CN111778213B - 诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞的方法及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞的方法及其应用，具体地，本发明提供了一种诱导人类分化细胞(Differentiated Cell)分化为诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)的方法，包括步骤：(a)在第一培养条件下，在培养体系中培养分化细胞，从而获得诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)；其中，所述培养体系包括EGF、A83‑01和CHIR99021。本发明的功能性的诱导多潜能内胚层干细胞具有非常高的分化率和纯度。

Description

诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞的方法及其应用
技术领域
本发明涉及生物技术和细胞治疗领域。具体地，本发明涉及诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞的方法及其应用。
背景技术
细胞退分化(De-differentiation)特指分化细胞(differentiated cells)在某些外界条件刺激下失去其特有功能并返回上级发育阶段(earlier developmentalstages)，是自然界中普遍存在的现象。退分化获得的前体/干细胞对组织损伤修复等有着重要意义。
hEnSCs在体外能够无限扩增并分化成功能性内胚层衍生细胞，但其生长依赖于小鼠成纤维细胞作为滋养层及高浓度的matrigel，限制了其临床应用。
原代肝实质细胞的退分化现象在其分离培养过程特别明显，许多功能性蛋白基因尤其是参与异物质代谢的一相酶P450家族，在培养的早期迅速丢失。关于人原代肝实质细胞的退分化机制目前尚未明了，然而由于人原代肝实质细胞不易获得、在体外不能长期培养、难以进行遗传操作，因此不适合用于退分化机制的研究。
因此，本领域迫切需要开发一种诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞(smallmolecule induced Endoderm Stem Cells，smEnSCs)的方法。
发明内容
本发明公开了一种诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞(small moleculeinduced Endoderm Stem Cells，smEnSCs)的方法。
本发明公开了一种利用小分子化合物及细胞因子组合诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞(small molecule induced Endoderm Stem Cells，smEnSCs)的方法
本发明还公开了，利用小分子首次在体外诱导分化细胞的退分化，并建立诱导多潜能内胚层干细胞系(smEnSCs)
本发明还公开了，通过优化培养方法，smEnSCs能够不依赖于滋养层细胞在体外无限扩增。
本发明还公开了，建立了smEnSCs在体外分化成肝实质细胞、胆管上皮细胞以及小肠上皮细胞等内胚层衍生细胞的分化体系。
在本发明第一方面，提供了一种诱导人类分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)的方法，其特征在于，包括步骤：
(a)在第一培养条件下，在培养体系中培养分化细胞，从而获得诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)；其中，所述培养体系包括EGF、A83-01和CHIR99021。
在另一优选例中，所述分化为退分化。
在另一优选例中，所述第一培养条件含有第一培养基。
在另一优选例中，所述第一培养基选自下组：SFD、DMEM、DMEM/F12、或其组合。
在另一优选例中，所述培养体系还包括选自下组的一种或多种添加物：抗坏血酸磷酸镁(Ascorbic Acid Phosphate Magnesium)、L-谷氨酰胺(L-glutamine)、MTG、bFGF。
在另一优选例中，所述分化细胞包括成体细胞。
在另一优选例中，所述成体细胞选自下组：肝实质细胞、胃上皮细胞、胰岛细胞、小肠上皮细胞、或其组合。
在另一优选例中，所述肝实质细胞包括原代肝实质细胞、干细胞分化来源的肝实质细胞。
在另一优选例中，所述成体细胞来源于成体组织分离、干细胞(如内胚层干细胞、诱导多能干细胞)的体外定向分化。
在另一优选例中，所述的内胚层干细胞来源于人胚胎干细胞或人诱导多能干细胞。
在另一优选例中，所述多能干细胞选自下组：人胚胎干细胞系(如H9、Hes2)、人诱导多能干细胞系(如ZRZ-iPSCs、WT6iPSCs)、或其组合。
在另一优选例中，所述的内胚层干细胞选自下组：H9、Hes2、ZRZ-iPSC EnSC、WT6iPSC EnSC、或其组合。
在另一优选例中，所述方法还包括步骤(b)：将诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)分化为内胚层衍生细胞。
在另一优选例中，所述内胚层衍生细胞包括肝实质细胞、胆管上皮细胞、小肠上皮细胞、胰岛β细胞、胃上皮细胞。
在另一优选例中，所述步骤(b)中不含有滋养层细胞。
在另一优选例中，所述步骤(b)中，包括：
(b1)在第二培养条件下，在培养体系中培养诱导多潜能内胚层干细胞，从而获得肝实质细胞；或
