CN111920048A - 一种含有玫瑰发酵液的胶囊及其制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种含有玫瑰发酵液的胶囊，其中玫瑰发酵液富含多糖、黄酮和氨基酸，具有调节肠道微生态的作用。且玫瑰发酵液可以促进益生菌(如短双歧杆菌、唾液乳杆菌)生长，而对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌等致病菌有明显的抑制作用。因此，玫瑰对肠道菌群具益生元作用。通过发酵得到的玫瑰发酵液比玫瑰水提物含有更多的黄酮、多糖、氨基酸等活性物，具有抗炎、美白、保湿等养肤功效。本发明还向该产品中加入菊粉和低聚果糖对玫瑰发酵液进行复配，这一配料方式能够统筹各原料优点，放大该产品对肠道菌群以及健康的正相作用，同时可以减轻不良反应。

Description

一种含有玫瑰发酵液的胶囊及其制备方法
技术领域
本发明涉及轻化工业技术领域，具体涉及一种含有玫瑰发酵液的胶囊，以及该胶囊的制备方法。
背景技术
上世纪60年代以来，随着对肠道微生物学的深入研究，表明肠道菌群对机体健康的确有莫大影响，与人体免疫、衰老、疾病发生等都有着密切关系。按对人体健康的影响可以分为有益、有害、无害三群，在正常情况下这三群细菌处于相对平衡的状态，若人体有益菌如双歧杆菌、乳酸菌等处于优势，则对净化肠道、改善营养，维持人体健康起到重要作用。
益生元是指能选择性地刺激肠道内有益菌生长和繁殖，增强有益菌新陈代谢，使人体向健康的方向发展。近十年来，国内外学者对益生元开展了大量研究，发现益生元具有改善肠道内生态环境，增强有益菌群数量，促进矿物质吸收，调节脂肪代谢功能，增强自身免疫系统，降低癌症及心血管等突发病症的作用。
随着科学技术的发展，人们的生活水平提高，人们对健康的追求越来越强烈，人们意识到环境污染，以及抗生素滥用等使肠道菌群平衡被破坏，而益生元可以调节肠道菌群，使其恢复平衡，普通消费者对于益生元的认知也越来越深，关注度和认可度也在提高，这使得近年来对益生元的开发、生产需求逐渐提高并且要求多样化。并且益生元的应用人群覆盖很广，从婴儿、儿童、青年到老年人都有涉及，所以潜在消费者非常多。然而如今食品上益生元产品数量较少，还有很大的开发需求，并且市面上的产品成分单一，添加量不高，效果不明显，而且有些消费者出现食用后腹泻等不良反应。因此需要针对上述问题对益生元产品进行改进。
鉴于此，特提出本发明。
发明内容
本发明的第一目的在于提供一种含有玫瑰发酵液的胶囊。
本发明的第二目的在于提供上述胶囊的制备方法。
为实现上述目的，本发明的技术方案如下：
本发明涉及一种含有玫瑰发酵液的胶囊，包括以下重量份的原料：玫瑰发酵液70～85份、菊粉3～10份、低聚果糖3～7份，麦芽糊精8～15份。
本发明还涉及所述胶囊的制备方法，包括以下步骤：
(1)配料：将所述玫瑰发酵液、菊粉、低聚果糖和麦芽糊精投入配料罐中，然后加入纯水；
(2)搅拌溶解：控制所述配料罐内温度为45～55℃，搅拌至各组分混合均匀；
(3)灭菌和过滤：将所述配料罐升温至75～90℃，持续搅拌保持温度灭菌30～40min，过滤后得到浓缩液；
优选地，采用5μm滤芯进行杂质过滤。
(4)冷冻干燥：将所述浓缩液冷冻干燥后，进行胶囊填充，得到所述含有玫瑰发酵液的胶囊。
优选地，所述冷冻干燥包括预冻和冻干，所述预冻是-60℃冷冻6h，然后进行冻干，所述冻干过程包括：-60℃干燥10h，-40℃干燥5h，-20℃干燥5h，0℃干燥5h，20℃干燥10h，40℃干燥5h。
本发明还涉及所述玫瑰发酵液的制备方法，包括以下步骤：
1)玫瑰发酵基质制备：将干玫瑰花蕾粉碎后过筛，并加水配成混合液，灭菌后得到玫瑰发酵基质。
优选地，所述筛网的目数为100～200目。
优选地，所述混合液的质量浓度为10％～15％。
优选地，所述灭菌为将所述混合液在121℃下灭菌15min，或对其在600MPa，25℃下进行超高压灭菌。
2)菌种活化：采用平板划线法将菌种分别接种到固体活化培养基表面，于37℃恒温倒置培养15～20h，得到活化菌株；
优选地，所述菌种选自双歧杆菌、芽孢杆菌、乳杆菌、酿酒酵母中的至少一种。
优选地，所述菌种选自青春双歧杆菌CICC 6175、纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271、酿酒酵母菌CICC 1252中的至少一种。
优选地，所述活化培养基为MRS培养基，包括牛肉膏5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖20g/L，酵母粉4g/L，乙酸钠5g/L，硫酸镁0.2g/L，柠檬酸三铵2g/L，磷酸氢二钾2g/L，硫酸锰0.05g/L，吐温-80 1g/L，琼脂20g/L，pH值6.2±0.2。
优选地，所述活化培养基还包括海藻多糖，所述海藻多糖的加入量为3g/L。
3)混合发酵：将所述活化菌株扩大培养后进行混合得到混合菌液，将所述混合菌液以1.5％～2.5％的质量百分含量加入玫瑰发酵基质中，于40～45℃摇床发酵培养45～50h，得到初始发酵液；
优选地，所述摇床转速为100～150rpm。
优选地，所述菌种为纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252的混合菌种，扩大培养后的所述纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252的种子液质量比例为1:(2～5):(2～5)。
4)发酵后处理：对所述初始发酵液依次进行灭菌、菌体破碎和过滤后，得到所述玫瑰发酵液。
优选地，所述灭菌为将所述初始发酵液在121℃下灭菌15min，或对其在600MPa，25℃下进行超高压灭菌。
优选地，所述过滤选自离心分离、超滤膜过滤、微滤膜过滤、反渗透过滤中的一种，或者在灭菌后破碎菌体无需进行过滤。
优选地，采用高压匀浆机破碎菌体，压力设定为100MPa，匀浆3～5次，出口温度为25℃。
本发明的有益效果：
本发明提供了一种含有玫瑰发酵液的胶囊，其中玫瑰发酵液富含多糖、黄酮和氨基酸，具有调节肠道微生态的作用。且玫瑰发酵液可以促进益生菌(如短双歧杆菌、唾液乳杆菌)生长，而对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌等致病菌有明显的抑制作用。因此，玫瑰对肠道菌群具益生元作用。通过发酵得到的玫瑰发酵液比玫瑰水提物含有更多的黄酮、多糖、氨基酸等活性物，具有抗炎、美白、保湿等养肤功效。
本发明还向该产品中加入菊粉和低聚果糖对玫瑰发酵液进行复配，这一配料方式能够统筹各原料优点，放大该产品对肠道菌群以及健康的正相作用，同时可以减轻不良反应。
此外本发明将该产品制成胶囊，在隔离空气的同时可以防潮、避光，提高产品稳定性。而且与片剂和丸剂相比，胶囊服用后释药更迅速，药物生物利用度高；与颗粒剂相比，可减少辅料的用量，节约成本，且具有服用和携带方便的优点。
附图说明
图1为本发明玫瑰发酵液的制备流程图。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将对本发明的技术方案进行详细的描述。显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动的前提下所得到的所有其它实施方式，都属于本发明所保护的范围。
本发明实施例涉及一种含有玫瑰发酵液的胶囊，包括以下重量份的原料：玫瑰发酵液70～85份、菊粉3～10份、低聚果糖3～7份，麦芽糊精8～15份。
其中，玫瑰花含有多种营养成分。文献报道玫瑰花能够抑制肠道有害菌生长，促进有益菌的生长，因此玫瑰花具有作为益生元的潜力。由于玫瑰花的许多活性成分存在于细胞内，如采用发酵菌对玫瑰花进行发酵，有利于玫瑰细胞的破裂，从而释放其有效成分。并且对比传统玫瑰水提取方法，玫瑰发酵也可以得到更多的活性物质，例如多糖、黄酮；与传统有机试剂提取相比，发酵提取更加环保和安全。此外，发酵还能使玫瑰花内的活性物质大分子降解为小分子，利于功效成分的吸收。因此本发明采用玫瑰发酵液来制备肠道益生元胶囊。
菊粉是植物中储备性多糖，主要来源于植物。菊粉分子约由31个β-D-呋喃果糖和1～2个吡喃菊糖残基聚合而成，果糖残基之间能通过β-2，1-键连接。是由D-果糖经β(1→2)糖苷键链接而成的线性直链多糖。摄入菊粉可有效降低血清总胆固醇(TC)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)，提高高密度脂蛋白/低密度脂蛋白比率，改善血脂状况，还能够降低血糖和促进矿物质的吸收。菊粉还是一种天然的水溶性膳食纤维，几乎不能被胃酸水解和消化，只有在结肠被有益微生物利用，从而改善肠道环境，增强胃肠道蠕动，防止便秘。
低聚果糖又称寡果糖或蔗糖三糖族低聚糖。包括蔗糖分子以β-(1→2)糖苷键与1-3个果糖分子结合成的蔗果三糖，蔗果四糖和蔗果五糖，属于果糖和葡萄糖构成的直链杂低聚糖。低聚果糖通过选择性促进乳酸杆菌、双歧杆菌和链球菌等有益菌在消化道中的定植，抑制有害细菌生长，改善肠道菌群，间接达到对动物体的营养及促生长效应。促进B族维生素及叶酸的形成，能维护神经系统的正常功能，促进消化及新陈代谢，减少肝脏毒素，增强人体免疫力。
麦芽糊精也称水溶性糊精或酶法糊精。它是以各类淀粉作原料，经酶法工艺低程度控制水解转化，提纯，干燥而成。在胶囊中主要作为粘合剂和填充剂。
如今市面上的益生元产品很少，并且成分单一，效果不明显。本胶囊采取复配的方法，添加了菊粉、低聚果糖和玫瑰发酵液。可以更加全面地调节肠道菌群，维持肠道和身体健康。
本发明实施例还涉及该胶囊的制备方法，包括以下步骤：
(1)配料：将玫瑰发酵液、菊粉、低聚果糖和麦芽糊精按重量比投入配料罐中，然后加入纯水；
在本发明的一个实施例中，玫瑰发酵液、菊粉、低聚果糖和麦芽糊精的质量和与纯水的体积比为(84～117kg):(8～12L)。
(2)搅拌溶解：控制配料罐内温度为45～55℃，搅拌至各组分混合均匀；
(3)灭菌和过滤：将配料罐升温至75～90℃，持续搅拌保持温度灭菌30～40min，过滤后得到浓缩液，优选采用5μm滤芯进行杂质过滤。
(4)冷冻干燥：将浓缩液冷冻干燥后，进行胶囊填充，得到含有玫瑰发酵液的胶囊。
在本发明的一个实施例中，冷冻干燥包括预冻和冻干，所述预冻是-60℃冷冻6h，然后进行冻干，所述冻干过程包括：-60℃干燥10h，-40℃干燥5h，-20℃干燥5h，0℃干燥5h，20℃干燥10h，40℃干燥5h。
本发明还涉及玫瑰发酵液的制备方法，其制备流程图如图1所示，包括以下步骤：
1)玫瑰发酵基质制备：将干玫瑰花蕾粉碎后过筛，并加水配成混合液，灭菌后得到玫瑰发酵基质。
在本发明的一个实施例中，筛网的目数为100～200目。混合液的质量浓度为10％～15％。
在本发明的一个实施例中，灭菌为将混合液在121℃下灭菌15min，或对混合液进行软包装后，用水作为介质，在600MPa，25℃下进行超高压灭菌。超高压灭菌的温度较低，可保护多酚、黄酮类物质，但超高压灭菌成本高，可根据实际情况选择灭菌方式。
2)菌种活化：采用平板划线法将菌种分别接种到固体活化培养基表面，于37℃恒温倒置培养15～20h，得到活化菌株。菌种活化的目的是使保藏菌种的活性得以恢复，同时恢复其优良的生产性能。
在本发明的一个实施例中，菌种选自双歧杆菌、芽孢杆菌、乳杆菌、酿酒酵母中的至少一种。
进一步地，菌种选自青春双歧杆菌CICC 6175、纳豆芽孢杆菌CICC10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271、酿酒酵母菌CICC 1252中的至少一种。
优选地，菌种为纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252的混合菌种。
在本发明的一个实施例中，用于菌种活化的活化培养基为MRS培养基，包括牛肉膏5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖20g/L，酵母粉4g/L，乙酸钠5g/L，硫酸镁0.2g/L，柠檬酸三铵2g/L，磷酸氢二钾2g/L，硫酸锰0.05g/L，吐温-80 1g/L，琼脂20g/L，pH值6.2±0.2。
进一步地，活化培养基还包括海藻多糖，所述海藻多糖可作为碳源加入，有利于菌株活化，对于菌落直径、形态、菌体体积以及长出的菌落时间都有正向效果。优选海藻多糖的加入量为3g/L。
进一步地，菌种活化方式为：用灭菌竹签蘸取少量的菌种，按照平板划线法在固体活化培养基上划线，于37℃的恒温培养箱中倒置培养15～20h，得到活化菌株。由于双歧杆菌和乳杆菌需要无氧条件活化，芽孢杆菌和酿酒酵母需要有氧活化，可以将双歧杆菌、乳杆菌、芽孢杆菌和酿酒酵母分别接种于不同的固体活化培养基，然后在适宜的条件下培养，待混合发酵步骤将上述活化菌株加入玫瑰发酵基质中即可。
3)混合发酵：将活化菌株扩大培养后，按照比例混合得到混合菌液，将所述混合菌液以1.5％～2.5％的质量百分含量加入玫瑰发酵基质中，于40～45℃摇床发酵培养45～50h，得到初始发酵液。
在本发明的一个实施例中，采用MRS液体培养基进行扩大培养，包括牛肉膏5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖20g/L，酵母粉4g/L，乙酸钠5g/L，硫酸镁0.2g/L，柠檬酸三铵2g/L，磷酸氢二钾2g/L，硫酸锰0.05g/L，吐温-80 1g/L，pH值6.2±0.2。不同菌种的扩大培养方法如下：
[1]对于酿酒酵母菌CICC 1252，固体培养基活化后，用接种针或接种环从固体培养基菌落中挑取菌落，放入装有液体培养基的三角瓶中，轻微摆动接种针，使菌体分散于液体培养基内，37℃，120rpm培养，直到菌种数量达到1*10^9cfu/mL时结束，得到酿酒酵母种子液。
[2]对于纳豆芽孢杆菌CICC 10262，固体培养基活化后，用接种针或接种环从固体培养基菌落中挑取菌落，放入装有液体培养基的三角瓶中，轻微摆动接种针，使菌体分散于液体培养基内，37℃，120rpm培养，直到菌种数量达到1*10^9cfu/mL时结束，得到纳豆芽孢杆菌种子液。
[3]对于青春双歧杆菌CICC 6175，由于在无氧条件进行活化，需要对其进行耐氧训练。具体为固体培养基活化后，用接种针或接种环从固体培养基菌落中挑取菌落，放入装有液体培养基的三角瓶中，静置培养24h；吸取上步骤菌液再接种到装有液体培养基的三角瓶中，接种量为5％，37℃，20rpm培养12h；吸取上步骤菌液再接种到装有液体培养基的三角瓶中，接种量为10％，37℃，60rpm培养12h；吸取上步骤菌液再接种到装有液体培养基的三角瓶中，接种量为15％，37℃，120rpm培养，直到菌种数量达到1*10^9cfu/mL时结束，得到青春双歧杆菌种子液；
[4]对于保加利亚乳杆菌CICC 20271，由于在无氧条件进行活化，需要对其进行耐氧训练。具体为固体培养基活化后，用接种针或接种环从固体培养基菌落中挑取菌落，放入装有液体培养基的三角瓶中，静置培养24h；吸取上步骤菌液再接种到装有液体培养基的三角瓶中，接种量为5％，37℃，20rpm培养12h；吸取上步骤菌液再接种到装有液体培养基的三角瓶中，接种量为10％，37℃，60rpm培养12h；吸取上步骤菌液再接种到装有液体培养基的三角瓶中，接种量为15％，37℃，120rpm培养，直到菌种数量达到1*10^9cfu/mL时结束，得到保加利亚乳杆菌种子液。
扩大培养后的纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252种子液的质量比例为1:(2～5):(2～5)。申请人研究发现，当发酵菌种满足上述配比时，得到的玫瑰发酵液中含有较多的黄酮和糖类物质。
在步骤3)中，采用摇床培养可以使菌种与发酵底物充分接触，优选的摇床转速为100～150rpm。
4)发酵后处理：对初始发酵液依次进行灭菌、菌体破碎和过滤后，得到玫瑰发酵液。
与步骤1)类似，灭菌为将初始发酵液在121℃下灭菌15min，或对其在600MPa，25℃下进行超高压灭菌。
过滤选自离心分离、超滤膜过滤、微滤膜过滤、反渗透过滤中的一种，或者在灭菌后破碎菌体无需进行过滤，目的是除去悬浮物，防止沉降。
采用高压匀浆机破碎菌体，目的是破碎发酵菌及部分玫瑰细胞，使胞内物质溶出，玫瑰发酵液的成分更丰富。高压匀浆压力设定为100MPa，匀浆3～5次，出口温度为25℃。也可采用超声破碎菌体。
制备例玫瑰发酵液的制备
制备例1
1)玫瑰发酵基质制备：将干玫瑰花蕾粉碎后过100目筛，并加水配成质量浓度为10％的混合液，121℃下灭菌15min，得到玫瑰发酵基质。
2)菌种活化：用灭菌竹签蘸取纳豆芽孢杆菌CICC 10262，按照平板划线法在固体活化培养基上划线，于37℃的恒温培养箱中倒置有氧培养15～20h，得到活化纳豆芽孢杆菌CICC 10262菌株。
用灭菌竹签蘸取保加利亚乳杆菌CICC 20271，按照平板划线法在固体活化培养基上划线，于37℃的恒温培养箱中倒置无氧培养15～20h，得到活化保加利亚乳杆菌CICC20271菌株。
用灭菌竹签蘸取酿酒酵母菌CICC 1252，按照平板划线法在固体活化培养基上划线，于37℃的恒温培养箱中倒置有氧培养15～20h，得到活化酿酒酵母菌CICC 1252菌株。
活化培养基为MRS培养基，包括牛肉膏5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖20g/L，酵母粉4g/L，乙酸钠5g/L，硫酸镁0.2g/L，柠檬酸三铵2g/L，磷酸氢二钾2g/L，硫酸锰0.05g/L，吐温-80 1g/L，琼脂20g/L，pH值6.2±0.2。
3)混合发酵：将活化菌株分别扩大培养，以纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252的种子液质量比例为1:3:3混合，把混合菌液按照2％的质量百分含量加入玫瑰发酵基质中，于40℃，120rpm摇床发酵培养48h，得到初始发酵液。
4)发酵后处理：对初始发酵液在121℃下灭菌15min后，使用High PressureHomogenizer高压匀浆机进行菌体破碎，压力设定为100MPa，匀浆3次，出口温度为25℃，然后离心分离取上清液，得到玫瑰发酵液。
制备例2～8改变某一项实验参数，其它操作步骤和测试过程同制备例1，具体设置方式见表1。制备例中的青春双歧杆菌CICC 6175、纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271、酿酒酵母菌CICC 1252均购自中国工业微生物菌种保藏管理中心。
对比例1中的玫瑰提取液的提取方法为：将干玫瑰花蕾粉碎后过100目筛，并加水配成质量浓度为10％的混合液，121℃下灭菌15min，然后在40℃下保温48h，再在121℃下灭菌15min，离心分离取上清液，即得到清水提取液。
对比例2中的玫瑰发酵液的制备方法为：将步骤2)中的活化培养基替换为沙氏葡萄糖液体培养基。
表1
Figure BDA0002639993240000101
Figure BDA0002639993240000111
营养成分检测
对于制备例1至12制备得到的玫瑰发酵液，以及对比例1和2制备得到的玫瑰提取液，采用分光光度法测定总黄酮含量；参照GB/T 5009.7-2008测定总糖含量；参照GB/T5009.124-2003测定氨基酸含量。测试结果见表2和表3。
表2玫瑰发酵液各成分含量
Figure BDA0002639993240000112
Figure BDA0002639993240000121
表3玫瑰发酵液氨基酸含量
Figure BDA0002639993240000122
上述实验结果表明，比较制备例1和对比例1可知，与传统玫瑰水提物相比，本发明的玫瑰发酵液含有更多的活性物质，例如多糖、黄酮和氨基酸。
比较制备例1～6以及制备例11和12可知，采用纳豆芽孢杆菌CICC10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252作为发酵菌种，且三者质量比例满足1:(2～5):(2～5)时，玫瑰发酵液中的活性物质含量最高。
比较制备例1和7～9可知，如果在此基础上向活化培养基和扩大培养基中均加入海藻多糖，能够进一步提升活性物质含量。但将海藻多糖替换为葡萄糖或米粉则不具有相应效果，原因可能是海藻多糖刺激菌种表达了某些基因，使其分解、合成活性物质的能力提升，并且使菌生长状态更加旺盛，活力更强。
比较制备例1与10可知，混合发酵过程中，摇床上培养比静置培养有更多活性物质，原因可能是摇床使发酵菌与玫瑰充分接触，使活性成分更易产生和流出。
比较制备例1与11和12可知，黄酮含量有所升高，原因可能是超高压灭菌可以保护黄酮，减少其被氧化。
比较制备例1和对比例2可知，采用固体活化培养基与液体活化培养基相比，能获得更多的活性物质。并且与液体培养基相比，固体培养基单位体积的质量更轻，而且对生产过程中所需设备要求较低。大量培育液体菌种需要在大型液体发酵罐中进行，对场地、能源(蒸汽)的需求较高；而使用固体培养基培育菌种，仅需灭菌设备即可，在条件较低的情况下即可生产。
抑菌实验
(1)将金黄色葡萄球菌ATCC6538接种于营养肉汤培养基，短双歧杆菌ATCC15700和唾液乳杆菌ATCC11741培养于TPY培养基，大肠杆菌ATCC25312培养于LB培养基。
(2)每种培养液各取10mL，各2份，分别加入0.1mL制备例1的玫瑰发酵液和0.1mL去离子水作为空白对照。
(3)将金黄色葡萄球菌、大肠杆菌置于37℃下进行24h需氧培养，将短双歧杆菌和唾液乳杆菌置于37℃下进行48h厌氧培养。
(4)用稀释平板法测定培养前后培养液中各种菌的数目，测试结果如表4所示。
表4
Figure BDA0002639993240000131
Figure BDA0002639993240000141
以3.1*10^6为例，含义为3.1×106。
表4数据可以看出，加入玫瑰发酵液培养，金黄色葡萄球菌、大肠杆菌这类有害菌数量比不加入玫瑰发酵液的空白组降低很多，但短双歧杆菌、唾液乳杆菌这类有益菌比不加入玫瑰发酵液的空白组增加了。说明本发明的玫瑰提取液可以作用于肠道微生物，特别是能够选择性抑制大肠杆菌和金黄色葡萄球菌等有害菌的生长，同时促进短双歧杆菌、唾液乳杆菌这类有益菌的生长，从而调节肠道菌群，使其达到健康平衡的状态。将其用于胶囊中，能够调节肠道微生态，达到促进人体健康的效果。
实施例胶囊的制备
实施例1
(1)配料：将玫瑰发酵液80份、菊粉5份、低聚果糖5份和麦芽糊精10份按重量比投入配料罐中，然后加入纯水；
其中，菊粉购自西安浩天生物工程有限公司，低聚果糖购自广州鸿易食品添加剂有限公司，麦芽糊精购自西安大丰收生物科技有限公司。上述玫瑰发酵液、菊粉、低聚果糖和麦芽糊精的质量和与纯水的体积比为(84～117kg):(8～12L)。
(2)搅拌溶解：控制配料罐内温度为50℃，搅拌至各组分混合均匀；
(3)灭菌和过滤：将配料罐升温至80℃，持续搅拌保持温度灭菌30min，采用5μm滤芯过滤后得到浓缩液；
(4)冷冻干燥：将浓缩液在-60℃预冻6h后，然后进行冻干，冻干过程包括：-60℃干燥10h，-40℃干燥5h，-20℃干燥5h，0℃干燥5h，20℃干燥10h，40℃干燥5h；
(5)将冻干物进行胶囊填充，得到含有玫瑰发酵液的胶囊。
实施例2～4和对比例3～4改变某一项实验参数，其它操作步骤和测试过程同实施例1，具体设置方式见表5。
表5
Figure BDA0002639993240000151
皮肤含水量测试
选取实验室里7名志愿者，年龄范围18～40岁，其中6名志愿者分别服用了制备例1～4和对比例3～4制备的胶囊，服用量为每天1颗。第7名志愿者不服用胶囊。测试期间只能使用基础类护肤品，不能使用任何功效类护肤品，同时注意防晒。
选取脸颊两侧作为测试部位，在实验第0，14，30天采用皮肤水分测试仪水分测试探头Corneometer CM825测试其头皮角质层含水量，测试三次取平均值，结果如表6所示；在实验第0，14，30天使用皮肤颜色测试探头Colorimeter CL400测试皮肤亮度变化；测试三次取平均值，结果如表7所示。
表6皮肤角质层含水量对比
Figure BDA0002639993240000152
表7皮肤亮度对比
L值 实施例1 实施例2 实施例3 实施例4 对比例3 对比例4 空白
0d 56 52 57 59 54 58 56
14d 56 53 58 59 54 58 56
28d 57 54 60 60 54 59 56
结果如表6和7所示，可以看出与使用前以及空白组相比，本发明实施例1～4使用28天后，在角质层含水量以及皮肤亮度方面均有一定变化。具体地，皮肤亮度L值越大，颜色越偏向白色，L值越小则越偏向黑色。实施例1～4的L值总体趋势是增大的，能够在一定程度上反映产品美白的效果。同时角质层含水量越高，说明产品提高皮肤保湿能力越好。
将实施例2与对比例3，对比例4比较可以发现，在其他原料不变的情况下添加了玫瑰发酵液能对受试者的皮肤水润度和白度带来正向影响，如果把玫瑰发酵液换成玫瑰提取液，其水润度和白度变化都没有玫瑰发酵液那么明显。说明玫瑰发酵液能够对皮肤的水润与美白有很好的作用。
以上所述，仅为本发明的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，可轻易想到变化或替换，都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此，本发明的保护范围应以所述权利要求的保护范围为准。

Claims (10)

1.一种含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，包括以下重量份的原料：玫瑰发酵液70～85份、菊粉3～10份、低聚果糖3～7份，麦芽糊精8～15份。
2.根据权利要求1所述的含有玫瑰发酵液的胶囊的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1)配料：将所述玫瑰发酵液、菊粉、低聚果糖和麦芽糊精投入配料罐中，然后加入纯水；
(2)搅拌溶解：控制所述配料罐内温度为45～55℃，搅拌至各组分混合均匀；
(3)灭菌和过滤：将所述配料罐升温至75～90℃，持续搅拌保持温度灭菌30～40min，过滤后得到浓缩液；
(4)冷冻干燥：将所述浓缩液冷冻干燥后，进行胶囊填充，得到所述含有玫瑰发酵液的胶囊。
3.根据权利要求1所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，所述玫瑰发酵液的制备方法包括以下步骤：
1)玫瑰发酵基质制备：将干玫瑰花蕾粉碎后过筛，并加水配成混合液，灭菌后得到玫瑰发酵基质；
2)菌种活化：采用平板划线法将菌种分别接种到固体活化培养基表面，于37℃恒温倒置培养15～20h，得到活化菌株；
3)混合发酵：将所述活化菌株扩大培养后进行混合得到混合菌液，将所述混合菌液以1.5％～2.5％的质量百分含量加入玫瑰发酵基质中，于40～45℃摇床发酵培养45～50h，得到初始发酵液；
4)发酵后处理：对所述初始发酵液依次进行灭菌、菌体破碎和过滤后，得到所述玫瑰发酵液。
4.根据权利要求3所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤1)中，所述混合液的质量浓度为10％～15％。
5.根据权利要求3所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤2)中，所述菌种选自青春双歧杆菌CICC 6175、纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271、酿酒酵母菌CICC 1252中的至少一种。
6.根据权利要求5所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤2)中，所述菌种为纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252的混合菌种，步骤3)中扩大培养后的所述纳豆芽孢杆菌CICC 10262、保加利亚乳杆菌CICC 20271和酿酒酵母菌CICC 1252种子液的质量比例为1:(2～5):(2～5)。
7.根据权利要求3所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤2)中，所述活化培养基为MRS培养基，包括牛肉膏5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖20g/L，酵母粉4g/L，乙酸钠5g/L，硫酸镁0.2g/L，柠檬酸三铵2g/L，磷酸氢二钾2g/L，硫酸锰0.05g/L，吐温-80 1g/L，琼脂20g/L，pH值6.2±0.2。
8.根据权利要求3所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤2)中，所述活化培养基还包括海藻多糖，所述海藻多糖的加入量为3g/L。
9.根据权利要求3所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤3)中，所述摇床转速为100～150rpm。
10.根据权利要求3所述的含有玫瑰发酵液的胶囊，其特征在于，步骤1)和4)中，所述灭菌为将所述初始发酵液在121℃下灭菌15min，或对其在600MPa，25℃下进行超高压灭菌；
步骤4)中，采用高压匀浆机破碎菌体，压力设定为100MPa，匀浆3～5次，出口温度为25℃。
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