CN110872614A - 基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,包括以下步骤:S1:进行菌种的培养;S2:gRNA探针的设计与制备;S3:DNA制备与PCR扩增;S4:采用FnCas12a/gRNA进行切割,进行荧光检测,从而区分出分枝杆菌。本申请基于Cas12a/gRNA的平台来鉴定MTB和大多数NTM物种。通过设计针对rpoB序列的物种特异性gRNA探针,基于Cas12a/gRNA的平台成功地鉴定了MTB和六种主要NTM物种无交叉反应。采用盲法,73株临床分离的分枝杆菌中有72株被正确鉴定,与以往rpoB测序结果一致。这些结果表明,基于Cas12a/gNRA的平台是快速、准确和经济有效地鉴定MTB和NTM物种的一个有希望的工具。
Description
技术领域
本发明涉及分子生物学技术领域,尤其涉及一种基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法。
背景技术
结核病是十大死亡原因之一,也是单一传染源(高于艾滋病毒/艾滋病)的主要原因。每年仍有数百万人因肺结核而患病。世界卫生组织(世卫组织)的一份报告显示,2017年,结核病估计造成130万人死亡,1000万人患上结核病。近年来,NTM病的发病率和流行率在世界范围内持续上升。尽管NTM疾病的致病因子因地理位置而异,但最常见的肺部NTM病原体是脓肿分枝杆菌、胞内分枝杆菌、鸟分枝杆菌、偶发分枝杆菌、堪萨斯分枝杆菌和戈登分枝杆菌。NTM和MTB感染的临床症状往往非常相似。然而,分枝杆菌的种类在治疗效果和抗生素敏感性方面存在显著差异,严重阻碍了结核分枝杆菌和结核分枝杆菌引起的疾病的诊断和治疗。控制分枝杆菌感染最有效的策略是早期诊断和治疗。因此,建立快速、准确地检测和鉴定感染分枝杆菌的方法,对特异性化疗和更好的病人管理具有重要意义。
MTB和NTM的鉴别主要依靠实验室诊断。微生物实验室常规病原学方法复杂、费时费力,特异性和敏感性差,不利于临床治疗的及时指导。近几十年来,分子诊断方法的引入克服了这些缺点,使分枝杆菌的直接检测方法有了显著的改进。为了从临床标本和培养物中鉴定结核分枝杆菌和结核分枝杆菌,人们开发了多种分子技术。主要包括多重PCR、实时PCR、DNA探针分析、PCR限制性片段长度多态性(RFLP)分析、靶基因序列和微阵列技术。其中,微阵列技术能够在短时间内同时分析成千上万个基因,对系统发育分析和物种鉴定具有重要的意义,因此受到了广泛的关注。然而,这些技术大多不具有成本效益,其中一些需要昂贵的设备。此外,这些检测方法大多仅用于检测或定量某些分枝杆菌物种,如结核分枝杆菌,或检测耐药性。
Cas12a(Cpf1)首先被张峰群鉴定为RNA引导的核酸内切酶,能直接结合和切割靶DNA。最近,两个独立的研究小组发现Cas12a具有反式切割DNA活性。这一酶切活性立即发展成为两种基于Cas12a的核酸检测方法,称为HOLMES和DETECTR。两种平台均能实现单碱基分辨的aM级灵敏度。在这里,通过设计多种物种特异性的gRNA探针,我们试图建立基于Cas12a/gRNA的平台快速准确地识别MTB和最常见的NTM物种(脓肿分枝杆菌、胞内分枝杆菌、鸟分枝杆菌、堪萨斯分枝杆菌、戈登分枝杆菌和偶发分枝杆菌)。
发明内容
针对上述技术中存在的不足之处,本发明提供一种基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,能够对MTB和六种主要NTM物种进行快速鉴别,从而对结核分枝杆菌的早期诊断、治疗提供重要帮助。
为实现上述目的,本发明提供一种基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,包括以下步骤:
S1:进行菌种的培养;
S2:gRNA探针的设计与制备;
S3:DNA制备与PCR扩增;
S4:采用FnCas12a/gRNA进行切割,进行荧光检测,从而区分出分枝杆菌。
作为优选,在步骤S1中,将多种不同类型的分歧杆菌均培养在7H9液体培养基中,温度设定在35-40℃进行孵育。
作为优选,在步骤S2中,采用分枝杆菌中的rpoB基因作为gRNA探针的靶序列,基于分枝杆菌中的rpoB基因的差异性设计物种特异性gRNA探针,且每一种分枝杆菌均设计两种特异性gRNA探针,然后使用RNA转录试剂盒通过体外转录制备gRNA探针。
作为优选,针对gRNA探针的靶序列两侧的保守序列,设计一个通用的扩增靶序列的引物对。
作为优选,在步骤S3中,进行DNA的提取制备根据天根细菌DNA提取试剂盒说明书或者热消煮法提取DNA;然后以提取的DNA为模板对ropB靶基因进行PCR扩增,PCR扩增方法为:94℃3min,94℃30s,60℃30s,72℃30s,72℃5min,4℃冷却,然后用1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。
作为优选,利用FnCas12a/gRNA进行识别切割,在37℃反应1小时,然后添加2ul的0.25M EDTA终止反应,在激发光波长为535nm,发射光波长为560nm的条件下检测荧光,根据荧光的强弱鉴别出不同的分枝杆菌。
