CN111118178A - 绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 - Google Patents
绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111118178A CN111118178A CN202010098387.4A CN202010098387A CN111118178A CN 111118178 A CN111118178 A CN 111118178A CN 202010098387 A CN202010098387 A CN 202010098387A CN 111118178 A CN111118178 A CN 111118178A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- sheep
- deletion
- ghr gene
- polymorphism
- genotype
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/6858—Allele-specific amplification
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/124—Animal traits, i.e. production traits, including athletic performance or the like
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明涉及一种绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对,所述引物对能够用于PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段。本发明能够简单、快速、低成本、精确地检测所述插入/缺失多态性位点的基因型,检测的插入/缺失多态性位点能够作为绵羊产羔数的分子标记位点,从而加快建立产羔数性状优良的绵羊种群,提高良种选育速度。
Description
技术领域
本发明属于生物技术与家畜育种技术领域,尤其是一种绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用。
背景技术
绵羊以其产肉、产奶和产绒性能深受消费者的喜爱,随着人们生活水平的提高,社会对羊肉、羊奶、羊绒等产品的需求越来越高。为了实现高产、优质和高效的绵羊育种目标,人们对绵羊的研究已在分子水平上,以DNA的多态性为标记对绵羊进行基因结构和功能的遗传分析和研究,通过筛查与绵羊产羔数性状密切相关的DNA标记位点并进行检测,并根据其基因多态性与产羔数性状的关联,从而可以加快建立优良产羔数性状绵羊种群,这类标记具有存在较为普遍、遗传稳定、准确度高等优点,因而被广泛应用于各个领域。
分子标记辅助选择(MAS)作为分子遗传标记的常用方法,通过对目标基因所连锁的分子标记的基因型分析从而进行育种,使用这种方法可以大幅度地缩短育种年限,针对某一性状专一选择,从而能够有效地提高育种效率。
近年来,随着测序技术的不断升级与测序成本的降低,插入/缺失(indel)突变作为一种重要的分子遗传标记而逐渐受到人们的重视。插入和缺失(InDels)构成自然突变库的重要组成部分,InDels是由于聚合酶滑移、转座子、不均等交叉等导致的在整个基因组中大量分布的结构,有时可能导致生物体功能的获得或丧失。InDels最常见的类别包括单碱基对插入和缺失,单体碱基对扩展和多碱基对扩展,然而在基因组中包含随机序列和转座子插入的InDel相对较少。由于可以简单地使用凝胶对InDels进行基因分型鉴定,使InDels更具价值。在以前的一些研究中,还发现InDels比微卫星标记更具多态性。如今,InDels已在多种应用中使用,包括种群遗传学、分类学诊断标记、遗传图谱构建和不同农作物中的关联图谱,在动物繁殖性状的选育方面的indel标记的研究和应用较少。在羊上已有的部分关于indels的报道显示:在生长方面,有报道在陕北白绒山羊KDM6A基因内含子区域存在一个16bp的indel可以显著的影响山羊的体高,胸深,体长等生长性状(Wang.et al.,2018);在繁殖方面,有报道山羊CTNNB1存在一26bp的indel与山羊第一胎产羔数极显著相关(Zhang.et al.,2018);还有chen等对山羊SPEF2三个indel位点进行了关联分析,发现SPEF12对山羊的产羔数有显著影响(chen et al.,2018)。这些研究都表明InDels对动物分子育种具有重要的意义和参考价值。
生长激素受体(growth hormone receptor,GHR)基因生长激素受体(growthhormone receptor,GHR)是Ⅰ类细胞因子受体超家族(classⅠcytokine receptorsuperfamily)中的一员,大多数哺乳动物GHR基因由10个外显子和9个内含子组成。生长激素具有能加快肌肉、骨骼生长、促进性腺的发育成熟、渗透压调节等作用,生长激素必须先于靶细胞膜上的GHR结合后将信息传入细胞内才能引发一系列生理效应。如果GHR不足或缺乏或变异,GH便无法发挥其作用,故GHR基因在动物的生长发育过程中起重要作用。生长激素受体在脑、肝脏、肾脏、性腺、肌肉、肠等多种组织中均有表达。此外,GHR基因表达受很多因素调控,如动物品种及动物年龄、生理状态和营养水平等。生长激素受体基因对动物个体的促生长作用是通过似胰岛素因子(IGF)完成的,IGF主要产生于肝脏细胞,并且只有当GH与肝细胞膜上的GHR结合时才大量产生。不少研究表明:肝脏是GHR基因的主要表达器官。SUN Wei等(2012)揭示,GHR基因与湖羊生长早期肉质性状有关,可与IGF-Ⅰ基因一同作为湖羊生长早期肉质性状的候选基因。因此,研究GHR基因的突变对于快速培育产羊羔数性状优良的绵羊种群、达到更高的经济效应有重要意义。
通过检索,尚未发现与本专利申请相关的公开专利文献。
发明内容
本发明目的在于克服现有技术中的不足之处,提供一种绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用,本发明能够简单、快速、低成本、精确地检测所述插入/缺失多态性位点的基因型,检测的插入/缺失多态性位点能够作为绵羊产羔数的分子标记位点,从而加快建立产羔数性状优良的绵羊种群,提高良种选育速度。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:
一种绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对,所述引物对能够用于PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段。
而且,所述插入/缺失多态性位点为绵羊GHR基因NC_040267.1:g.32005124_32005146位23-bp插入/缺失多态性位点。
而且,所述引物对为:
上游引物:SEQ NO.1 5'-TGCTGTATGGCCCCTCTAGTA-3'(21nt);
下游引物:SEQ NO.2 5'-CTAAAGAGTTTCCCCAGTCCCC-3'(22nt)。
如上所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对在绵羊产羔数分子标记辅助选择育种方面中的应用。
一种包含如上所述的引物对的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测试剂盒。
一种利用如上所述的引物对的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法,步骤如下:
以待测绵羊基因组DNA为模板,以引物对为扩增引物,利用PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段,对扩增产物进行电泳,根据电泳结果鉴定所述插入/缺失多态性位点的基因型。
而且,所述PCR扩增采用的反应程序为:95℃预变性5min;94℃变性30s,68℃退火30s,72℃延伸12~24s,18个循环,每循环后退火温度减1℃;50℃退火30s,72℃延伸12~24s,25~30个循环;72℃延伸10min;
或者,所述电泳时采用质量浓度为3.0~3.5%的琼脂糖凝胶。
而且,根据电泳结果,所述插入/缺失多态性位点的插入/插入基因型II表现为237bp一条带纹,插入/缺失基因型ID表现为237bp和260bp两条带纹,缺失/缺失基因型DD表现为260bp一条带纹。
一种如上所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法在绵羊产羔数分子标记辅助选择育种方面中的应用。
而且,所述应用为:所述检测方法得到的插入/缺失多态性位点的基因型作为提高绵羊第3胎产羔数的DNA标记方面中的应用。
本发明取得的优点和积极效果为:
1、本发明根据绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点(参考序列NC_040267.1:g.32005124_32005146)设计引物,以绵羊基因组DNA为模板,通过序列扩增、电泳鉴定,能够简单、快速、低成本、精确地检测所述插入/缺失多态性位点的基因型。
2、本发明对绵羊(例如,澳洲白绵羊)GHR基因插入/缺失多态性位点(参考序列NC_040267.1:g.32005124_32005146)进行基因型和基因频率分析,对该插入/缺失多态性位点与绵羊生产性状进行关联分析,结果表明本发明检测的插入/缺失多态性位点能够作为绵羊产羔数的分子标记位点,从而加快建立产羔数性状优良的绵羊种群,提高良种选育速度。
3、本发明方法以待测绵羊全基因组DNA为模板,通过PCR扩增绵羊GHR基因部分片段,再进行琼脂糖凝胶电泳,根据电泳结果鉴定绵羊GHR基因
NC_040267.1:g.32005124_32005146位23-bp插入/缺失多态性位点的基因型。该23-bp插入/缺失多态性位点的不同基因型与澳洲白绵羊的产羔数性状存在显著相关关系,存在提高绵羊第1胎产羔数性状的DNA标记。本发明提供的检测绵羊GHR基因插入/缺失多态性的方法,可应用于绵羊分子标记辅助选择育种中,加快建立优良绵羊遗传资源群体。
附图说明
图1为本发明中绵羊GHR基因扩增产物(引物对P2)的琼脂糖凝胶电泳结果图;M表示Marker;
图2为本发明中绵羊GHR基因PCR扩增产物测序图;其中:黑色方框标出的部分表示23-bp插入序列:
NC_040267.1:g.32005124_32005146delTATTCTACCATTAATCGAGGTAC。
具体实施方式
下面详细叙述本发明的实施例,需要说明的是,本实施例是叙述性的,不是限定性的,不能以此限定本发明的保护范围。
本发明中所使用的原料,如无特殊说明,均为常规的市售产品;本发明中所使用的方法,如无特殊说明,均为本领域的常规方法。
一种绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对,所述引物对能够用于PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段。
较优地,所述插入/缺失多态性位点为绵羊GHR基因NC_040267.1:g.32005124_32005146位23-bp插入/缺失多态性位点。
较优地,所述引物对为:
上游引物:SEQ NO.1 5'-TGCTGTATGGCCCCTCTAGTA-3'(21nt);
下游引物:SEQ NO.2 5'-CTAAAGAGTTTCCCCAGTCCCC-3'(22nt)。
如上所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对在绵羊产羔数分子标记辅助选择育种方面中的应用。
一种包含如上所述的引物对的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测试剂盒。
一种利用如上所述的引物对的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法,步骤如下:
以待测绵羊基因组DNA为模板,以引物对为扩增引物,利用PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段,对扩增产物进行电泳,根据电泳结果鉴定所述插入/缺失多态性位点的基因型;
其中,所述插入/缺失多态性位点选自绵羊GHR基因NC_040267.1:g.32005124_32005146位23-bp插入/缺失多态性位点。
较优地,所述PCR扩增采用的反应程序为:95℃预变性5min;94℃变性30s,68℃退火30s,72℃延伸12~24s,18个循环,每循环后退火温度减1℃;50℃退火30s,72℃延伸12~24s,25~30个循环;72℃延伸10min。
较优地,所述电泳时采用质量浓度为3.0~3.5%的琼脂糖凝胶。
较优地,根据电泳结果,所述插入/缺失多态性位点的插入/插入基因型II表现为260bp一条带纹,插入/缺失基因型ID表现为260bp和237bp两条带纹,缺失/缺失基因型DD表现为237bp一条带纹。
一种如上所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法在绵羊产羔数分子标记辅助选择育种方面中的应用。
较优地,所述插入/缺失多态性位点的插入/缺失基因型作为提高绵羊第1胎产羔数的DNA标记。
更为具体地,相关制备步骤如下:
本发明利用PCR方法对所发现的绵羊GHR基因g.32005124_32005146位点(参考序列:NC_040267.1)突变可能产生的插入/缺失多态性进行检测,并将其与绵羊产羔数性状进行关联分析,验证其是否存在可以作为绵羊分子育种中标记辅助选择的分子标记。
1.实验药品与试剂
1.1生化试剂与生物学试剂:①Taq DNA聚合酶(购自Fermantas即MBI公司);②蛋白酶K(购自华美生物工程公司);③Marker I(购自天根生化科技(北京)有限公司)。
1.2普通试剂:柠檬酸、柠檬酸钠、葡萄糖、Tris、EDTA、NaCl、NaOH、KCl、Na2HPO4、KH2PO4、Tris饱和酚、氯仿、异戊醇、无水乙醇、醋酸钠、十二烷基磺酸钠(SDS)、溴化乙锭(EB)、溴酚蓝、二甲基苯氰FF、乙酸、蔗糖、硼酸、琼脂糖等,普通试剂从华美生物工程公司购买,为进口分装产品。
1.3溶液与缓冲液:所有溶液与缓冲液均采用去离子超纯水配制;高压灭菌条件为15bf/in(1.034×105Pa)、25min。试剂配制方法均参考Sambrook等编著的《分子克隆实验指南》;
1)提取组织样DNA所用溶液
①2mol/LNaCl:11.688g溶于水,定容至100mL,高压灭菌;
②组织DNA提取液(100mL):l mol/L Tris-HCl(pH 8.0)l mL、0.5mol/L EDTA(pH8.0)20mL,及2mol/LNaCl 5mL,定容至100mL。
2)琼脂糖凝胶电泳分析所用溶液
①0.5×TBE缓冲液:取10×TBE 50mL定容至1000mL;
②上样缓冲液:含质量终浓度0.25%溴酚蓝以及质量终浓度0.25%二甲苯青FF,溶剂为40.0%(w/v)蔗糖水溶液。
2.设计绵羊GHR基因InDel位点扩增引物
在NCBI上检索绵羊GHR基因的序列(NC_040267.1),并利用Primer 5.0设计能够扩增GHR基因多个候选InDel位点DNA片段的引物,其中能够扩增绵羊GHR基因第1内含子区g.32005124_32005146InDel位点的PCR引物对为P2(引物设计完成时间2019年10月1日)。引物对P2序列见表1。
表1.绵羊GHR基因InDel位点扩增引物表
上述引物对P2对绵羊基因组扩增,能够扩增包含绵羊GHR基因第1内含子区的候选InDel位点(NC_040267.1:g.32005124_32005146)的片段。理论上,当g.32005124_32005146位之间的序列TATTCTACCATTAATCGAGGTAC插入时,利用引物对P2进行GHR扩增所得到的是260bp大小的带纹;当g.32005124_32005146位之间的序列TATTCTACCATTAATCGAGGTAC缺失时,利用引物对P2进行GHR扩增所得到的是237bp大小的带纹;当g.32005124_32005146位之间的序列TATTCTACCATTAATCGAGGTAC在一个等位基因上出现插入,在另一个等位基因上出现缺失时,利用引物对P2进行GHR扩增所得到的是大小分别为260bp和237bp的带纹。
3.以引物对P2PCR扩增待测绵羊GHR基因片段
3.1绵羊耳组织样品的采集
实验所用的动物共计823个样本,具体信息见表2。产羔数性状数据由原种场工作人员测量,采取个体耳组织样品,样品用70%乙醇保存,冰盒低温带回实验室后置于-80℃冻存。
表2.采样信息
3.2组织样品基因组DNA的提取与分离
参考Sambrook等编著的《分子克隆实验指南》(2002)和以下文献:蓝贤勇.绵羊重要功能基因遗传变异及其与经济性状的关系[D.]西北农林科技大学博士学位论文,2007,陕西杨凌。
3.3琼脂糖凝胶电泳检测DNA
参考Sambrook等编著的《分子克隆实验指南》(2002)。
3.4DNA的纯化
参考Sambrook等编著的《分子克隆实验指南》(2002)。
3.5分光光度法检测DNA
用紫外光光度计测定DNA样品在260nm、280nm处的OD值。计算DNA含量和OD260/OD280的比值。如OD260/OD280比值小于1.6,说明样品中含有较多的蛋白质或酚,则应进行纯化;若比值大于1.8,则应该考虑去除RNA纯化。
DNA浓度(ng/μL)=50×OD260值×稀释倍数。
DNA检测完毕后,取出一定的量稀释至20ng/μL,存于-20℃备用,其余的存放于-80℃。
3.6PCR扩增
PCR反应体系采用混合加样法,即根据每一个反应体系所需的各种组分的数量和1次反应所需的PCR反应的个数,算出各种反应组分的总量,加入到1个1.5mL离心管中,充分混匀后瞬时离心,再分装到每个0.2mL EppendorfPCR管中,然后加入模板DNA(浓度为20ng/μL的绵羊基因组DNA),再瞬时离心后进行PCR扩增;PCR反应体系包括2×Taq PCR SuperMix(包括Taq DNA聚合酶、dNTPs和反应缓冲液,浓度为2×)6.5μL;上游引物0.25μL;下游引物0.25μL(上、下游引物浓度为10pmol/μL);基因组DNA 0.5μL;去离子水5.5μL;共13μL。
3.7PCR反应的程序
95℃预变性5min;94℃变性30s,68℃退火30s,72℃延伸12s,18个循环,每循环后退火温度减1℃;50℃退火30s,72℃延伸12s,25个循环;72℃延伸10min。
4.PCR扩增产物的琼脂糖凝胶电泳检测分析
琼脂糖凝胶电泳检测分3步:1)制作3.5%的琼脂糖凝胶,使用核酸染料染色,点样4.5μL,点样后120V电压电泳1.0~1.2h;2)待分子量不同的DNA片段分离清晰时,在BIO-RADGel Doc 2000凝胶成像系统成像;3)根据琼脂糖凝胶电泳结果分析InDel位点多态性;
对于澳洲白绵羊GHR基因g.32005124_32005146位存在的23-bp插入/缺失多态性位点,其插入/缺失突变(InDel)在不同绵羊个体中的多态性分析结果参见图1,PCR的扩增产物(引物对P2)经琼脂糖凝胶电泳检测之后,所扩增的对应插入/缺失多态性位点的插入/插入基因型(II)表现为260bp一条带纹,插入/缺失基因型(ID)表现为260bp和237bp两条带纹,缺失/缺失基因型(DD)表现为237bp一条带纹。分析结果经测序进行了验证,见图2。
5.绵羊GHR基因InDel位点的频率统计分析
1)基因和基因型频率
基因型频率是指一个群体中某一性状的某种基因型个体数占总个体数的比率。PYY=NYY/N,其中PYY代表某一位点的YY基因型频率;NYY表示群体中具有YY基因型的个体数;N为检测群体的总数量。
基因频率是指一个群体中某一基因数对其等位基因总数的相对比率。计算的公式可以写成:PY=(2NYY+NYa1+NYa2+NYa3+NYa4+……+NYan)/2N
式中,PY表示等位基因Y频率,NYY表示群体中具有YY基因型的个体数量,NYai表示群体中具有Yai基因型个体数量,a1-an为等位基因Y的n个互不相同的复等位基因。
2)统计结果
澳洲白绵羊样本GHR基因g.32005124_32005146位23-bp插入/缺失多态性位点的基因型频率及等位基因频率如表3所示。
表3.澳洲白绵羊GHR基因InDel位点基因频率分布表
6.绵羊GHR基因InDel位点基因效应的关联分析
基因型数据:PCR扩增后琼脂糖凝胶电泳识别的基因型;
生产数据:澳洲白绵羊的每胎产羔数据。
关联分析模型:利用SPSS(18.0)软件来分析品种,不同因素与产羔数性状相关性。首先要对所得数据描述性的统计分析,来确定是不是存在离群值。然后根据数据的特性,利用方差分析、多元线性模型来分析基因型的效应。在数据处理的过程中,考虑到个体的效应,基因之间的互作以及基因型的效应,采用固定的模型来进行相关分析。此外,根据实际条件来进行取舍,完整模型:Yijlm=μ+Si+HYSj+Gl+eijlm;其中,Yijlm:个体表型记录;μ:总体均值;Si:产仔年限效应;HYSj:绵羊群体均值;Gl:基因型的固定效应;eijlm:随机误差。第二胎次的结果使用方差分析,第三胎中将n<3的基因型的个体剔除并做t检验,方差分析结果如表4所示。
表4.GHR基因InDel位点与澳洲白绵羊每胎产羔数性状方差分析
注:平均值肩上字母不同a和b表示差异极显著(P<0.05);
由表4可以看出,GHR基因23-bp InDel多态性对澳洲白绵羊第一胎产羔数有显著影响(P<0.05),ID基因型个体性状优于II和DD基因型个体。因此,绵羊GHR基因23-bp插入/缺失多态性位点(NC_040267.1:g.32005124_32005146)的ID基因型可作为绵羊产羔数的DNA分子标记。
总之,本发明利用PCR扩增方法检测绵羊GHR基因23-bp插入/缺失多态性位点(NC_040267.1:g.32005124_32005146)的基因型,并将其与澳洲白绵羊的前五胎产羔数进行关联分析,发现了可以作为绵羊产羔数分子育种中辅助选择的分子标记,从而加快良种选育速度。本发明所建立的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法,为利用InDel实现绵羊产羔数性状的标记辅助选择(MAS)提供了理论和实践依据。
本发明相关序列如下:
1、人工合成SEQ NO.1
TGCTGTATGGCCCCTCTAGTA 21
2、人工合成SEQ NO.2
CTAAAGAGTTTCCCCAGTCCCC 22
3、NC_040267.1:g.32005124_32005146位插入序列
TATTCTACCATTAATCGAGGTAC 23
尽管为说明目的公开了本发明的实施例,但是本领域的技术人员可以理解:在不脱离本发明及所附权利要求的精神和范围内,各种替换、变化和修改都是可能的,因此,本发明的范围不局限于实施例所公开的内容。
序列表
<110> 天津奥群牧业有限公司
<120> 绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 上游引物(Unknown)
<400> 1
tgctgtatgg cccctctagt a 21
<210> 2
<211> 22
<212> DNA
<213> 下游引物(Unknown)
<400> 2
ctaaagagtt tccccagtcc cc 22
<210> 3
<211> 23
<212> DNA
<213> NC_040267.1:g.32005124_32005146位插入序列(Unknown)
<400> 3
tattctacca ttaatcgagg tac 23
Claims (10)
1.一种绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对,其特征在于:所述引物对能够用于PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段。
2.根据权利要求1所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对,其特征在于:所述插入/缺失多态性位点为绵羊GHR基因NC_040267.1:g.32005124_32005146位23-bp插入/缺失多态性位点。
3.根据权利要求1或2所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对,其特征在于:所述引物对为:
上游引物:SEQ NO.1;
下游引物:SEQ NO.2。
4.如权利要求1至3任一项所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性检测用引物对在绵羊产羔数分子标记辅助选择育种方面中的应用。
5.一种包含如权利要求1至3任一项所述的引物对的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测试剂盒。
6.一种利用如权利要求1至3任一项所述的引物对的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法,其特征在于:步骤如下:
以待测绵羊基因组DNA为模板,以引物对为扩增引物,利用PCR扩增包含绵羊GHR基因内含子区插入/缺失多态性位点的片段,对扩增产物进行电泳,根据电泳结果鉴定所述插入/缺失多态性位点的基因型。
7.根据权利要求6所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法,其特征在于:所述PCR扩增采用的反应程序为:95℃预变性5min;94℃变性30s,68℃退火30s,72℃延伸12~24s,18个循环,每循环后退火温度减1℃;50℃退火30s,72℃延伸12~24s,25~30个循环;72℃延伸10min;
或者,所述电泳时采用质量浓度为3.0~3.5%的琼脂糖凝胶。
8.根据权利要求6或7所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法,其特征在于:根据电泳结果,所述插入/缺失多态性位点的插入/插入基因型II表现为237bp一条带纹,插入/缺失基因型ID表现为237bp和260bp两条带纹,缺失/缺失基因型DD表现为260bp一条带纹。
9.一种如权利要求6至8任一项所述的绵羊GHR基因插入/缺失多态性的检测方法在绵羊产羔数分子标记辅助选择育种方面中的应用。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于:所述应用为:所述检测方法得到的插入/缺失多态性位点的基因型作为提高绵羊第3胎产羔数的DNA标记方面中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010098387.4A CN111118178A (zh) | 2020-02-18 | 2020-02-18 | 绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010098387.4A CN111118178A (zh) | 2020-02-18 | 2020-02-18 | 绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111118178A true CN111118178A (zh) | 2020-05-08 |
Family
ID=70492864
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010098387.4A Pending CN111118178A (zh) | 2020-02-18 | 2020-02-18 | 绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN111118178A (zh) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU5071390A (en) * | 1989-03-06 | 1990-09-06 | Genentech Inc. | Dna encoding ovine-active, growth-hormone-receptor-binding, lactogenic protein |
CA2312269A1 (en) * | 2000-07-19 | 2002-01-20 | The Curators Of The University Of Missouri | A dna marker for cattle growth |
CN1749416A (zh) * | 2004-09-15 | 2006-03-22 | 中国农业科学院畜牧研究所 | 利用单核苷酸多态性预测绵羊窝平均产羔数的方法 |
CN104878099A (zh) * | 2015-05-15 | 2015-09-02 | 西北农林科技大学 | 山羊atbf1基因单核苷酸多态性的检测方法及其应用 |
-
2020
- 2020-02-18 CN CN202010098387.4A patent/CN111118178A/zh active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU5071390A (en) * | 1989-03-06 | 1990-09-06 | Genentech Inc. | Dna encoding ovine-active, growth-hormone-receptor-binding, lactogenic protein |
CA2312269A1 (en) * | 2000-07-19 | 2002-01-20 | The Curators Of The University Of Missouri | A dna marker for cattle growth |
CN1749416A (zh) * | 2004-09-15 | 2006-03-22 | 中国农业科学院畜牧研究所 | 利用单核苷酸多态性预测绵羊窝平均产羔数的方法 |
CN104878099A (zh) * | 2015-05-15 | 2015-09-02 | 西北农林科技大学 | 山羊atbf1基因单核苷酸多态性的检测方法及其应用 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
"rs1089159767" * |
张清峰等: "牛GHRIO基因HindⅢ酶切多态性与体尺、 体重指标的相关性分析" * |
闫海龙等: "GHR基因9-bp InDel与陕北白绒山羊体重和生长性状的关联研究" * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN110468218B (zh) | 一种山羊igf2bp1基因插入/缺失标记的检测方法 | |
CN109880890B (zh) | 一种山羊hiat1基因插入/缺失多态性的检测方法及其应用 | |
CN109957614B (zh) | 一种山羊cmtm2基因插入/缺失多态性的检测方法及其应用 | |
CN107164482B (zh) | 一种山羊csn1s1基因插入/缺失的检测方法及其应用 | |
CN109182539B (zh) | 一种黄牛igf1r基因插入/缺失的检测方法及其应用 | |
CN111088369B (zh) | 一种绵羊rora基因插入/缺失多态性的检测方法、引物对和应用 | |
CN108441566B (zh) | 一种山羊atbf1基因插入/缺失多态性的检测方法及其应用 | |
CN111154892B (zh) | 绵羊bmpr1b基因插入/缺失多态性检测用引物对、试剂盒、方法和应用 | |
CN110607373B (zh) | 一种山羊dnah1基因插入/缺失多态性的检测方法及其应用 | |
CN112795668B (zh) | 一种山羊cfap43基因插入/缺失标记在性状早期选择中的应用 | |
CN111154891B (zh) | 绵羊igf2bp1基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 | |
CN111118179B (zh) | 一种检测鲁西黑公羊胸深性状的dna检测方法及其应用 | |
CN112553345B (zh) | 一种绵羊prnp基因插入/缺失在繁殖性状早期选择方面中的应用 | |
CN111088373A (zh) | 绵羊prl基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 | |
CN112941202B (zh) | 一种牛sept7基因插入/缺失突变的检测方法及其应用 | |
CN110904247B (zh) | 一种山羊Sox9基因InDel标记的检测方法及其应用 | |
CN111154895B (zh) | 绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 | |
CN111118178A (zh) | 绵羊ghr基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 | |
CN112852974B (zh) | 一种绵羊ahr基因插入/缺失作为繁殖性状早期选择的应用方法 | |
CN111733261B (zh) | 一种山羊AKAP12基因InDel标记的检测方法及其应用 | |
CN112609007B (zh) | 一种绵羊kdm3b基因插入/缺失作为繁殖性状早期选择的应用及方法 | |
CN111154894B (zh) | 一种检测鲁西黑头羊体重性状的dna检测方法及其应用 | |
CN111118148A (zh) | 绵羊csf1r基因插入/缺失多态性的检测引物对、试剂盒、方法和应用 | |
CN117305422A (zh) | 一种绵羊col27a1基因插入/缺失标记的繁殖性状早期选择应用 | |
CN113308550A (zh) | 一种绵羊cry2基因插入/缺失多态性的检测方法、试剂盒和应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination |