CN110904096B - 一种利用抑制剂提取不含dna的rna方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种利用抑制剂提取不含DNA的RNA方法,本发明使用经处理的生长至一定周期的小桐子幼叶研磨上清液,与样本进行共提取,可以阻止样本中与病原体RNA同源的病原体DNA的回收,从而提高病原体RNA的提取质量。样本包括但不仅是病毒、细菌等。本发明的提取方法可以达到安全、经济、高效,不用增加时间长、成本高的DNAse I消化步骤,即可获得不含同源DNA的病原体RNA。
Description
技术领域
本发明属于核酸提取技术领域,特别涉及一种利用抑制剂提取不含DNA的RNA方法。
背景技术
核酸提取是分子生物学研究的基础技术。在一些病原体的扩增实验中,我们需要检测其中的RNA,而不能检测出同源的DNA。如果这些同源的DNA难以去除干净,就可能会造成假阳性的结果。
例如,血清中的HBV pgRNA代表当前肝组织中的HBV cccDNA是否活跃,如果研究人员扩增血清中的HBV pgRNA,RT-qPCR实验会将血清中的HBV DNA(HBV rcDNA)一并扩增,RNA和DNA共同扩增,不能正确反映肝组织中HBV cccDNA复制的活跃程度,影响后续实验的精准度。
在临床检验方面,检测痰液活的结核杆菌,需要去除结核杆菌的DNA,检测对象是活菌中仅表达的mRNA。如果结核杆菌DNA被扩增,则无法判断痰液中的结核杆菌是否具有感染性。
在现有技术中,获得不含DNA的RNA提取方法,主要依靠DNAse(主要是DNAse I)的消化作用。但是DNAse的活性并不稳定,通常并不能将DNA去除干净。而且DNAse价格昂贵,使用量大,很难广泛应用于病原体的检测。
传统的Trizol法(酸酚法)通常被认为可去除DNA。Trizol法主要使用异硫氰酸胍和重蒸酚,异硫氰酸胍裂解细胞后,通过有机相萃取掉结合了大量组蛋白的基因组DNA,可以去除大部分基因组DNA。但此方法无法去除结合蛋白较少、分子量较小的DNA,如质粒DNA和病毒DNA。所以Trizol法并不适合前面两种应用。而且Trizol法需要使用苯酚、氯仿等有机试剂,严重危害了研究人员的身体健康。
根据现有问题,本发明致力于寻求一种提取不含有DNA的RNA方法。
发明内容
本发明的首要目的在于提供一种方法,无须DNAse I,通过与含有抑制剂的植物成分共提取,回收不含DNA的RNA。
为达到上述目的,本发明所采取的技术方案是:
本发明第一个方面,提出了小桐子幼叶的应用,小桐子幼叶作为DNA抑制剂在RNA提取中的应用。
根据本发明的实施例,所述小桐子幼叶生长10~30天的小桐子幼叶。
根据本发明的实施例,所述RNA提取适用不含同源DNA的病毒RNA或杆菌RNA。
根据本发明的实施例,所述肝炎病毒为乙型肝炎病毒;所述杆菌为结核杆菌。
根据本发明的实施例,所述小桐子因结合样本DNA而减少DNA含量。
根据本发明的实施例,所述RNA提取步骤如下:将小桐子幼叶和裂解液混合后,与样本混合;异丙醇磁吸、洗涤液磁吸和洗脱液磁吸,取上清即得不含DNA的RNA。
本发明第二个方面,提出了前面所述小桐子幼叶的使用方法,包括以下步骤:
①小桐子幼叶在液氮中迅速研磨成粉末;
②将Buffer S加到粉末,混合成裂解混合液,振荡使其裂解;
③将裂解混合液孵育;
④再加入Buffer P冰上孵育;
⑤将裂解混合液离心,取上清液;
⑥将步骤⑤上清液与样本混合,使用常规方法进行RNA提取。
根据本发明的实施例,步骤②所述Buffer S由以下质量份成分组成:50mM Tris,20~30mM EDTA,3~5%SDS。
根据本发明的实施例,步骤②所述Buffer S包括50mM Tris、25mM EDTA和3%SDS。
根据本发明的实施例,所述小桐子幼叶和Buffer S的质量体积比为:50~100mg:400~500μL。
根据本发明的实施例,步骤③所述孵育条件为:65~70℃孵育10~15分钟,倒置管混合2~3次。
根据本发明的实施例,步骤④Buffer P与步骤②Buffer S体积比:400~500μL:130~162.5μL。
根据本发明的实施例,步骤④所述Buffer P为3M乙酸钾KOAc,pH 5.5。
根据本发明的实施例,步骤⑤20,000×g离心5~10分钟。
根据本发明的实施例,步骤⑥所述样本选自HBV血清、肺灌洗液或NaOH处理过的结核杆菌痰液的任意一种;所述上清液与样本体积比为1:9~19。
根据本发明的实施例,所述小桐子研磨液中的某种成分结合了混合液中的DNA,造成DNA无法被提取。
