CN112675307A - 纤溶酶抑制因子的抑制剂用于预防或治疗子痫前期或子痫的用途 - Google Patents

Abstract

本发明涉及疾病治疗领域。具体地，本发明涉及纤溶酶抑制因子的抑制剂用于预防和/或治疗子痫前期或子痫的用途，或者在制备用于预防和/或治疗子痫前期或子痫的药物中的用途。

Description

纤溶酶抑制因子的抑制剂用于预防或治疗子痫前期或子痫的 用途

技术领域

本发明涉及疾病治疗领域。具体地，本发明涉及纤溶酶抑制因子的抑制剂用于预防和/或治疗子痫前期或子痫的用途，或者在制备用于预防和/或治疗子痫前期或子痫的药物中的用途。

背景技术

妊娠期高血压疾病指妊娠期妇女发生高血压，其平均发病率为孕妇的5-10％。按照美国国家高血压教育工作组(national high blood pressure education program，NHBPEP)2000年的分类，妊娠期高血压疾病可被分为五种类型，包括：(1)子痫前期(preeclampsia)；(2)子痫(eclampsia)；(3)妊娠期高血压(gestational hypertension)；(4)慢性高血压(chronic hypertension)；(5)慢性高血压基础上的子痫前期(preeclampsia superimposed on chronic hypertension)。其中临床上对母儿危害最大的是子痫前期和子痫，特指妊娠20周以后出现高血压并伴随蛋白尿或多个器官的功能异常(如肝肾功能损伤、水肿、头晕、继发颅内病变、抽搐甚至昏迷)。这一疾病在世界范围内都是产科临床上导致孕产妇死亡的第二位主要原因(第一位为产后出血)，据统计，无论在发展中国家还是发达国家，10-20％的孕产妇死亡都与其有关，尤其是孕34周前发生的早发型子痫前期(early onset preeclampsia)。子痫前期和子痫缺乏有效的临床早期预测指标，发病后尽快终止妊娠仍是目前首选治疗方案，因而多数患者在终止妊娠时是早产，造成很高的围产儿病率和死亡率。文献报道孕34周前的早发子痫前期造成的围产儿死亡率为24％，孕18-27周的早发重度子痫前期围产儿死亡率高达87％。另一方面，对于病情较轻的患者，产科多采用降压、解痉等措施，保胎至妊娠36周后引产或剖腹产，但由于子宫血管痉挛引起的胎盘供血不足等因素，易造成胎儿宫内发育迟缓，分娩后胎儿需要特殊的护理，这又给患者家庭以及社会带来许多直接和间接的经济负担。

妊娠期高血压疾病尤其是子痫前期从上个世纪初就开始受到国际生殖医学界的重视，目前该领域所面临的最大挑战之一是开发能够治疗或者减轻子痫前期征状的干预措施，以最大限度降低对患者生命的威胁，获得最低可能性的围产儿病死率。因此，寻找能够预防和/或治疗子痫前期和子痫的药物迫在眉睫。

发明内容

本申请的发明人经过大量实验和反复摸索，出人意料地发现，通过抑制纤溶酶抑制因子的活性或表达可以逆转或减轻子痫前期及子痫的临床表征，由此完成了本发明。

医药用途

在一个方面，本发明涉及纤溶酶抑制因子的抑制剂在制备用于预防和/或治疗子痫前期(preeclampsia)和/或子痫(eclampsia)的药物中的用途。

在另一方面，本发明涉及用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的方法，其包括向有此需要的受试者施用纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤。在某些实施方案中，所述受试者是哺乳动物，例如人。

在某些实施方案中，所述预防和/或治疗子痫前期和/或子痫包括，缓解、减轻、改善或抑制子痫前期或子痫的一种或多种表征和/或由所述一种或多种表征所导致的不良状态(condition)。在某些实施方案中，所述表征可以包括例如高雄激素状态或过度炎性状态。

在本文中，表述“纤溶酶抑制因子的抑制剂”是指能够降低或去除纤溶酶抑制因子的生物学功能和/或抑制纤溶酶抑制因子的表达的活性剂。

纤溶酶抑制因子的抑制剂可以通过任何机制发挥其抑制作用，例如通过在RNA或蛋白质水平上抑制纤溶酶抑制因子的表达(例如，降低或抑制纤溶酶抑制因子的编码基因的转录，和/或，降低或抑制纤溶酶抑制因子的编码mRNA的翻译)；或者例如通过抑制或阻断纤溶酶抑制因子与一种或多种其相互作用蛋白(例如，纤溶酶和/或纤维蛋白)的相互作用，以恢复纤溶酶的生物活性(例如对纤维蛋白的降解)，和/或抑制纤维蛋白沉积；或者通过降低纤溶酶抑制因子的稳定性。优选地，所述抑制剂特异性抑制纤溶酶抑制因子，即其仅抑制纤溶酶抑制因子的生物学功能或表达，而不影响其它蛋白的生物学功能或活性。

在某些实施方案中，所述抑制剂能够抑制纤溶酶抑制因子的表达、降低纤溶酶抑制因子的浓度(例如，降低循环的纤溶酶抑制因子的浓度)，和/或降低纤溶酶抑制因子的活性。

测定纤溶酶抑制因子抑制剂的活性或筛选纤溶酶抑制因子抑制剂的方法在本领域技术人员的能力之内。特定的测定或筛选方法可以取决于使用的抑制剂的作用机制。

在一些实施方案中，所述抑制剂通过直接结合纤溶酶抑制因子来抑制其生物学功能。在此类实施方案中，可以通过检测待测试剂对纤溶酶抑制因子的生物学功能(例如抑制纤溶酶的活性)的影响来评价该待测试剂的抑制活性。可选地，在该检测之前可以首先通过生物物理结合试验来鉴定待测试剂对纤溶酶抑制因子的结合。

合适的测定酶活性和酶活性抑制的试验是本领域公知的，并且用于进行该试验的试剂通常可从市场上买到。例如，检测体系通常包含待测酶(例如纤溶酶)的特异性底物(例如，发色底物)，所述底物被酶水解时，产生有颜色的产物；在预定的时间段用分光光度法测定该颜色产物的显色程度(即，颜色变化的速率)，从而检测待测酶的活性。酶活性的抑制表现为在酶抑制剂(例如，纤溶酶抑制因子)的存在下在相同的时间段内颜色变化的速率可测量的降低。因此，在某些实例性实施方案中，在包含待测试剂的待测样品和不包含待测试剂的对照样品中加入纤溶酶抑制因子、纤溶酶和发色底物并进行反应，一定时间后在规定波长(例如405nm)比色，通过标准曲线求得待测样品和对照样品中纤溶酶的活性，当待测样品的纤溶酶活性相比于对照样品升高时，表明该待测样品具备抑制纤溶酶抑制因子的活性(参见，例如，Burnouf T等.Biologicals.2007 Oct；35(4):349-53.)。

