CN112106856A - 一种玫瑰红茶固体饮料的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种玫瑰红茶固体饮料的制备方法,属于茶叶加工技术领域。本发明所述方法为将干玫瑰花与经萎凋后的茶鲜叶一起揉捻、接种、发酵、干燥、精制,制备玫瑰红茶,再将玫瑰红茶加入纯净水中煮沸提取,添加菊粉、聚葡萄糖制备茶固体饮料。再通过梯度提取,得到玫瑰红茶提取液,再进行喷雾干燥;最终经调配制备玫瑰红茶固体饮料,并通过高脂饮食诱导建立了肥胖SD大鼠模型,结果表明:玫瑰红茶固体饮料各个剂量组在不影响SD大鼠食欲的情况下,能够显著降低高脂饮食诱导肥胖SD大鼠的体重增重,且均能显著降低大鼠体内的总脂肪含量和脂/体比,具有良好的减肥作用,且该饮料溶解性好,口感好,红茶与玫瑰花香味协调。
Description
技术领域
本发明涉及一种玫瑰红茶固体饮料的制备方法,属于茶叶加工技术领域。
背景技术
玫瑰在植物分类学上是一种蔷薇科蔷薇属灌木,在日常生活中是蔷薇属一系列花大艳丽的栽培品种的统称,这些栽培品种亦可称做月季或蔷薇。玫瑰花的作用不仅仅能供人观赏,同时也能作为药材引用,玫瑰花它本身具有浓郁而又甜美的香味,它同时也能作为一种食物入口,功效也是层出无穷,可以疏肝解郁,活血止痛。主要治疗肝郁气滞引起的情绪低落,或者是脾气暴躁,没有胃口饮食,胸胁的疼痛,胃脘胀满,它的活血止痛多用于妇科的月经不调以及跌打损伤的疼痛。除此之外,现在的好多女性还用玫瑰花泡水喝,不仅可以养颜美容,还能改善内分泌失调和消除疲劳等神奇的功效。
云南省自然资源丰富,茶区面积广袤,茶叶产量大,制茶历史悠久。其中,普洱茶在云南省茶叶产业中的占比较大,其生产加工技术逐步发展,不断创新。红茶是指以云南大叶种晒青毛茶为原料,采取人工渥堆工艺,通过控制茶叶发酵温度,湿度和发酵时间,形成发酵料,再经过蒸,压,烘等工艺制成红茶紧压茶或不经过蒸压直接烘制而成普洱熟散茶。清代赵学敏《本草纲目拾遗》云:“普洱茶,蒸之成团,西蕃市之,最能化物。普洱味苦性刻,解油腻牛羊毒,虚人禁用。苦涩,逐痰下气,利肠通泄。”中医普遍认为普洱茶同时具有清热,消暑,解毒,消食,去油腻,利尿,延年益寿等功效。现在的现代医学对于茶的研究也有不少。
现在市场上有着多种多样的茶饮料和与玫瑰相关的很多产品,现在市场上目前最主要的玫瑰花茶有:玫瑰红茶,玫瑰绿茶,墨红红茶,玫瑰九曲红梅等的花色品种,传统的玫瑰花茶是靠人工采摘玫瑰花和茶叶后并清洗,然后将茶叶进行杀青,摊凉,揉捻,烘干,然后开始窨花,最后玫瑰花和茶叶与之拌合。这种方法制备得到的玫瑰花茶口味和营养成分都不是特别理想,因此有必开发一种新的制备玫瑰花茶的方法。
此外,超重和肥胖的发生率在世界范围内急剧增加,肥胖症给人类带来的危害已不容忽视,而目前市场上减肥药种类较少,并且存在较大的副作用,因此,寻找安全、有效、无毒的抗肥胖药物是迫切需要的。
发明内容
本发明的目的在于提供一种玫瑰红茶固体饮料制备方法,该玫瑰红茶固体饮料溶解性好,色泽均一,呈紫红色,口感好,适口性强,回甘明显,红茶与玫瑰花香味协调,具有明显的减肥作用。具体包括以下步骤:
(1)将鲜茶叶进行萎凋,按玫瑰干花与鲜茶叶质量比为1:1~1:3的比例将干玫瑰花与经萎凋后的鲜茶叶一起混合揉捻,在无菌环境中,按照0.5%的接种量在揉捻过程中喷洒菌液。
(2)利用密封袋充氧密封后进行低温长时发酵;发酵完成后在115℃条件下烘干2h,再提高温度至125℃烘干30min进行精制得到玫瑰红茶。
(3)得到的玫瑰红茶进行梯度提取,得到玫瑰红茶提取液,玫瑰红茶提取液进行喷雾干燥,喷出来的粉末用密封袋保存。
(4)将得到的玫瑰红茶速溶粉与菊粉、聚葡萄糖、赤藓糖醇复配、过筛、包装后得到玫瑰红茶固体饮料。
优选的,本发明步骤(1)中鲜茶叶进行萎凋以后水分含量为58-64%。
优选的,本发明所述揉捻的条件是:在室温20-24℃,湿度85%-90%下分次揉捻,合计90min。
优选的,本发明步骤(2)中发酵的条件为:空气温度20-30℃,叶片温度25-30℃,空气湿度95-120%,发酵时间6-10h,每2小时翻转一次。
