CN110982807B

CN110982807B - 一种高效稳定的纤维素酶突变体

Info

Publication number: CN110982807B
Application number: CN201911300776.4A
Authority: CN
Inventors: 杨舒黎; 王松明; 朱雅新; 顾招兵; 苟潇; 孔小艳; 吴东旺; 邓茗月
Original assignee: Yunnan Agricultural University
Current assignee: Yunnan Agricultural University
Priority date: 2019-12-17
Filing date: 2019-12-17
Publication date: 2022-04-29
Anticipated expiration: 2039-12-17
Also published as: CN110982807A

Abstract

本发明涉及一种来源于大额牛瘤胃分离的高效稳定的纤维素酶突变体，属于基因工程领域，该高效稳定的纤维素酶突变体EP‑15的氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示，该纤维素酶突变体EP‑15编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。本发明提供的纤维素酶突变体EP‑15的最适温度从突变前（CMC‑1酶）的50℃降为45℃，更接近瘤胃的生理温度（40℃）；EP‑15最适pH为5.0。EP‑15和CMC‑1分别在温度40℃、45℃和50℃以及在pH4.5、pH5.0和pH5.5处理120min后，EP‑15酶仍能保持较强的热稳定性和pH稳定性，且酶活高于CMC‑1酶。EP‑15酶活力在45℃或pH 5.0时较CMC‑1酶约有2倍提高，具有一定的开发价值。

Description

一种高效稳定的纤维素酶突变体

技术领域

本发明属于基因工程领域，具体的说，涉及一种高效稳定的纤维素酶突变体。

背景技术

大额牛终年散养，放牧在大山上，没有相应的科学饲养措施，能以竹子等其它反刍家畜所不能利用的饲料为主要食物，对竹子干物质消化率可达61％，大额牛是高效纤维分解酶筛选和发掘的珍贵种质资源之一。大额牛的瘤胃内存在大量未知的纤维降解菌，且这些纤维降解菌可能携带着丰富的功能新基因，能够分泌表达高效的纤维降解酶。筛选高效分解粗纤维的基因和酶并对其进行定向改造，如果能提高大额牛瘤胃中纤维素酶的活性或改善原有纤维素酶的特性，其结果不仅对大额牛的人工饲养及生物资源的开发具有重要的意义，而且对提高其他反刍动物利用粗饲料的能力和效率具有更重大的经济意义。

发明内容

本发明目的在于提供了一种高效稳定的纤维素酶突变体。本发明采用易错PCR对来源于大额牛瘤胃CMC-1基因进行了体外定向改造，获得了突变酶，其酶活、热稳定性和pH稳定性均明显提高，具有一定的开发价值。

为实现上述目的，本发明是通过如下技术方案实现的：

所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15，其氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示。

所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15编码基因，用于编码所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15。所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15编码基因，其核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。

本发明还涉及包含所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15编码基因的重组表达载体和包含所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15编码基因的表达菌株。

本发明还提供了一种纤维素酶突变体EP-3，其氨基酸序列如SEQ ID NO.5所示。

所述的纤维素酶突变体EP-3编码基因，用于编码所述的纤维素酶突变体EP-3。所述的纤维素酶突变体EP-3编码基因，其核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示。

本发明还涉及包含所述的纤维素酶突变体EP-3编码基因的重组表达载体和包含所述的纤维素酶突变体EP-3编码基因的表达菌株。

本发明还提供了一种纤维素酶突变体EP-6，其氨基酸序列如SEQ ID NO.7所示。

所述的纤维素酶突变体EP-6编码基因，用于编码所述的纤维素酶突变体EP-6。所述的纤维素酶突变体EP-6编码基因，其核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示。

本发明还涉及包含所述的纤维素酶突变体EP-6编码基因的重组表达载体和包含所述的纤维素酶突变体EP-6编码基因的表达菌株。

本发明还提供了一种纤维素酶突变体EP-7，其氨基酸序列如SEQ ID NO.9所示。

所述的纤维素酶突变体EP-7编码基因，用于编码所述的纤维素酶突变体EP-7。所述的纤维素酶突变体EP-7编码基因，其核苷酸序列如SEQ ID NO.10所示。

本发明还涉及包含所述的纤维素酶突变体EP-7编码基因的重组表达载体和包含所述的纤维素酶突变体EP-7编码基因的表达菌株。

本发明的有益效果：

本发明通过构建了大额牛瘤胃纤维素酶CMC-1基因突变文库，筛选到四个突变基因EP-3、EP-6、EP-7、EP-15，这些突变基因在E.coli BL21中能表达出纤维素酶活性。EP-3、EP-6、EP-15突变酶的最适温度由突变前(CMC-1)的50℃降到45℃，更接近瘤胃的生理温度(40℃)。EP-3、EP-7和EP-15较未突变酶CMC-1具有更强的热稳定性和pH稳定性，酶活力有1～2倍提高；EP-15酶活力在45℃或pH 5.0时较CMC-1酶约有2倍提高。EP-15是四个突变酶中酶活最大，热稳定性和pH稳定性最强的突变酶，具有一定的开发价值，不仅对大额牛的人工饲养及生物资源的开发具有重要的意义，而且对提高其他反刍动物利用粗饲料的能力和效率具有更重大的经济意义。

附图说明

图1是蛋白的组件结构；

图2是CMC-1及其四个突变体的基因DNA序列比对；

图3是葡萄糖浓度标准曲线；

图4是纤维素酶反应最适温度；

图5是40℃纤维素酶反应的热稳定性；

图6是45℃纤维素酶反应的热稳定性；

图7是50℃纤维素酶反应的热稳定性；

图8是纤维素酶反应最适pH；

图9是pH4.5纤维素酶反应的pH稳定性；

图10是pH5.0纤维素酶反应的pH稳定性；

图11是pH5.5纤维素酶反应的pH稳定性。

具体实施方式

申请人从大额牛瘤胃Fosmid文库中获得的纤维素酶基因CMC-1(其氨基酸序列为SEQ ID NO.1，编码核苷酸序列为SEQ ID NO.2)，通过原核表达及酶学性质分析发现CMC-1酶最适温度是50℃，最适pH为5.0。为了使CMC-1酶反应更接近瘤胃环境的生理温度(40℃)或提高纤维素酶的活力，申请人采用易错PCR对CMC-1基因进行了体外定向改造，并对改造后的突变体进行了序列分析、重组表达和酶学性质分析；从而选择出活性更高、稳定性更好以及温度或pH更适宜瘤胃内环境的纤维素酶。

【实施例1】纤维素酶突变体的获得

1.1突变文库的构建

采用ep-PCR对纤维素酶基因CMC-1进行随机突变，先酶切突变基因再连接转化进行突变文库的构建，转化至BMTOP10感受态细胞中，扩大突变体文库容量。

1.1.1纤维素酶CMC-1基因易错PCR扩增

通过设计带有酶切位点(EcoRⅠ、SmaⅠ)的上下游引物(见表1)。

表1CMC-1引物扩增序列

注：下划线为酶切识别位点。

根据即用型易错PCR试剂盒(Instant Error-Prone PCR Kit)自主设计如表2中的ep-PCR条件，以CMC-1-EcoRⅠ-FP和CMC-1-SmaⅠ-RP为引物进行ep-PCR，以体系各组分正常PCR作为对照。

表2易错PCR反应体系及其对照

反应程序：95℃5min；95℃30s，54℃40s，72℃90s，24cycles；72℃5min；4℃hold。0.8％琼脂糖凝胶电泳查看PCR结果。

1.1.2构建突变文库

采用即用型易错PCR试剂盒(Instant Error-Prone PCR Kit)自主设计突变效果较好ep-PCR条件对纤维素酶基因CMC-1进行随机突变，随后切胶回收ep-PCR后的产物，双酶切(EcoRⅠ、SmaⅠ)ep-PCR后的产物，回收纯化酶切产物，得到CMC-1-ep-PCR-EcoRⅠ-SmaⅠ和载体pGEX-6p-1-EcoRⅠ-SmaⅠ；使用T4DNA连接酶再连接到载体上，进行构建突变文库，然后转化至BMTOP10感受态细胞中，涂LB固体培养基平板(含0.1％体积Amp)，37℃过夜培养后，此平板内的所有菌落所含的突变基因即为CMC-1突变文库。

表3pGEX-6p-1与CMC-1-ep-PCR EcoRⅠ酶切体系

反应条件：37℃保温2-4h。酶切完后放入65℃水浴中20min使酶失活。

表4pGEX-6p-1-EcoRⅠ和CMC-1-ep-PCR-EcoRⅠSmaⅠ酶切体系

反应条件：25℃水浴保温2-4h。酶切完后放入65℃水浴中20min使酶失活。

表5T4连接体系

反应条件：16℃温育16h。连接完后放入65℃水浴中20min使酶失活。初步获得重组载体质粒pGEX-6p-1—CMC-1-ep-PCR。(注：pGEX-6p-1—CMC-1-ep-PCR不是代表一个突变体的重组质粒而是代表所有突变体的重组质粒)

1.2突变文库的转化及突变体的筛选

从突变文库中挑取单菌落编号，并进行点LB固体培养基平板(含0.1％体积Am)、含CMC-Na底物的LB固体培养基平板(含0.1％体积Amp)，采用刚果红染色平板法对突变文库进行活性较强或稳定性较强纤维素酶CMC-1突变体的初步筛选。经过刚果红染色法初步筛选得到的透明圈较大的一些菌落，随机选择几个进行菌落PCR，并且摇菌提取质粒后进行质粒PCR。最后选择效果较好的，送硕擎公司测序，通过基因序列分析确定突变率，由序列查看碱基的突变。

1.2.1突变文库的转化

转化方法大致如下：

将T4DNA连接酶连接的产物pGEX-6p-1—CMC-1-ep-PCR(或者突变文库、质粒)转化到感受态细胞BMTOP10中，然后涂布于LB固体培养基平板(含相应抗生素如Amp)，37℃培养箱中过夜培养。转化方法如下：

(1)从-80℃冰箱中取出所需要的感受态细胞若干mL(100mL/管)，置于冰浴中，放在无菌操作台上。如需分装可将融化细胞悬液分装到无菌预冷的离心管中，置于冰浴中。本实验用50μL感受态细胞做为实验用量。

(2)向融化的感受态细胞悬液中加入目的DNA，本次实验中加入7μL T4DNA连接酶连接的产物pGEX-6p-1—CMC-1或者质粒。

(3)小心吹打混匀或者轻旋混匀，冰浴静置30min。

(4)42℃水浴热激90秒，然后快速转入冰浴中冷却2min，勿摇动。

(5)加入500μL无菌LB液体培养基(不含抗生素)，37℃，250rpm，摇床振荡培养45min。

(6)取适量涂布LB固体培养基平板(含抗生素Amp 0.1％，V/V)，37℃培养箱中过夜培养。本实验涂布平板的量分别是100μL和200μL。

1.2.2突变体的筛选

将T4DNA连接酶连接的产物pGEX-6p-1—CMC-1-ep-PCR转化后，37℃孵育平板至克隆产生，挑取单菌落编号，并进行点固体LB平板(含0.1％体积Amp)、含CMC-Na底物的固体LB平板(含0.1％体积Amp)，液体LB培养基摇菌并提取质粒。

以四种方法筛选验证重组质粒pGEX-6p-1—CMC-1-ep-PCR的存在和自主性：a.对进行编号的菌落进行培养后，以CMC-1-EcoRⅠ-FP和CMC-1-SmaⅠ-RP为引物，进行菌落PCR；b.对进行编号的菌落进行摇菌培养后提取质粒，以CMC-1-EcoRⅠ-FP和CMC-1-SmaⅠ-RP为引物，提取的质粒为模板进行PCR；c.对进行编号的菌点含羧甲基纤维素钠CMC-Na底物的LB固体培养基平板(含0.1％V Amp)，刚果红平板染色筛选验证纤维素酶的存在；d.对进行编号的菌摇菌培养后，送入公司测序，测序确定突变率，由序列查看碱基的突变，筛选突变体。

表6菌落PCR反应体系

反应程序：95℃5min；95℃30s，54℃40s，72℃90s，32cycles；72℃5min；4℃hold。0.8％琼脂糖凝胶电泳查看PCR结果。

表7质粒PCR反应体系

【实施例2】纤维素酶突变体的原核表达

2.1纤维素酶CMC-1突变体导入表达菌BL21

提取纤维素酶突变体的质粒DNA并且转入到感受态细胞BL21中(转化方法同前)，筛选含纤维素酶突变体的质粒DNA的菌株，挑菌接种到CMC为底物的LB(含0.1％V Amp)平板上，37℃过夜培养，次日用刚果红染色法确定表达菌BL21是否有纤维素酶活性。

2.2粗酶液的制备

工程菌的培养：将含有纤维素酶活(突变体)特性的表达菌BL21接种于10mL含0.1％V Amp的2×YT培养基中37℃(或者16℃低温诱导表达)，250rpm摇菌，当菌液OD600达到0.6时加入终浓度为0.1mM的IPTG，继续诱导培养10-14h。

收集菌体：将菌液于2ml离心管中，4℃，10000g，离心1min得菌体，可重复收集，直至10ml菌液全部收集完。用1×PBS洗菌体2次，离心，得菌体，置于冰上。

菌体破碎：将得到的菌体用1ml 1×PBS悬置摇匀，冰上超声破碎，超声3s，停顿7s，超声30min，得全菌液。

粗酶液收集：将破碎的菌体4℃，12000g，离心10min，得上清和沉淀，上清即为粗酶液，使用时将上清过0.22μm滤膜。得到的粗酶液于4℃或者-20℃中保存备用。

【实施例3】纤维素酶突变体的序列分析

将不同的纤维素酶进行同源性比对，比对结果见表8。

表8序列同源性比对结果

由上表可得CMC-1酶和四个突变体的编码氨基酸序列与GenBank数据库的部分纤维素酶的氨基酸序列同源性比对结果显示：CMC-1和EP-3、EP-6、EP-7、EP-15最大同源性依次分别为68％、64％、68％、80％、76％。

CMC-1突变体的蛋白组件分析图见图1，蛋白序列分析结果见表9。

表9纤维素酶基因的蛋白序列分析

通过对EP-3、EP-6、EP-7、EP-15突变体和CMC-1酶的序列分析，得到四个突变体和CMC-1酶都属于糖苷水解酶家族5(GH5)，但四个突变体的编码aa、理论分子量、等电点、纤维素酶结构功能域都与CMC-1酶有很大差异。

CMC-1突变体的基因序列分析，分析结果见下图2。

纤维素酶基因CMC-1序列长度为1239bp，测序得到EP-3序列长度为1033bp，EP-6序列长度为1024bp，EP-7序列长度为952bp，EP-15序列长度为952bp。对各序列进行比对分析，结果如图2。具体碱基变化见表10。由图2和表10可知，EP-3、EP-6、EP-7、EP-15相对于CMC-1都发生了序列的变化。其中EP-3发生了8处碱基位置的变化，EP-6也发生了8处碱基位置突变，且与EP-3的突变位置不同；EP-7发生了一处碱基的缺失，EP-15发生了两处碱基的变化，缺失和突变。由于有碱基的插入或者缺失，使得表达产物的氨基酸变化也较大；故可推测这些CMC-1突变体与原来的突变前的CMC-1酶有一定的区别，从而导致酶活力的增强或者稳定性的提高。

表10四个突变体碱基的变化

【实施例4】纤维素酶突变体的酶学特性

4.1葡萄糖标准曲线

以葡萄糖浓度为横坐标，光吸收值OD540为纵坐标，绘制标准曲线(如下图3)。相关系数为0.9925。

4.2纤维素酶CMC-1突变体的活性及稳定性

4.2.1温度对纤维素酶CMC-1突变体活性的影响

测CMC-1酶及四个突变体酶在25℃～70℃条件下的酶活力，结果如下图4。CMC-1的最适温度为50℃，此温度条件下的CMC-1酶活最大，以此为对照(设为100％)，计算四个突变体在各自最适温度条件下的最大相对酶活。由图4可知，EP-3、EP-6、EP-15的最适温度均为45℃；且EP-15在45℃时的酶活比CMC-1的最大酶活提高了约2倍，EP-3的酶活提高了近1.5倍；即使在50℃条件下，EP-15和EP-3的相对酶活较CMC-1提高了约1.4倍。EP-7的最适温度仍为50℃，但其酶活较CMC-1酶提高了近1.4倍。此外，CMC-1酶及四个突变体酶在35℃以下及60℃以上酶活较低。

4.2.2纤维素酶活力

CMC-1酶及四个突变体酶在各自最适温度及pH5.0条件下的酶活力见表11。纤维素酶活力最高的是EP-15，为334.82U/mL；其它突变体酶活力高低依次为EP-3(259.23U/mL)、EP-7(247.76U/mL)和EP-6(182.97U/mL)，而CMC-1为178.92U/mL。四个突变体酶活力较CMC-1酶约有1～2倍提高。

表11纤维素酶活力

4.2.3温度对纤维素酶CMC-1突变体稳定性的影响

40℃条件下，CMC-1酶及四个突变体酶的热稳定性见图5，随着处理时间的延长，各种酶活力呈下降趋势。处理30min后，除了EP-6酶外，其它四种酶的酶活都保持在80％以上；处理120min后，除了EP-6酶外，EP-7和EP-15酶活在70％以上，EP-3和CMC-1酶活力仍能保持在60％以上；说明这四种酶在120min钟内40℃条件下都具有很好的热稳定性。

45℃条件下，CMC-1酶及四个突变体酶的热稳定性见图6，随着处理时间的延长，各种酶活力呈下降趋势。处理30min后，除了EP-3、EP-6酶活在50％以下外，其他各种酶的活力都保持在50％以上。处理120min后，只有EP-15酶活仍接近70％。，其他各种酶活力已下降到50％以下，说明EP-15酶在45℃条件下的热稳定性高于其它酶。

50℃条件下，CMC-1酶及四个突变体酶的热稳定性见图7，随着处理时间的延长，各种酶活力呈下降趋势。处理120min后，唯有EP-15酶活在50％以上，而其他三个突变体及CMC-1酶活都降到50％以下。由此可见，较高的温度对纤维素酶的热稳定性影响较大，但EP-15酶在50℃条件下依然能保持较高的热稳定性。

4.2.4pH值对纤维素酶CMC-1突变体活性的影响

测pH在3.0～9.0条件下CMC-1酶及四个突变体酶的活力，结果如下图8。CMC-1酶最适pH为5.0，以CMC-1酶最适pH的酶活为对照(设定为100％)，计算四种突变体在各自最适pH下的相对酶活。EP-15与CMC-1的最适pH一样仍为5.0，EP-6和EP-7的最适pH升高到5.5，而EP-3的最适pH则下降到4.5。EP-15、EP-7、EP-3和EP-6在各自最适pH时的酶活比CMC-1酶活分别提高了近2.8倍、2.6倍、1.2倍和1.3倍。

4.2.5pH值对纤维素酶CMC-1突变体稳定性的影响

pH4.5条件下，CMC-1酶及四个突变体酶的稳定性见图9，随着处理时间的延长，各种酶活力呈下降趋势。处理30min后，除了EP-6的酶活下降到40％以下外，其它的各种酶活都下降到40％以上。处理120min后，只有EP-7和EP-15的酶活下降到50％以上，而CMC-1及EP-6的酶活却下降到20％以下；由此可见pH4.5对纤维素酶CMC-1和EP-6的稳定性影响较大，特别是EP-6酶活力的稳定性影响最大，酶将近失活。

pH5.0条件下，CMC-1酶及四个突变体酶的稳定性见图10，随着处理时间的延长，各种酶活力呈下降趋势。处理30min后的各种酶活力多保持在80％以上，说明在30min钟内五种酶在pH5.0条件下的稳定性较好。处理120min后，各酶剩余酶活都高于60％，其中EP-7和EP-15酶剩余酶活达到了70％以上。结果说明这五种纤维素酶在pH5.0条件下具有一定的稳定性，且EP-15酶稳定性最高。

pH5.5条件下，不同纤维素酶活的CMC-1酶及四个突变体酶的稳定性见图11，随着处理时间的延长，各种酶活力呈下降趋势。处理30min后的各种酶活残余率大多在80％以上，其中EP-7酶活残余最高，保持在90％以上，说明在30min钟内五种酶在pH5.5条件下的稳定性较好。处理120min后，除了CMC-1酶活残余率为50％左右，其它四种突变酶活残余率都高于60％。由此可见该5个种纤维素酶在pH5.5条件下都具有较强的稳定性。

本发明构建了大额牛瘤胃纤维素酶CMC-1基因突变文库，筛选得到四个突变基因EP-3、EP-6、EP-7、EP-15，这些突变基因在E.coli BL21中能表达出纤维素酶活性。

(1)EP-3、EP-6、EP-15突变酶的最适温度由突变前(CMC-1)的50℃降到45℃，更接近瘤胃的生理温度(40℃)。

(2)EP-15与CMC-1的最适pH一样仍为5.0，EP-6和EP-7的最适pH升高到5.5，而EP-3的最适pH则下降到4.5。

(3)CMC-1酶及四个突变体酶在各自最适温度及pH5.0条件下，纤维素酶活力最高的是EP-15，为334.82U/mL；其它突变体酶活力高低依次为EP-3(259.23U/mL)、EP-7(247.76U/mL)和EP-6(182.97U/mL)，而CMC-1为178.92U/mL。四个突变体酶活力较CMC-1酶约有1～2倍提高。

(4)将四个突变体与CMC-1在40℃、45℃、50℃分别放置2h及与底物(1％CMC-Na)作用30min后观察酶活稳定性，结果显示EP-15和EP-7在40℃条件下的酶活仍能保持在70％以上，高于CMC-1酶(68％)；EP-15在45℃和50℃条件下酶活分别保持在70％和50％以上，而另三个突变体以及CMC-1的酶活却都降到50％以下。

(5)EP-3、EP-7和EP-15在pH5.0或pH5.5放置2h后及与底物(1％CMC-Na)作用30min观察pH稳定性，结果显示三个突变体在pH5.0或pH5.5具有较强的pH稳定性，且酶活都高于CMC-1酶；尤其是在pH5.5，三个突变体的酶活仍能保持在70％以上，而CMC-1酶活却下降到50％左右。

最后说明的是，以上优选实施例仅用于说明本发明的技术方案而非限制，尽管通过上述优选实施例已经对本发明进行了详细的描述，但本领域技术人员应当理解，可以在形式上和细节上对其作出各种各样的改变，而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。

SEQUENCE LISTING

<110> 云南农业大学

<120> 一种高效稳定的纤维素酶突变体

<130> 20191206

<160> 10

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 413

<212> PRT

<213> Prevotella

<400> 1

Val Ile Tyr Asn Arg Glu Asn Asp Thr Thr Met Arg Leu Leu Ser Ile

1 5 10 15

Ser Leu Ala Ile Ile Ile Ser Leu Ala Cys Cys Gly Ser Val Glu Ser

20 25 30

Ser Asn Ile Glu Glu Pro Lys Pro Val Asp Asn Ala Ala Pro Thr Ala

35 40 45

Lys Gln Trp Asn Gly Glu Ile Thr Ala Gly Trp Asn Leu Gly Asn Gln

50 55 60

Phe Glu Cys Ser Ala Pro Gly Gln Glu His Tyr Ser Leu Asp Ile Gly

65 70 75 80

Met Pro Ala Asn Ser Ile Asn Ala Glu Thr Ala Trp Gly Asn Pro Lys

85 90 95

Val Thr Lys Asn Met Ile Lys Ala Val Lys Ala Ala Gly Phe Asn Ala

100 105 110

Ile Arg Ile Pro Ile Arg Trp Gln Cys His Ile Thr Asn Pro Gln Ala

115 120 125

Met Ser Val Asp Lys Ala Trp Met Ala Arg Val Lys Gln Val Val Asp

130 135 140

Trp Cys Leu Glu Leu Asp Met Lys Val Ile Ile Asn Thr His His Glu

145 150 155 160

Gln Trp Leu Glu Ser Arg Pro Leu Asn Arg Tyr Lys Glu Glu Asn Cys

165 170 175

Gln Lys Leu Ala Leu Leu Trp Phe Asn Ile Ala Ser Glu Phe Ala Asp

180 185 190

Tyr Asp Tyr Arg Leu Ala Phe Ala Gly Thr Asn Glu Val His Glu Lys

195 200 205

Asp Asn Trp Gly Lys Pro Thr Ala Glu Asn Leu Glu Val Gln Asn Ala

210 215 220

Tyr Asn Gln Thr Phe Val Asp Ile Val Arg Ala Thr Gly Gly Asn Asn

225 230 235 240

Ala Lys Arg His Leu Leu Val Gln Thr Tyr Val Cys Asn Pro Glu Phe

245 250 255

Gly Leu Ser Asn Gly Asp Phe Ile Ile Pro Thr Asp Ile Glu Gly Asn

260 265 270

Gly Asn Lys Tyr Met Ser Val Glu Ile His Tyr Tyr Asn Pro Trp Asp

275 280 285

Tyr Ala Gly Glu Gly Lys Tyr Tyr Tyr Trp Gly Glu Ala Tyr Ser Gln

290 295 300

Tyr Gly Glu Ile Ser Pro Ser Lys Glu Ala Asp Met Ile Asn Leu Phe

305 310 315 320

Asp Arg Val Ala Arg Thr Trp Gly Asp Lys Gly Leu Gly Ile Val Ile

325 330 335

Gly Glu Trp Gly Val Thr Asp His Tyr Lys Gly Asn Gln Thr Asp Leu

340 345 350

Met His Ala Asn Met Thr Tyr Tyr Cys Lys Thr Tyr Val Thr Glu Ala

355 360 365

Arg Lys Arg Gly Phe Ala Thr Phe Ile Trp Asp Asn Asn Ser Phe Gly

370 375 380

Asn Gly Met Glu Lys Tyr Gly Ile Phe Asp Arg Lys Asn Asn Met Lys

385 390 395 400

Val Lys Thr Pro Trp Ile Leu Asp Gly Ile Phe Ala Lys

405 410

<210> 2

<211> 1239

<212> DNA

<213> Prevotella ruminicola

<400> 2

gtgatatata atcgcgaaaa cgacactact atgagacttc tttcaatttc actcgcaatc 60

atcatttcgc tggcctgctg tggctcagta gagagcagca acattgaaga gccaaaaccg 120

gtggacaatg ctgcgccaac cgcaaagcaa tggaacggcg agataacagc cggctggaat 180

ctgggcaacc agtttgaatg ctcggcgcca ggacaagagc attacagtct ggacataggc 240

atgccggcta actccatcaa cgccgagacc gcatggggaa atcccaaagt aacaaaaaac 300

atgatcaagg ctgtgaaagc ggccggtttc aatgccatcc gcattcccat tcgatggcag 360

tgccacatca ccaaccctca agccatgagc gttgataagg cttggatggc ccgcgtcaag 420

caggtggttg actggtgtct tgaacttgac atgaaggtca taatcaacac ccaccatgag 480

caatggcttg aatcacgtcc ccttaatcgc tacaaagagg agaattgcca aaagctcgca 540

ttgttgtggt ttaacatcgc aagcgagttt gccgattacg actatcgtct tgcctttgcc 600

ggcaccaacg aggttcacga gaaagataac tggggcaagc caaccgccga gaatcttgag 660

gttcaaaatg cctacaacca gacttttgtt gacatcgttc gtgccacagg tggcaacaat 720

gccaagcgtc acctgctcgt tcagacctat gtgtgtaacc cagagtttgg tctcagcaac 780

ggcgacttca taatccccac cgacatcgag ggcaacggca acaaatacat gagcgtggaa 840

atccactact acaatccttg ggattatgcc ggtgaaggga aatactatta ctggggtgag 900

gcctacagcc agtatggcga aatctcgcca agcaaggagg ccgacatgat aaatctcttc 960

gaccgtgtgg caagaacatg gggcgacaaa ggcttgggaa tcgtgatagg cgaatggggc 1020

gttaccgacc actacaaagg caatcaaact gacttgatgc acgccaacat gacctactac 1080

tgcaagacct acgtcaccga ggcgcgcaag cgcggttttg ctaccttcat ttgggataac 1140

aacagttttg gcaacggtat ggagaaatat ggcattttcg accgcaagaa caacatgaag 1200

gtcaagactc cctggatttt agatggcatc ttcgcaaaa 1239

<210> 3

<211> 317

<212> PRT

<213> Prevotella ruminicola

<400> 3

Leu Asn Arg Thr Gly Val Leu Phe Gln Gly Pro Leu Gly Ser Pro Glu

1 5 10 15

Phe Gly Ser Val Glu Ser Ser Asn Ile Glu Glu Pro Lys Pro Val Asp

20 25 30

Asn Ala Ala Pro Thr Ala Lys Gln Trp Asn Gly Glu Ile Thr Ala Gly

35 40 45

Trp Asn Leu Gly Asn Gln Phe Glu Cys Ser Ala Pro Gly Gln Glu His

50 55 60

Tyr Ser Leu Asp Ile Gly Met Pro Ala Asn Ser Ile Asn Ala Glu Thr

65 70 75 80

Ala Trp Gly Asn Pro Lys Val Thr Lys Asn Met Ile Lys Ala Val Lys

85 90 95

Ala Ala Gly Phe Asn Ala Ile Arg Ile Pro Ile Arg Trp Gln Cys His

100 105 110

Ile Thr Asn Pro Gln Ala Met Ser Val Asp Lys Ala Trp Met Ala Arg

115 120 125

Val Lys Gln Val Val Asp Trp Cys Leu Glu Leu Asp Met Lys Val Ile

130 135 140

Ile Asn Thr His His Glu Gln Trp Leu Glu Ser Arg Pro Leu Asn Arg

145 150 155 160

Tyr Lys Glu Glu Asn Cys Gln Lys Leu Ala Leu Leu Trp Phe Asn Ile

165 170 175

Ala Ser Glu Phe Ala Asp Tyr Asp Tyr Arg Leu Ala Phe Ala Gly Thr

180 185 190

Asn Glu Val His Glu Lys Asp Asn Trp Gly Lys Pro Thr Ala Glu Asn

195 200 205

Leu Glu Val Gln Asn Ala Tyr Asn Gln Thr Phe Val Asp Ile Val Arg

210 215 220

Ala Thr Gly Gly Asn Asn Ala Lys Arg His Leu Leu Val Gln Thr Tyr

225 230 235 240

Val Cys Asn Pro Glu Phe Gly Leu Ser Asn Gly Asp Phe Ile Ile Pro

245 250 255

Thr Asp Ile Glu Gly Asn Gly Asn Lys Tyr Met Ser Val Glu Ile His

260 265 270

Tyr Tyr Asn Pro Trp Asp Tyr Ala Gly Glu Gly Lys Tyr Tyr Tyr Trp

275 280 285

Gly Glu Ala Tyr Ser Gln Tyr Gly Glu Ile Ser Pro Ser Lys Glu Ala

290 295 300

Asp Met Ile Asn Leu Phe Asp Arg Gly Glu Arg Asn Gly

305 310 315

<210> 4

<211> 952

<212> DNA

<213> Prevotella ruminicola

<400> 4

tctcaatcgg actggggttc tgttccaggg gcccctggga tccccggaat tcggctcagt 60

agagagcagc aacattgaag agccaaaacc ggtggacaat gctgcgccaa ccgcaaagca 120

atggaacggc gagataacag ccggctggaa tctgggcaac cagtttgaat gctcggcgcc 180

aggacaagag cattacagtc tggacatagg catgccggct aactccatca acgccgagac 240

cgcatgggga aatcccaaag taacaaaaaa catgatcaag gctgtgaaag cggccggttt 300

caatgccatc cgcattccca tccgatggca gtgccacatc accaaccctc aagccatgag 360

cgttgataag gcttggatgg cccgcgtcaa gcaggtggtt gactggtgtc ttgaacttga 420

catgaaggtc ataatcaaca cccaccatga gcaatggctt gaatcacgtc cccttaatcg 480

ctacaaagag gagaattgcc aaaagctcgc attgttgtgg tttaacatcg caagcgagtt 540

tgccgattac gactatcgtc ttgcctttgc cggcaccaac gaggttcacg agaaagataa 600

ctggggcaag ccaaccgccg agaatcttga ggttcaaaat gcctacaacc agacttttgt 660

tgacatcgtt cgtgccacag gtggcaacaa tgccaagcgt cacctgctcg ttcagaccta 720

tgtgtgtaac ccagagtttg gtctcagcaa cggcgacttc ataatcccca ccgacatcga 780

gggcaacggc aacaaataca tgagcgtgga aatccactac tacaatcctt gggattatgc 840

cggggaaggg aaatactatt actggggtga ggcctacagc cagtatggcg aaatctcgcc 900

aagcaaggag gccgacatga taaatctctt cgaccggggg gaaagaaatg gg 952

<210> 5

<211> 328

<212> PRT

<213> Prevotella ruminicola

<400> 5

Ala Glu Ala Leu Asn Arg Thr Gly Val Leu Phe Gln Gly Pro Leu Gly

1 5 10 15

Ser Pro Glu Phe Gly Ser Val Glu Ser Ser Asn Ile Glu Glu Pro Lys

20 25 30

Pro Val Asp Asn Ala Ala Pro Thr Ala Lys Gln Trp Asn Gly Glu Ile

35 40 45

Thr Ala Gly Trp Asn Leu Gly Asn Gln Phe Glu Cys Ser Ala Pro Gly

50 55 60

Gln Glu His Tyr Ser Leu Asp Ile Gly Met Pro Ala Asn Ser Ile Asn

65 70 75 80

Ala Glu Thr Ala Trp Gly Asn Pro Lys Val Thr Lys Asn Met Ile Lys

85 90 95

Ala Val Lys Ala Ala Gly Phe Asn Ala Ile Arg Ile Pro Ile Arg Trp

100 105 110

Gln Cys His Ile Thr Asn Pro Gln Ala Met Ser Val Asp Lys Ala Trp

115 120 125

Met Ala Arg Val Lys Gln Val Val Asp Trp Cys Leu Glu Leu Asp Met

130 135 140

Lys Val Ile Ile Asn Thr His His Glu Gln Trp Leu Glu Ser Arg Pro

145 150 155 160

Leu Asn Arg Tyr Lys Glu Glu Asn Cys Gln Lys Leu Ala Leu Leu Trp

165 170 175

Phe Asn Ile Ala Ser Glu Phe Ala Asp Tyr Asp Tyr Arg Leu Ala Phe

180 185 190

Ala Gly Thr Asn Glu Val His Glu Lys Asp Asn Trp Gly Lys Pro Thr

195 200 205

Ala Glu Asn Leu Glu Val Gln Asn Ala Tyr Asn Gln Thr Phe Val Asp

210 215 220

Ile Val Arg Ala Thr Gly Gly Asn Asn Ala Lys Arg His Leu Leu Val

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Gln Thr Tyr Val Cys Asn Pro Arg Val Trp Ser Gln Gln Arg Arg Leu

245 250 255

His Asn Pro His Arg His Arg Gly Gln Arg Gln Gln Leu His Glu Ala

260 265 270

Trp Lys Ser Thr Thr Thr Ile Leu Gly Ile Ile Ala Gly Glu Gly Asn

275 280 285

Thr Ile Asn Trp Gly Glu Ala Tyr Ser Gln Tyr Gly Glu Ile Ser Pro

290 295 300

Ser Lys Glu Ala Asp Met Ile Ile Phe Phe Asp Arg Gly Gln Gly His

305 310 315 320

Gly Ala Thr Lys Ala Trp Glu Ser

325

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<211> 1033

<212> DNA

<213> Prevotella ruminicola

<400> 6

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cgccgagacc gcatggggaa atcccaaagt aacaaaaaac atgatcaagg ctgtgaaagc 300

ggccggtttc aatgccatcc gcattcccat tcgatggcag tgccacatca ccaaccctca 360

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aagcgagttt gccgattacg actatcgtct tgcctttgcc ggcaccaacg aggttcacga 600

gaaagataac tggggcaagc caaccgccga gaatcttgag gttcaaaatg cctacaacca 660

gacttttgtt gacatcgttc gtgccacagg tggcaacaat gccaagcgtc acctgctcgt 720

tcagacctat gtgtgtaacc caagagtttg gtctcagcaa cggcgacttc ataatcccca 780

ccgacatcga gggcaacggc aacaattaca tgaagcgtgg aaatccacta ctacaatcct 840

tgggattatt gccggtgaag ggaatactat taactggggt gaggcctaca gccagtatgg 900

cgaaatctcg ccaagcaagg aggccgacat gataatcttc ttcgaccggg ggcaaggaca 960

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<210> 7

<211> 282

<212> PRT

<213> Prevotella ruminicola

<400> 7

Ser Leu Asn Arg Thr Gly Val Leu Phe Gln Gly Pro Leu Gly Ser Pro

1 5 10 15

Glu Phe Gly Ser Val Glu Ser Ser Asn Ile Glu Glu Pro Lys Pro Val

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Asp Asn Ala Ala Pro Thr Ala Lys Gln Trp Asn Gly Glu Ile Thr Ala

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Gly Trp Asn Leu Gly Asn Gln Phe Glu Cys Ser Ala Pro Gly Gln Glu

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His Tyr Ser Leu Asp Ile Gly Met Pro Ala Asn Ser Ile Asn Ala Glu

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Thr Ala Trp Gly Asn Pro Lys Val Thr Lys Asn Met Ile Lys Ala Val

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Lys Ala Ala Gly Phe Asn Ala Ile Arg Ile Pro Ile Arg Trp Gln Cys

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Arg Tyr Lys Glu Glu Asn Cys Gln Lys Leu Ala Leu Leu Trp Phe Asn

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Ile Ala Ser Glu Phe Ala Asp Tyr Asp Tyr Arg Leu Ala Phe Ala Gly

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Tyr Val Cys Asn Pro Glu Phe Gly Leu Ser Asn Gly Asp Phe Ile Ile

245 250 255

Pro Thr Asp Ile Glu Gly Asn Gly Asn Lys Tyr Met Lys Arg Gly Asn

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Pro Leu Leu Gln Ser Leu Gly Leu Cys Arg

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<210> 8

<211> 1024

<212> DNA

<213> Prevotella ruminicola

<400> 8

tctctcaatc ggactggagt tctgttccag gggcccctgg gatccccgga attcggctca 60

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ccaggacaag agcattacag tctggacata ggcatgccgg ctaactccat caacgccgag 240

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ttcaatgcca tccgcattcc cattcgatgg cagtgccaca tcaccaaccc tcaagccatg 360

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gacatgaagg tcataatcaa cacccaccat gagcaatggc ttgaatcacg tccccttaat 480

cgctacaaag aggagaattg ccaaaagctc gcattgttgt ggtttaacat cgcaagcgag 540

tttgccgatt acgactatcg tcttgccttt gccggcacca acgaggttca cgagaaagat 600

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tatgtgtgta acccagagtt tggtctcagc aacggcgact tcataatccc caccgacatc 780

gagggcaacg gcaacaaata catgaagcgt ggaaatccac tactacaatc cttgggatta 840

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ccaagcagga ggccggatga taatctcttc gacgggggca ggacatgggg gacaaaggtt 960

ggaatcgtga taggcgaatg gggcgtaccg acactacaag gcatcaactg attgatgccg 1020

cact 1024

<210> 9

<211> 305

<212> PRT

<213> Prevotella ruminicola

<400> 9

Ser Gln Trp Thr Val Val Leu Phe Gln Gly Pro Leu Gly Ser Pro Glu

1 5 10 15

Phe Gly Ser Val Glu Ser Ser Asn Ile Glu Glu Pro Lys Pro Val Asp

20 25 30

Asn Ala Ala Pro Thr Ala Lys Gln Trp Asn Gly Glu Ile Thr Ala Gly

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Trp Asn Leu Gly Asn Gln Phe Glu Cys Ser Ala Pro Gly Gln Glu His

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Ala Trp Gly Asn Pro Lys Val Thr Lys Asn Met Ile Lys Ala Val Lys

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Ala Ala Gly Phe Asn Ala Ile Arg Ile Pro Ile Arg Trp Gln Cys His

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Asn Glu Val His Glu Lys Asp Asn Trp Gly Lys Pro Thr Ala Glu Asn

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Val Cys Asn Pro Glu Phe Gly Leu Ser Asn Gly Asp Phe Ile Ile Pro

245 250 255

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260 265 270

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275 280 285

Val Arg Pro Thr Ala Ser Met Ala Lys Ser Arg Gln Ala Arg Arg Pro

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Thr

305

<210> 10

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<212> DNA

<213> Prevotella ruminicola

<400> 10

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ccgggtaatt ggtcgtttcg cattgcttat taatattaga agggagagaa tctatatatg 120

gggttatttt gcgaagatgc catctaaaat ccagggagtc ttgaccttca tgttgttctt 180

gcggtcgaaa atgccatatt tctccatacc gttgccaaaa ctgttgttat cccaaatgaa 240

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ggcgtgcatc aagtcagttt gattgccttt gtagtggtcg gtaacgcccc attcgcctat 360

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ggcacgaacg atgtcaacaa aagtctggtt gtaggcattt tgaacctcaa gattctcggc 720

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attctcctct ttgtagcgat taaggggacg tgattcaagc cattgctcat ggtggggggg 900

tgataatgac cttcatgtca agtccagaaa ccagtcaacc acctgcttga cggggccatc 960

caagcttatc accgtcatgg cttggaggga tggggac 997

Claims

1.一种高效稳定的纤维素酶突变体EP-15，其特征在于：其氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示。

2.一种高效稳定的纤维素酶突变体编码基因，其特征在于：编码权利要求1所述的高效稳定的纤维素酶突变体EP-15。

3.根据权利要求2所述的高效稳定的纤维素酶突变体编码基因，其特征在于：该纤维素酶突变体编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。

4.包含权利要求2或3所述的高效稳定的纤维素酶突变体编码基因的重组表达载体。

5.包含权利要求2或3所述的高效稳定的纤维素酶突变体编码基因的表达菌株。