合适的生物物理结合试验是本领域已知的，包括但不限于，荧光偏振(FP)试验、荧光共振能量转移(FRET)试验、表面等离子体共振(SPR)试验等。

在另一些实施方案中，所述抑制剂通过降低纤溶酶抑制因子表达水平来抑制其生物学功能。在此类实施方案中，表达水平的测定可以在核酸水平或蛋白水平实施。在核酸水平测定表达的方法包括但不限于Northern印迹、PCR、RT-PCR或实时(real)RT-PCR。在蛋白水平测定表达的方法包括但不限于Western印迹或聚丙烯酰胺凝胶电泳联合蛋白染色技术如考马斯亮蓝或银染、质谱、ELISA等。在核酸水平以及蛋白水平测定纤溶酶抑制因子表达水平的这些方法为本领域熟知。

I.抗体或其抗原结合片段抑制剂

在一些实施方案中，所述纤溶酶抑制因子的抑制剂是特异性结合纤溶酶抑制因子的抗体或其抗原结合片段。

在某些实施方案中，所述抗体是阻断抗体(blocking antibody)或中和抗体(neutralizing antibody)。在某些实施方案中，所述抗体能够结合纤溶酶抑制因子，并直接干扰其生物学功能(例如，阻断纤溶酶抑制因子与其相互作用的蛋白(如纤溶酶和/或纤维蛋白)的结合)。

在某些实施方案中，所述抗体特异性结合人纤溶酶抑制因子。

在某些实施方案中，所述抗体是嵌合抗体或人源化抗体。

在某些实施方案中，所述抗原结合片段选自ScFv、Fab、Fab’、(Fab’)₂、Fv片段、二硫键连接的Fv(dsFv)。

可以通过多种常规技术进行制备特异性结合纤溶酶抑制因子的抗体，例如杂交瘤技术(参见，例如Kohler等人.Nature,256:495,1975)，重组DNA技术(参见，例如美国专利申请4,816,567)，或噬菌体抗体库技术(参见，例如Clackson等.Nature352：624-628,1991，或Marks等.J.Mol.Biol.222：581-597,1991)。

例如，可以如下来制备单克隆抗体。首先用免疫原(必要时候添加佐剂)免疫注射小鼠或其它合适的宿主动物。免疫原或佐剂的注射方式通常为皮下多点注射或腹腔注射。可将免疫原预先偶联到某些已知蛋白，如血清白蛋白或大豆胰酶抑制剂上，以增强抗原在宿主内的免疫原性。佐剂可以是弗氏佐剂或MPL-TDM等。动物在接受免疫后，体内将产生分泌特异性结合免疫原的抗体的淋巴细胞。另外，淋巴细胞也可以利用体外免疫获得。收集目的淋巴细胞，并用合适的融合剂，如PEG，使其与骨髓瘤细胞融合以获得杂交瘤细胞(Goding,Monoclonal Antibodies:Principles and Practice,pp.59-103,AcademicPress,1996)。上述制备的杂交瘤细胞可以接种到合适的培养液中生长，培养液中优选含有一种或多种能够抑制未融合的、母体骨髓瘤细胞生长的物质。例如，对于缺乏次黄嘌呤鸟嘌呤磷酸转移酶(HGPRT或HPRT)的母体骨髓瘤细胞，在培养液中添加次黄嘌呤、氨基喋呤和胸腺嘧啶(HAT培养基)等物质将可以抑制HGPRT-缺陷细胞的生长。优选的骨髓瘤细胞应该具有融合率高，抗体分泌能力稳定，对HAT培养液敏感等特征。其中，骨髓瘤细胞首选鼠源骨髓瘤，如MOP-21或MC-11小鼠肿瘤衍生株(THE Salk Institute Cell Distribution Center,San Diego,Calif.USA)，和SP-2/0或X63-Ag8-653细胞株(American Type CultureCollection,Rockville,Md.USA)。另外也有研究报道，利用人骨髓瘤和人鼠异源骨髓瘤细胞株制备人单抗(Kozbor,J.Immunol.,133:3001(1984)；Brodeur et al.,MonoclonalAntibody Production Techniques and Applications,pp.51-63,Marcel Dekker,Inc.,New York,1987)。生长杂交瘤细胞的培养液用于检测针对特异抗原的单抗的产生。测定杂交瘤细胞产生的单抗的结合特异性的方法包括例如，免疫沉淀或体外结合试验，如放射免疫试验(RIA)、酶联免疫吸附试验(ELISA)。当确定了杂交瘤产生的抗体的特异性、亲和力和反应性之后，目的细胞株可以通过(Goding,Monoclonal Antibodies:Principles andPractice,pp.59-103,Academic Press,1996)所描述的标准的有限稀释法进行亚克隆化。合适的培养液可以是DMEM或RPMI-1640等。另外，杂交瘤细胞还可以腹水瘤的形式在动物体内生长。利用传统的免疫球蛋白纯化方法，如蛋白A琼脂糖凝胶、羟基磷灰石层析、凝胶电泳、透析或亲和层析等，可以将亚克隆细胞分泌的单抗从细胞培养液、腹水或血清中分离出来。

还可以通过基因工程重组技术获得单克隆抗体。利用特异性结合单抗重链和轻链基因的核酸引物进行PCR扩增，可以从杂交瘤细胞中分离得到编码单抗重链和轻链基因的DNA分子。将所得的DNA分子插入表达载体内，然后转染宿主细胞(如E.coli细胞、COS细胞、CHO细胞、或其它不产生免疫球蛋白的骨髓瘤细胞)，并在合适的条件下进行培养，可以获得重组表达的目标抗体。

抗体可通过公知的技术，例如使用蛋白A或蛋白G的亲和层析进行纯化。随后或作为替代，可将特异性抗原(该抗体识别的靶分子)或其抗原表位固定在柱上，并通过免疫亲合层析法来纯化免疫特异性抗体。免疫球蛋白的纯化可参考例如D.Wilkinson(TheScientist,published by The Scientist,Inc.,Philadelphia Pa.,Vol.14,No.8(Apr.17,2000),pp.25-28)。