优选的,本发明步骤(2)的菌种为威尔酵母菌Saccharomyces willianusSaccardo GIM 2.60和努比卤地无氧芽孢杆菌Anoxybacillus rupiensis CICC 20649,两种菌液的体积比为1:1-1:3。
优选的,本发明步骤(4)中喷雾干燥的条件为:料速度300mL/h、进口温度170℃。
优选的,本发明步骤(4)中玫瑰红茶速溶粉与菊粉、聚葡萄糖、赤藓糖醇的质量份数为:玫瑰红茶速溶粉0.1~1重量份、菊粉4~4.5重量份、聚葡萄糖5重量份、赤藓糖醇5~15重量份。
本发明的有益效果:
(1)本发明采用鲜茶叶与干玫瑰花利用红茶工艺制备玫瑰花红茶,并采用自制直投式菌株低温长时发酵,玫瑰花香与茶香混合风味独特,香气明显;同时采用高温长时烘干,香味持久,汤色澄清。
(2)制备的玫瑰红茶固体饮料具有良好的减肥作用,动物试验表明玫瑰红茶固体饮料各个剂量组在不影响SD大鼠食欲的情况下,能够显著降低高脂饮食诱导肥胖SD大鼠的体重增重,且均能显著降低大鼠体内的总脂肪含量和脂/体比,具有良好的减肥作用。
附图说明
图1为玫瑰红茶固体饮料制备工艺流程图。
图2不同发酵时间对总多酚含量的影响。
图3给药期间SD肥胖大鼠进食量变化(n=10,mean±SEM),与Model相比,*p<0.05,**p<0.01。
图4给药后SD肥胖大鼠体重每周变化(n=10,mean±SEM),与Model相比,*p<0.05,**p<0.01。
图5给药后SD肥胖大鼠增重的变化(n=10,mean±SEM),与Model相比,*p<0.05,**p<0.01。
图6各药物对SD肥胖大鼠脂肪垫的影响(n=10,mean±SEM),与Model相比,*p<0.05,**p<0.01。
图7各药物对SD肥胖大鼠脂/体比的影响(n=10,mean±SEM),与Model相比,*p<0.05,**p<0.01。
具体实施方式
下面结合具体实施例本发明作进一步的详细说明,但本发明的保护范围并不限于所述内容。
实施例1
一种玫瑰红茶固体饮料的制备方法,具体包括以下步骤:
(1)玫瑰红茶制备方法:鲜叶按1芽2、3叶采摘后,利用萎凋调曹进行萎凋,摊叶厚度(15-18cm之间随机选取),热风温度35℃,萎凋3-4h,确保萎凋后水分含量为58-64%即可;采用揉捻机,按玫瑰干花与鲜茶叶质量比为1:1~1:3的比例将干玫瑰花与经萎凋后的鲜茶叶一起混合揉捻,在室温20-24℃,湿度85%-90%下分次揉捻,合计90min;揉捻过程中喷洒菌液,
(2)利用密封袋充氧密封后进行低温长时发酵,其中空气温度20-30℃,叶片温度25-30℃,空气湿度95-120%,发酵时间6-10h,每2小时翻转一次;发酵完成后在115℃烘干2h,再提高温度至125℃烘干30min进行精制得到玫瑰红茶。
(3)玫瑰红茶速溶粉制备:得到的玫瑰红茶进行梯度提取,料液比为1:20、1:20、1:10合计提取3次,80℃下恒温水浴提取30min,4000rpm/min离心20min,200目过滤,得到玫瑰红茶提取液,进行喷雾干燥(进料速度300mL/h、进口温度170℃),喷出来的粉末用密封袋保存,并在室温干燥环境中进行(水分含量低于50%),避免粉末吸潮。
(4)将得到的玫瑰红茶速溶粉与菊粉、聚葡萄糖、赤藓糖醇复配、过筛、包装后得到玫瑰红茶固体饮料。
下面对玫瑰红茶发酵过程进一步详细说明:
①玫瑰花与红茶固态发酵
菌种活化及菌液制备:从-80℃中冰箱取出保藏的威尔酵母及努比卤地无氧芽孢杆菌接入液体培养基中,于55℃、180rpm/min条件下培养27-28h;将活化所得菌液于无菌甘油中保存,连续活化3代,在无菌条件下将威尔酵母及努比卤地无氧芽孢杆菌以体积比为1:1的比例混合驯化,制备菌液。
混菌发酵:在无菌环境中,按照0.5%的接种量,将制备的菌液喷洒到经过揉捻的玫瑰花红茶上,利用密封袋进行低温长时发酵,发酵过程中:空气温度20-30℃,叶片温度25-30℃,空气湿度95-120%,发酵时间6-10h,充氧密封后发酵,每2小时翻转一次;烘干温度115℃烘干2h,再提高温度至125℃烘干30min进行精制得到玫瑰红茶;密封干燥保存,以备分析。
本实施例中玫瑰花与鲜茶叶固态发酵比例1:1,2:1,1:3,1:2,3:1。
表1玫瑰花与红茶鲜茶叶固态发酵比例筛选
由表1可知:玫瑰花与红茶比例对后期固态饮料开发感官评分影响较大,以感官为指标,玫瑰花与鲜茶叶比例为2:1时,色泽均匀,呈紫红色,玫瑰香味与红茶气味协调,口感顺滑,苦涩味适中,有回甘,此时感官评分最高。实验中发现:当红茶占比提高时,溶解性较好,但口感较差;同时,玫瑰花占比提高时,苦涩味明显;根据GB 29602-2013固体饮料标准,溶解性因≤60s,综上所述:选取感官评分最高,溶解性较好的比例为玫瑰花:红茶鲜叶1:2。
作为对比,本发明还研究了玫瑰花与其他普洱茶混合制备的固体速溶茶,试验结果表明:玫瑰花与普洱熟茶1:1混合发酵后,普洱熟茶香味过浓,掩盖了玫瑰花香味;与普洱生茶1:1混合发酵后,其中苦涩味太浓。本实施例所述方法制备得到的固体速溶茶,具有玫瑰香味,口感柔和。
进一步的,本实施例以固态发酵后干粉中多酚含量为指标,研究发酵时间对发酵对玫瑰普洱茶中多酚含量的影响,以玫瑰花:红茶鲜叶质量比为1:2为例说明。
酵母菌与芽孢杆菌混菌发酵对玫瑰普洱茶中多酚含量变化的影响如图2所示,图中NTP代表未接菌发酵样品的总多酚,FTP代表接菌发酵样品的总多酚,从图中可以看出,在发酵前7h,红茶提取物的总多酚含量随着发酵时间的延长而上升,并且在发酵第7h,总多酚含量达到最高,为47.60mg/g;与未接种发酵玫瑰红茶样品相比,其总多酚含量提高了2倍。
这可能由于酵母菌与芽孢杆菌混菌发酵玫瑰花及红茶时,发生协同作用,产生较多的水解酶来促进玫瑰红茶中的多酚类物质释放与转化。其发发酵第7h后,总多酚含量降低。研究表明,利用微生物对植物进行固态发酵能够极大促进多酚类化合物的释放。也有研究报道黑茶在发酵过程中,随着发酵时间的变化,黑茶所含的儿茶素会被氧化成对苯二酚。玫瑰红茶发酵条件优化的结果表明,利用酵母菌与芽孢杆菌固态发酵,能够显著改善玫瑰红茶中总多酚的含量,发酵最佳周期为7h。
实施例2
作为本发明的另一个实施方式,下面对玫瑰红茶固态发酵物提取过程进一步详细说明:其中,玫瑰花:红茶鲜叶质量比为1:2,发酵时间为7h。
取50g发酵玫瑰红茶粉末于500mL烧杯中,研究提取料液比(①1:10提取5次,②1:15提取2次1:20提取1次,③1:20提取2次1:10提取1次,④1:30提取1次1:10提取2次,⑤1:20提取1次,1:10提取3次),提取物4000rpm/min离心20min,进行喷雾干燥;玫瑰普洱固态发酵物提取料液比筛选结果如下表所示:
表2玫瑰鲜茶叶固态发酵物提取料液比筛选
玫瑰红茶与水的提取方法 | 多酚含量(mg/g) | 得粉率(%) |
① | 23.67 | 27.8 |
② | 36.50 | 31.6 |
③ | 41.72 | 43.2 |
④ | 42.38 | 38.2 |
⑤ | 41.67 | 37.6 |
如表2可知:玫瑰红茶进行梯度提取,料液比为1:20、1:20、1:10合计提取3次,80℃下恒温水浴提取30min,200目过滤、4000rpm/min离心20min,玫瑰红茶中的多酚溶出基本完全,且得粉率较高。故选择料液比为1:20提取2次1:10提取1次合计提取3次,多酚及得粉率较高。
实施例3
本实施例将得到的玫瑰红茶速溶粉与不同比例的菊粉、聚葡萄糖、赤藓糖醇进行复配、过筛、包装后得到玫瑰红茶固体饮料。
根据感官评分筛选产品配方,结果如下表所示。
表3配方筛选
由表3可知:5种配方感官评分差距不大,但随着物料含量增加,溶解性变差,同时成本提高。添加聚葡萄糖及菊粉对玫瑰红茶固体饮料溶解性及口感影响较大,对色泽影响较小,对香气的影响可忽略不计;菊粉添加量为4.5g及4g时,色泽呈紫红色,分值为85分以上,口感较好,适口性强,回甘明显,红茶与玫瑰花香味协调,溶解性较好,在50s内溶解。
实施例4
本发明所述玫瑰红茶固体饮料具有很好的减肥功效,下面结合动物实验进行详细说明。
①实验动物与原料
实验动物:SPF级雄性SD大鼠;定购于广东省实验动物中心,体重100-120g,5-6周龄。
玫瑰红茶固体饮料:按本发明所述方法自制,原物料购买山东百龙创园生物科技股份有限公司。
Orlistat胶囊:购于中山万汉制药有限公司,国药准字H20148005。
②肥胖模型建立与动物分组
在温度为24±2℃,相对湿度为50%-60%,光照节律为12小时的实验动物中心SPF级环境下,喂养80只雄性SD大鼠。用普通饲料适应性喂养SD大鼠2周后,随机分成两组,其中10只作为空白组给予普通饲料喂养8周,剩下的70只SD大鼠作为高脂模型组,给予高脂饲料继续喂养2周后,称取每只大鼠体重,剔除肥胖抵抗的20只大鼠,剩下的50只SD大鼠继续造模,喂养高脂饲料6周。每周称量体重,直至高脂模型组平均体重大于空白组的平均体重20%,即为肥胖大鼠造模成功。
高脂饲料(HFD)配比:54%普通饲料,15%猪油,15%蔗糖,4%奶粉,3%花生,5%蛋黄粉,2%食盐,1%芝麻,0.6%磷酸氢钙,0.4%石粉。
将造模成功的50只肥胖大鼠随机分成五组(每组10只):高脂模型组(Model)、阳性对照组(Orlistat)、玫瑰红茶固体饮料高剂量(PDX-H)、玫瑰红茶固体饮料中剂量(PDX-M)、玫瑰红茶固体饮料低剂量(PDX-L);加上空白组(Control),一共6组。其中玫瑰红茶固体饮料随机选取实施例3得到的玫瑰红茶固体饮料。
③给药剂量与方法
空白组和模型组给与等量生理盐水进行灌胃;每只SD大鼠按照每100g体重给予1ml的量进行灌胃。
PDX剂量(玫瑰红茶固体饮料):在实验中的给药剂量分别为PDX-H:1200mg/kg,PDX-M:800mg/kg,PDX-L:600mg/kg。
Orlistat胶囊剂量:人体口服推荐剂量为0.36g/d,根据人体与大鼠剂量换算原则,SD大鼠的给药剂量为75mg/kg。
④肥胖指标测定
平均日进食量:每天定时称量各组SD大鼠前一天饲料剩余量与当日剩余量,相减得出每组的日进食量,计算平均日进食量。
体重:每周定时称量各组SD大鼠体重;
状态:每日定时观察SD大鼠精神状态、外表体征有无异常。
给药结束后解剖SD大鼠,腹主动脉取血,取心、肝、脾、肾、肾周脂肪、附睾脂肪、皮下脂肪和棕色脂肪,分别称取重量,计算脂/体比、脂肪垫和脏器指数。
SD大鼠进食量的变化
给药期间,记录了各组SD大鼠每天和每周平均进食量的情况,结果分别可见表4和图3。
表4给药期间SD肥胖大鼠进食量变化(n=10,mean±SEM)
图3中柱状图(a):给药期间平均进食量;折线图(b):给药期间每周进食量。由表4和图3得知,与Control组和Model组,Orlistat组和PDX(玫瑰红茶固体饮料)高、中、低剂量组的每日平均进食量均无显著性差异。结果表明,各组大鼠的食欲并无受到明显的影响,即玫瑰红茶固体饮料无食欲抑制作用。
SD大鼠每周体重的变化
由表5可知,造模完成后,测得Control组的平均体重为435.76g,给予高脂饲料的大鼠体重均超过576.65g,大于20%,表明造模成功。在给药第8周时,Orlistat和玫瑰红茶固体饮料给药组均显著低于Model组,表明各给药组均能显著降低高脂饮食诱导的体重增重。由图4可知,相比于Control组和Model组,Orlistat和玫瑰红茶固体饮料给药组的体重增长趋势均有所减缓。
表5给药前后SD肥胖大鼠体重的变化(n=10,mean±SEM)
备注:与Model相比,*p<0.05,**p<0.01
SD大鼠脂肪垫与脂/体比的变化
各组SD大鼠的脂肪重量,总脂肪量(脂肪垫)和脂/体比,结果见表6、图6和图7。
表6各药物对SD肥胖大鼠脂肪的影响(n=10,mean±SEM)
备注:与Model相比,*p<0.05,**p<0.01
由表6可知,Model组的脂肪垫和脂/体比,与Control组相比,分别高出了56.85%和48.69%;Orlistat组的脂肪垫和脂/体比,相比于Model组,分别减少了29.18%和16.83%;PDX(玫瑰红茶固体饮料)高、中、低组的脂肪垫含量分别减少了22.94%、12.54%、21.43%,脂/体比分别减少了29.10%、11.49%、15.48%,表明Orlistat和PDX(玫瑰红茶固体饮料)高、中、低剂量给药组均显著降低了高脂饮食导致的高脂肪含量和脂/体比。同时,与Model组相比,PDX(玫瑰红茶固体饮料)高、中、低剂量均增加棕色脂肪的含量,且高,中剂量呈显著性差异。
Claims (7)
1.一种玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于,具体包括以下步骤:
(1)将鲜茶叶进行萎凋,按玫瑰干花与鲜茶叶质量比为1:1~1:3的比例将干玫瑰花与经萎凋后的鲜茶叶一起混合揉捻,在无菌环境中,按照0.5%的接种量在揉捻过程中喷洒菌液;
(2)利用密封袋充氧密封后进行低温长时发酵;发酵完成后在115℃条件下烘干2h,再提高温度至125℃烘干30min进行精制得到玫瑰红茶;
(3)得到的玫瑰红茶进行梯度提取,得到玫瑰红茶提取液,玫瑰红茶提取液进行喷雾干燥,喷出来的粉末用密封袋保存;
(4)将得到的玫瑰红茶速溶粉与菊粉、聚葡萄糖、赤藓糖醇复配、过筛、包装后得到玫瑰红茶固体饮料。
2.根据权利要求1所述玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于:步骤(1)中鲜茶叶进行萎凋以后水分含量为58-64%。
3.根据权利要求1所述玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于:揉捻的条件是:在室温20-24℃,湿度85%-90%下分次揉捻,合计90min。
4.根据权利要求1所述玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于:揉捻的条件是:步骤(2)中发酵的条件为:空气温度20-30℃,叶片温度25-30℃,空气湿度95-120%,发酵时间6-10h,每2小时翻转一次。
5.根据权利要求1所述玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于:步骤(2)的菌种为威尔酵母菌Saccharomyces willianus Saccardo GIM 2.60和努比卤地无氧芽孢杆菌Anoxybacillus rupiensis CICC 20649,两种菌液的体积比为1:1-1:3。
6.根据权利要求1所述玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于:步骤(4)中喷雾干燥的条件为:料速度300mL/h、进口温度170℃。
7.根据权利要求1所述玫瑰红茶固体饮料的制备方法,其特征在于:步骤(4)中玫瑰红茶速溶粉与菊粉、聚葡萄糖、赤藓糖醇的质量份数为:玫瑰红茶速溶粉0.1~1重量份、菊粉4~4.5重量份、聚葡萄糖5重量份、赤藓糖醇5~15重量份。
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CN113575946A (zh) * | 2021-07-26 | 2021-11-02 | 仙乐健康科技股份有限公司 | 一种抑制糖分和脂肪吸收的组合物 |
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Legal Events
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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WW01 | Invention patent application withdrawn after publication | ||
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Application publication date: 20201222 |