模拟细胞内渗的Transwell小室及其使用方法，下面结合附图对本发明作详细的描述。
如图1所示，本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室包括：肿瘤细胞1、Matrigel 2、血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞3。自上而下为小室B(无基底膜)，小室A(具有完整基底膜)，二小室在使用前粘合为一。使用时具有完整基底膜的A室在上，向小室A中铺Matrigel(此时该模型中仅有一层基底膜，一层基质胶)，待其凝固后翻转小室，B室朝上，向其内铺血管或淋巴管内皮细胞，置于无菌容器中培养过夜。次日将二小室拆开，A室置于24孔板中，加入肿瘤细胞悬液，后续处理如常规Transwell侵袭实验。
本发明实施例提供的血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞为人脐静脉内皮细胞HUVEC、人肺动脉内皮细胞HPAEC或人真皮淋巴管细胞HDLEC中的一种。
如图2所示，本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室可拆分为A、B两个transwell小室；A室具有完整Transwell膜，膜上孔径为8um；B室无此膜。
本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室需配合高度超过常规24孔板高度2倍的无菌密闭容器使用。
如图3所示，本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法包括以下步骤：
S101，A室朝上，于A室中均匀平整铺入Matrigel并37℃静置使其凝固，以此模拟血管或淋巴管外基质；
S102，待Matrigel凝固后，于超净台中将小室翻转，B室朝上，均匀铺入内皮细胞；
S103，置于无菌密闭容器内，放置于细胞培养箱中培养过夜，待内皮细胞满度超过90％时，将此模型小室取出，拆分为两个独立小室，弃B室；
S104，将A室置于常规24孔细胞培养板中，向孔板中加入全血清培养基，A室中加入无血清培养基稀释的肿瘤细胞，即可模拟肿瘤细胞进入淋巴或血管时先后穿过基质和内皮的过程。
下面结合实施例对本发明的技术方案作进一步的描述。
如图1所示，本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室包括：
1:肿瘤细胞；
2:Matrigel；
3:血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞(如人脐静脉内皮细胞HUVEC、人肺动脉内皮细胞HPAEC或人真皮淋巴管细胞HDLEC)。
该内渗模型需配合高度超过常规24孔板高度2倍的无菌密闭容器使用。
如图2所示，本发明实施例提供的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的具体操作：该内渗模型小室可拆分为A、B两个transwell小室。A室具有完整Transwell膜(膜上孔径为8um)，B室无此膜。
如图3所示，使用时首先A室朝上，于A室中均匀平整铺入Matrigel并37度静置使其凝固，以此模拟血管或淋巴管外基质。待Matrigel凝固后，于超净台中将小室翻转，B室朝上，均匀铺入内皮细胞(如HUVEC、HPAEC或HDLEC)。置于无菌密闭容器内，放置于细胞培养箱中培养过夜，待内皮细胞满度超过90％时，将此模型小室取出，拆分为两个独立小室，弃B室，A室置于常规24孔细胞培养板中，向孔板中加入全血清培养基，A室中加入无血清培养基稀释的肿瘤细胞，即可模拟肿瘤细胞进入淋巴或血管时先后穿过基质→内皮的过程。示意图中自上而下为小室B(无基底膜)，小室A(具有完整基底膜)，二小室在使用前粘合为一。使用时具有完整基底膜的A室在上，向小室A中铺Matrigel(此时该模型中仅有一层基底膜，一层基质胶)，待其凝固后翻转小室，B室朝上，向其内铺血管或淋巴管内皮细胞，置于无菌容器中培养过夜。次日将二小室拆开，A室置于24孔板中，加入肿瘤细胞悬液，后续处理如常规Transwell侵袭实验。
创新之处：
①两小室拼接，有利于接种内皮细胞，较直接滴于单独小室背面，细胞悬液的体积限制较小，可接种＞400ul细胞悬液。
②Matrigel铺于A室中，最终观察细胞时内皮细胞与肿瘤细胞所处平面不受Matrigel干扰，有利于荧光显微镜下观察采图。
内渗模型小室侧面图如图4所示。
以上所述，仅为本发明的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等，都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (6)
1.一种用于模拟肿瘤细胞内渗的Transwell小室，其特征在于，所述用于模拟肿瘤细胞内渗的Transwell小室自上而下为小室B，小室A；小室B，小室A在使用前粘合为一；小室A、小室B的中间部分自上而下依次为肿瘤细胞、Matrigel、血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞。