在获得特异性结合纤溶酶抑制因子的单克隆抗体后，可以使用如上所述的方法进一步测定该单克隆抗体对纤溶酶抑制因子的抑制活性。

如上制备获得鼠单克隆抗体之后，可进一步制备其嵌合抗体或人源化抗体。例如，从目标鼠杂交瘤中获得编码重链和轻链的DNA，并且使用标准分子生物学技术进行工程改造以包含非鼠(例如人)免疫球蛋白序列。

为制备嵌合抗体，可使用本领域已知的方法将鼠免疫球蛋白可变区连接至人免疫球蛋白恒定区(参见例如Cabilly等人的美国专利No.4,816,567)。例如，将编码VH的DNA可操作的连接至编码重链恒定区的另一DNA分子以获得全长重链基因。人重链恒定区基因的序列是本领域已知的(参见例如Kabat,E.A.等人(1991)Sequences of Proteins ofImmunological Interest,Fifth Edition,U.S.Department of Health and HumanServices,NIH Publication No.91-3242)，包含这些区的DNA片段可以通过标准PCR扩增获得。重链恒定区可以是IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgE、IgM或IgD恒定区，但是通常优选为IgG1或IgG4恒定区。例如，将编码VL的DNA可操作的连接至编码轻链恒定区CL的另一DNA分子以获得全长轻链基因(以及Fab轻链基因)。人轻链恒定区基因的序列是本领域已知的(参见例如Kabat，E.A.等人(1991)Sequences of Proteins of Immunological Interest，Fifth Edition，U.S.Department of Health and Human Services，NIH PublicationNo.91-3242)，包含这些区的DNA片段可以通过标准PCR扩增获得。轻链恒定区可以是κ或λ恒定区，但通常优选为κ恒定区。

为制备人源化抗体，可以使用本领域已知的方法将鼠CDR区插入人源框架序列(参见Winter的美国专利No.5,225,539；Queen等人的美国专利Nos.5,530,101；5,585,089；5,693,762和6,180,370；以及Lo,Benny,K.C.,editor,in Antibody Engineering:Methodsand Protocols,volume 248,Humana Press,New Jersey,2004)。或者，还可以利用转基因动物，其能够在免疫后不产生内源性免疫球蛋白、并且能够产生完整人抗体库。例如，已有报道在嵌合和种系突变小鼠中抗体重链连接区(JH)基因的纯合缺失可以完全抑制了内源性抗体产生，然后将人种系免疫球蛋白基因阵列转移到所述种系突变小鼠中将导致该小鼠在遇到抗原刺激时产生人抗体(参见例如，Jakobovits等，1993，Proc.Natl.Acad.Sci.USA90：2551；Jakobovits等，1993，Nature362：255-258；Bruggermann等，1993，Year inImmunology 7：33；和Duchosal等，1992，Nature 355：258)。上述转基因动物的非限制性实例包括，HuMAb小鼠(Medarex,Inc.)，其含有编码未重排的人重链(μ和γ)和κ轻链免疫球蛋白序列的人免疫球蛋白基因微型基因座(miniloci)，加之使内源μ和κ链基因座失活的靶向突变(参见例如Lonberg等人(1994)Nature 368(6474):856-859)；或携带人重链转基因和人轻链转染色体的“KM小鼠TM”(参见专利申请WO02/43478)。其他抗体人源化改造的方法还包括噬菌体展示技术(Hoogenboom等，1991，J.Mol.Biol.227：381；Marks等，J.Mol.Biol.1991，222：581-597；Vaughan等，1996，Nature Biotech 14：309)。

在某些实施方案中，所述抗体可以选自下述市售抗体：单克隆抗体4H9(MolecularInnovations)、27C9(Molecular Innovations)、14AP(Diapharma)、以及可以从Genetex、Thermo Scientific获得的其他抗人纤溶酶抑制因子的抗体。在某些实施方案中，所述抗体包括可以通过标准分子生物学技术获得的上述市售抗体的嵌合或人源化抗体。

在某些示例性实施方案中，所述抗体选自单克隆抗体4H9(MolecularInnovations)或其嵌合抗体或人源化抗体。

II.核酸抑制剂

在另一些实施方案中，所述纤溶酶抑制因子的抑制剂包括RNA干扰剂或反义寡核苷酸。所述RNA干扰剂抑制纤溶酶抑制因子的表达。所述反义寡核苷酸特异地与编码纤溶酶抑制因子的DNA或mRNA结合而抑制纤溶酶抑制因子的表达。

在本文中，表述“RNA干扰剂”是指，通过RNA干扰(RNAi)机制来抑制靶基因表达的任何试剂。“RNA干扰(RNAi)”是一种进化上保守的过程，其中与靶基因相同或高度相似的序列的RNA的表达或引入导致从该靶基因转录的信使RNA(mRNA)的序列特异性降解或特异性转录后基因沉默(PTGS)(参见Coburn和Cullen(2002)J.Virol.76：9225)，从而抑制靶基因的表达。

因此，本领域技术人员知晓，可以根据纤溶酶抑制因子编码基因或其转录生成的mRNA的序列选取靶序列设计小干扰RNA(siRNA)或者小RNA(microRNA、miRNA)分子。该siRNA或者miRNA分子可以干扰基因的转录、翻译或转录、翻译后的修饰，进而影响蛋白的表达。

此外，为了延长siRNA对靶基因表达的抑制作用，可以设计一对特定的寡核苷酸序列，退火后克隆至载体中，该重组载体的转录产物即短发夹RNA(short hairpin RNA,shRNA)，其可以自身折叠配对成茎长为19-21个碱基的茎环(stem-loop)结构，其中该19-21个碱基即来源于靶基因mRNA的一段特定序列，这种茎环结构的前体在细胞内很快被切割形成有功能的siRNA。这种载体表达的shRNA经剪切形成的siRNA具有表达量稳定、待续时间长的特点，从而可引起目标基因表达的长效抑制。