发明人偶然发现,提取小桐子幼叶的核酸时,仅能够提取RNA,而无法提取DNA。将提取试剂的组成改变,加入5%的PVP40用于结合其中的抑制剂后,可以同时提取小桐子幼叶的DNA和RNA。发明人推测,小桐子幼叶存在某种可被PVP40结合的抑制剂,结合了DNA,使DNA无法回收,但这种抑制剂并不会结合RNA。因此,可以将这两者结合起来,反常规思维而行(核酸提取的纯度越高越好),通过人为地引入小桐子进行共提取,获得不含同源DNA的RNA。
本发明的有益效果是:
本发明公开了一种利用抑制剂回收不含DNA的RNA的方法,本发明使用经处理的生长至一定周期的小桐子幼叶研磨上清液,与样本进行共提取,可以阻止样本中与病原体RNA同源的病原体DNA的回收,从而提高病原体RNA的提取质量。样本包括但不仅是病毒、细菌等。本发明的提取方法可以达到安全、经济、高效,不用增加时间长、成本高的DNAse I消化步骤,即可获得不含同源DNA的病原体RNA。
附图说明
图1为使用本发明方法扩增HBV pgRNA的扩增曲线图。
图2为使用本发明方法扩增结核杆菌mRNA的扩增曲线图。
图3为使用生长天数为30天的小桐子幼叶扩增结核杆菌mRNA的扩增曲线图。
图4是使用生长天数为330天的小桐子叶片扩增图。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明中的技术方案进行清楚、完整的说明,但并不局限于此。
实施例1
小桐子幼叶:生长10天的小桐子幼叶
小桐子幼叶处理方法:
①50~100mg小桐子幼叶在液氮中迅速研磨成粉末;
②加入500μL Buffer S(50mM Tris,25mM EDTA,3%SDS),涡旋振荡使其充分裂解;
③将混合液在65℃孵育10分钟。在培养期间通过倒置管混合2或3次;
④向混合液中加入162.5μL Buffer P(3M KOAc,pH 5.5),混合,在冰上孵育5分钟;
⑤将混合液以20,000x g(14,000rpm)离心5分钟,吸取上清液100μL至新的离心管,待用。
将20μL上清液与380μL HBV血清样本混合后按下面方法进行核酸提取。
核酸提取试剂及其方法:
裂解液:Tris-Cl pH 8,4M异硫氰酸胍,15%Triton X-100,100mM NaCl;
洗涤液1:3M盐酸胍,65%乙醇;
洗涤液2:75%乙醇;
洗脱液:10mM Tris-Cl pH 7.5,1mM EDTA;
1)将400μL样本加入1200μL裂解液中,混匀后,1000rpm振荡5min;
2)加入400μL异丙醇,30μL粒径1μm的羟基磁珠(购自:苏州为度生物),静置1min,用磁力架进行磁吸,弃废液;
3)添加600μL洗涤液1,静置1min,磁吸弃废液;
4)添加600μL洗涤液2,静置1min,磁吸弃废液;
5)添加600μL洗涤液2,静置1min,磁吸弃废液;
6)添加100μL洗脱液,静置1min,磁吸,吸取上清即为不含DNA的RNA。
RT-qPCR反应
实验组的反应液体系如下:
所述qPCR PreMix购自:天根生化;货号:FP206 SuperReal PreMix。
同时设立无MMLV酶作为对照组,反应液体系如下:
其中:
所述上游引物:5’-GGTCCCCTAGAAGAAGAACTCC-3’(SEQ ID NO.1);
下游引物:5’-GATTGAGATCTTCTGCGACGC-3’(SEQ ID NO.2);
荧光探针:5’-Fam-TCGCCTCGCAGACGAAGGTCTCAA-BHQ1-3’(SEQ ID NO.3)。
qPCR检测反应程序为:
45℃1h;95℃5min;95℃15s,58℃45s,72℃10s,循环10次;95℃15s,58℃45s,循环40次。
结果:实验组qPCR检测,扩增Ct值为17.89;无MMLV对照组无扩增目的条带。本申请提取核酸以及核酸扩增方法,可用于检测血清样本中HBV pgRNA,而且不会同时扩增出血清样本中的HBV DNA。
图1为使用本发明方法扩增HBV(乙型肝炎病毒)pgRNA的效果,其中无MMLV对照组中的MMLV高温(100℃10min,冷却至室温)灭活,仅可以扩增提取核酸中的DNA。实验证明,使用本发明方法提取的核酸中不含有HBV DNA。
实施例2
样本:180μL结核病人的肺灌洗液
小桐子幼叶:生长15天的小桐子幼叶
小桐子幼叶处理方法:
①50~100mg小桐子幼叶在液氮中迅速研磨成粉末;
