CN112794925B - 一种阳春砂多糖及其制备方法和应用 - Google Patents
一种阳春砂多糖及其制备方法和应用 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种阳春砂多糖及其制备方法和应用。阳春砂多糖主要由葡萄糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖和阿拉伯糖这5种单糖组成,其特征在于:其糖链结构如下:主链由→4)‑α‑D‑Glcp‑(1→3,4)‑β‑D‑Glcp‑(1→4)‑α‑D‑Glcp‑(1→构成,支链由β‑D‑Xylp‑(1‑、‑4)‑α‑D‑Galp‑(1‑、α‑L‑Araf‑(1‑和α‑D‑GlcpA‑(1‑构成,多糖含量为88.74%,糖醛酸含量为7.21%,重均分子量为5.14×105 D。阳春砂多糖AVPG‑1在50‑200μg/mL浓度范围内,可显著促进巨噬细胞RAW 264.7产生NO,提高巨噬细胞RAW 264.7的细胞活力。
Description
技术领域
本发明涉及天然产物及其制备方法和应用,特别涉及一种阳春砂多糖及其制备方法和应用。
背景技术
阳春砂 (Amomum villosumLour.) 来源于姜科豆蔻属多年生常绿草本植物,入药部位为干燥成熟的果实,又称为春砂仁,是我国著名的“四大南药”之一。该药性温,味辛,具有化湿开胃、温脾止泻和理气安胎等功效,为我国的常用中药,在临床上应用广泛,有着1300多年的应用历史。目前,阳春砂主要分布在广东省、云南省、广西省、海南省、福建省等地,其中又以广东阳春所产的春砂仁药效最佳。
多糖又称多聚糖,是由10个或以上的单糖脱水缩合形成的具有糖苷键的一类高分子化合物,其在生物体内的生命活动中起着至关重要的作用。大量研究表明,许多中药多糖表现出较强的生物活性,具有抗肿瘤、免疫调节、抗氧化、保肝和降血糖等作用。因其属于非细胞毒性物质,具有毒副作用小的特点,多糖已成为药物、食品添加剂、化妆品及保健品等研发的热点。
目前国内外关于阳春砂研究最多的是其挥发性成分,普遍认为阳春砂的主要有效成分是挥发油。关于阳春砂多糖的研究报道较少,且主要集中于阳春砂多糖提取方法、抗氧化活性、粗多糖的免疫调节活性等方面。鲜少有关于阳春砂多糖新成分、结构研究、纯化多糖活性的研究报道。多糖作为生物体内的一大类物质,应该有更深入的研究。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种阳春砂多糖及其制备方法和应用。
本发明所采取的技术方案是:
本发明的第一个方面,提供:
一种阳春砂多糖,主要由葡萄糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖和阿拉伯糖这5种单糖组成,其特征在于:其糖链结构如下:主链由→ 4)-α-D-Glcp-(1 →3,4)-β-D-Glcp-(1 →4)-α-D-Glcp-(1 →构成,支链由β-D-Xylp-(1-、-4)-α-D-Galp-(1-、α-L-Araf-(1-和α-D-GlcpA-(1-构成,多糖含量为88.74%,糖醛酸含量为7.21%,重均分子量为5.14 × 105 D,具体的糖链结构如下式所示:
式中,Ara指阿拉伯糖残基、Glc指葡萄糖残基、Gal指半乳糖残基、Xyl指木糖残基、GlcpA指葡萄糖醛酸残基。
本发明的第二个方面,提供:
一种具有免疫调节功能的组合物,其含有本发明第一个方面所述的阳春砂多糖。
在一些实例中,还包括可接受的辅料。
在一些实例中,所述组合物为保健食品或药物。
本发明的第三个方面,提供:
本发明第一个方面所述的阳春砂多糖在制备免疫调节剂中的应用。
本发明的第四个方面,提供:
本发明第一个方面所述的阳春砂多糖制备方法,包括:
1)将阳春砂粉碎,脱除其中的脂肪,得阳春砂脱脂粉末;
2)将阳春砂脱脂粉末加水,合并提取液,减压浓缩,得浓缩液;
3)浓缩液经沉淀,除蛋白,去除多糖上清液中的有机溶剂,冷冻干燥后得粗多糖;
4)取粗多糖配制成粗多糖溶液,上样阴离子纤维素层析柱,分别使用蒸馏水、0.05M NaCl和0.1 M NaCl进行洗脱,取0.05 M NaCl 洗脱下来的组分,经浓缩透析冻干后得到阳春砂多糖AVPD-1;
5)取AVPD-1配制成5 mg/mL的溶液,经葡聚糖凝胶Sephadex G-100柱分离,蒸馏水洗脱,洗脱流速为3 mL/10 min,洗脱时间为10 min/管,浓缩、干燥,获得阳春砂均一多糖AVPG-1。