2.如权利要求1所述的用于模拟细胞内渗的Transwell小室，其特征在于，所述血管内皮细胞或淋巴管内皮细胞包括为人脐静脉内皮细胞HUVEC、人肺动脉内皮细胞HPAEC或人真皮淋巴管细胞HDLEC中的一种。
3.如权利要求1所述的用于模拟细胞内渗的Transwell小室，其特征在于，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室可拆分为A、B两个transwell小室；A室具有完整Transwell膜，膜上孔径为8um；B室无此膜。
4.一种应用如权利要求1～3任意一项所述的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法，其特征在于，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室需配合高度超过常规24孔板高度2倍的无菌密闭容器使用。
5.如权利要求4所述的用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法，其特征在于，所述用于模拟细胞内渗的Transwell小室的使用方法包括以下步骤：
步骤一，A室朝上，于A室中均匀平整铺入Matrigel并37℃静置使其凝固，以此模拟血管或淋巴管外基质；
步骤二，待Matrigel凝固后，于超净台中将小室翻转，B室朝上，均匀铺入内皮细胞；
步骤三，置于无菌密闭容器内，放置于细胞培养箱中培养过夜，待内皮细胞满度超过90％时，将此模型小室取出，拆分为两个独立小室，弃B室；
步骤四，将A室置于常规24孔细胞培养板中，向孔板中加入全血清培养基，A室中加入无血清培养基稀释的肿瘤细胞，即可模拟肿瘤细胞进入淋巴或血管时先后穿过基质和内皮的过程。
6.一种模拟肿瘤细胞向血管或淋巴管内转移的方法，其特征在于，所述模拟肿瘤细胞向血管或淋巴管内转移的方法使用权利要求1～3任意一项所述的用于模拟细胞内渗的Transwell小室。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN202110526358.8A CN113355284A (zh) | 2021-05-14 | 2021-05-14 | 用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN202110526358.8A CN113355284A (zh) | 2021-05-14 | 2021-05-14 | 用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN113355284A true CN113355284A (zh) | 2021-09-07 |
Family
ID=77526404
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN202110526358.8A Pending CN113355284A (zh) | 2021-05-14 | 2021-05-14 | 用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN113355284A (zh) |
Citations (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101157908A (zh) * | 2007-01-04 | 2008-04-09 | 南京大学医学院附属鼓楼医院 | 一种肿瘤血管新生体外共培养模型 |
| CN103320494A (zh) * | 2013-07-08 | 2013-09-25 | 连云港脂立方生物医药研究所有限公司 | 利用Transwell测量多种细胞对包埋有内皮细胞的细胞基质侵袭性的方法 |
| US20140037629A1 (en) * | 2012-08-02 | 2014-02-06 | New York University | Humanized single-chain antibody against beta 3 integrin for the treatment and prevention of metastasis |
| CN108642179A (zh) * | 2018-05-18 | 2018-10-12 | 无锡市第二人民医院 | MiR-210在胶质瘤中相关靶点验证的实验方法 |
| WO2019094710A1 (en) * | 2017-11-09 | 2019-05-16 | Duke University | Lymphovascular invasion bioreactor and methods of making and using same |
| CN110577926A (zh) * | 2019-08-29 | 2019-12-17 | 南方医科大学南方医院 | 一种仿生三维DPCs独立共培养体系及其构建方法 |
| CN211570667U (zh) * | 2019-12-23 | 2020-09-25 | 南华大学附属第一医院 | 一种改良型Transwell小室实验装置 |