在本文中，所述shRNA是指短发夹RNA(short hairpin RNA)，shRNA包括两个短反向重复序列，中间由一茎环(loop)序列分隔的，组成发夹结构，由polⅢ启动子控制。随后再连上5-6个T作为RNA聚合酶Ⅲ的转录终止子。将siRNA序列克隆进质粒载体中，可以在活体中输送“小干扰RNA”(siRNA)。当送入动物体内时，该发夹序列被表达出来，形成茎环结构，该茎环结构被切割成有功能的siRNA，发挥基因沉默作用。

在本文中，所述siRNA是指Small interfering RNA，是一种小RNA分子，由大约21-25个核苷酸组成，由Dicer(RNAaseⅢ家族中对双链RNA具有特异性的酶)加工而成，siRNA是siRISC的主要成员，激发与之互补的目标mRNA的沉默。

在本文中，所述微小RNA(miRNA)是指天然存在的一类非编码RNA分子，长度约为21-25个核苷酸，它们基于与靶mRNA的序列互补，能够通过与靶mRNA特异性的碱基互补配对，引起靶mRNA降解或者抑制其翻译，从而对基因进行转录后的表达调控。miRNA可参考miRBase数据库(http://microrna.sanger.ac.uk/)。

在某些实施方案中，所述RNA干扰剂选自小干扰RNA(siRNA)、小发夹RNA(shRNA)或微小RNA(miRNA)。

在本文中，表述“反义寡核苷酸”是指，与有义核酸互补的分子，例如与对应于纤溶酶抑制因子的双链DNA的编码链互补或与对应于纤溶酶抑制因子的mRNA序列互补。因此，所述反义寡核苷酸可以与有义核酸形成氢键(即与其退火)。在本发明中，反义寡核苷酸可以与编码纤溶酶抑制因子的核酸序列的整个编码链互补，或仅与其一部分互补，例如全部或部分蛋白质编码区(或开放阅读框)。反义寡核苷酸也可以与编码纤溶酶抑制因子的核酸序列的编码链的全部或部分非编码区反义。非编码区(“5'和3'非翻译区”)是5'和3'序列，其位于编码区的侧翼并且不翻译成氨基酸。反义寡核苷酸的长度可以是例如约5、10、15、20、25、30、35、40、45或50或更多个核苷酸。

可以使用本领域已知的程序使用化学合成和酶促连接反应构建反义核酸。例如，反义核酸(例如，反义寡核苷酸)可以使用天然存在的核苷酸或各种修饰的核苷酸化学合成，所述修饰的核苷酸被设计成增加分子的生物稳定性或增加反义和有义核酸之间形成的双链体的物理稳定性，例如可以使用硫代磷酸酯衍生物和吖啶取代的核苷酸。或者，可以使用表达载体以生物学方式产生反义核酸，该表达载体包含亚克隆至其中的靶核酸，从插入的核酸转录的RNA将具有与靶核酸的反义方向。

在某些实施方案中，所述反义寡核苷酸是反义RNA或反义DNA。

在获得所述RNA干扰剂或反义寡核苷酸后，可以使用如上所述的方法进一步测定该RNA干扰剂或反义寡核苷酸对纤溶酶抑制因子的mRNA或蛋白表达水平的抑制活性。

III.小分子化合物抑制剂

在另一些实施方案中，所述纤溶酶抑制因子的抑制剂包括小分子化合物。

在本文中，表述“小分子化合物”是指有机的非蛋白质化合物。在某些实施方案中，所述小分子化合物的分子量不大于1500Da。本发明的小分子化合物能够结合并抑制纤溶酶抑制因子的功能，包括但不限于纤溶酶抑制因子与纤溶酶的相互作用。

可以通过筛选现有的小分子化合物库(例如，Chem Bridge、Chem Div、Inter BioScreen、Life Chemicals、Specs或Vitas-m)，并使用如上所述的方法测定化合物对纤溶酶抑制因子的结合活性及抑制活性，来获得所述小分子化合物。

在某些示例性实施方案中，所述小分子化合物是羟乙基淀粉。羟乙基淀粉能够抑制纤溶酶抑制因子和纤溶酶之间的结合，参见Nielsen VG.Blood CoagulFibrinolysis.2007 Oct；18(7):647-56.。

本发明的纤溶酶抑制因子抑制剂可以为医学领域已知的任何形式，例如，可以是片剂、丸剂、混悬剂、乳剂、溶液、凝胶剂、胶囊剂、粉剂、颗粒剂、酏剂、锭剂、栓剂、注射剂(包括注射液、冻干粉剂)、吸入剂、喷雾剂等形式。优选剂型取决于预期的给药方式和治疗用途。

本发明的纤溶酶抑制因子抑制剂可以通过本领域已知的任何合适的方法来施用，包括但不限于，口服、直肠、肠胃外或局部给药。

一种示例性施用途径是口服给药。用于口服给药的液体剂型包括药学上可接受的乳剂、微乳剂、溶液剂、悬浮剂、糖浆剂、酏剂等。用于口服给药的固体剂型包括胶囊剂、片剂、丸剂、锭剂、粉剂、颗粒剂等。

本发明的纤溶酶抑制因子抑制剂也可通过非口服途径给药。

因此，另一种示例性的施用途径是肠胃外给药，例如，皮下注射、静脉注射、腹膜内注射、肌肉注射、胸骨内注射和注入。用于肠道外给药的剂型可以为注射制剂，包括注射液、注射用无菌粉末或注射用浓溶液。除活性化合物以外，注射剂型可含有药学上可接受的载体例如无菌水、林格氏液和等渗氯化钠溶液，也可根据药物的性质加入适宜的附加剂例如抗氧化剂、缓冲剂和抑菌剂。

另一种示例性的施用途径是局部给药，例如经皮给药(如通过经皮贴剂或离子电渗装置给药)、眼内给药或者鼻内或吸入给药。用于经皮给药的剂型可以为局部凝胶剂、喷雾剂、软膏剂和霜剂。除活性化合物以外，局部剂型可含有能够提高该活性化合物通过皮肤或其它作用区域的吸收或渗透的成分。

另一种示例性的施用途径是直肠给药。用于直肠给药的剂型可以为栓剂。

此外，还可以使用药学领域已知的其它载体材料和给药方式。本发明的纤溶酶抑制因子抑制剂可以通过任何公知的制药工艺制备，例如有效的制剂和给药方法。

在某些实施方案中，所述药物任选地包含药学上可接受的载体和/或赋形剂。

筛选方法

在另一个方面，本发明涉及筛选用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的候选药物的方法，其包括筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤。在某些实施方案中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤在体外进行。

在一些实施方案中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤包括：

(1)在受试试剂存在的情况下，测定纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性；

(2)将步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时测定的纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性进行比较；

其中，如果步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时的测定结果相比降低，表明所述受试试剂是纤溶酶抑制因子的抑制剂，并且是用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的候选药物。

在某些实施方案中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤包括：

(1)使受试试剂与纤溶酶抑制因子接触；

(2)测定纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性；

(3)将步骤(2)的测定结果与不存在所述受试试剂时测定的纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性进行比较；

(4)选择在所述接触之后降低或消除所述纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性的受试试剂；

其中，所筛选获得的受试试剂可用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫。

在另一些实施方案中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤包括：

(1)在受试试剂存在的情况下，测定纤溶酶抑制因子编码基因在能够表达该编码基因的细胞中的表达水平；

(2)将步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时测定的所述编码基因的表达水平进行比较；

其中，如果步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时的测定结果相比降低，表明所述受试试剂是纤溶酶抑制因子的抑制剂，并且是用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的候选药物。

在某些实施方案中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤包括：

(1)使受试试剂与能够表达纤溶酶抑制因子编码基因的细胞接触；

(2)测定所述编码基因的表达水平；

(3)将步骤(2)的测定结果与不存在所述受试试剂时测定的所述编码基因的表达水平进行比较；

(4)选择具有降低或抑制所述编码基因表达的能力的受试试剂；

其中，所筛选获得的受试试剂可用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫。

在另一个方面，本发明涉及筛选用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的候选药物的方法，所述方法包括下述步骤：

a)提供包含纤溶酶抑制因子的编码核酸序列或纤溶酶抑制因子的基因表达产物的样品；

b)将所述样品与受试试剂接触；

c)检测所述受试试剂与所述纤溶酶抑制因子的编码核酸序列或纤溶酶抑制因子的基因表达产物之间的结合；

d)鉴定能够结合所述纤溶酶抑制因子的编码核酸序列或纤溶酶抑制因子的基因表达产物的受试试剂；以及，

e)在所述受试试剂存在或不存在的情况下，评估纤溶酶抑制因子的活性或表达中的至少一项；

其中，在所述受试试剂存在的情况下测量的纤溶酶抑制因子的活性或表达与在所述受试试剂不存在的情况下测量的纤溶酶抑制因子的活性或表达相比降低，表明所述受试试剂可用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫。

术语定义

在本发明中，除非另有说明，否则本文中使用的科学和技术名词具有本领域技术人员所通常理解的含义。并且，本文中所用的肿瘤学、分子遗传学、核酸化学、细胞培养、生物化学、细胞生物学等操作步骤均为相应领域内广泛使用的常规步骤。同时，为了更好地理解本发明，下面提供相关术语的定义和解释。

如本文中所使用的，术语“纤溶酶抑制因子(Plasmin inhibitor)”，也称为α2-抗纤溶酶(α2-antiplasmin)，是一种丝氨酸蛋白酶抑制剂，能够灭活纤溶酶。纤溶酶抑制因子的生物学功能包括但不限于，(1)通过与纤溶酶结合，阻碍纤溶酶对纤维蛋白的降解；和/或，(2)通过与纤维蛋白结合，促使纤维蛋白沉积。纤溶酶抑制因子的序列是本领域技术人员已知的，并可参见公共数据库(NM_000934.3)。

如本文中所使用的，术语“抗体”是指，通常由两对多肽链(每对具有一条轻链(LC)和一条重链(HC))组成的免疫球蛋白分子。抗体轻链可分类为κ(kappa)和λ(lambda)轻链。重链可分类为μ、δ、γ、α或ε，并且分别将抗体的同种型定义为IgM、IgD、IgG、IgA和IgE。在轻链和重链内，可变区和恒定区通过大约12或更多个氨基酸的“J”区连接，重链还包含大约3个或更多个氨基酸的“D”区。各重链由重链可变区(VH)和重链恒定区(CH)组成。重链恒定区由3个结构域(CH1、CH2和CH3)组成。各轻链由轻链可变区(VL)和轻链恒定区(CL)组成。轻链恒定区由一个结构域CL组成。恒定结构域不直接参与抗体与抗原的结合，但展现出多种效应子功能，如可介导免疫球蛋白与宿主组织或因子，包括免疫系统的各种细胞(例如，效应细胞)和经典补体系统的第一组分(C1q)的结合。VH和VL区还可被细分为具有高变性的区域(称为互补决定区(CDR))，其间散布有较保守的称为构架区(FR)的区域。各VH和VL由按下列顺序：FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3、FR4从氨基末端至羧基末端排列的3个CDR和4个FR组成。各重链/轻链对的可变区(VH和VL)分别形成抗原结合部位。氨基酸在各区域或结构域的分配可遵循Kabat,Sequences of Proteins of Immunological Interest(NationalInstitutes of Health,Bethesda,Md.(1987 and 1991))，或Chothia&Lesk(1987)J.Mol.Biol.196:901-917；Chothia等人(1989)Nature 342:878-883的定义。

术语“抗体”不受任何特定的产生抗体的方法限制。例如，其包括，重组抗体、单克隆抗体和多克隆抗体。抗体可以是不同同种型的抗体，例如，IgG(例如，IgG1，IgG2，IgG3或IgG4亚型)，IgA1，IgA2，IgD，IgE或IgM抗体。

在本文中，除非上下文明确指出，否则当提及术语“抗体”时，其不仅包括完整抗体，而且包括抗体的抗原结合片段。

如本文中所使用的，术语抗体的“抗原结合片段”是指抗体全长或部分片段的多肽，例如全长抗体的片段的多肽，其保持特异性结合全长抗体所结合的相同抗原的能力，和/或与全长抗体竞争对抗原的特异性结合，其也被称为“抗原结合部分”。通常参见，Fundamental Immunology,Ch.7(Paul,W.,ed.,第2版，Raven Press,N.Y.(1989)，以其全文通过引用合并入本文，用于所有目的。可通过重组DNA技术或通过完整抗体的酶促或化学断裂产生抗体的抗原结合片段。抗原结合片段的非限制性实例包括Fab、Fab’、F(ab’)₂、Fd、Fv、dAb和互补决定区(CDR)片段、单链抗体(例如，scFv)、和这样的多肽，其包含足以赋予多肽特异性抗原结合能力的抗体的至少一部分。