在一些实例中,按200 g粉碎后的阳春砂粉末,加入4 L 95%乙醇的比例将阳春砂粉末和95%乙醇混合,80℃提取3h,重复操作三次,最后将阳春砂粉末烘干,得阳春砂脱脂粉末。
在一些实例中,按200 g阳春砂脱脂粉末加4 L水的比例配料,95℃提取3 h,重复操作3次,再将水提液于60℃下减压浓缩,得浓缩液。
在一些实例中,向浓缩液中加入4倍体积的无水乙醇,于4℃下静置12 h,沉淀多糖,然后离心收集沉淀,离心转速为5000 rpm,离心时间为5 min,得多糖沉淀,将多糖沉淀溶解于蒸馏水中,得到多糖溶液;向多糖溶液中加入4倍体积的Sevage试剂,剧烈震荡后离心,离心转速为5000 rpm,离心时间为10 min,取上清液,重复操作,直至去除蛋白。
在一些实例中,所述Sevage试剂为氯仿:正丁醇体积比=4:1的溶剂。
本发明的有益效果是:
本发明的一些实例,首次从阳春砂中分离出一种大分子量酸性阳春砂多糖,记为AVPG-1,经高效尺寸排阻色谱联用多角度激光散射仪联用示差检测器(HPSEC-MALLS-RID)测定,其重均分子量为5.14 × 105 Da,经HPLC分析,阳春砂多糖AVPG-1主要由葡萄糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖和阿拉伯糖这5种单糖组成。经刚果红分析,没有三螺旋结构。结合单糖组成分析、红外光谱分析和核磁分析,解析了AVPG-1的分子结构,确定阳春砂多糖AVPG-1为新物质。
本发明一些实例的阳春砂多糖AVPG-1在50-200 mg/mL浓度范围内,可显著促进巨噬细胞RAW 264.7产生NO,提高巨噬细胞RAW 264.7的细胞活力。
附图说明
图1是阳春砂多糖AVPG-1的DEAE纤维柱层析洗脱图;
图2是阳春砂多糖AVPG-1的Sephadex G-100分子筛洗脱图;
图3是阳春砂多糖AVPG-1的HPSEC-MALLS-RID图;
图4是阳春砂多糖AVPG-1的单糖组成图;
图5是阳春砂多糖AVPG-1的红外光谱图;
图6是阳春砂多糖AVPG-1的1H NMR图谱;
图7是阳春砂多糖AVPG-1的13C NMR图谱;
图8是阳春砂多糖AVPG-1的1H-1H COSY图谱;
图9是阳春砂多糖AVPG-1的HSQC图谱;
图10是阳春砂多糖AVPG-1的HMBC图谱;
图11是阳春砂多糖AVPG-1的刚果红实验图谱;
图12是阳春砂多糖AVPG-1对巨噬细胞的影响,其中,A是阳春砂多糖AVPG-1提高巨噬细胞细胞活力图;B是阳春砂多糖AVPG-1促进巨噬细胞产生NO图。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步详细的描述,但本发明的实施方式不限于此。在未作特别说明的情况下,本发明所采用的试剂、设备和方法均为本技术领域常规市购的试剂、设备和常规使用的方法。
实施例1:
一)阳春砂多糖AVPG-1的制备
阳春砂种子去壳取种子团,粉碎,取200 g粉碎后的阳春砂粉末,加入4 L 95%乙醇,提取温度80 ℃,提取3 h,重复操作三次,最后将阳春砂粉末烘干,得阳春砂脱脂粉末;往阳春砂脱脂粉末中加水,200 g阳春砂脱脂粉末加4 L水,提取温度95 ℃提取3 h,重复操作3次,再将水提液于60 ℃下减压浓缩,得浓缩液;
向浓缩液中加入4倍体积的无水乙醇,于4 ℃下静置12 h,沉淀多糖,然后离心收集沉淀,离心转速为5000 rpm,离心时间为5 min,再将沉淀物溶解于蒸馏水中,得到多糖溶液;
向多糖溶液中加入4倍体积的Sevage试剂,所述Sevage试剂为氯仿:正丁醇=4:1(体积比)的溶剂,剧烈震荡后离心,离心转速为5000 rpm,离心时间为10 min,取上清液,重复操作,直至完全去除蛋白;随后将去除蛋白的多糖溶液在50 ℃下浓缩至无有机试剂味,之后冷冻干燥,得到粗多糖。
取阳春砂粗多糖100 mg,配制成浓度为20 mg/mL 的溶液,经DEAE-52纤维素离子交换柱分离,依次用浓度为0、0.05、0.1 M的NaCl溶液洗脱,洗脱流速为1 mL/min,洗脱时间为10 min/管,洗脱曲线如图1所示;使用全自动馏分收集器收集,采用苯酚-硫酸法测多糖含量,收集0.05 M NaCl溶液洗脱下的组分,60 ℃浓缩,3500 Da的透析袋透析,冷冻干燥后得到阳春砂多糖AVPD-1;取AVPD-1 20mg,配制成5 mg/mL的溶液,经葡聚糖凝胶SephadexG-100柱分离,蒸馏水洗脱,洗脱流速为3 mL/10 min,洗脱时间为10 min/管,洗脱曲线如图2所示;使用全自动馏分收集器收集,采用苯酚-硫酸法测多糖含量,合并含有多糖的组分,经浓缩、冷冻干燥后得到阳春砂多糖AVPG-1。
二)阳春砂多糖AVPG-1的分子量测定
AVPG-1的重均分子量通过HPSEC-MALLS-RID系统测得,该系统配备DAWN HELEOS-II激光散射仪,Waters e2695的分离系统和Optilab T-rEX的示差检测器,其中分离系统使用TSK-Gel G4000SWXL柱 (300 mm × 7.8 mm),柱温为35 °C,流动相为0.9% NaCl溶液,流速为0.5 mL/min,使用Astra software (Version 7.1.3)对分子量数据进行获取和分析,结果如图3所示。由HPLC结果可知,阳春砂多糖AVPG-1的重均分子量为5.14 × 105 Da。
三)阳春砂多糖AVPG-1的单糖组成分析
取8 mg多糖,用2 mL的3 M三氟乙酸于120 °C温度下水解6h,水解后的多糖用0.5M PMP (1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone,1-苯基-3-甲基-5-吡唑酮)进行衍生。分析采用Shimadzu高效液相色谱系统测定衍生产物样品。
HPLC条件:安捷伦XDB-C18色谱柱 (4.6 × 250 mm, 5 mm),柱温35 ℃,检测波长250 nm,流速1.0 mL/min,流动相为磷酸盐缓冲液(A)(0.05M, pH 6.7)和乙腈(B),洗脱梯度为:0-40 min保持16.0% B, 40-41 min由16.0% B降至14.0% B并保持14.0% B 13 min,54-55 min由14.0% B升至16.0% B并保持16.0% B 15 min。
其中标准品顺序(1-9)依次为:甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖和岩藻糖,结果如图4所示。
由HPLC结果可知,阳春砂多糖AVPG-1的单糖组成及比例为:葡萄糖醛酸:葡萄糖:半乳糖:木糖:阿拉伯糖=1.57:73.11:10:29:6.21:8.83。
四)阳春砂多糖AVPG-1的红外光谱分析
取多糖AVPG-1,使用傅里叶变换红外分光光度计(FT-IR),在4000-400 cm-1的范围内进行红外光谱扫描,结果如图5所示,可以看出:出现了多糖的特征吸收峰。在3314.15cm-1处的特征峰是由O-H基团的拉伸振动引起的,在2925.00 cm-1处的峰值是由C-H吸收引起的,包括CH、CH2和CH3的拉伸振动;在1639.85 cm-1和1600.82 cm-1处的吸收峰是由甲酯化羧基的C=O拉伸振动引起的,表明AVPG-2中含有糖醛酸;在853.08 cm-1处的特征吸收表明AVPG-1中存在α糖苷键。
五)阳春砂多糖AVPG-1的核磁共振分析
将AVPG-1以60 mg/mL 的浓度溶于D2O中使用Bruker Avance-600进行检测。阳春砂多糖AVPG-1核磁共振分析:结果如图6-10所示,根据图6-10的核磁图谱对各残基的各个碳和氢的化学位移值进行归属,归属结果如下表1所示。
表1-阳春砂多糖AVPG-1中各糖残基的氢、碳信号归属
结合单糖组成、红外光谱和核磁共振分析可知AVPG-1的糖链结构如下:
主链由→ 4)-α-D-Glcp-(1 →3,4)-β-D-Glcp-(1 →4)-α-D-Glcp-(1 →构成,支链由β-D-Xylp-(1-、-4)-α-D-Galp-(1-、α-L-Araf-(1-和α-D-GlcpA-(1-构成。具体连接方式如下:
式中,Ara指阿拉伯糖残基、Glc指葡萄糖残基、Gal指半乳糖残基、Xyl指木糖残基、GlcpA指葡萄糖醛酸残基,式中的数字指其键合的羟基在残基上的位置。
六)阳春砂多糖AVPG-1的刚果红实验
将1.0 mL多糖样品(1.0 mg/mL)与1.0 mL 刚果红溶液(80 mM)混合。随后,加入NaOH溶液(1.0 M),使氢氧化钠的最终浓度为0.1-0.6 M,混合溶液避光放置10 min,用Shimadzu UV-2600分光光度计分析其最大吸收波长(λ max)。结果如图11所示,可以看出:AVPG-1没有三螺旋结构。
实施例2:
一)阳春砂多糖AVPG-1对巨噬细胞RAW 264.7细胞活力的影响
取RAW 264.7细胞(5.0 × 103个/孔)接种于康宁96孔板,于37 ℃ 5%的CO2培养箱中培养24 h;弃去旧培养液,加入不同浓度的AVPG-1(50,100和200 mg/mL),空白对照和阳性对照分别加入DMEM培养基和LPS(1 mg/mL),培养24 h;取出96孔板,每孔加入10 mLCCK-8试剂,于37 ℃ 5%的CO2培养箱中培养3 h,之后使用Epoch酶标仪于450 nm下测定吸光值。测定结果如图12A所示。从图中可以看出,AVPG-2在浓度为100和200 mg/mL时可以提高细胞活力,且呈剂量依赖关系。
二)阳春砂多糖AVPG-1对巨噬细胞RAW 264.7 NO释放量的影响
NO释放量通过Griess反应进行测定。RAW 264.7细胞(5.0 × 104 cells/well)于96孔板中培养24 h后给药,AVPG-1终浓度为50,100和200 mg/mL,等体积的培养基作为空白对照,等体积的LPS(1 mg/mL)作为阳性对照。给药后继续培养24 h,按照试剂盒说明书使用Griess反应,通过Epoch酶标仪测定吸光值。测定结果如图12B所示。从图中可以看出,AVPG-1在给药剂量下均可以显著促进巨噬细胞分泌NO,且呈剂量依赖关系。
Claims (10)
2.一种具有免疫调节功能的组合物,其特征在于:其含有权利要求1所述的阳春砂多糖。
3.根据权利要求2所述的组合物,其特征在于:还包括可接受的辅料。
4.根据权利要求2所述的组合物,其特征在于:所述组合物为保健食品或药物。
5.权利要求1所述阳春砂多糖在制备免疫调节剂中的应用。
6.权利要求1所述阳春砂多糖的制备方法,包括:
1)将阳春砂粉碎,脱除其中的脂肪,得阳春砂脱脂粉末;
2)将阳春砂脱脂粉末加水,合并提取液,减压浓缩,得浓缩液;
3)浓缩液经沉淀,除蛋白,去除多糖上清液中的有机溶剂,冷冻干燥后得粗多糖;
4)取粗多糖配制成粗多糖溶液,上样阴离子纤维素层析柱,分别使用蒸馏水、0.05 MNaCl和0.1 M NaCl进行洗脱,取0.05 M NaCl 洗脱下来的组分,经浓缩透析冻干后得到阳春砂多糖AVPD-1;
5)取AVPD-1配制成5 mg/mL的溶液,经葡聚糖凝胶Sephadex G-100柱分离,蒸馏水洗脱,洗脱流速为3 mL/10 min,洗脱时间为10 min/管,浓缩、干燥,获得阳春砂均一多糖AVPG-1。
7.根据权利要求6所述的制备方法,其特征在于:按200 g粉碎后的阳春砂粉末,加入4L 95%乙醇的比例将阳春砂粉末和95%乙醇混合,80℃提取3 h,重复操作三次,最后将阳春砂粉末烘干,得阳春砂脱脂粉末。
8.根据权利要求6或7所述的制备方法,其特征在于: 按200 g阳春砂脱脂粉末加4 L水的比例配料,95℃提取3 h,重复操作3次,再将水提液于60 ℃下减压浓缩,得浓缩液。
9.根据权利要求6或7所述的制备方法,其特征在于:向浓缩液中加入4倍体积的无水乙醇,于4 ℃下静置12 h,沉淀多糖,然后离心收集沉淀,离心转速为5000 rpm,离心时间为5min,得多糖沉淀,将多糖沉淀溶解于蒸馏水中,得到多糖溶液;向多糖溶液中加入4倍体积的Sevage试剂,剧烈震荡后离心,离心转速为5000 rpm,离心时间为10 min,取上清液,重复操作,直至去除蛋白。
10.根据权利要求9所述的制备方法,其特征在于:所述Sevage试剂为氯仿:正丁醇体积比=4:1的溶剂。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
CB03 | Change of inventor or designer information |
Inventor after: Zhao Zhimin Inventor after: Zhou Yang Inventor after: Yang Depo Inventor after: Wen Qiyin Inventor after: Zhu Longping Inventor before: Zhao Zhimin Inventor before: Yang Depo Inventor before: Zhou Yang Inventor before: Wen Qiyin Inventor before: Zhu Longping |
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CB03 | Change of inventor or designer information | ||
GR01 | Patent grant | ||
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