-
2021
- 2021-05-14 CN CN202110526358.8A patent/CN113355284A/zh active Pending
Patent Citations (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101157908A (zh) * | 2007-01-04 | 2008-04-09 | 南京大学医学院附属鼓楼医院 | 一种肿瘤血管新生体外共培养模型 |
| US20140037629A1 (en) * | 2012-08-02 | 2014-02-06 | New York University | Humanized single-chain antibody against beta 3 integrin for the treatment and prevention of metastasis |
| CN103320494A (zh) * | 2013-07-08 | 2013-09-25 | 连云港脂立方生物医药研究所有限公司 | 利用Transwell测量多种细胞对包埋有内皮细胞的细胞基质侵袭性的方法 |
| WO2019094710A1 (en) * | 2017-11-09 | 2019-05-16 | Duke University | Lymphovascular invasion bioreactor and methods of making and using same |
| US20210171893A1 (en) * | 2017-11-09 | 2021-06-10 | Duke University | Lymphovascular invasion bioreactor and methods of making and using same |
| CN108642179A (zh) * | 2018-05-18 | 2018-10-12 | 无锡市第二人民医院 | MiR-210在胶质瘤中相关靶点验证的实验方法 |
| CN110577926A (zh) * | 2019-08-29 | 2019-12-17 | 南方医科大学南方医院 | 一种仿生三维DPCs独立共培养体系及其构建方法 |
| CN211570667U (zh) * | 2019-12-23 | 2020-09-25 | 南华大学附属第一医院 | 一种改良型Transwell小室实验装置 |
Non-Patent Citations (20)
| Title |
|---|
| DI MARTILE M等: "Inhibition of lysine acetyltransferases impairs tumor angiogenesis acting on both endothelial and tumor cells", 《J EXP CLIN CANCER RES》 * |
| DI MARTILE M等: "Inhibition of lysine acetyltransferases impairs tumor angiogenesis acting on both endothelial and tumor cells", 《J EXP CLIN CANCER RES》, vol. 39, no. 1, 5 June 2020 (2020-06-05), pages 103 * |
| GERMAN AE等: "Paxillin controls endothelial cell migration and tumor angiogenesis by altering neuropilin 2 expression", J CELL SCI, vol. 127, pages 1682 * |
| 付海燕等: "人淋巴管内皮细胞对人肝癌HepG-2细胞增殖及侵袭的影响", 《中国肿瘤》 * |
| 付海燕等: "人淋巴管内皮细胞对人肝癌HepG-2细胞增殖及侵袭的影响", 《中国肿瘤》, no. 01, 5 January 2013 (2013-01-05), pages 70 - 73 * |
| 成敏: "SOS1对高转移潜能卵巢癌Hey细胞恶性生物学行为的影响及机制探究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库医药卫生科技辑》 * |
| 成敏: "SOS1对高转移潜能卵巢癌Hey细胞恶性生物学行为的影响及机制探究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库医药卫生科技辑》, no. 5, 15 May 2016 (2016-05-15), pages 18 * |
| 李若男等: "DACT1对Ⅰ型卵巢癌恶性侵袭行为的影响", 《第三军医大学学报》 * |
| 李若男等: "DACT1对Ⅰ型卵巢癌恶性侵袭行为的影响", 《第三军医大学学报》, no. 19, 31 December 2016 (2016-12-31), pages 58 - 63 * |
| 葛曙雄等: "水杨酸抑制胃癌细胞体外增殖及侵袭转移能力研究", 《浙江医学》 * |