如本文中所使用的，术语“Fab片段”意指由VL、VH、CL和CH1结构域组成的抗体片段；术语“F(ab’)₂片段”意指包含通过铰链区上的二硫桥连接的两个Fab片段的抗体片段；术语“Fab’片段”意指还原连接F(ab’)₂片段中两个重链片段的二硫键后所获片段，由一条完整的轻链和重链的Fd片段(由VH和CH1结构域组成)组成。

如本文中所使用的，术语“Fv片段”意指由抗体的单臂的VL和VH结构域组成的抗体片段。Fv片段通常被认为是，能形成完整的抗原结合位点的最小抗体片段。一般认为，六个CDR赋予抗体的抗原结合特异性。然而，即便是一个可变区(例如Fd片段，其仅仅含有三个对抗原特异的CDR)也能够识别并结合抗原，尽管其亲和力可能低于完整的结合位点。

如本文中所使用的，术语“scFv”是指，包含VL和VH结构域的单个多肽链，其中所述VL和VH通过接头(linker)相连(参见，例如,Bird等人,Science 242:423-426(1988)；Huston等人,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:5879-5883(1988)；和Pluckthun，ThePharmacology of Monoclonal Antibodies，第113卷，Roseburg和Moore编，Springer-Verlag，纽约，第269-315页(1994))。此类scFv分子可具有一般结构：NH2-VL-接头-VH-COOH或NH2-VH-接头-VL-COOH。在一些情况下，scFv的VH与VL之间还可以存在二硫键。

如本文中所使用的，术语“嵌合抗体(Chimeric antibody)”是指，这样的抗体，其轻链或/和重链的一部分源自一个抗体(其可以源自某一特定物种或属于某一特定抗体类或亚类)，且轻链或/和重链的另一部分源自另一个抗体(其可以源自相同或不同的物种或属于相同或不同的抗体类或亚类)，但无论如何，其仍保留对目标抗原的结合活性(U.S.P4,816,567 to Cabilly et al.；Morrison et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,81:68516855(1984))。例如，术语“嵌合抗体”可包括这样的抗体(例如人鼠嵌合抗体)，其中抗体的重链和轻链可变区来自第一抗体(例如鼠源抗体)，而抗体的重链和轻链恒定区来自第二抗体(例如人抗体)。

如本文中所使用的，术语“人源化抗体”是指，经基因工程改造的非人源抗体，其氨基酸序列经修饰以提高与人源抗体的序列的同源性。通常而言，人源化抗体的全部或部分CDR区来自于非人源抗体(供体抗体)，全部或部分的非CDR区(例如，可变区FR和/或恒定区)来自于人源免疫球蛋白(受体抗体)。人源化抗体通常保留了供体抗体的预期性质，包括但不限于，抗原特异性、亲和性、反应性等。供体抗体可以是有预期性质(例如，抗原特异性、亲和性和/或反应性)的小鼠、大鼠、兔或非人灵长类动物(例如，食蟹猴)抗体。

如本文中所使用的，术语“特异性结合”是指，两分子间的非随机的结合反应，如抗体和其所针对的抗原之间的反应。特异性结合相互作用的强度或亲和力可以该相互作用的平衡解离常数(KD)或半最大效应浓度(EC50)表示。

两分子间的特异性结合性质可使用本领域公知的方法进行测定。一种方法涉及测量抗原结合位点/抗原复合物形成和解离的速度。“结合速率常数”(ka或kon)和“解离速率常数”(kdis或koff)两者都可通过浓度及缔合和解离的实际速率而计算得出(参见Malmqvist M,Nature,1993,361:186-187)。kdis/kon的比率等于解离常数KD(参见Davies等人,Annual Rev Biochem,1990；59:439-473)。可用任何有效的方法测量KD、kon和kdis值。在某些实施方案中，可以使用生物发光干涉测量法(例如ForteBio Octet法)来测量解离常数。除此以外还可用表面等离子共振技术(例如Biacore)或Kinexa来测量解离常数。

如本文中所使用的，术语“药学上可接受的载体和/或赋形剂”是指在药理学和/或生理学上与受试者和活性成分相容的载体和/或赋形剂，其是本领域公知的(参见例如Remington's Pharmaceutical Sciences.Edited by Gennaro AR,19thed.Pennsylvania:Mack Publishing Company,1995)，并且包括但不限于：pH调节剂，表面活性剂，佐剂，离子强度增强剂，稀释剂，维持渗透压的试剂，延迟吸收的试剂，防腐剂。例如，pH调节剂包括但不限于磷酸盐缓冲液。表面活性剂包括但不限于阳离子，阴离子或者非离子型表面活性剂，例如Tween-80。离子强度增强剂包括但不限于氯化钠。防腐剂包括但不限于各种抗细菌试剂和抗真菌试剂，例如对羟苯甲酸酯，三氯叔丁醇，苯酚，山梨酸等。维持渗透压的试剂包括但不限于糖、NaCl及其类似物。延迟吸收的试剂包括但不限于单硬脂酸盐和明胶。稀释剂包括但不限于水，水性缓冲液(如缓冲盐水)，醇和多元醇(如甘油)等。防腐剂包括但不限于各种抗细菌试剂和抗真菌试剂，例如硫柳汞，2-苯氧乙醇，对羟苯甲酸酯，三氯叔丁醇，苯酚，山梨酸等。稳定剂具有本领域技术人员通常理解的含义，其能够稳定药物中的活性成分的期望活性，包括但不限于谷氨酸钠，明胶，SPGA，糖类(如山梨醇，甘露醇，淀粉，蔗糖，乳糖，葡聚糖，或葡萄糖)，氨基酸(如谷氨酸，甘氨酸)，蛋白质(如干燥乳清，白蛋白或酪蛋白)或其降解产物(如乳白蛋白水解物)等。

如本文中所使用的，术语“预防”是指，为了阻止或延迟疾病或病症或症状(例如，子痫或子痫前期)在受试者体内的发生而实施的方法。如本文中所使用的，术语“治疗”是指，为了获得有益或所需临床结果而实施的方法。为了本发明的目的，有益或所需的临床结果包括但不限于，减轻症状、缩小疾病的范围、稳定(即，不再恶化)疾病的状态，延迟或减缓疾病的发展、改善或减轻疾病的状态、缓解症状(无论部分或全部)、缓解或改善预后、降低或抑制疾病复发等，无论是可检测或是不可检测的。此外，“治疗”还可以指，与期望的存活期相比(如果未接受治疗)，延长存活期。

如本文中所使用的，术语“受试者”是指哺乳动物，例如灵长类哺乳动物，例如人。在某些实施方案中，所述受试者(例如人)为孕妇。在某些实施方案中，所述受试者(例如人)患有子痫或子痫前期，或者，具有患有上述疾病的风险。

发明的有益效果

目前由于缺乏针对子痫前期和子痫的早期预测指标及有效干预措施，子痫前期和子痫是产科临床上导致孕产妇死亡的第二位主要原因，仅次于产后出血。本申请的发明人经过大量实验和反复摸索，出人意料地发现通过抑制纤溶酶抑制因子可以显著改善子痫前期症状，挽救不良妊娠结局。因此，纤溶酶抑制因子的抑制剂可以作为药物用于预防和/或治疗子痫和/或子痫前期，具有重大的临床价值。

下面将结合附图和实施例对本发明的实施方案进行详细描述，但是本领域技术人员将理解，下列附图和实施例仅用于说明本发明，而不是对本发明的范围的限定。根据附图和优选实施方案的下列详细描述，本发明的各种目的和有利方面对于本领域技术人员来说将变得显然。

附图说明

图1显示了实施例1中孕期高雄小鼠模型的建模及治疗流程图。

图2显示了实施例1中小鼠外周血T0水平的检测结果,*p<0.05。

图3显示了实施例1中小鼠收缩压的检测结果，*p<0.05，**p<0.01，TP对比CTRL。δp<0.05，δδp<0.01，TP+A对比TP。#p<0.05，##p<0.01，TP+A对比TP+G。

图4显示了实施例1中小鼠蛋白尿含量的检测结果,*p<0.05。

图5显示了实施例1中小鼠胎儿重量的检测结果,*p<0.05。

图6显示了实施例1中小鼠各组织中纤维蛋白沉积情况的检测结果。

图7显示了实施例1中小鼠胎盘母体血窦和胎儿血管的检测结果。

图8显示了实施例1中小鼠胎盘母体血窦面积的统计结果,*p<0.05，**p<0.01。

图9显示了实施例1中小鼠胎盘胎儿血管面积的统计结果,*p<0.05。

图10显示了实施例1中小鼠子宫血流和脐带血流的超声检测结果。

图11显示了实施例1中小鼠子宫血流超声的搏动指数统计结果,*p<0.05。

图12显示了实施例1中小鼠子宫血流超声的阻力指数统计结果,*p<0.05。

图13显示了实施例2中孕期慢性炎症小鼠模型的建模及治疗流程图。

图14显示了实施例2中小鼠外周血TNFα水平的检测结果,*p<0.05。

图15显示了实施例2中小鼠收缩压的检测结果**p<0.01，LPS对比CTRL。δδp<0.01，LPS+A对比LPS。##p<0.01，LPS+A对比LPS+G。

图16显示了实施例2中小鼠蛋白尿含量的检测结果,*p<0.05。

图17显示了实施例2中小鼠胎儿重量的检测结果,*p<0.05。

图18显示了实施例2中小鼠各组织中纤维蛋白沉积情况的检测结果。

图19显示了实施例2中小鼠胎盘母体血窦和胎儿血管的检测结果。

图20显示了实施例2中小鼠胎盘母体血窦面积的统计结果,*p<0.05。

图21显示了实施例2中小鼠胎盘胎儿血管面积的统计结果,*p<0.05。

图22显示了实施例2中小鼠子宫血流和脐带血流的超声检测结果。

图23显示了实施例2中小鼠子宫血流超声的搏动指数统计结果,*p<0.05。

图24显示了实施例2中小鼠子宫血流超声的阻力指数统计结果,*p<0.05。

具体实施方式

现参照下列意在举例说明本发明(而非限定本发明)的实施例来描述本发明。

除非特别指明，否则基本上按照本领域内熟知的以及在各种参考文献中描述的常规方法进行实施例中描述的实验和方法。实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市购获得的常规产品。本领域技术人员知晓，实施例以举例方式描述本发明，且不意欲限制本发明所要求保护的范围。本文中提及的全部公开案和其他参考资料以其全文通过引用合并入本文。

实施例1.纤溶酶抑制因子抑制剂在孕期高雄小鼠模型中的疗效评价

1.1孕期高雄小鼠模型的建立

为了模拟人类子痫前期患者的高雄激素表征，采用注射雄激素类似物的策略构建孕期高雄模型(图1)。在胎龄7.5天(E7.5)-胎龄18.5天(E18.5)给予CD-1孕鼠(购自维通利华)皮下注射2-4mg/kg/天的丙酸睾酮(上海通用药业，国药准字H31020524)，作为高雄组(TP)；同时，对照组小鼠皮下注射同等剂量的溶剂(蓖麻油)，作为CTRL组。每天监测小鼠血压，在E7.5、E13.5、E18.5分别取血检测睾酮(T0)水平(小鼠血清睾酮ELISA试剂盒，CEA458Ge，武汉优尔生科技股份有限公司)，在E18.5收集尿液检测蛋白尿水平(白蛋白ELISA试剂盒，E90-134，Bethyl Laboratories；尿肌酐比色法检测试剂盒，500701，CaymanChemical。尿蛋白含量＝尿液中白蛋白浓度/尿液中肌酐的浓度)，在E18.5处死小鼠、取组织标本并对胎儿进行称重。结果显示，与对照组(CTRL)相比，高雄组小鼠(TP)外周血T0水平稳定增高1.5倍(图2)，与人类子痫前期患者的情况类似；从E15.5开始，高雄组小鼠(TP)收缩压显著升高(图3)，并伴随严重的蛋白尿(图4)；E18.5时显示胎儿重量减低(图5)，表现为与人类子痫前期类似的症状。

对组织切片进行纤维蛋白染色分析，为了定位组织中的Fibrin，使用Fibrinogen抗体(ab34269,abcam,Cambridge,UK)进行免疫组化染色。结果如图6所示，相比于对照组(CTRL)，高雄组小鼠(TP)的肾脏、肝脏、胎盘等组织中呈现明显的纤维蛋白沉积。

对胎盘组织进行胎盘结构分析，根据HE染色结果，用红色和蓝色分别对母体血窦和胎儿血管进行标识，结果如图7所示。进一步，用Impage-Pro Plus软件对母体血窦和胎儿血管的面积进行统计分析，结果如图8-9所示。高雄组小鼠(TP)的母体血窦平均面积(图8)、和胎儿血管平均面积(图9)显著低于对照组。对孕鼠子宫血流和脐带血流进行超声检测(图10)，并统计搏动指数(图11)和阻力指数(图12)，结果显示，高雄组小鼠(TP)的搏动指数降低，表明母胎界面血流灌注减少。

1.2纤溶酶抑制因子特异性抗体在孕期高雄小鼠模型中的治疗活性评价

在1.1中所述的孕期高雄小鼠模型中，于E6.5一次注射13mg/Kg的纤溶酶抑制因子特异性抗体4H9(Molecular Innovations,Novi,MI)，作为治疗组TP+A；另一组施用4H9的对照抗体IgG(B30010M,Abmart,China)，作为对照组TP+G；随后与1.1中对照组(CTRL)及高雄组小鼠(TP)进行相同的指标监测。结果显示，高雄激素所致的妊娠高血压(图3)、蛋白尿(图4)、胎儿发育迟缓(图5)等表型可被该抗体有效逆转。纤维蛋白染色结果显示，肝脏、肾脏和胎盘中纤维沉积得以减轻(图6)。胎盘结构分析结果显示，母胎界面上母体血窦面积得到有效增加(图7-9)。超声结果显示，母血灌注增强(图10-12)。由此可见，通过抑制纤溶酶抑制因子能够挽救子痫及子痫前期母儿损伤。

实施例2.纤溶酶抑制因子抑制剂在孕期慢性炎症小鼠模型中的疗效评价

2.1孕期慢性炎症小鼠模型的建立

子痫前期患者表现为过度炎性状态，外周血中TNFα水平异常增高。基于此，为了模拟人类子痫前期患者的过度炎性表征，采用注射LPS的策略构建孕鼠模型(图13)。在E7.5-E13.5给予CD-1孕鼠10μg/Kg/天LPS(L2630，Sigma-Aldrich)；同时，对照组小鼠注射同等剂量的溶剂(生理盐水)。每天监测小鼠血压，在E7.5LPS注射2小时后采集外周血检测TNFα水平(TNFαELISA试剂盒，88-7324-22，eBioscience)，在E18.5收集尿液检测蛋白尿水平(参见实施例1.1)，在E18.5处死小鼠、取组织标本制备组织切片并对胎儿进行称重。结果显示，与对照组(CTRL)相比，LPS组小鼠(LPS)外周血TNFα水平较对照组显著增高(图14)；从E8.5开始，收缩压显著升高(图15)，并伴随严重的蛋白尿(图16)；E18.5时显示胎儿重量减低(图17)，表现出与人类子痫前期类似的症状。

根据实施例1.1中所述的方法，对组织切片进行纤维蛋白染色分析，结果如图18所示，LPS组小鼠(LPS)的肾脏、肝脏、胎盘等组织中呈现明显的纤维蛋白沉积。对胎盘组织进行胎盘结构分析，结果如图19-21所示，LPS处理组小鼠的母体血窦平均面积、总面积、和胎儿血管总面积显著低于对照组。对孕鼠子宫血流和脐带血流进行超声检测(图22)后发现，LPS处理组的搏动指数和阻力指数均降低，表明母胎界面血流灌注减少(图23-24)。

2.2纤溶酶抑制因子特异性抗体在孕期慢性炎症小鼠模型中的治疗活性评价

在2.1中所述的孕期慢性炎症小鼠模型中，于E6.5一次注射13mg/Kg的纤溶酶抑制因子特异性抗体4H9，作为治疗组LPS+A；另一组施用4H9的对照抗体IgG，作为对照组LPS+G；随后与2.1中对照组(CTRL)及LPS组小鼠(LPS)进行相同的指标监测。结果显示，LPS所致的妊娠高血压(图15)、蛋白尿(图16)、胎儿发育迟缓(图17)等表型均可被该抗体有效逆转。纤维蛋白染色结果显示，肝脏、肾脏和胎盘中纤维沉积得以减轻(图18)。胎盘结构分析及超声结果显示，母胎界面母血灌注增强(图19-24)。以上结果再次证明通过抑制纤溶酶抑制因子能够挽救子痫及子痫前期母儿损伤。

尽管本发明的具体实施方式已经得到详细的描述，但本领域技术人员将理解：根据已经公布的所有教导，可以对细节进行各种修改和变动，并且这些改变均在本发明的保护范围之内。本发明的全部分为由所附权利要求及其任何等同物给出。

Claims (9)

1.纤溶酶抑制因子的抑制剂在制备用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的药物中的用途。

2.权利要求1所述的用途，其中，所述纤溶酶抑制因子的抑制剂包括特异性结合纤溶酶抑制因子的抗体或其抗原结合片段。

3.权利要求2所述的用途，其中，所述抗原结合片段选自ScFv、Fab、Fab’、(Fab’)₂、Fv片段、二硫键连接的Fv(dsFv)。

4.权利要求1所述的用途，其中，所述纤溶酶抑制因子的抑制剂包括RNA干扰剂或反义寡核苷酸。

5.权利要求4所述的用途，其中，所述RNA干扰剂选自小干扰RNA(siRNA)、小发夹RNA(shRNA)或微小RNA(miRNA)。

6.权利要求1所述的用途，其中，所述纤溶酶抑制因子的抑制剂包括小分子化合物。

7.筛选用于预防和/或治疗子痫前期和/或子痫的候选药物的方法，其包括筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤。

8.权利要求7所述的方法，其中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤包括：

(1)在受试试剂存在的情况下，测定纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性；

(2)将步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时测定的纤溶酶抑制因子对纤溶酶的抑制活性进行比较；

其中，如果步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时的测定结果相比降低，表明所述受试试剂是纤溶酶抑制因子的抑制剂。

9.权利要求7所述的方法，其中，所述筛选纤溶酶抑制因子的抑制剂的步骤包括：

(1)在受试试剂存在的情况下，测定纤溶酶抑制因子编码基因在能够表达该编码基因的细胞中的表达水平；

(2)将步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时测定的所述编码基因的表达水平进行比较；

其中，如果步骤(1)的测定结果与不存在所述受试试剂时的测定结果相比降低，表明所述受试试剂是纤溶酶抑制因子的抑制剂。

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