CN111534552B

CN111534552B - 谷氨酸的发酵生产及后处理

Info

Publication number: CN111534552B
Application number: CN202010415136.4A
Authority: CN
Inventors: 马吉银; 赵二红; 哈志瑞; 马文友
Original assignee: Inner Mongolia Eppen Biotech Co ltd
Current assignee: Inner Mongolia Eppen Biotech Co ltd
Priority date: 2017-12-15
Filing date: 2017-12-15
Publication date: 2023-03-31
Anticipated expiration: 2037-12-15
Also published as: CN111534552A; CN107974473A; CN107974473B

Abstract

本发明提供了发酵生产L‑谷氨酸的方法，其包括改造棒杆菌属细菌染色体上编码DNA甲基化酶的基因，使DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低；和，用改造而得到的细菌发酵生产L‑谷氨酸。另外，本发明还提供了谷氨酸发酵液的处理方法。

Description

谷氨酸的发酵生产及后处理

技术领域

本发明属于氨基酸发酵领域，具体而言，本发明涉及发酵生产L-谷氨酸的方法和应用，和可以用在这些方法和应用中的细菌，以及后处理方法等。

相关申请

本申请是中国专利申请第201711350944.1号（申请日：2017年12月15日）的分案申请。

背景技术

L-谷氨酸是重要的氨基酸原料，已经被广泛用作为调味品和食品添加剂使用。当前，L-谷氨酸的生产主要是通过微生物的发酵生产的，如可以利用棒状杆菌来生产。

用于发酵生产的微生物可以是野生型微生物，但是更多的是通过诱变或基因工程获得的产量更高的营养缺陷型、耐药变异型和代谢变异型微生物。对于基因工程获得的性状改良的微生物来说，其中至关重要的就是性质优异的基因。例如，中国专利第201110065721.7号公开了L-谷氨酸的发酵方法，其包括将编码RNA聚合酶sigma-32因子变体的多核苷酸导入产L-谷氨酸的菌，从而使所获得的菌表达所述RNA聚合酶sigma-32因子变体，然后在发酵条件下培养。

本发明人经过长期研究和实践，经历了众多的失败，凭借了一些运气，偶然发现在棒杆菌的染色体中对一个编码腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因的改造能够有助于提高L-谷氨酸的产量。该方法与现有改造的大量高产L-谷氨酸的细菌的染色体改造位点没有冲突，可以叠加提高的效果，从而在实践上可用于多种细菌发酵生产L-谷氨酸。

另外，目前国内对谷氨酸发酵液的后处理基本是，发酵液过滤或超滤后经蒸发器浓缩（浓缩倍数控制在谷氨酸含量为30-32g/dl），采用流加的方式加酸连续中和到等电点pH3.22，形成谷氨酸晶型，分离后的废液（母液）经絮凝、过滤，滤渣经气流干燥而作为蛋白饲料，滤液经浓缩后加入腐殖酸等，高温（滚筒）造粒形成复合肥。

然而，本发明人发现，该方法收率较低，为88%-90%，大量成分溶于母液和此后的滤液，干燥成附加值低的复合肥，而且由于母液中溶有大量发酵产生的氨氮，干燥过程会产生大量有异味的废气，在目前日益重视环保的形势下难以扩大生产规模。为此，经过长期研究和实践，本发明人设计了新的谷氨酸发酵液的后处理方法，改变了发酵液的起始处理方式，从而使得谷氨酸收率有所提高，达到90%-93%，并且设计了全新的母液处理方法，减少了低附加值的复合肥的产生，充分利用发酵剩余的菌体作为蛋白饲料，获得了可重复利用的硫酸铵等盐，并且大幅减少了有异味的废气，几乎没有高温造粒产生有异味的废气。

发明内容

本发明要解决的技术问题在于提供新的发酵生产L-谷氨酸的方法及其相关的方法，包括相对于未改造细菌提高L-谷氨酸的发酵生产量的方法，改造的细菌在发酵生产L-谷氨酸中的应用，改造的细菌在相对于未改造细菌提高L-谷氨酸的发酵生产量的应用，和/或，改造细菌的方法等。另外，本发明还提供了新的谷氨酸发酵液的处理方法等。