本发明的有益效果是:与现有技术相比,本发明采用了一个基于Cas12a/gRNA的平台来鉴定MTB和大多数NTM物种。通过设计针对rpoB序列的物种特异性gRNA探针,基于Cas12a/gRNA的平台成功地鉴定了MTB和六种主要NTM物种(脓肿分枝杆菌(MAB)、胞内分枝杆菌(MIN)、鸟分枝杆菌(MAV)、堪萨斯分枝杆菌(MKA),戈登分枝杆菌(MGO)和偶发分枝杆菌(MFO)无交叉反应。采用盲法,73株临床分离的分枝杆菌中有72株被正确鉴定,与以往rpoB测序结果一致。这些结果表明,基于Cas12a/gNRA的平台是快速、准确和经济有效地鉴定MTB和NTM物种的一个有希望的工具。
附图说明
图1为基于rpoB序列的物种特异性gRNA探针设计;
图2为扩增靶序列序列表;
图3为基于FnCas12a/gRNA的分枝杆菌鉴定平台示意图;
图4为FnCas12a/gRNA平台检测下限;
图5为临床试验检测结果。
具体实施方式
为了更清楚地表述本发明,下面结合附图对本发明作进一步地描述,但是实施例并不对本发明做任何形式的限定。对于本领域的技术人员来说,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所做的改变、修饰、替代的技术手段,在没有付出任何创造性的劳动下,均包含在本发明的保护范围之内。
首先从医院分离得到结核分枝杆菌10株、脓肿分枝杆菌15株、胞内分枝杆菌15株、鸟分枝杆菌10株、偶发分枝杆菌10株、堪萨斯分枝杆菌7株和戈登分枝杆菌6株,且经rpoB测序验证。,这些分枝杆菌分别与中国疾病预防控制中心提供结核分枝杆菌H37Rv、脓肿分枝杆菌ATCC 19977、胞内分枝杆菌ATCC 13950、鸟分枝杆菌ATCC 25291、堪萨斯分枝杆菌ATCC12478、戈登分枝杆菌ATCC 14470、偶发分枝杆菌ATCC 6841等7株参考菌株由中国疾病预防控制中心赠送。所有菌株培养在7H9液体培养基中,37℃孵育。大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、鲍曼不动杆菌、肠炎沙门氏菌和肺炎克雷伯菌从深圳市第三人民医院获得,并在血琼脂平板上培养。
请参阅图1和图2,由于rpoB基因已被报道为区分分枝杆菌菌种的合适位点,所以选择它作为设计gRNA探针的靶序列。结核分枝杆菌H37Rv和最常见的NTM(脓肿分枝杆菌ATCC 19977,胞内分枝杆菌ATCC 13950,鸟分枝杆菌ATCC 25291,堪萨斯分枝杆菌ATCC12478,戈登分枝杆菌ATCC 14470和偶发分枝杆菌ATCC 6841)的rpoB基因序列可从NCBI(https://www.NCBI.nlm.nih.gov/)下载。利用DNAMAN 8软件对rpoB基因序列进行多重比对(保守序列标记为黑色;红色框表示gRNA探针的目标区域;绿色方框代表FnCas12a蛋白识别基序用箭头指示扩增rpoB片段的通用引物)基于rpoB基因的差异区域设计了物种特异性gRNA探针。我们为每种分枝杆菌设计了两种特异性的gRNA探针,除了偶发分枝杆菌。基于gRNA探针靶向区域两侧的保守序列,设计了一个通用的扩增靶序列的引物对(RpoB-F和RpoB-R)。使用T7高产RNA转录试剂盒(诺唯赞,南京,中国)通过体外转录制备gRNA探针。由生工生物科技有限公司合成gRNA转录的DNA模板,用VAHTS RNA清洁珠(诺唯赞,南京,中国)纯化转录RNA,并用NanoDrop 2000进行定量。
针对DNA制备与PCR扩增,首先DNA的提取根据天根细菌DNA提取试剂盒说明书或者简单的热消煮法提取DNA。DNA浓度测量使用Qubit dsDNAHS Assay Kit(赛默飞,马萨诸塞州,美国)。使用上述通用引物对rpoB靶基因进行PCR扩增。PCR方法为:94℃3min,94℃30s,60℃30s,72℃30s,72℃5min,4℃冷却,用1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。PCR产物浓度使用Qubit dsDNA HS Assay Kit(赛默飞,马萨诸塞州,美国)测量。
采用安徽吐露港生物科技有限公司生产的重组的FnCas12a蛋白成品,FnCas12a的识别切割特征基序是“TTN”。FnCas12/gRNA切割实验体系如下:
在37℃的条件下反应1小时,然后添加2ul的0.25M EDTA终止反应,在激发光波长为535nm,发射光波长为560nm的条件下检测荧光,以无靶基因的反应作为荧光背景值进行试验,根据荧光强度将多种分枝杆菌进行区分;其原理是用PCR扩增靶DNA,然后与FnCas12a、gRNA探针和猝灭荧光报告ssDNA孵育;如果反应混合物中的物种特异性gRNA探针检测到目标DNA,则FnCas12a/gRNA/靶DNA三元复合物的形成会反式切割报告者ssDNA,显示荧光,从而将分枝杆菌进行区分。
此外,针对所述使用的gRNA探针的特异性和检测下限也进行了测定,利用7株分枝杆菌参考菌株和大肠杆菌、铜绿假单胞菌、鲍曼氏菌、肠炎链球菌和肺炎克雷伯菌细菌对gRNA探针的特异性进行评估。PCR扩增rpoB片段后,用1ul未纯化的PCR产物,进行FnCas12a/gRNA切割实验,检测gRNA探针的特异性和检测下限。请参阅图3,其中1-7分别代表结核分枝杆菌H37Rv、脓肿分枝杆菌(ATCC 19977)、胞内分枝杆菌(ATCC 13950)、鸟分枝杆菌(ATCC25291)、堪萨斯分枝杆菌(ATCC 12478)、戈登分枝杆菌(ATCC 14470)和偶发分枝杆菌(ATCC6841);8-12分别代表大肠杆菌、铜绿假单胞菌、鲍曼菌、肠炎链球菌和肺炎克雷伯菌;误差线表示平均值±标准差,其中n=3个技术重复。从图3所示的荧光检测结果来看,每一个设计的gRNA探针只能识别特定的分枝杆菌物种,没有出现交叉反应。从图4所示的荧光检测
请参阅图4;为了确定以上检测方法能实际应用于临床上对分枝杆菌进行分离,采用盲法检测73株临床分离菌,包括10株结核分枝杆菌、15株脓肿分枝杆菌、15株胞内分枝杆菌、10株禽流感分枝杆菌、7株堪萨斯分枝杆菌、10株戈尔多纳分枝杆菌和6株偶然分枝杆菌,以确定基于FnCas12a/gRNA平台鉴定主要分枝杆菌的可行性。每次试验均以大肠杆菌作为阴性对照。检测结果显示:73个临床菌株中的72个得到了正确的鉴定,显示与之前的rpoB测序结果几乎一致。
本发明的优势在于:
1)采用基于FnCas12a/gRNA的检测平台对分枝杆菌鉴定,方法操作简单,无需昂贵的设备,有助于在贫困国家和地区推广应用;整个过程在3h内完成,根据荧光强度可方便直观地读出实验结果。
以上公开的仅为本发明的几个具体实施例,但是本发明并非局限于此,任何本领域的技术人员能思之的变化都应落入本发明的保护范围。
序列表
<110> 深圳市第三人民医院
<120> 基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法
<160> 15
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 1
<210> 2
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 2
<210> 3
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 3
<210> 4
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 4
<210> 5
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 5
<210> 6
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 6
<210> 7
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 7
<210> 8
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 8
<210> 9
<211> 3
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<210> 10
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<210> 11
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<210> 13
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<210> 14
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<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 14
<210> 15
<211> 3
<212> RNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 15
Claims (6)
1.一种基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1:进行菌种的培养;
S2: gRNA探针的设计与制备;
S3: DNA制备与PCR扩增;
S4:采用FnCas12a/gRNA进行切割,进行荧光检测,从而区分出分枝杆菌。
2.根据权利要求1所述的基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,其特征在于,在步骤S1中,讲多种不同类型的分歧杆菌均培养在7H9液体培养基中,温度设定在35-40℃进行孵育。
3.根据权利要求1所述的基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,其特征在于,在步骤S2中,采用分枝杆菌中的rpoB基因作为gRNA探针的靶序列,基于分枝杆菌中的rpoB基因的差异性设计物种特异性gRNA探针,且每一种分枝杆菌均设计两种特异性gRNA探针。
4.根据权利要求3所述的基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,其特征在于,针对gRNA探针的靶序列两侧的保守序列,设计一个通用的扩增靶序列的引物对,然后使用RNA转录试剂盒通过体外转录制备gRNA探针。
5.根据权利要求1所述的基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,其特征在于,在步骤S3中,进行DNA的提取制备根据天根细菌DNA提取试剂盒说明书或者热培养的菌株中提取DNA;然后使用该DNA对ropB靶基因进行PCR扩增,PCR扩增方法为:94°C3min,94°C30s,60°C30s,72°C30s,72°C5min,在4°C下冷却,用1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。
6.根据权利要求1所述的基于Cas12a/gRNA的快速鉴定分枝杆菌的方法,其特征在于,利用FnCas12a/gRNA进行识别切割,在37℃反应1小时,然后添加2ul的0.25M EDTA终止反应,在激发光波长为535nm,发射光波长为560nm的条件下检测荧光,从而鉴别出不同的分枝杆菌。
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CN (1) | CN110872614A (zh) |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105368943A (zh) * | 2015-11-21 | 2016-03-02 | 中国人民解放军第三〇九医院 | 一种用于鉴定分枝杆菌菌种的试剂盒及方法 |
CN109280711A (zh) * | 2018-05-16 | 2019-01-29 | 深圳市第三人民医院(深圳市肝病研究所) | 堪萨斯分枝杆菌的lamp检测引物组、检测试剂盒及其检测方法 |
CN109811072A (zh) * | 2019-02-28 | 2019-05-28 | 广州微远基因科技有限公司 | 用于结核分枝杆菌复合群的crispr检测引物组及其用途 |
CN110218802A (zh) * | 2019-04-30 | 2019-09-10 | 广州普世利华科技有限公司 | 一种检测呼吸道病原体核酸的方法 |
US20200190147A1 (en) * | 2018-11-27 | 2020-06-18 | Eligo Bioscience | Chimeric receptor binding proteins for use in bacterial delivery vehicles |
-
2019
- 2019-12-05 CN CN201911230545.0A patent/CN110872614A/zh active Pending
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105368943A (zh) * | 2015-11-21 | 2016-03-02 | 中国人民解放军第三〇九医院 | 一种用于鉴定分枝杆菌菌种的试剂盒及方法 |
CN109280711A (zh) * | 2018-05-16 | 2019-01-29 | 深圳市第三人民医院(深圳市肝病研究所) | 堪萨斯分枝杆菌的lamp检测引物组、检测试剂盒及其检测方法 |
US20200190147A1 (en) * | 2018-11-27 | 2020-06-18 | Eligo Bioscience | Chimeric receptor binding proteins for use in bacterial delivery vehicles |
CN109811072A (zh) * | 2019-02-28 | 2019-05-28 | 广州微远基因科技有限公司 | 用于结核分枝杆菌复合群的crispr检测引物组及其用途 |
CN110218802A (zh) * | 2019-04-30 | 2019-09-10 | 广州普世利华科技有限公司 | 一种检测呼吸道病原体核酸的方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
GUOHUI XIAO 等: "Identification of Mycobacterium abscessus species and subspecies using the Cas12a/sgRNA-based nucleic acid detection platform", 《EUROPEAN JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY & INFECTIOUS DISEASES》 * |
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Application publication date: 20200310 |