(b2)在第三培养条件下，在培养体系中培养诱导多潜能内胚层干细胞，从而获得胆管细胞；或
(b3)在第四培养条件下，在培养体系中培养诱导多潜能内胚层干细胞，从而获得小肠细胞。
在另一优选例中，所述第二培养条件含有第二培养基。
在另一优选例中，所述第二培养基包括肝向特化培养基、肝向成熟培养基I和肝向成熟培养基II。
在另一优选例中，所述肝向特化培养基选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述肝向成熟培养基I选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述肝向成熟培养基II选自下组：SFD、HCM、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述肝向特化培养基还含有选自下组的一种或多种添加物：
BMP4、FGF、A83-01、SB431542、IWP2、Dexamethasone、DMSO。
在另一优选例中，所述肝向成熟培养基I还包括选自下组的一种或多种添加物：
HGF、地塞米松(Dexamethasone)、OSM、C-E、A83-01、EGFi、VK1。
在另一优选例中，所述肝向成熟培养基II还包括选自下组的一种或多种添加物：HGF、Dexamethasone、OSM、C-E、A83-01、EGFi、VK1。
在另一优选例中，所述第三培养条件含有第三培养基。
在另一优选例中，所述第三培养基包括胆管特化培养基和胆管成熟培养基。
在另一优选例中，所述第三培养基选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、William’s E、或其组合。
在另一优选例中，所述第三培养条件还含有选自下组的一种或多种添加物：
FGF10、HGF、TGFβ、EGF、Activin A、地塞米松(Dexamethasone)。
在另一优选例中，所述第四培养条件含有第四培养基。
在另一优选例中，所述第四培养基包括扩增培养基、后肠特化培养基、小肠成熟培养基I和小肠成熟培养基II。
在另一优选例中，所述第四培养基选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述第四培养条件还含有选自下组的一种或多种添加物：
FGF4、EGF、A83-01、CHIR99321、Wnt3a、R-spondin、EGF、Noggin。
在另一优选例中，所述扩增培养基选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述后肠特化培养基选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述小肠成熟培养基I选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述小肠成熟培养基II选自下组：SFD、DMEM/F12、DMEM、或其组合。
在另一优选例中，所述扩增培养基还包括选自下组的一种或多种添加物：
FGF4、EGF、A83-01。
在另一优选例中，所述后肠特化培养基还包括选自下组的一种或多种添加物：
FGF4、CHIR99321。
在另一优选例中，所述小肠成熟培养基I还包括选自下组的一种或多种添加物：
FGF4、CHIR99321、EGF、Noggin。
在另一优选例中，所述小肠成熟培养基II还包括选自下组的一种或多种添加物：CHIR99321、EGF、Noggin。
在另一优选例中，在步骤(a)中，将成体细胞在第一培养条件下培养3-18天，较佳地，4-16天，更佳地，6-12天。
在另一优选例中，在步骤(b1)中，将诱导多潜能内胚层干细胞在第二培养条件下培养15-40天，较佳地，18-36天，更佳地，20-25天。
在另一优选例中，在步骤(b2)中，将诱导多潜能内胚层干细胞在第三培养条件下培养10-30天，较佳地，15-28天，更佳地，15-21天。
在另一优选例中，在步骤(b3)中，将诱导多潜能内胚层干细胞在第四培养条件下培养20-50天，较佳地，22-45天，更佳地，25-40天。
在另一优选例中，所述方法具有选自下组的一个或多个特征：
(i)高诱导多潜能内胚层干细胞分化率，所述分化率为80-98.5％，较佳地，90-95％；
(ii)在培养过程中，每1ml的培养液中接种0.5-2×105个成体细胞，可产生0.5-3×106个诱导多潜能内胚层干细胞。
在另一优选例中，所述培养体系中不含有或含有很少的细胞外基质。
在另一优选例中，所述细胞外基质选自下组：基质胶(Matrigel)、层粘连蛋白(Laminin)、基底膜提取物(Basement Membrane Extracts)、或其组合
在另一优选例中，在培养体系中，所述细胞外基质的含量(v/v)为0.5％－5％，较佳地，1％—3％，更佳地，1％－2％。
在另一优选例中，所述方法包括治疗性和非治疗性的。
在另一优选例中，所述的培养体系中，成体细胞的密度为0.5×106-4×106细胞/平板，较佳地，1×106-2×106细胞/平板。
在另一优选例中，所述的培养体系为体积10-25ml，较佳地10-20ml，最佳地为10-15ml。
在另一优选例中，所述的获得的诱导多潜能内胚层干细胞的数量M2与所述成体细胞的数量M1之比M2/M1为5-15，较佳地8-14，更佳地8-10。
在另一优选例中，所述诱导多潜能内胚层干细胞为功能性的诱导多潜能内胚层干细胞。
在另一优选例中，所述内胚层衍生细胞为功能性的内胚层衍生细胞。
本发明第二方面提供了一种诱导多潜能内胚层干细胞，所述的诱导多潜能内胚层干细胞由权利要求1所述的方法制备获得。
在另一优选例中，所述的诱导多潜能内胚层干细胞具有选自以下一种或多种特征：
(a)80-90％的细胞为肝向标志基因表达阴性；
(b)85-98％的细胞为前体细胞标志物基因表达阳性；
(c)85-98％的细胞为内胚层特异基因表达阳性；
(d)80-90％的细胞为肝脏前体细胞特异基因表达阳性；
(e)85-90％的细胞为FOXA1、EpCAM和SOX9表达阳性；
(f)85-95％的细胞为CD31表达阳性。
在另一优选例中，所述的诱导多潜能内胚层干细胞具有选自以下一种或多种特征：
(a)肝向标志基因低表达或不表达；
(b)前体细胞标志物基因高表达；
(c)内胚层特异基因高表达；
(d)肝脏前体细胞特异基因高表达；
(e)FOXA1、EpCAM和SOX9高表达；
(f)CD31高表达。
在另一优选例中，所述肝向标志基因选自下组：ALB、AAT、CYP3A7、CYP3A4、或其组合。
在另一优选例中，所述前体细胞标志物基因选自下组：CDX2、SOX17、或其组合。
在另一优选例中，所述内胚层特异基因选自下组：SOX17、CDX2、FOXA2、或其组合。
在另一优选例中，所述肝脏前体细胞特异基因选自下组：SOX9、TBX3、或其组合。
在另一优选例中，所述的诱导多潜能内胚层干细胞由成体细胞诱导获得。
本发明第三方面提供了一种内胚层衍生细胞，所述内胚层衍生细胞为三维球状结构，其中，所述内胚层衍生细胞的球囊直径大小为100－500μm。
在另一优选例中，所述的内胚层衍生细胞具有选自以下的一种或多种特征：
(a)肝实质细胞球为空心球，直径在150－500μm；
(b)胆管细胞结构为细胞球结构或者管状结构，细胞球直径为150-500μm，管状结构内径为20-80μm，长500μm-3mm；
(c)小肠细胞结构包括实心细胞球、带内腔的细胞球以及管状结构，其中实心细胞球、带内腔的细胞球的直径在100－500μm，管状结构内径在20-80μm，长500μm-5mm。
在另一优选例中，所述内胚层衍生细胞包括肝实质细胞、胆管上皮细胞、小肠上皮细胞、胰岛β细胞、胃上皮细胞。
本发明第四方面提供了一种本发明第二方面所述的诱导多潜能内胚层干细胞、或本发明第三方面所述的内胚层衍生细胞的用途，用于制备药物或制剂，所述药物或制剂用于(a)治疗肝脏、胆管相关疾病；和/或(b)肠道疾病；和/或(c)糖尿病。
在另一优选例中，所述肝脏、胆管相关疾病选自下组：遗传代谢性肝病、慢/急性肝衰竭、Alagille综合症、Crigler-Najjar综合征1型(Crigler–Najjar syndrome type 1)、或其组合。
在另一优选例中，所述遗传性肝病选自下组：肝豆状核变性(Wilson’s disease，WD)、糖原累积病Ia型、α-抗胰蛋白酶缺乏症、血色病、先天性胆道闭锁、希特林蛋白缺乏症、家族型高胆固醇症、或其组合。
在另一优选例中，所述肠道疾病选自下组：肠道损伤、短肠综合征、或其组合。
在另一优选例中，所述糖尿病选自下组：I型糖尿病、II型糖尿病、或其组合。
本发明第五方面提供了一种诱导培养基，所述诱导培养基含有基础培养基和添加物；其中所述基础培养基选自下组：SFD、DMEM、DMEM/F12、BDM、或其组合；并且，所述添加物包括EGF、A83-01和CHIR99021。
在另一优选例中，所述添加物还包括bFGF、VEGF、EGF、HGF、OSM、和地塞米松(Dexamethasone)。
在另一优选例中，所述添加物选自下组的一种或多种添加物：抗坏血酸磷酸镁(Ascorbic Acid Phosphate Magnesium)、L-谷氨酰胺(L-glutamine)、MTG、bFGF。
本发明第六方面提供了一种本发明第五方面所述的诱导培养基的用途，用于诱导分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)。
本发明第七方面提供了一种筛选或确定促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)的潜在治疗剂的方法，包括步骤：
(a)在测试组中，在培养体系中，在测试化合物的存在下，培养分化细胞一段时间T1，检测测试组所述培养体系中的诱导多潜能内胚层干细胞的数量M1；
并且在不存在所述测试化合物且其他条件相同的对照组中，检测对照组所述培养体系中的诱导多潜能内胚层干细胞的数量M2；和
(b)将上一步骤所检测的M1、M2进行比较，从而确定所述测试化合物是否是促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞的潜在治疗剂；
其中，如果M1显著高于M2，则表示所述测试化合物是促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞的潜在治疗剂。
在另一优选例中，所述“显著高于”指M1/M2≥2,较佳地，≥3，更佳地，≥4。
在另一优选例中，所述的方法是非诊断和非治疗性的。
应理解，在本发明范围内中，本发明的上述各技术特征和在下文(如实施例)中具体描述的各技术特征之间都可以互相组合，从而构成新的或优选的技术方案。限于篇幅，在此不再一一累述。
附图说明
图1表示体外诱导分化肝实质细胞退分化并建立smEnSC细胞系；其中，
(A)诱导成熟分化的Eheps成smEnSCs流程图。
(B)Eheps退分化过程中细胞形态图。D3，D7分别表示诱导退分化的时间。比例尺：200μm。
(C)Eheps退分化7天后基因表达变化。肝向基因(ALB、AAT、CYP3A7和CYP3A4)关闭，前体细胞标志物基因(CDX2和SOX17)开启。
(D)smEnSCs形态图。呈均一的上皮样形态。比例尺：200μm。
(E)smEnSCs能够在体外无限传代。
(F)smEnSCs基因表达情况。P3，P4代表smEnSCs的代数，DE-T5表示定型内胚层。smEnSC表达内胚层特异基因SOX17、CDX2及FOXA2，肝脏前体细胞特异基因SOX9与TBX3。
(G)流式细胞分析表明，smEnSCs表达SOX17和FOXA1，EpCAM和SOX9。
(H)smEnSC可从单细胞建立，因此具有克隆水平上的干性。
(I)smEnSCs在体内不成畸胎瘤。
图2表示体外诱导smEnSCs分化成内胚层衍生细胞；其中，
(A)smEnSC-Hep基因表达概况。分化获得的smEnSC-Hep肝向基因如ALB、CYPs等明显上调。AL代表成体肝组织。
(B)共染AFP和ALB揭示smEnSCs体外分化成肝实质细胞的效率。AFP阳性率高达90％以上，ALB阳性率也达到近70％。
(C)ELISA检测smEnSC-Heps能够分泌白蛋白。
(D)PAS染色表明smEnSC-Heps具有糖原积累的能力。比例尺：500μm。
(E)smEnSC-Heps能够响应利福平诱导CYP3A4的表达。
(F)smEnSCs体外诱导成胆管上皮细胞(smEnSC-Cho)，qPCR实验表明其表达胆管上皮细胞标志基因。
(G)smEnSCs体外诱导成小肠上皮细胞(smEnSC-HIO)。
(H)smEnSCs体外诱导成胰岛β细胞(smEnSC-βcell)。
(I)smEnSCs体外分化的肝实质细胞、胆管上皮细胞、小肠上皮细胞及胰岛β细胞形态图。
图3表示smEnSC-Hep能够拯救肝衰模型FRG小鼠；其中，
(A)smEnSC-Hep移植能够显著改善FRG小鼠生存。Sham表示未移植smEnSC-Hep组，smEnSC-Hep表示移植smEnSC-Hep组。
(B)移植smEnSC-Hep存活的FRG小鼠血清中能够检测到人源白蛋白。
具体实施方式
本发明人经过广泛而深入的研究，首次意外地发现，在本发明的第一培养条件下，在培养体系中培养成体细胞，能够获得诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)，并且本发明的诱导多潜能内胚层干细胞的分化率＞90％，诱导多潜能内胚层干细胞具有＞90％的纯度。并且，本发明的诱导多潜能内胚层干细胞还可以进一步分化为内胚层衍生细胞(如肝实质细胞、胆管细胞、小肠细胞、胰岛β细胞等)，此外，本发明的诱导多潜能内胚层干细胞还可用于治疗肝脏、胆管相关疾病和糖尿病。在此基础上，本发明人完成了本发明。
具体地，本发明人发明了一种利用小分子化合物及细胞因子组合诱导分化细胞成多潜能内胚层干细胞(small molecule induced Endoderm Stem Cells，smEnSCs)的方法。通过将干细胞来源的肝实质细胞等分化细胞用含特定的小分子化合物及细胞因子组合培养，诱导其退分化，并通过传代的方式建立不依赖于滋养层细胞的、可无限增殖的新型内胚层干细胞系，随后进一步在体外对其进行诱导分化成肝实质细胞、胆管上皮细胞、小肠上皮细胞及胰岛β细胞。
术语
如本文所用，术语“A83-01”化学式为C25H19N5S，CAS编号为909910-43-6；
“C-E”的化学式C27H24F2N4O3，CAS编号为209986-17-4；
“EGFi”化学式为C22H23N3O4.HCl，CAS编号为183319-69-9；
SB431542的化学式为C22H16N4O3，CAS编号为301836-41-9。
如本文所用，术语“平板”指各个规格的平板，包括58mm2的平板。
如本文所用，术语“诱导多潜能内胚层干细胞”、“smEnSC”指的是经本发明方法制备获得的诱导多潜能内胚层干细胞，所述诱导多潜能内胚层干细胞具有以下一种或多种特征：
(a)肝向基因低表达或不表达；
(b)前体细胞标志物基因高表达；
(c)内胚层特异基因高表达；
(d)肝脏前体细胞特异基因高表达；
(e)FOXA1、EpCAM和SOX9高表达；
(f)CD31高表达；
分化细胞
在本发明中，分化细胞指分化细胞指的是从发育生物学角度讲从受精卵往下进一步分化的细胞类型，其为某一特定谱系的细胞且无法增殖，本专利中包括干细胞定向分化获得的成熟细胞以及原代分离的成体细胞。
在本发明中，分化细胞包括成体细胞。
成体细胞指从成体组织直接分离获取的原代细胞，成体细胞属于终末分化细胞类型，不具备增殖能力。
诱导多潜能内胚层干细胞的诱导培养方法
本发明的诱导多潜能内胚层干细胞的起始细胞为人类分化细胞(包括成体细胞)，在第一培养条件下进行培养，从而获得诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)，其中，所述第一培养条件下的培养体系包括EGF、A83-01和CHIR99021。
接着，在适合培养的条件下(如在含有第二培养基，包括肝向特化培养基、肝向成熟培养基I和肝向成熟培养基II)和添加物(肝向特化培养基包括BMP4、FGF、A83-01、IWP2、Dexamethasone，肝向成熟培养基I包括HGF、Dexamethasone、OSM、C-E、A83-01、EGFi，肝向成熟培养基II包括Dexamethasone、C-E、A83-01、EGFi)的条件下或在含有第三培养基(如SFD)和添加物(包括FGF10、HGF、TGFβ、地塞米松)的条件下或在含有第四培养基(包括扩增培养基、后肠特化培养基、小肠成熟培养基I和小肠成熟培养基II)和添加物(扩增培养基包括FGF4、EGF、A83-01，后肠特化培养基包括FGF4、CHIR99321，小肠成熟培养基I包括FGF4、CHIR99321、EGF、Noggin，小肠成熟培养基II包括CHIR99321、EGF、Noggin)的条件下)，对诱导多潜能内胚层干细胞进一步培养，获得内胚层衍生细胞(如肝实质细胞、胆管细胞、小肠细胞、胰岛β细胞等)。
在本发明中，本发明的培养体系中不含或含有很少的基质胶(Matrigel)。