②加入500μL Buffer S(50mM Tris,25mM EDTA,3%SDS),涡旋振荡使其充分裂解;
③将混合液在65℃孵育10分钟。在培养期间通过倒置管混合2或3次;
④向混合液中加入162.5μL Buffer P(3M KOAc,pH 5.5),混合,在冰上孵育5分钟;
⑤将混合液以20,000x g(14,000rpm)离心5分钟,吸取上清液100μL至新的离心管,待用。
将20μL上清液与180μL结核病人的肺灌洗液样本混合后按下面方法进行核酸提取。
裂解液:Tris-Cl pH 5,5M异硫氰酸胍,10%Triton X-100,50mM NaI,1mM 1-硫代甘油;
洗涤液1:3M异硫氰酸胍,65%乙醇;
洗涤液2:75%乙醇;
洗脱液:10mM Tris-Cl pH 7.5;
离心柱购自:天根生化;
核酸提取:
1)4℃、13,400×g(12,000rpm)离心2min收集菌体,加入90μL 1xTE缓冲液,彻底重悬;
2)加入10μL 50mg/mL的溶菌酶(购自上海生工,货号:A610308),吹打混匀,25℃孵育30min;
3)加入350μl裂解液混匀,边吹打混合液边转移到离心柱;
4)加入200μl异丙醇,静置2min,13,400×g离心1min,弃滤液;
5)加入600μl预先加有无水乙醇的洗涤液1,10000×g离心1min,弃废液;
6)加入600μl预先加有无水乙醇的洗涤液2,10000×g离心1min,弃废液;
7)加入600μl预先加油无水乙醇的洗涤液2,10000×g离心1min,弃废液;
8)13,400×g离心2min,弃套管,吸附柱转入新的离心管中;
9)滴加50μl洗脱液,室温放置2min,13,400×g离心1min。
核酸qPCR反应
实验组的反应液体系如下:
无MMLV酶对照组:
其中:
所述上游引物:5’-GGTGGTTTGTCGCGTTGTTC-3’(SEQ ID NO.4);
下游引物:5’-GCCCGCACGCTCACA-3’(SEQ ID NO.5);
荧光探针:5’-Fam-TGAAATCTCACGGCTTAA-MGB-3’(SEQ ID NO.6)。
qPCR检测反应程序为:
45℃1h;95℃5min;95℃15s,58℃45s,72℃10s,循环8次;95℃15s,58℃45s,循环40次。
结果:实验组qPCR检测,扩增Ct值为28.17;无MMLV对照组无扩增目的条带。图2为使用本发明方法扩增结核杆菌mRNA的图,表明本发明方法可提取肺灌洗液样本中的结核杆菌mRNA,不会同时检测结核杆菌DNA,可用于检测活的结核杆菌。
实施例3
样本:结核病人的肺灌洗液
小桐子幼叶为生长30天的小桐子幼叶
小桐子幼叶处理方法:
①50~100mg小桐子幼叶在液氮中迅速研磨成粉末;
②加入500μL Buffer S(50mM Tris,25mM EDTA,3%SDS),涡旋振荡使其充分裂解;
③将混合液在65℃孵育10分钟。在培养期间通过倒置管混合2或3次;
④向混合液中加入162.5μL Buffer P(3M KOAc,pH 5.5),混合,在冰上孵育5分钟;
⑤将混合液以20,000x g(14,000rpm)离心5分钟,吸取上清液100μL至新的离心管,待用。
将20μL上清液与180μL结核病人的肺灌洗液样本混合后按下面方法进行核酸提取。
裂解液:Tris-Cl pH 5,5M异硫氰酸胍,10%Triton X-100,50mM NaI,1mM 1-硫代甘油;
洗涤液1:3M异硫氰酸胍,65%乙醇;
洗涤液2:75%乙醇;
洗脱液:10mM Tris-Cl pH 7.5;
离心柱购自:天根生化;
核酸提取:
1)4℃、13,400×g(12,000rpm)离心2min收集菌体,加入90μL 1xTE缓冲液,彻底重悬;
2)加入10μL 50mg/mL的溶菌酶(购自上海生工,货号:A610308),吹打混匀,25℃
孵育30min;
3)加入350μl裂解液混匀,边吹打混合液边转移到离心柱;
4)加入200μl异丙醇,静置2min,13,400×g离心1min,弃滤液;
5)加入600μl预先加有无水乙醇的洗涤液1,10000×g离心1min,弃废液;
6)加入600μl预先加有无水乙醇的洗涤液2,10000×g离心1min,弃废液;
7)加入600μl预先加油无水乙醇的洗涤液2,10000×g离心1min,弃废液;
8)13,400×g离心2min,弃套管,吸附柱转入新的离心管中;
9)滴加50μl洗脱液,室温放置2min,13,400×g离心1min。
核酸qPCR反应
实验组的反应液体系如下:
无MMLV酶对照组:
其中:
所述上游引物:5’-GGTGGTTTGTCGCGTTGTTC-3’(SEQ ID NO.4);
下游引物:5’-GCCCGCACGCTCACA-3’(SEQ ID NO.5);
荧光探针:5’-Fam-TGAAATCTCACGGCTTAA-MGB-3’(SEQ ID NO.6)。
qPCR检测反应程序为:
45℃1h;95℃5min;95℃15s,58℃45s,72℃10s,循环8次;95℃15s,58℃45s,循环40次。
结果:实验组qPCR检测,扩增Ct值为28.17;无MMLV对照组无扩增目的条带。图3为使用本发明方法扩增结核杆菌mRNA的图,表明本发明方法可提取肺灌洗液样本中的结核杆菌mRNA,不会同时检测结核杆菌DNA,可用于检测活的结核杆菌。
对比例1
小桐子幼叶:生长330天的小桐子幼叶
小桐子幼叶处理方法:
①50~100mg小桐子幼叶在液氮中迅速研磨成粉末;
②加入500μL Buffer S(50mM Tris,25mM EDTA,3%SDS),涡旋振荡使其充分裂解;
③将混合液在65℃孵育10分钟。在培养期间通过倒置管混合2或3次;
④向混合液中加入162.5μL Buffer P(3M KOAc,pH 5.5),混合,在冰上孵育5分钟;
⑤将混合液以20,000x g(14,000rpm)离心5分钟,吸取上清液100μL至新的离心管,待用。
将20μL上述上清液与380μL HBV血清样本混合后按下面方法进行核酸提取。
核酸提取
裂解液:Tris-Cl pH 8,4M异硫氰酸胍,15%Triton X-100,100mM NaCl;
洗涤液1:3M盐酸胍,65%乙醇;
洗涤液2:75%乙醇;
洗脱液:10mM Tris-Cl pH 7.5,1mM EDTA;
1)将400μL样本加入1200μL裂解液中,混匀后,1000rpm振荡5min;
2)加入400μL异丙醇,30μL粒径1μm的羟基磁珠(购自:苏州为度生物),静置1min,用磁力架进行磁吸,弃废液;
3)添加600μL洗涤液1,静置1min,磁吸弃废液;
4)添加600μL洗涤液2,静置1min,磁吸弃废液;
5)添加600μL洗涤液2,静置1min,磁吸弃废液;
6)添加100μL洗脱液,静置1min,磁吸,吸取上清即为不含DNA的RNA。
RT-qPCR反应
实验组的反应液体系如下:
所述qPCR PreMix购自:天根生化;货号:FP206 SuperReal PreMix。
同时设立无MMLV酶作为对照组,反应液体系如下:
其中
所述上游引物:5’-GGTCCCCTAGAAGAAGAACTCC-3’(SEQ ID NO.1);
下游引物:5’-GATTGAGATCTTCTGCGACGC-3’(SEQ ID NO.2);
荧光探针:5’-Fam-TCGCCTCGCAGACGAAGGTCTCAA-BHQ1-3’(SEQ ID NO.3)。
qPCR检测反应程序为:
45℃1h;95℃5min;95℃15s,58℃45s,72℃10s,循环10次;95℃15s,58℃45s,循环40次。
结果:图4中,实验组和对照组qPCR检测,均无目的条带扩增出来。由此可知,本发明提取方法不能使用生长时间过久的小桐子叶片进行提取。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
SEQUENCE LISTING
<110> 广州湾区生物科技有限公司
<120> 一种利用抑制剂提取不含DNA的RNA方法
<130>
<160> 6
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
ggtcccctag aagaagaact cc 22
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
gattgagatc ttctgcgacg c 21
<210> 3
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
tcgcctcgca gacgaaggtc tcaa 24
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 4
ggtggtttgt cgcgttgttc 20
<210> 5
<211> 15
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
gcccgcacgc tcaca 15
<210> 6
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 6
tgaaatctca cggcttaa 18
Claims (8)
1.小桐子幼叶作为DNA提取抑制剂在RNA提取中的应用;所述RNA提取包括以下步骤:将小桐子幼叶和裂解液混合后,与样本混合;异丙醇磁吸、洗涤液磁吸和洗脱液磁吸,取上清即得不含DNA的RNA,所述小桐子幼叶为生长10~30天的小桐子幼叶。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述RNA为病毒RNA或结核杆菌RNA。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于,所述病毒为乙型肝炎病毒。
4.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述小桐子幼叶结合样本DNA而减少DNA含量。
5.小桐子幼叶作为DNA提取抑制剂在RNA提取中的使用方法,其特征在于,包括以下步骤:
①小桐子幼叶在液氮中研磨成粉末;所述小桐子幼叶为生长10~30天的小桐子幼叶;
②将Buffer S加到粉末,混合成裂解混合液,振荡使其裂解;所述Buffer S为Tris、EDTA和SDS;
③将裂解混合液孵育;
④再加入Buffer P冰上孵育;所述Buffer P为乙酸钾;
⑤将裂解混合液离心,取上清液;
⑥将步骤⑤上清液与样本混合,使用常规方法进行RNA提取。
6.根据权利要求5所述的方法,其特征在于,所述小桐子幼叶和Buffer S的质量体积比为:50~100 mg:400~500μL。
7.根据权利要求5所述的方法,其特征在于,步骤③所述孵育条件为:65~70℃孵育10~15分钟,倒置管混合2~3次。
8.根据权利要求5所述的方法,其特征在于,步骤⑥所述样本选自HBV血清、肺灌洗液或NaOH处理过的结核杆菌痰液的任意一种;所述上清液与样本体积比为1:9~19。
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Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN110343696A (zh) * | 2019-06-25 | 2019-10-18 | 中国药科大学 | 一种快速、安全、无毒的rna提取方法 |
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2019
- 2019-12-23 CN CN201911338197.9A patent/CN110904096B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN110343696A (zh) * | 2019-06-25 | 2019-10-18 | 中国药科大学 | 一种快速、安全、无毒的rna提取方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
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miR172 regulates both vegetative and reproductive development in the perennial woody plant Jatropha curcas;Mingyong Tang et al.;《Plant and cell physiology》;20181231;第59卷(第12期);第2549-2563页 * |
一种简易快速高效提取麻疯树营养器官中RNA的方法;罗言云等;《植物生理学通讯》;20050630;第41卷(第3期);第361页第2栏第2.1节,第362-363页第2栏第2节 * |
从麻疯树胚乳中提取总RNA的快速方法;林莎等;《应用与环境生物学报》;20081025;第14卷(第5期);第692-694页 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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CN110904096A (zh) | 2020-03-24 |
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