具体而言，在第一方面，本发明提供了发酵生产L-谷氨酸的方法，其包括：

（1）改造棒杆菌属细菌染色体上编码腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低；和，

（2）用步骤（1）改造而得到的细菌发酵生产L-谷氨酸。

在本文中，术语“改造”指的是是相应被改造的对象发生变化，从而达到一定的效果。改造位于染色体上的基因的手段包括但是不限于，诱变、定点突变、和/或同源重组，优选是后两者。改造位于染色体上的基因使得该基因的核苷酸序列被添加、缺失或替换一个或多个核苷酸，例如可以在该基因中插入无义密码子，也可以敲除该基因。也可以通过改造该基因的调控序列来间接改造该基因，从而使其编码的蛋白质的活性和/或表达量降低。

这些技术手段广泛记载于分子生物学和微生物学文献中，有许多甚至已经商品化了。在本发明的具体实施方式中，根据同源重组的原理，可以采用Addgene公司商品化的pKOV质粒系统来进行改造，也可以采用pK18mobsacB质粒系统来进行改造。因此，在本文中，改造优选是通过同源重组进行的改造，更优选是通过同源重组进行的敲除。

在本文中，腺嘌呤特异性DNA甲基化酶优选是NCBI参考序列NP_600130.1（简称为NP_600130.1），其氨基酸序列如SEQ ID NO：2所示（也可获取自网站http://www.ncbi.nlm.nih.gov，NCgl0866）。编码NP_600130.1的基因的核苷酸序列如SEQ ID NO：1所示（也可获取自网站http://www.ncbi.nlm.nih.gov）。在本发明的具体实施方式中，NCgl0866基因被敲除后（即，它的活性和/或表达量消失），谷氨酸的产量提高了。因此，在本文中，腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量优选消失。

相应地，本发明还提供了其他的应用或方法。例如，在第二方面，本发明提供了提高L-谷氨酸的发酵量的方法，其包括：

（1）改造棒杆菌属细菌染色体上编码腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低，优选消失；和，

（2）用步骤（1）改造而得到的细菌发酵生产L-谷氨酸。

又如，在第三方面，本发明提供了改造获得的细菌在发酵生产L-谷氨酸中的应用，其中，所述改造获得是改造棒杆菌属细菌染色体上编码腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低，优选消失。

还如，在第四方面，本发明提供了改造获得的细菌在提高L-谷氨酸的发酵量中的应用，其中，所述改造获得是改造棒杆菌属细菌染色体上编码腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低，优选消失。

在本文中，如无特别限定（如未以“改造获得”来限定），术语“细菌”或“棒杆菌属细菌”是未改造或改造前的细菌或棒杆菌属细菌，其染色体具有野生型的编码NCBI参考序列NP_600130.1的基因。

现有技术没有在谷氨酸生产/发酵中关注过编码NCBI参考序列NP_600130.1的基因，因此现有技术中的产L-谷氨酸的棒杆菌属细菌通常都带有野生型的编码NCBI参考序列NP_600130.1的基因基本上都可以采用本发明的方法进行改造，提高L-谷氨酸的发酵量。在本文中，棒杆菌属细菌包括谷氨酸棒杆菌。

更本质地，在第五方面，本发明提供了改造细菌的方法，其包括改造棒杆菌属细菌的方法，其包括改造棒杆菌属细菌染色体上编码腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低，优选消失。

本发明第五方面的方法改造而获得的细菌能够用于发酵生产或产生L-谷氨酸。因此，在第六方面，本发明提供了本发明第五方面的方法改造而获得的细菌。本发明第六方面的细菌是棒杆菌属细菌，其染色体上编码NCBI参考序列NP_600130.1的基因座位的核苷酸序列不同于编码NCBI参考序列NP_600130.1的基因的核苷酸序列，优选其染色体上编码NCBI参考序列NP_600130.1的基因被敲除。

在第七方面，本发明提供了腺嘌呤特异性DNA甲基化酶（优选是NCBI参考序列NP_600130.1）和/或其编码基因在棒杆菌属细菌发酵生产L-谷氨酸中的应用。尽管可能增加NCBI参考序列NP_600130.1的活性和/或表达量能够用于降低棒杆菌属细菌发酵生产L-谷氨酸的产量，但是优选所述应用为NCBI参考序列NP_600130.1的活性和/或表达量降低（优选消失，如将其编码基因敲除）的应用，用于提高棒杆菌属细菌发酵生产L-谷氨酸的产量。其中，NCBI参考序列NP_600130.1的氨基酸序列如SEQ ID NO：2所示，其编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO：1所示。

在第八方面，本发明提供了谷氨酸发酵液的后处理方法，其包括：

（1）将谷氨酸发酵液离心分离出菌体和上清液，上清液通过连续等电点法加硫酸获得谷氨酸晶型和母液；

（2）将步骤（1）获得的母液浓缩，析出沉淀后过滤获得盐和滤液；

（3）取步骤（2）获得的滤液的一部分润湿步骤（1）获得的菌体，干燥并任选造粒，从而获得蛋白饲料；和，

（4）取步骤（2）获得的滤液的剩余部分与腐殖酸混合，干燥并任选造粒，从而获得复合肥。

优选在本发明第八方面的方法中，谷氨酸发酵液是本发明第一方面的方法获得的谷氨酸的发酵液。

本发明的有益效果在于，开辟并且实践证明了新的提高L-谷氨酸的发酵量的方式，而且与现有改造的大量高产L-谷氨酸的棒杆菌属细菌的染色体改造位点没有冲突，从而在实践上可用于进一步提高L-谷氨酸的产量；通过新的谷氨酸发酵液的后处理方法，减少了有异味的废气和低附加值的复合肥的产生，更为环保和经济，而且增产了硫酸铵等盐并一定程度上提高了谷氨酸的收率，更加提高了谷氨酸发酵的综合经济效益。

为了便于理解，以下将通过具体的实施例对本发明进行详细地描述。需要特别指出的是，这些描述仅仅是示例性的描述，并不构成对本发明范围的限制。依据本说明书的论述，本发明的许多变化、改变对所属领域技术人员来说都是显而易见的。

另外，本发明引用了公开文献，这些文献是为了更清楚地描述本发明，它们的全文内容均纳入本文进行参考，就好像它们的全文已经在本文中重复叙述过一样。

具体实施方式

以下通过实施例进一步说明本发明的内容。如未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段和市售的常用仪器、试剂，可参见《分子克隆实验指南（第3版）》（科学出版社）、《微生物学实验（第4版）》（高等教育出版社）以及相应仪器和试剂的厂商说明书等参考。

实施例1 NCgl0866基因表达下调实验

根据NCBI公布的谷氨酸棒杆菌ATCC13032的基因组序列，合成两对扩增NCgl0866基因编码区两端片段的引物，作为上下游同源臂片段。引物设计如下（上海英俊公司合成）：

P7: 5' CGGAATTCGATGCCTGC GGGATGACGA 3'（BamH1）

P8: 5'GATGACGAAG GAGCCCCTAT CCAGAGCCAC CAAACCTGGG ACG3'

P9: 5'CGTCCCAGGT TTGGTGGCTC TGGATAGGGG CTCCTTCGTC ATC3'

P10: 5' CGGGATCCCCTAAACCCTGTCTCAAATCAC 3'(EcoR1)

以谷氨酸棒杆菌ATCC13032为模板，分别以引物P7/P8及P9/P10，进行PCR扩增，获得上游同源臂片段680bp及下游同源臂片段800bp再用引物P7/P10进行OVER PCR得到整个同源臂片段1480bp，两端分别含有EcoR1和BamH1酶切位点。PCR反应结束后，对扩增的产物进行电泳回收，采用柱式DNA凝胶回收试剂盒进行回收所需要的1480bp的DNA片段，并通过酶切回收连接，与穿梭质粒pk18mobsacB质粒相连接，获得敲除质粒。该质粒上含有卡那霉素抗性标记。

将敲除质粒电转化入L-谷氨酸发酵的谷氨酸棒杆菌ATCC 13869（可购自美国典型微生物保藏中心（ATCC）；经测序确认该菌株染色体上保留有野生型的NCgl0866基因），对培养产生的单菌落分别通过如下引物（上海英俊公司合成）进行PCR鉴定：

P11:5' CGCTACGGCGTCCAAGGAGT 3'

P12: 5' GTGCCCTAAGGCTGAATAAC 3'

上述PCR扩增出大小1900bp及750bp的条带的菌株为阳性菌株，只扩增出1900bp条带的菌株为原菌。阳性菌株分别在含有卡那霉素和不含卡那霉素的培养基上培养，在不含卡那霉素的培养基上生长，而在含卡那霉素的培养基上不生长的菌株进一步采用P11/P12引物进行PCR鉴定，扩增出大小为750bp条带的菌株为Ncgl0866基因编码区被敲除的基因工程菌株。

实施例2 谷氨酸发酵实验

将实施例1构建的基因工程菌株和原始菌株分别在液体LB培养基中振荡培养至OD500达到0.5，以5%的接种量接入谷氨酸发酵培养基（每升培养基配方为：80g蔗糖，20gNH4Cl，45g CaCl2,1g KH2PO4，1g蛋白胨, 400mg MgSO4•7H2O, 10mg FeSO4•7H2O, 10mgMnSO4•7H2O,300μg生物素, 50μg盐酸硫胺素，和4mg氯霉素，用NaOH调节至pH7.8）中以30℃振荡（150rpm）培养72小时。离心收集培养基上清液（即，发酵液），用纸层析法分离并定量培养基中的L-谷氨酸。结果发现，基因工程菌株的发酵培养基中L-谷氨酸的含量达到了36g/L，而原始菌株的发酵培养基中L-谷氨酸的含量仅为31g/L，表明敲除Ncgl0866基因编码区能够提高谷氨酸产量。

实施例3谷氨酸发酵液的后处理方法

首先，将谷氨酸发酵液（扩大规模生产的如实施例2产生的发酵液）基本参照现有的连续等电点法提取谷氨酸晶型，所不同的在于，发酵液不进行过滤或超滤，而是进行离心分离。具体而言，谷氨酸发酵液离心，分离得到的菌体沉淀备用，上清液经四效真空蒸发器浓缩（由于离心还去除了部分菌体蛋白，所以浓缩倍数可以提高到38-40g/dl），得到的浓缩液连续通过调酸罐（大规模提取中调酸罐可以分多级，例如依次通过一级调酸罐、二级调酸罐和三级调酸罐），连续流加硫酸以使得浓缩液被中和到等电点pH3.22，从而形成谷氨酸晶型，对连续流出的包含谷氨酸晶型的浓缩液离心分离，得到谷氨酸晶型和母液。通过该方法得到的谷氨酸进行的收率为90%-93%，较现有的连续等电点法有所提高，而且使母液得产生量较现有的连续等电点法下降21-23%。

然后，母液经四效真空蒸发器浓缩至原体积的1/3-1/2，结晶分离出硫酸铵，滤液取一部分加入菌体沉淀润湿至不聚成团，造粒干燥而作为蛋白饲料，余下的滤液加入腐殖酸等，造粒形成复合肥。此过程中，几乎没有高温造粒产生有异味的废气。以年生产20万吨谷氨酸钠计算，按此方法处理母液，可产3.5万吨硫酸铵和16万吨蛋白饲料，仅产2.4万吨复合肥，比现有方法减少20万吨复合肥的产量，尤其是每天可减排1680万m³废气。

序列表

<110> 内蒙古伊品生物科技有限公司

<120> 谷氨酸的发酵生产及后处理

<130> CN

<160> 3

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 1158

<212> DNA

<213> 谷氨酸棒杆菌

<400> 1

gtgtcgagac tgacggaact gctgcggcag gtgcgcaagg cggacgcgca acttggtact 60

gacctggaag ccgaggtcgc tgcgctgacc aagcgtcgca ccttcgggct cgtctttgag 120

cagcatcagc ctgaggctgt cgagctgccc ggcagggtcg tccgtcgcgg cgacaaggtg 180

cgggtgctgc ctccgcgagg ggggacaaag gcaggtgacc aacggctgtg gcggacaact 240

cggatcgagt gcgtcgacgg gcagcgtgtg gctcatctcg cggagctcga cgtcgaagaa 300

cccgagactc gggcagtgct tgccgacgac gtggtggtcg tcgcggagtt ccgggatcgc 360

atctaccccg gcctggtgga gacaggcagg gttgagcggg gcggcgacaa gccgttccac 420

acggtcgtca acgctgagaa ctaccacgcg ctggagatgc tgacctatac gcaccggcat 480

tccatcgacg ccatctacat cgacccgccg tacaacaccg gggcgaggga ctggaagtac 540

gacaacgatt acgtcgcgag tgatgacgac tatcgacact cgaaatggct ggcgttcatg 600

gagcgacggt tgaagatctg tcgggagctc atgcgtagcg atgctactct tgtggcaact 660

atcgatgagc atgaagtaaa ccgtttgggc gtgttgctag atcagctctt cccggaatct 720

acgcggcaac tcgtcacaat tgtcaacaac cctaaaggcg ttactcaggg atatctttcg 780

agggtcgaag agtatgcgtt ctttgtattt ggtcctgacg cgcgaatcgg ttcggtcgat 840

gacgaccttc tgacgcatcg agacatggcc gatgctgaag gggaactgca gaggcctcga 900

tggaaggggc tcttgcggtc gggcgacgac tcgcttcgag ctgaccgtaa agatatgttc 960

tatccggtgt ggttcgatga gtcgactggg cgactcagcc acgcgggcga agcattgcca 1020

cttgacgaaa ctcctgactt cagtccgcag gatggcctga cgccgatctg gcctattagg 1080

cgggacatga aggaggggcc tacccgggca gcgccacgcc gttcgatcct tgactacgcg 1140

ctacaccctc atctgtga 1158

<210> 2

<211> 385

<212> PRT

<213> 谷氨酸棒杆菌

<400> 2

Met Ser Arg Leu Thr Glu Leu Leu Arg Gln Val Arg Lys Ala Asp Ala

1 5 10 15

Gln Leu Gly Thr Asp Leu Glu Ala Glu Val Ala Ala Leu ThrLys Arg

20 25 30

Arg Thr Phe Gly Leu Val Phe Glu Gln His Gln Pro Glu Ala Val Glu

35 40 45

Leu Pro Gly Arg Val Val Arg Arg Gly Asp Lys Val Arg Val Leu Pro

50 55 60

Pro Arg Gly Gly Thr Lys Ala Gly Asp Gln Arg Leu Trp Arg Thr Thr

65 70 75 80

Arg Ile Glu Cys Val Asp Gly Gln Arg Val Ala His Leu Ala Glu Leu

85 90 95

Asp Val Glu Glu Pro Glu Thr Arg Ala Val Leu Ala Asp Asp Val Val

100 105 110

Val Val Ala Glu Phe Arg Asp Arg Ile Tyr Pro Gly Leu Val Glu Thr

115 120 125

Gly Arg Val Glu Arg Gly Gly Asp Lys Pro Phe His Thr Val Val Asn

130 135 140

Ala Glu Asn Tyr His Ala Leu Glu Met Leu Thr Tyr Thr His Arg His

145 150 155 160

Ser Ile Asp Ala Ile Tyr Ile Asp Pro Pro Tyr Asn Thr Gly Ala Arg

165 170 175

Asp Trp Lys Tyr Asp Asn Asp Tyr Val Ala Ser Asp Asp Asp Tyr Arg

180 185 190

His Ser Lys Trp Leu Ala Phe Met Glu Arg Arg Leu Lys Ile Cys Arg

195 200 205

Glu Leu Met Arg Ser Asp Ala Thr Leu Val Ala Thr Ile Asp Glu His

210 215 220

Glu Val Asn Arg Leu Gly Val Leu Leu Asp Gln Leu Phe Pro Glu Ser

225 230 235 240

Thr Arg Gln Leu Val Thr Ile Val Asn Asn Pro Lys Gly Val Thr Gln

245 250 255

Gly Tyr Leu Ser Arg Val Glu Glu Tyr Ala Phe Phe Val Phe Gly Pro

260 265 270

Asp Ala Arg Ile Gly Ser Val Asp Asp Asp Leu Leu Thr His Arg Asp

275 280 285

Met Ala Asp Ala Glu Gly Glu Leu Gln Arg Pro Arg Trp Lys Gly Leu

290 295 300

Leu Arg Ser Gly Asp Asp Ser Leu Arg Ala Asp Arg Lys Asp Met Phe

305 310 315 320

Tyr Pro Val Trp Phe Asp Glu Ser Thr Gly Arg Leu Ser His Ala Gly

325 330 335

Glu Ala Leu Pro Leu Asp Glu Thr Pro Asp Phe Ser Pro Gln Asp Gly

340 345 350

Leu Thr Pro Ile Trp Pro Ile Arg Arg Asp Met Lys Glu Gly Pro Thr

355 360 365

Arg Ala Ala Pro Arg Arg Ser Ile Leu Asp Tyr Ala Leu His Pro His

370 375 380

Leu

385

<210> 3

<211> 2700

<212> DNA

<213> 谷氨酸棒杆菌

<400> 3

ggcccgtgtt cgatgcctgc gggatgacga tgaggttgtt gtcgacggat acctgcagcg 60

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taggttcgga ccgcggtact ttcggactcc ggtaggttcg gaccgcgata gttcggaccg 600

cgatgtcggc cactgccctc accccataga tcgacgcagc aatcagactc gcctagcgcc 660

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cccgcgtggc tgagtcgccc agtcgactca tcgaaccaca ccggatagaa catatcttta 900

cggtcagctc gaagcgagtc gtcgcccgac cgcaagagcc ccttccatcg aggcctctgc 960

agttcccctt cagcatcggc catgtctcga tgcgtcagaa ggtcgtcatc gaccgaaccg1020

attcgcgcgt caggaccaaa tacaaagaac gcatactctt cgaccctcga aagatatccc1080

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agctgatcta gcaacacgcc caaacggttt acttcatgct catcgatagt tgccacaaga1200

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catttcgagt gtcgatagtc gtcatcactc gcgacgtaat cgttgtcgta cttccagtcc1320

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tcgccgcccc gctcaaccct gcctgtctcc accaggccgg ggtagatgcg atcccggaac1500

tccgcgacga ccaccacgtc gtcggcaagc actgcccgag tctcgggttc ttcgacgtcg1560

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agccgttggt cacctgcctt tgtcccccct cgcggaggca gcacccgcac cttgtcgccg1680

cgacggacga ccctgccggg cagctcgaca gcctcaggct gatgctgctc aaagacgagc1740

ccgaaggtgc gacgcttggt cagcgcagcg acctcggctt ccaggtcagt accaagttgc1800

gcgtccgcct tgcgcacctg ccgcagcagt tccgtcagtc tcgacacgga taggggctcc1860

ttcgtcatca tccgtagcgc gtccgggcta tttcttactt ccagacgtaa gtcccgtccg1920

gaactccacc acgtgatcct tcaacctgta tgcaactaat ctagccagtt taggactaac1980

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gcactcgtta aggtatctga ctactgattg ctctacgatt tctttcatcg tgcgatgttc2100

tttaaatgcc tgtagtttca accgtctatg cacactggtg gtcatgcgga cattgaacat2160

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gcgctggtgg ggtttccccg gcccaagact caactttgca acagcacctt attaagtgcc2280

ctagagttat tcagccttag ggcaccgctc tatttcttac ggcatttccc acttttctca2340

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tgtaaaagac tcacctgtca gggatctatc tccttgtaga ggaactattc cagtcttctt2460

taaaaacact tatgatcgct gtgatcaggt aatttaatga aaaaacttat agcgttaaaa2520

cgtgatgatt ttttgacgtc aaaaagtttt agcactataa cgttatgacg ttttagtgct2580

aaagtgtggc ttgtcagatt cgtgttggtc gtgcgcccgt atggtgattt gagacagggt2640

ttaggagaat tagttccatg tcgaatcgca cgtcatcttc accgaagaat tcaaagcagg2700

Claims

1.提高L-谷氨酸的发酵量的方法，其包括：

（1）改造谷氨酸棒杆菌染色体上编码氨基酸序列如SEQ ID NO：2所示的腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低；和，

（2）用步骤（1）改造而得到的细菌发酵生产L-谷氨酸。

2. 改造获得的细菌在提高L-谷氨酸的发酵量中的应用，其中，所述改造获得是改造谷氨酸棒杆菌染色体上编码氨基酸序列如SEQ ID NO：2所示的腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的基因，使腺嘌呤特异性DNA甲基化酶的活性和/或表达量降低。

3.权利要求1所述的方法获得的谷氨酸发酵液的后处理方法，其包括：

（2）将步骤（1）获得的母液浓缩，结晶分离后获得盐和滤液；

（3）取步骤（2）获得的滤液的一部分润湿步骤（1）获得的菌体，造粒干燥，从而获得蛋白饲料；

（4）取步骤（2）获得的滤液的剩余部分与腐殖酸混合，造粒干燥，从而获得复合肥。