在一优选实施方式中，SFD(Serum free differentiation medium)包括以下组分：
75％Iscove的改良Dulbecco's培养基(IMDM)(Cellgro)，添加有0.5倍N2和B27补充剂(Gibco-BRL)，1％青霉素/链霉素，0.05％牛血清白蛋白的25％Ham's F12培养基(Cellgro)。
HCM培养基可市售获得(Commercial medium:Lonza:CC-4182)(Ogawa,S.,Surapisitchat,J.,Virtanen,C.,Ogawa,M.,Niapour,M.,Sugamori,K.S.,...&Zhao,B.(2013).Three-dimensional culture and cAMP signaling promote the maturation ofhuman pluripotent stem cell-derived hepatocytes.Development,140(15),3285-3296.)。
筛选或确定促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)的潜在治疗剂的方法
在本发明中，提供了筛选或确定促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)的潜在治疗剂的方法，包括步骤：
(a)在测试组中，在培养体系中，在测试化合物的存在下，培养分化细胞一段时间T1，检测测试组所述培养体系中的诱导多潜能内胚层干细胞的数量M1；
并且在不存在所述测试化合物且其他条件相同的对照组中，检测对照组所述培养体系中的诱导多潜能内胚层干细胞的数量M2；和
(b)将上一步骤所检测的M1、M2进行比较，从而确定所述测试化合物是否是促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞的潜在治疗剂；
其中，如果M1显著高于M2，则表示所述测试化合物是促进分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞的潜在治疗剂。
在另一优选例中，所述“显著高于”指M1/M2≥2,较佳地，≥3，更佳地，≥4。
在另一优选例中，所述的方法是非诊断和非治疗性的。
本发明的主要优点包括：
(1)本发明首次发现，本发明在培养体系中培养分化细胞(如成体细胞)，可获得极高分化率(＞90％)的功能性诱导多潜能内胚层干细胞，并且本发明的诱导多潜能内胚层干细胞的纯度也非常高，高达99％。
(2)本发明利用小分子首次在体外诱导分化细胞的退分化，并建立诱导多潜能内胚层干细胞系(smEnSCs)。
(3)本发明的smEnSCs能够不依赖于滋养层细胞在体外无限扩增，且在特定的诱导分化条件下可以重新分化成肝实质细胞、胆管上皮细胞以及小肠上皮细胞等内胚层衍生细胞，因此本发明的smEnSC有望替代hEnSCs应用于再生医学等许多领域。此外，该退分化体系也可作为退分化机制研究的理想模型。
(4)本发明的干细胞来源的肝实质细胞易于获得、能够在体外长期培养、可进行遗传操作，因此具有替代人原代肝实质细胞进行退分化机制研究的潜力。
(5)本发明利用小分子化合物组合诱导Eheps退分化建立smEnSCs，成本低、稳定性高。
(6)本发明的smEnSCs的培养不依赖于如MEF等滋养层细胞，符合临床治疗的要求。
(7).本发明的smEnSCs能够在体外无限扩增，体内不成瘤，且在特定体外诱导条件下重新分化成肝实质细胞、胆管上皮细胞以及小肠上皮细胞等内胚层衍生细胞类型。因此，可用于在体外规模化制备符合临床需求的功能细胞。
下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，例如Sambrook等人，分子克隆：实验室手册(New York:Cold Spring HarborLaboratory Press,1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数是重量百分比和重量份数。
除非另有说明，否则本发明实施例中所用的试剂和材料均为市售产品。
通用材料和方法
细胞培养基
诱导多潜能内胚层干细胞(smEnSC)培养基：SFD培养基种加入L-Ascorbic AcidPhosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，bFGF(10ng/ml),EGF(10ng/ml),A83-01(0.5μM)；CHIR99021(3μM)；
smEnSC肝实质细胞分化培养基：肝向特化培养基，SFD培养基添加L-AscorbicAcid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，hBMP4(50ng/ml)；bFGF(20ng/ml)，A83-01(0.5μM)，IWP2(5μM)，Dexamethasone(40ng/ml)，DMSO(1％v/v)；肝向成熟培养基Ⅰ，SFD培养基添加L-AscorbicAcid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，HGF(25ng/ml)，Dexamethasone(40ng/ml)，OSM(20ng/ml),C-E(0.1uM),A83-01(0.5uM)，EGFi(2uM)。；肝向成熟培养基Ⅱ，HCM培养基添加L-Ascorbic AcidPhosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，HGF(25ng/ml)，Dexamethasone(40ng/ml),C-E(0.1uM),A83-01(0.5uM)，EGFi(2uM)。
smEnSC胆管细胞分化培养基：胆管特化培养基，SFD培养基种加入L-AscorbicAcid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，ActivinA(50ng/ml),FGF10(50ng/ml)；胆管成熟培养基，SFD培养基种加入L-Ascorbic Acid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，HGF(25ng/ml)，TGFβ(5ng/ml),地塞米松(40ng/ml)。
smEnSC小肠细胞分化培养基：扩增培养基，SFD培养基种加入L-Ascorbic AcidPhosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，FGF4(10ng/ml),EGF(10ng/ml),A83-01(0.5μM)；；后肠特化培养基，SFD培养基种加入L-Ascorbic Acid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，FGF4(500ng/ml)，CHIR99321(3μM)；小肠成熟培养基Ⅰ，SFD培养基种加入L-Ascorbic Acid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，FGF4(100ng/ml)，CHIR99321(3μM)，EGF(100ng/ml)，Noggin(100ng/ml)；小肠成熟培养基Ⅱ，SFD培养基种加入L-AscorbicAcid Phosphate Magnesium(50μg/ml，Wako,cat#013-19641)，L-glutamine(1X，Cellgro)，MTG(4.5×10-4M)，CHIR99321(3μM)，EGF(100ng/ml)，Noggin(100ng/ml)。
实施例1诱导Eheps成smEnSC
分化成熟的Eheps经胶原酶B(1mg/ml，Roche)37℃消化2个小时，再用0.25％胰酶消化5分钟，后机械力吹达成单细胞，种植在matrigel包被的六孔板，每孔1-2×105细胞，用smEnSC培养基培养(图1A)。光学显微镜下能明显观察到细胞增殖(图1B)。qPCR结果显示Eheps在我们发明的培养基中培养7天后，肝向标志基因AAT、ALB、CYP3A7、CYP3A4显著下调(图1C)早期内胚层相关的基因SOX17和CDX2的表达显著上调，这都表明原先的肝实质细胞功能发生大幅度退化甚至消失。前面2代每6天进行一次传代，后期3-4天传代一次。起始Eheps的细胞数量为0.5-2×105，培养后可获得smEnSC的细胞数量为1-2×106个。
稳定的smEnSC细胞系呈均一的上皮样细胞形态(图1D)，此外能在体外无限扩增(图1E)。基因表达分析表明，smEnSCs表达肝脏富集转录因子HNF4A，以及定型内胚层(Definitive Endoderm，DE)和hEnSC关键转录因子SOX17，(图1F)。但与DE和hEnSC不同的是，smEnSCs不表达转录因子EOMES，而FOXA1、TBX3、SOX9、CEBPA、PROX1等早期肝脏发育关键转录因子有明显上调(图1F)。此外，smEnSC表达后肠命运决定的关键转录因子CDX2，但CDX2在DE中并不表达(图1F)。流式结果显示，smEnSC共表达SOX17和FOXA1，EpCAM和SOX9(图1G)。这些结果表明，分化成熟的肝实质细胞在“F”培养基中发生了退分化，由此建立的新型内胚层干细胞系smEnSC，在发育阶段上晚于DE或hEnSCs。
此外，单克隆生长实验表明一个smEnSC能够长成smEnSC克隆并建系(图1H)，这在克隆水平上验证了smEnSCs的干性。
将smEnSCs移植到SCID-Beige小鼠(20只，5×106细胞/小鼠)，追踪4个月后未发现任何体内成瘤情况(图1I),这个结果表明smEnSCs体内不成瘤，是未来细胞治疗应用的一个安全的种子细胞。
实施例2诱导smEnSCs成肝实质细胞
1×105的smEnSC首先用smEnSC培养基培养两天，后更换肝向特化培养基4天。用0.05％胰酶消化成20-50个细胞的团块，2孔的细胞合为1孔，加入80μl matrigel，转入低吸附培养板中用肝向特化培养基继续培养2天。后在肝向成熟培养基Ⅰ中培养12天，肝向培养基Ⅱ中培养6天。
smEnSCs分化获得的肝实质细胞(smEnSC-Hep)表达一系列成体肝实质细胞特异的蛋白，包括分泌型蛋白Albumin、AAT，参与糖原积累的关键酶G6PC，以及部分成体肝实质细胞的表面标志物ASGPR1。而在转录因子方面，smEnSC-Hep表达一系列肝脏转录因子包括HNF4A、CEBPA、HNF6等，且表达水平与成体肝相近(图2A)。在肝实质细胞的成熟度的重要标志P450家族酶类中，smEnSC-Hep表达CYP3A4、CYP3A7、CYP2C9、CYP2C19以及CYP2B6等(图2A)。此外，smEnSC-Hep表达EPHX1等二相酶以及一系列转运体蛋白，如NTCP、UGT1A1、MRP2、BCRP及BSEP等(图2A)。流式细胞分析发现，smEnSC-Hep中超过90％的细胞为AFP+，70％的细胞为ALB+(图2B)。smEnSC-Heps形成的细胞团——“肝球”(Liver balls)(图2I)具有特殊的极性结构，能够分泌白蛋白(图2C)，并积累糖原(图2D)，经利福平诱导后能显著上调CYP3A4的表达(图2E)。这些结果表明，smEnSC能够在现有的三维系统里高效分化成功能性肝实质细胞。1×105的smEnSC起始细胞量经过完整的分化流程后可获得2-3×106的肝实质细胞。