| 葛曙雄等: "水杨酸抑制胃癌细胞体外增殖及侵袭转移能力研究", 《浙江医学》, no. 15, 10 August 2016 (2016-08-10), pages 19 - 22 * |
| 谢小雪: "不同温度热疗对小鼠恶性黑色素瘤增殖和侵袭能力的影响", 《中国博士学位论文全文数据库医药卫生科技辑》 * |
| 谢小雪: "不同温度热疗对小鼠恶性黑色素瘤增殖和侵袭能力的影响", 《中国博士学位论文全文数据库医药卫生科技辑》, no. 11, 15 November 2010 (2010-11-15), pages 12 - 13 * |
| 郭婧: "人卵巢癌网膜转移模型的建立及卵巢癌对网膜微血管内皮细胞活化作用的研究", 《中国学位论文全文数据库》 * |
| 郭婧: "人卵巢癌网膜转移模型的建立及卵巢癌对网膜微血管内皮细胞活化作用的研究", 《中国学位论文全文数据库》, 30 April 2019 (2019-04-30) * |
| 阴传敏等: "信号接头蛋白crk在宫颈癌Caski细胞恶性潜能中的作用", 《肿瘤》 * |
| 阴传敏等: "信号接头蛋白crk在宫颈癌Caski细胞恶性潜能中的作用", 《肿瘤》, no. 02, 25 February 2009 (2009-02-25), pages 6 - 10 * |
| 齐墨词等: "抗氧化蛋白 Prx1 在尼古丁诱导的口腔癌淋巴转移中的作用", 北京口腔医学, vol. 25, no. 1, pages 2 - 3 * |
| 齐墨词等: "抗氧化蛋白Prx1在尼古丁诱导的口腔癌淋巴转移中的作用", 《北京口腔医学》 * |
| 齐墨词等: "抗氧化蛋白Prx1在尼古丁诱导的口腔癌淋巴转移中的作用", 《北京口腔医学》, no. 01, 28 February 2017 (2017-02-28), pages 6 - 10 * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN102746986B (zh) | 一种基于微流控芯片的肿瘤细胞迁移动力学监测方法 | |
| KR20050044484A (ko) | 생물 배양 장치 및 생물 배양 방법 | |
| CN108117990B (zh) | 一种基于微流控技术的仿生气血屏障模型的构建方法 | |
| CN103710263A (zh) | 细胞培养装置 | |
| CN204644371U (zh) | 一种集成式多细胞非接触共培养装置 | |
| CN113355284A (zh) | 用于模拟细胞内渗的Transwell小室及使用方法 | |
| Berner et al. | A new visualization chamber to study the transient volumetric response of yeast cells submitted to osmotic shifts | |
| CN205103235U (zh) | 土体植物根系角度观察测定试验装置 | |
| CN109929766A (zh) | 一种克鲁维乳酸酵母cve-lt1及其在葡萄酒酿造中的应用 | |
| CN105624039A (zh) | 一种食品中砷对人体的生物有效性及毒性的联合评价模型 | |
| De Jonge et al. | Reconstruction of the oxygen uptake and carbon dioxide evolution rates of microbial cultures at near-neutral pH during highly dynamic conditions | |
| CN105695392B (zh) | 一种可提高肝细胞体外分化表型及功能的培养方法 | |
| CN209171112U (zh) | 一种用于研究植物根部营养液的分根装置 | |
| CN109097274A (zh) | 一种标准化的高通量三维细胞制备装置及其应用 | |
| CN104673744A (zh) | 一种大鼠血管内皮细胞体外培养方法 | |
| CN205473829U (zh) | 细胞培养和细胞间相互作用的共培养装置 | |
| CN206494246U (zh) | 一种高中生物学用标本临时储存箱 | |
| CN203435434U (zh) | 农作物根系动态观察试验装置 | |
| CN104164365A (zh) | 一种体外细胞接触式共培养装置及其培养操作方法 | |
| CN205830680U (zh) | 一种水稻水培装置 | |
| CN205995467U (zh) | 一种精准高位蛋白质扩散滴液仪 | |
| CN115029243A (zh) | 肠道-血管-免疫共培养器官芯片制备方法及其制备装置 | |
| CN207130275U (zh) | 一种共培养装置 | |
| CN209914670U (zh) | 3d水稻根系表型观测辅助装置 | |
| KR20210023261A (ko) | 3차원 세포 배양 시스템 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination |