CN111366632A - 基于唾液特异糖蛋白糖链结构的肺小细胞癌筛查、评估的产品及应用 - Google Patents

基于唾液特异糖蛋白糖链结构的肺小细胞癌筛查、评估的产品及应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了基于唾液特异糖蛋白糖链结构的肺小细胞癌相关筛查、评估的产品及应用,针对唾液样本,提供了用于肺小细胞癌筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估的产品,检测唾液样本中的三种特定糖蛋白糖链结构High‑Mannose,Manα1‑3Man,Manα1‑6Man,Man5‑GlcNAc2‑Asn的表达水平(是否高表达),以及唾液样本中是否含有特定的3种N‑糖链之任一或任意组合。相应起到特异性结合识别作用的凝集素为HHL,能够单独作为识别唾液特异糖蛋白糖链结构的试剂用以制备相关医疗产品。

Description

基于唾液特异糖蛋白糖链结构的肺小细胞癌筛查、评估的产 品及应用
技术领域
本发明涉及一种基于唾液特异糖蛋白的肺小细胞癌标志物的确定及其相关产品、应用。
背景技术
根据国际癌症研究中心(IARC)的《2018全球癌症统计数据》,全世界有五分之一的男性和六分之一的女性在其一生中会罹患癌症,且八分之一的男性和十一分之一的女性死于这种疾病。这份报告对全球185个国家36种癌症的发病率和死亡率进行了估算。报告显示,今年新发病例将达到1810万,死亡人数将达到960万。四年前新增病例与死亡人数分别为1410万和820万。肺癌是造成男性和女性死亡的主要原因之一,其中北美、北欧和西欧等地区以及中国、澳大利亚和新西兰等国家女性肺癌发病率最高。
原发性支气管肺癌,简称肺癌,是起源于支气管粘膜或腺体的恶性肿瘤。目前在全世界范围内因恶性肿瘤引起的死亡中,肺癌最为常见。而且,它的发生率正在以约5%的速度逐年增加,预计到2020年,因肺癌而死亡的人数将达到恶性肿瘤引起的总死亡人数的50%。肺癌已经成为全世界各个国家亟待解决的重大健康问题和社会问题,在发展中国家尤甚。在2010年进行的全国性抽样调查显示,肺癌的死亡率已升高为30.83/10万,其中,男性为41.34/10万,女性为19.84/10万,肺癌死亡人数占肿瘤相关的总死亡人数已达到22.70%,居第1位,值得指出的是,在我国城市人口中,肺癌的死亡率为40.98/10万,居首位,且明显高于农村地区(26.93/10万)。
根据肺癌的分化程度、形态特征和生物学特点,目前将大多数肺癌分成两大类:非小细胞肺癌(non-small-cell lung cancer,NSCLC)和小细胞肺癌(small-cell lungcancer,SCLC)。前者主要包括腺癌(ADC)和鳞状细胞癌(简称鳞癌,SCC)。其中,ADC发病率最高,约占肺癌的50%;SCC为曾经最为常见的肺癌类型,现约占肺癌的1/3,而小细胞肺癌仅占肺癌的15%。
虽然,近年来肺癌的治疗方面已取得了长足的进步,但从总体上来说,肺癌的预后情况仍旧很不理想,非小细胞肺癌和小细胞肺癌的5年生存率仅分别为14%和4%。引起这一情况的主要原因是由于肺癌起病隐匿,早期通常无明显症状,大多数肺癌患者在确诊时已处于进展期,失去了手术治愈的机会。因此,肺癌的早期分型筛查和诊断对于提高肺癌患者的生存率、延长患者的生存期,都是至关重要的。
糖基化是最普遍的蛋白质翻译后修饰之一,研究发现约一半以上的哺乳动物蛋白质都发生了糖基化。糖基化作为一种重要的翻译后修饰,可以影响蛋白质的溶解度、折叠、定位及构象的维持,调节蛋白质的功能和降解;还可以介导分子与分子之间、分子与细胞之间、细胞与细胞之间的相互作用。大量研究表明,蛋白质糖基化,作为重要的翻译后修饰,在肿瘤发生、浸润、转移的过程中会发生改变并有相应的功能性作用。糖基化修饰的改变主要包括两个方面:1)多肽链上糖基化结合位点的改变;2)寡糖链结构的改变。因此,差异性表达的蛋白质糖基化亚型可以成为新型肿瘤标记物,用于肿瘤的早期分型诊断,还可以成为肿瘤生物靶向治疗的新靶点。
随着现今科学技术的发展,检测技术的多样性和灵敏度不断提高,近些年来,唾液作为临床样本已被广泛应用于多种疾病诸如艾滋病、自身免疫性疾病、酒精性肝硬变、囊性纤维病、糖尿病、心血管病、龋病等疾病的药物水平监测、病情监控和疗效评价当中。文献和我们以往的研究工作表明唾液中含有丰富的N-连接糖蛋白和O-连接糖蛋白,而唾液蛋白糖基化的改变与疾病的发生发展具有较高的关联性。从变化的唾液糖蛋白糖链中可以找到与疾病相关的生物标志物以用于检测,而基于唾液检测的新技术和新方法也会逐渐成为今后非侵袭性临床诊断发展的一个方向。
近年来大量研究表明:随着肿瘤的发生发展,患者的肿瘤组织、血清和唾液等体液中伴随着糖蛋白糖基化异常改变。不过,目前研究发现人唾液中有1939种蛋白质,人血浆中有3020种蛋白质,仅有27%的唾液蛋白质组与血浆蛋白质组重合。血浆蛋白质组学发现的177个与心血管疾病相关的潜在生物标志物的蛋白质中,也仅有40%的蛋白质出现在唾液蛋白质组中;在已列出的1058个潜在癌症相关生物标志物的蛋白质中,仅有34%的蛋白质出现在唾液蛋白质组中。这表明许多血液循环中的生物标志物并非能够在唾液中得到鉴定。另外,即使是同一种蛋白,较之于血清,其在唾液中的含量通常明显较低。所以在实践中,两者没有必然的联系,往往需要研究人员经过大量的实验和分析,才能判断是否有蛋白质组重合的可能性。
发明内容
关于肺小细胞癌(SCLC)的筛查、诊断以及评估等,发明人通过大量实验和分析,确定了以下结论:
一、HHL识别的糖链(High-Mannose,Manα1-3Man,Manα1-6Man,Man5-GlcNAc2-Asn)在肺小细胞癌患者的唾液中低于健康志愿者组和肺鳞癌组(HV组46.94%,SCC组39.53%,SCLC组33.71%),高于肺部良性病患者以及肺腺癌患者(COPD组16.78%,ADC组14.43%)。
二、以下3种N-糖链m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129,仅存在于SCLC患者的唾液中,而未见于HV以及COPD、ADC、SCC患者的唾液中。
根据以上结论,已经可得出以下应用方案:
第一方面,一种凝集素单独作为唾液特异糖蛋白糖链结构识别的试剂以构建相关产品的用途,所述凝集素为HHL,用途为肺小细胞癌患者(SCLC)的筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估;所述相关产品为试剂盒、设备、可操作系统和/或它们的组合,并提示以下检测依据:
凝集素HHL所识别的N-糖链中如果存在以下3种N-糖链m/z 1606.560、m/z1825.634、m/z 3188.129之一或任意组合,则表明唾液样本主体为肺小细胞癌患者。
这里,“提示检测依据”的具体形式不限,例如:随附的产品说明书中记载该检测依据;涉及到软件的,则还可由相应的算法体现该检测依据。
第二方面,特定糖链的识别单元在构建用于基于唾液样本作肺小细胞癌(SCLC)筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估的产品方面的用途,所述识别单元识别以下3种N-糖链(通过判断“有”、“无”即可得出结论):m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z3188.129之一或任意组合。
这里,识别单元可以是可执行的软件代码模块,标识出是否存在上述以下3种N-糖链之一或任意组合,进而可鉴别出唾液样本主体是否为肺小细胞癌患者;相应的,产品可以是与糖链分析设备(如质谱仪)连接的控制装置(例如,可使糖链分析设备按指令进行特定糖链的识别)、信息输出装置(例如,根据糖链分析设备输出带有标识的糖链清单)及其组合等。随着糖链识别技术的发展,识别单元也可能会出现其他具体形式。
第三方面,一种用于肺小细胞癌(SCLC)筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估的系统,针对唾液样本,该系统包括:
A、凝集素HHL
B、用于偶联凝集素HHL的亲和层析固相载体;
C、用于分离出N-糖链的试剂和装置;
D、质谱仪,用于显示对应于各种N-糖链的m/z值;
E、用于根据质谱图识别以下以下3种N-糖链之一或任意组合的标识、模块或处理器,以得出是否含有以下3种N-糖链之一或任意组合的判定结果:m/z 1606.560、m/z1825.634、m/z 3188.129。
上述用于偶联凝集素HHL的亲和层析固相载体为Fe3O4磁性微粒、琼脂糖凝胶、葡聚糖凝胶或玻璃微球。
第四方面,一种智能终端,包括处理器和程序存储器,所述程序存储器存储的某部分程序被处理器加载时执行以下步骤:
获取唾液样本中凝集素HHL所识别的N-糖链信息;
判断其中是否存在以下3种N-糖链m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129之一或任意组合。
如果存在,输出表明唾液样本主体为肺小细胞癌患者的提示信息。
这里,智能终端可以与糖链分析设备(如质谱仪)通信,也可以连接移动存储介质等,以获取唾液样本中凝集素HHL所识别的N-糖链信息;判断环节也有可能与获取环节合并,即直接获取/判断唾液样本中是否存在N-糖链m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z3188.129之一或任意组合的信息。
第五方面,一种计算机可读存储介质,存储有计算机程序,所述计算机程序被处理器加载时执行上述步骤。
采用本发明的方案,能够根据唾液样本,快速、准确地鉴别受试者是否为肺小细胞癌患者。
附图说明
图1为凝集素芯片对唾液样本进行逐例检测,其中凝集素HHL结果的散点图分析。图中,纵坐标表示凝集素芯片上该凝集素所对应的归一化荧光强度NFI,图中横线代表两端所示两组间的比较,p为根据单因素方差分析所获得的P-Value,p<0.05表示差异显著,p<0.001表示差异极显著;HV:健康志愿者;COPD:肺部良性疾病患者,ADC:肺腺癌患者,SCC:肺鳞癌患者,SCLC:肺小细胞癌患者。
图2至图6分别为HV、COPD、ADC、SCC以及SCLC唾液样本HHL分离糖蛋白N-糖链结构质谱解析。
具体实施方式
申请人前期的研究发现了肺小细胞癌患者唾液糖蛋白糖型与健康志愿者、肺部良性病患者、肺腺癌患者以及肺小细胞癌患者间存在显著的差异,凝集素HHL识别的糖链在HV、COPD、ADC、SCC、SCLC几组间存在显著的差异(图1)。基于此,我们设计并完成了如下实验。
以下详细介绍本申请的相关验证实验及分析,发明人具体的研发过程不限于此。
一、研究方法:
利用一种四氧化三铁纳米磁粒表面偶联上凝集素HHL制成凝集素磁性微粒复合物来富集各组唾液混合样本中的特定糖蛋白,利用PNGase F酶切法分离特定糖蛋白上的N-糖链,并由基质辅助激光电离飞行时间质谱(Matrix-Assisted Laser DesorptionIonization-Time of Flight-Mass Spectrum,MALDI-TOF-MS)对糖链进行质谱鉴定并对糖链结构进行推测,获得凝集素HHL识别的健康志愿者和肺良性病患者以及肺腺癌患者、肺小细胞癌患者唾液特定糖蛋白糖链谱并对比分析差异,具体如下。
1.1、唾液样本的收集及预处理
本实验所采用的健康志愿者及肺部良性疾病患者、肺腺癌患者、肺鳞癌患者、肺小细胞癌患者唾液样本均严格经过西北大学以及西安交通大学第一附属医院的伦理审批(Human Research Ethics Committees(HRECs))。所有捐赠唾液样本的志愿者连同协助采样指导的临床医师均对本研究工作知情、同意且高度配合,在均一的采样要求之下完成唾液样本的采集。其具体要求为:样本捐献者需无糖尿病,除肺部外其他的器官应无炎症以及肿瘤等慢性疾病,在采样时捐献者需确定在采集唾液前3小时内未进食并且24小时内未服用药物,然后用洁净无菌的生理盐水(0.9%NaCl)漱口三次,确保捐献者口腔卫生和无食物残渣的前提下,捐献者舌尖抵住上颚并于舌下收集自然分泌的唾液样本收集至2mL离心管,立即加入10μL蛋白酶抑制剂(Protease Inhibitor Cocktail,Sigma-Aldrich,U.S.A)于冰浴暂存。在临床医师指导下共收集唾液样本例:其中健康志愿者30例(HV,n=30),肺部良性疾病患者34例(COPD,n=34),肺腺癌患者49例(ADC,n=49),肺鳞癌患者55例(SCC,n=55),肺小细胞癌患者22例(SCLC,n=22),具体的样本信息如表1所示。
唾液采集12小时内,将唾液按1mL分装至离心管中,若有量少不足1mL者可加入1×PBS补足至1mL,10,000g×15min离心,小心吸取上清液,经微量核酸蛋白测定仪(Nano-drop)测定浓度后按1mg唾液蛋白10μL蛋白酶抑制剂的量加入蛋白酶抑制剂,随后按质量取每例唾液样本50μg进行混合。分别获得健康志愿者和乳腺疾病组(BD)唾液混合样本。利用BCA蛋白定量试剂盒(碧云天生物技术,中国上海)测定混合样本浓度。
表1用于肺部良性疾病诊断的唾液样本信息
Figure BDA0002374075690000051
Figure BDA0002374075690000061
1.2、凝集素HHL磁性微粒复合体的制备
取2mg环氧化修饰的Fe3O4磁性微粒至2mL离心管中,加入1mL无水乙醇,反复颠倒2min,置于磁性分离器上使磁粒充分吸附在离心管底面与侧面,倒去乙醇,如此重复5次,充分清洗磁性微粒。清洗后的磁性微粒用1mL的偶联缓冲液润洗,重复3遍后加入600μL0.5mg/mL凝集素HHL溶液(HHL溶解在偶联缓冲液中),固定在摇床上室温震荡反应6h使充分偶联。偶联结束后将离心管置于磁性分离架上分离,除去液体后取下离心管加入1mL偶联缓冲液清洗HHL-磁粒复合体,反复颠倒使其重新悬浮,充分悬浮后置于磁性分离架上分离,除去偶联缓冲液,重复清洗3次,以便充分除去未结合的凝集素HHL,获得凝集素HHL磁性微粒复合体。
1.3、凝集素HHL识别的糖蛋白的分离
首先,使用结合缓冲液清洗凝集素磁性微粒复合物3次,每次3min。将唾液蛋白用结合缓冲液补足体积至500μL,混匀后加入到凝集素磁性微粒复合物中,颠倒混匀,放入摇床中25℃震荡孵育3h。孵育完成后,磁场分离,弃上清,使用清洗缓冲液清洗磁性微粒5次,每次3min。清洗完成后,磁场分离,弃上清,向磁性微粒中加入400μL清洗缓冲液,颠倒混匀后放入摇床,25℃震荡洗脱1h。磁场分离,收集上清,重复上步一次,将两次收集的上清混合,BCA测定洗脱的蛋白浓度。
1.4、N-糖链的分离
(1)取经HHL-磁力复合体分离的糖蛋白400μg,加入8倍体积的9M Urea/1M NH4HCO3溶液,混匀后37℃震荡反应1h,变性糖蛋白;
(2)向蛋白溶液中加入5%体积的100mM DTT溶液母液,使DTT终浓度为5mM,混匀后室温静置1h,还原蛋白中的二硫键;
(3)将蛋白溶液先冷却至室温,向蛋白溶液中加入5%体积的200mM IAM溶液母液,使IAM终浓度为10mM,室温、避光摇动中反应30min;
(4)将蛋白溶液转入10K超滤离心管中,10000g室温离心15min,弃滤出液,向管中加入400μL 40mM NH4HCO3溶液,吹打混匀,重复上步5次。补足体积至500μL,加入3μL PNGaseF糖苷酶,混匀后放入37℃摇床中震荡孵育过夜,酶切糖蛋白上的N-聚糖;
(5)10000g离心10min,收集滤出液。再向管中加200μL超纯水,混匀后再次离心收集滤出液,将两次滤出液混合,并用冷冻干燥仪干燥。
1.5、糖链的脱盐纯化
(1)预清洗:将Hypercarb SPE柱(50mg)取出,向柱中依次加入3mL 1M NaOH溶液,3mL超纯水,3mL 30%乙酸,3mL超纯水;
(2)平衡:向柱中依次加入3mL 50%ACN/0.1%TFA,3mL 5%ACN/0.1%TFA溶液;
(3)上样:向冻干的N-聚糖中加入500μL 0.1%TFA,涡旋振荡。将溶解后的N-聚糖加入到柱中,收集滤出液,再次上样,重复上样3次;
(4)清洗:向柱中依次加入3mL超纯水,3mL 5%ACN/0.1%TFA;
(5)洗脱:向柱中加入400μL 50%ACN/0.1%TFA,收集滤出液,重复一次,将两次收集的滤出液合并,使用冷冻干燥仪冻干。
1.6、N-聚糖质谱解析
(1)向冻干的N-聚糖加入20μL糖链溶液,吹打至糖链完全溶解,涡旋后离心;
(2)取2μL溶解后的糖链,使用移液器点样于MTP Anchorchip 384点的靶板上,真空抽干,再次取2μL点在靶板的原位置,真空抽干;
(3)取1μL 20mg/ml的DHB基质溶液点在结晶的糖链样品上,待真空抽干;
(4)将靶板上机,以反射阳性离子模式鉴定多糖。
1.7、质谱数据分析
使用flexAnalysis软件打开质谱原始数据,以信噪比(SNR)大于6,选取m/z 1000-4000范围的质谱峰,将选取的质谱数据转入Glycowork beach软件,分析标准为:选择前体离子分子量,电荷状态,前体离子容忍度为1,碎片离子容忍度为0.5,无化学衍生化,无还原端修饰。绘制二级碎片和一级质谱结果。
糖链的相对丰度计算方法:将所有糖链的信号值相加作为分母(N),用单个糖链的信号值(n)除单个以N,即n/N为单个糖链相对丰度。
二、研究结果:
通过MALDI-TOF-MS共鉴定到了311种信号峰(SNR大于6),能解析到的糖链信号峰97种,其中63种HHL识别的N-糖链峰,如表二所示。在HV、COPD、ADC、SCC、SCLC组中表分别鉴定到了14、5、13、13、18种HHL特异性识别的N-糖链,其相对丰度分别为46.94%、16.78%、13.43%、39.53%、33.71%。
表2.五组样本中分离出的HHL识别的糖链
Figure BDA0002374075690000081
Figure BDA0002374075690000091
Figure BDA0002374075690000101
Figure BDA0002374075690000111
Figure BDA0002374075690000121
Figure BDA0002374075690000131
Figure BDA0002374075690000141
附注:蓝色(深色)正方形:N-乙酰葡糖胺;红色三角形:岩藻糖;绿色(深色)圆形:甘露糖;黄色(浅色)圆形:半乳糖;黄色(浅色)正方形:N-乙酰半乳糖胺;紫色菱形:唾液酸;ND代表在样本中没有检测到对应的糖链。
其中4种N-糖链仅存在于HV组的唾液样本中。具体如下:
m/z1705.604、m/z1932.695、m/z2207.758、m/z2369.810、m/z2920.036。
其中2种N-糖链仅存在于COPD组的唾液样本中。具体如下:
m/z 1866.661、m/z2677.959。
其中6种N-糖链仅存在于ADC组的唾液样本中。具体如下:
m/z 1680.539、m/z 1875.673、m/z 1933.715、m/z 2440.835、m/z 2531.863、m/z2547.896。
其中14种N-糖链仅存在于SCC组的唾液样本中。具体如下:
m/z 1501.529、m/z 1565.533、m/z 1641.599、m/z1647.586、m/z 1663.581、m/z1924.679、m/z 2020.711、m/z 2168.784、m/z 2328.822、m/z 2334.809、m/z 2350.804、m/z2418.853、m/z2693.916、m/z2772.957。
其中3种N-糖链仅存在于SCLC组的唾液样本中。具体如下:
m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z3188.129。
所以,最后可以得出:针对唾液样本进行检测,只需测定其是否含有以下这3种N-糖链之一或任意组合(m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129),即可作出肺小细胞癌的筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估的结果。

Claims (6)

1.一种凝集素单独作为唾液特异糖蛋白糖链结构识别的试剂以构建相关产品的用途,其特征在于:所述凝集素为HHL,用途为肺小细胞癌(SCLC)的筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估;所述相关产品为试剂盒、设备、可操作系统和/或它们的组合,并提示以下检测依据:
如果唾液样本中存在凝集素HHL所识别糖链中的以下三种N-糖链之一或任意组合,则表明唾液样本主体为肺小细胞癌患者;
m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129。
2.特定糖链的识别单元在构建用于基于唾液样本作肺小细胞癌(SCLC)筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估的产品方面的用途,其特征在于:所述识别单元识别以下以下糖链m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129之一或任意组合。
3.一种用于肺小细胞癌(SCLC)筛查、早期诊断、风险评估、药物筛选和/或疗效评估的系统,针对唾液样本,其特征在于,该系统包括:
A、凝集素HHL;
B、用于偶联凝集素HHL的亲和层析固相载体;
C、用于分离出N-糖链的试剂和装置;
D、质谱仪,用于显示对应于各种N-糖链的m/z值;
E、用于根据质谱图识别以下3种N-糖链之一或任意组合的标识、模块或处理器,以得出是否含有该3种N-糖链之一或任意组合的判定结果;
m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129。
4.根据权利要求3所述的系统,其特征在于:所述用于偶联凝集素HHL的亲和层析固相载体为Fe3O4磁性微粒、琼脂糖凝胶、葡聚糖凝胶或玻璃微球。
5.一种智能终端,包括处理器和程序存储器,其特征在于:所述程序存储器存储的某部分程序被处理器加载时执行以下步骤:
获取唾液样本中凝集素HHL所识别的N-糖链信息;
判断其中是否存在以下N-糖链m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129之一或任意组合;
如果存在,输出表明唾液样本主体为肺小细胞癌患者(SCLC)的提示信息。
6.一种计算机可读存储介质,存储有计算机程序,其特征在于:所述计算机程序被处理器加载时执行以下步骤:
获取唾液样本中凝集素HHL所识别的N-糖链信息;
判断其中是否存在以下N-糖链m/z 1606.560、m/z 1825.634、m/z 3188.129之一或任意组合;
如果存在,输出表明唾液样本主体为肺小细胞癌患者(SCLC)的提示信息。
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