肝实质细胞为球状结构，为空心球，直径为300μm左右。
实施例3诱导smEnSCs成胆管上皮细胞
1×105的smEnSC首先用smEnSC培养基培养两天，后更换肝向特化培养基4天。用0.05％胰酶消化成20-50个细胞的团块，2孔的细胞合成成1孔，加入80μlmatrigel，转入低吸附培养板中用肝向特化培养基继续培养2天。随后更换胆管特化培养基培养4天。后转入胆管成熟培养基继续培养7至10天。
smEnSC分化获得的胆管上皮细胞smEnSC-Cho呈三维类器官形态(图2I)，且重新在matrigel上贴壁后能够形成自带管腔的特定结构。而从基因表达分析的结果看，smEnSC-Cho表达胆管上皮细胞的关键转录因子HNF1B和SOX9，而肝脏转录因子HNF4A显著下调(图2F)。smEnSC-Cho，表达多种与胆管功能相关的受体蛋白和转运体，包括CTFR，AQP1，SCR，GGT等(图2F)。Notch信号通路对胆管发育具有重要意义，我们发现在smEnSC及smEnSC-Cho中Notch信号维持激活，其下游靶基因HES1高表达(图2F)。是，smEnSC-Cho表达胆管上皮细胞重要的角蛋白CK19和CK7。1×105的smEnSC经过完整的分化流程后可获得2-3×106的胆管上皮细胞。这些结果表明，smEnSCs在体外可以高效分化成胆管上皮细胞。
胆管细胞结构为细胞球结构或者管状结构，细胞球直径为280μm，管状结构内径为50μm，长1mm；
实施例4诱导smEnSCs成小肠细胞
1×105的smEnSC首先在扩增培养基中培养2-3天。后更换为后肠特化培养基培养4天。后用TrypLE或者0.05％胰酶消化成20-50个细胞的团块,2孔的细胞合为1孔，加入80μlmatrigel，转入低吸附培养板中用小肠成熟培养基Ⅰ继续培养3天。后在小肠成熟培养基中继续培养18-24天。
从基因表达来看，与成体小肠组织一样，smEnSCs体外分化获得的HIO表达小肠命运决定与维持的转录因子CDX2和SOX9(图2G)。此外，smEnSCs体外分化获得的HIO还表达Enterocyte特有的标志物VILLIN，肠内分泌细胞特有的标志物Chromogranin A(CHGA),Paneth cell特有的标志物Lysozyme(LYZ)；然而，Goblet cell的标志物Mucin2(MUC2)(图2G)。此外，经三维悬浮分化形成的HIO具有高度有序的组织结构，含有内部官腔，与之前报到的从原代小肠细胞建立的类器官结构相似(图2I)。并且，在我们的分化系统里还出现了较长的管状结构，这在小肠分化的相关研究中未见报道。HIO表达转运体蛋白如MRP2等，有利于体外模拟小肠物质吸收等(图2G)。这些结果表明，smEnSC能够在体外分化成具有一定结构及多种小肠细胞类型的小肠组织。
1×105的smEnSC起始细胞量经过完整的分化流程后可获得2-3×106的小肠细胞。
小肠细胞结构包括实心细胞球、带内腔的细胞球以及管状结构，其中实心细胞球、带内腔的细胞球的直径在300μm，管状结构内径在60μm，长2mm。
实施例5诱导smEnSCs成胰岛β细胞
1×105的smEnSC首先在扩增培养基中培养2-3天，随后在相应的培养条件下分别诱导成Pancreatic Foregut，Pancreatic Endoderm，Pancreatic Progenitor。后用Dispase或者0.05％胰酶消化成20-50个细胞的团块，2孔的细胞合为1孔，加入80μlmatrigel，转入低吸附培养板中用继续分化为成熟的胰岛β细胞smEnSC-βCell。qPCR实验表明，smEnSC-βCell表达胰岛β细胞标志物INS，MAFB，PDX1及NKX6.1，而smEnSC特有的基因CDX2,SOX17,FOXA1及SOX9明显下调(图2H)。
胰岛β细胞为三维实心球结构，直径为200μm-500μm等结构特征(图2I)。
实施例6 smEnSC-Hep移植FRG小鼠实验
FRG小鼠移植前6-7天开始撤除饮水中的NTBC。smEnSC-heps经胶原酶B(1mg/ml)消化1h后，在用0.25％Trypsin-EDTA处理5分钟。消化好的细胞经70μm滤膜过滤，最后用100-150μl PBS重悬1×106Eheps，置于冰上，从脾脏移植细胞。移植后每3天称重一次并记录小鼠死亡情况。未移植细胞且体重下降30％的小鼠作为阴性对照。细胞移植后8周仍然存活的小鼠进行处理，并采集血液及肝脏样本进行后面的分析。
结果显示，经smEnSC-Hep移植后FRG小鼠血清中可检测到人源白蛋白(图3B)，小鼠生存明显改善(图3A)。这些结果表明，smEnSC-Hep对肝衰竭等疾病具有较好的治疗效果。
讨论
细胞退分化，是自然界中普遍存在的生物学现象，在个体损伤修复等发挥着积极的作用。利用终末分化的细胞退分化为可增殖的细胞是建立新型干细胞系的新思路。由于缺乏理想的体外细胞模型，退分化的分子机制目前尚不清楚。
本发明中利用hEnSCs来源的肝实质细胞Eheps进行退分化的研究，结果显示TGFβ信号通路的抑制及MAPK信号通路的激活对分化细胞的退分化具有重要作用。
通过操纵这些信号通路，本发明利用分化细胞建立了新型的可在体外稳定传代的诱导多潜能内胚层干细胞系(smEnSCs)。该细胞系可以高效分化为肝实质、胆管上皮和小肠等内胚层衍生细胞，为再生医学提供了新型种子细胞。与hEnSCs相比，smEnSCs的培养不依赖于滋养层细胞，符合临床应用的要求。
综上所述，Eheps经小分子化合物诱导退分化可建立新型内胚层干细胞系smEnSCs，为研究原代肝实质细胞退分化机制提供了理想的体外模型，为再生医学提供了新型种子细胞。
本发明利用单细胞水平的转录组分析，结合表观遗传组学分析，研究上述退分化过程中的动态分子调控机制。利用单细胞测序技术研究Ehep退分化过程的动态变化，一方面能够跟踪该过程中各细胞类群的变化，并推断具体哪些细胞亚群能够响应外源诱导信号；另一方面可全面揭示退分化过程中的关键信号通路。
现有的其它肝实质细胞培养方法，在细胞增殖、血清依赖等方面存在多种缺陷，难以满足应用需求。然而，该诱导条件下的肝实质细胞退分化并不能获得等同hEnSC或smEnSC阶段的内胚层干细胞，提示分化细胞的表观遗传及转录状态可能影响退分化的进程及结果。
综上所述，本发明利用hEnSC来源的Eheps在体外模拟原代肝实质细胞退分化过程，并建立具有无限扩增能力及多分化潜能的新型内胚层干细胞系smEnSCs。本发明期待利用类似方式可实现人成体肝实质细胞以及其它终末分化细胞的体外退分化并建立稳定增殖的组织特异性干细胞，为再生医学应用提供新细胞来源。
在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。

Claims (11)

1.一种诱导人类分化细胞分化为诱导多潜能内胚层干细胞（smEnSC）的方法，其特征在于，包括步骤：
(a) 在第一培养条件下，在培养体系中培养分化细胞，从而获得诱导多潜能内胚层干细胞（smEnSC）；其中，所述培养体系包括EGF、A83-01和CHIR99021；
所述分化细胞为Eheps细胞；
所述第一培养条件含有第一培养基；
所述第一培养基选自下组：SFD、DMEM、DMEM/F12、或其组合；
(b)将诱导多潜能内胚层干细胞（smEnSC）分化为内胚层衍生细胞。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述分化为退分化。
3.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述培养体系还包括选自下组的一种或多种添加物：抗坏血酸磷酸镁（Ascorbic Acid Phosphate Magnesium）、L-谷氨酰胺（L-glutamine）、MTG、bFGF。
4.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述内胚层衍生细胞为肝实质细胞、胆管上皮细胞、小肠上皮细胞或胰岛
Figure 263439DEST_PATH_IMAGE002
细胞。
5.如权利要求1所述的方法，其特征在于，在步骤(a)中，将分化细胞在第一培养条件下培养3-18天。
6.如权利要求5所述的方法，其特征在于，将分化细胞在第一培养条件下培养4-16天。
7.如权利要求6所述的方法，其特征在于，将分化细胞在第一培养条件下培养6-12天。
8.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述培养体系中不含有或含有很少的细胞外基质。
9.如权利要求8所述的方法，其特征在于，在培养体系中，所述细胞外基质的含量（v/v）为0.5%－5%。
10.如权利要求9所述的方法，其特征在于，在培养体系中，所述细胞外基质的含量（v/v)为1%—3%。
11.如权利要求10所述的方法，其特征在于，在培养体系中，所述细胞外基质的含量（v/v)为1%－2%。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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CN115216436A (zh) * 2021-04-16 2022-10-21 中国科学院分子细胞科学卓越创新中心 利用多能干细胞建立具备双向分化潜能的肝干细胞系的方法及其应用
CN113388572B (zh) * 2021-08-17 2021-11-19 天九再生医学(天津)科技有限公司 高效人多能干细胞体外诱导分化为多谱系小肠类器官方法
CN113856764B (zh) * 2021-10-29 2022-11-01 华中科技大学 一种过渡金属催化剂及其制备方法和应用

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104726395A (zh) * 2015-03-20 2015-06-24 深圳市人民医院 一种诱导人诱导多能干细胞定向分化为胰腺细胞的方法
CN105874059A (zh) * 2012-11-29 2016-08-17 宝生物欧洲公司 用于产生哺乳动物多能干细胞衍生之内胚层细胞的改良方法

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014058274A1 (ko) * 2012-10-12 2014-04-17 서강대학교 산학협력단 미분화 인간 유도만능줄기세포의 선택적 세포사멸 유도를 통한 테라토마 형성 억제 방법

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105874059A (zh) * 2012-11-29 2016-08-17 宝生物欧洲公司 用于产生哺乳动物多能干细胞衍生之内胚层细胞的改良方法
CN104726395A (zh) * 2015-03-20 2015-06-24 深圳市人民医院 一种诱导人诱导多能干细胞定向分化为胰腺细胞的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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胎盘间充质干细胞研究进展;张迪等;《安徽医学》;20101231;第31卷(第12期);全文 *

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