CN110819738A - 高致病性h7n9禽流感病毒的检测方法及其引物和探针 - Google Patents
高致病性h7n9禽流感病毒的检测方法及其引物和探针 Download PDFInfo
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Abstract
本发明属于分子生物学检测领域,公开了一种检测高致病性H7N9禽流感病毒的引物和探针,所述引物序列为:F‑引物:5’‑AATGTTCCTGAGGT TCCAAAGGGAAAACGGACTGC‑3’,R‑引物:5’‑GAGTGCTTTTGTAATCTGCAGCAGTTCCCTCTCCC‑3’;所述探针的序列为:5’‑CGGGTTTCATTGAAAAT GGATGGGAAGGCCTATTGATGGTTGGTATGGT‑3’。本发明所述检测方法的特异性强、灵敏度高、重复性好,还具有简便、快速的特点。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学检测领域,具体涉及高致病性H7N9禽流感病毒的检测方法及其引物和探针。
背景技术
禽流感是由A型禽流感病毒(Avian influenz virus,AIV)引起的禽类疾病。AIV根据基质蛋白HA和NA的抗原特性分为16种HA亚型(H1-H16)和9种NA亚型(N1-N9),共有144种亚型。该病毒除可以感染禽类外,部分毒株也能够引起人感染发病。2013年3月以来,发生人感染禽流感并导致多人死亡的病例,经国家禽流感参考实验室证实,此次禽流感疫情由全球首次发现的H7N9新型流感病毒引起,能导致人类发生严重或致命的呼吸系统疾病。
疫情初期,H7N9亚型禽流感病毒对家禽是低致病性的,家禽的死亡率很低,有的甚至没有出现明显临床症状,也无死亡病例。但根据2017年2月19日中国疾控中心报道,从广东的两例人感染禽流感H7N9病例中分离病毒株的测序结果显示,该病毒已变异为高致病性禽流感病毒,造成禽类中出现病死等情况。农业部2017年3月24日发布了湖南省永州市东安县蛋鸡感染禽流感病毒的情况,这是我国第一起蛋鸡感染高致病性H7N9禽流感的疫情。
因此,建立一种快速检测方法对于控制新发高致病性H7N9亚型禽流感是非常重要的。
发明内容
本发明旨在至少解决上述现有技术中存在的技术问题之一。为此,本发明提出一种检测高致病性H7N9禽流感病毒的引物和探针,以及基于所述引物和探针的RAA(重组酶介导核酸扩增)检测方法。本发明所述检测方法的特异性强、灵敏度高、重复性好,还具有简便、快速的特点。
一种检测高致病性H7N9禽流感病毒的引物和探针,
所述引物的序列为:
F-引物:5’-AATGTTCCTGAGGTTCCAAAGGGAAAACGGACTGC-3’,
R-引物:5’-GAGTGCTTTTGTAATCTGCAGCAGTTCCCTCTCCC-3’;
所述探针的序列为:
5’-CGGGTTTCATTGAAAATGGATGGGAAGGCCTATTGATGGTTGGTATGGT-3’。
优选的,所述探针上标记有荧光基团、淬灭基团和THF,所述荧光基团与所述淬灭基团均标记在T碱基上,所述荧光基团与所述淬灭基团的间距为1~5nt;所述荧光基团与所述淬灭基团之间设有所述THF,所述THF距所述探针5’端≥30nt,所述THF距所述探针3’端≥15nt。
所述THF为四氢呋喃残基,所述THF的数量为一个。
本发明根据GenBank中公布的高致病性H7N9亚型禽流感病毒核酸HA基因的全序列与其它禽流感病毒HA基因的全序列进行比对,通过分析找到高致病性H7N9亚型禽流感病毒区别于其他禽流感病毒的特异性保守区域。
本发明针对该特异性保守区域设计特异性引物和探针,设计了多组不同的引物和探针组合,并经过筛选和分析,从而确定上述引物和探针的检测效果最佳。
优选的,所述荧光报告基团包括FAM(羧基荧光素)、TET(四氯-6-羧基荧光素)、HEX(六氯-6-甲基荧光素)、CY3(3H-吲哚菁)或JOE(2,7-二甲基-4,5-二氯-6-羧基荧光素)中的一种。
优选的,所述淬灭基团包括BHQ1、BHQ2、TAMRA、DABCYL、MGB或Eclipse中的一种。
优选的,所述探针的3’末端还标记有修饰基团。
更优选的,所述修饰基因包括胺基、磷酸基团、生物素-TEG、巯基或C3-spacer中的一种。所述修饰基团对探针3’末端起封闭和阻断作用,可阻止探针3’末端发生进一步的延伸。
上述引物和探针均委托由生工生物(上海)股份有限公司合成。
一种用于检测高致病性禽流感病毒H7N9的试剂盒,所述试剂盒包括上述的引物和探针。
优选的,所述试剂盒还包括阳性标准品和阴性标准品。所述阳性标准品为插入高致病性H7N9禽流感病毒HA全基因序列的质粒。所述阴性标准品为超纯水或纯净水。其中超纯水由双蒸水经高温杀菌制得。
一种非诊断目的的高致病性禽流感病毒H7N9的检测方法,包括以下步骤:
(1)提取样品RNA;
(2)以所述样品RNA为模板,利用上述引物和探针进行实时荧光重组酶介导核酸扩增检测;
(3)收集荧光信号,得出样品检测结果。
本发明采用RAA(重组酶介导核酸扩增)技术结合上述的引物和探针进行高致病性禽流感病毒H7N9的检测,样品检测结果可通过荧光检测仪进行读取。
优选的,所述样品RNA的OD260/280(OD260代表核酸的吸光度,OD280代表蛋白质的吸光度)为1.8~2.0。由于RAA技术对模板的要求较低,样品RNA的提取可采用人工提取或试剂盒提取,具体提取方法不作限制。为保证检测的准确性,当所提取样品RNA的OD260/280不为1.8~2.0时,需重新提取样品RNA。
优选的,所述实时荧光重组酶介导核酸扩增检测的反应体系中:F-引物的浓度为10μmol/L,R-引物的浓度为10μmol/L,探针的浓度10μmol/L。
优选的,所述RAA检测的反应体系中:F-引物的用量为2μL,R-引物的用量为2μL,探针的用量为0.6μL。
优选的,所述RAA检测的反应程序为:39℃40s,1个循环;39℃30s,30~40个循环。
相对于现有技术,本发明的有益效果如下:
(1)本发明通过采用RAA检测技术,可在恒温条件下完成检测,降低了对设备的要求,具有更广阔的应用范围;
(2)本发明所述检测方法的特异性强,灵敏度高;
(3)本发明所述检测方法操作简便,且检测效率高,通常情况下仅需15~20分钟即可完成,实现了高致病性H7N9禽流感病毒的快速检测,尤其适用于动物卫生监督、海关检疫部门或医院等场所。
附图说明
图1为实施例3中阳性对照组和阴性对照组的检测结果;
图2为实施例3中生物材料的检测结果;
图3为实施例4中灵敏度试验结果;
图4为实施例5中样品的检测结果;
图5~7为实施例6中阳性标准品的重复性试验结果。
具体实施方式
为了让本领域技术人员更加清楚明白本发明所述技术方案,现列举以下实施例进行说明。需要指出的是,以下实施例对本发明要求的保护范围不构成限制作用。
实施例1
根据GenBank中公布的高致病性H7N9亚型禽流感病毒核酸HA基因的全序列与其它禽流感病毒HA基因的全序列进行比对,通过分析找到高致病性H7N9亚型禽流感病毒区别于其他禽流感病毒的特异性保守区域。
针对该特异性保守区域,使用分子生物学软件Oligo7.0设计特异性引物和探针。
其中引物的序列为:
F-引物:5’-AATGTTCCTGAGGTTCCAAAGGGAAAACGGACTGC-3’,
R-引物:5’-GAGTGCTTTTGTAATCTGCAGCAGTTCCCTCTCCC-3’;
其中探针的序列为:
5’-CGGGTTTCATTGAAAATGGATGGGAAGGCC(FAM-dT)A(THF)T(BHQ1-dT)GATGGTTGGTATGGT-C3 spacer-3’。
其中THF位点距探针5’端32个核苷酸,距探针3’端17个核苷酸;其中FAM-dT表示标记有荧光基团FAM的胸腺嘧啶脱氧核苷酸,BHQ1-dT表示标记有淬灭基团BHQ1的胸腺嘧啶脱氧核苷酸。其中荧光基团与淬灭基团的间距为3nt。
上述引物和探针委托生工生物(上海)股份有限公司合成。
实施例2
一种非诊断目的的高致病性H7N9禽流感病毒的检测方法,包括以下步骤:
(1)提取样品RNA;
(2)以样品RNA为模板,利用实施例1中的引物和探针进行实时荧光RAA检测;
(3)收集荧光信号,得出样品检测结果。
采用RNA提取试剂盒进行样品RNA的提取,其中RNA提取试剂盒为购自TaKaRa宝生物有限公司的TRIzol(RNAiso Plus)产品。
采用购自杭州众测生物科技有限公司的RAA恒温核酸快速扩增试剂(荧光型)进行实时荧光RAA检测。
RAA检测的反应体系:
上述Buffer均来自杭州众测生物科技有限公司的RAA恒温核酸快速扩增试剂(荧光型)。该试剂中已包含反转录酶,反转录过程已整合至反应体系中。
RAA检测的反应程序如表1所示:
表1
步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 | 是否收集荧光 |
预热 | 39℃ | 40s | 1 | 否 |
扩增 | 39℃ | 30s | 40 | 是 |
采用Genchek-1荧光检测仪(厂家:杭州众测生物科技有限公司)对荧光信号进行检测,根据扩增曲线直接读取检测结果。
实施例3
特异性试验
采用实施例2中检测方法对以下材料进行检测,验证该检测方法的特异性。
生物材料:猪流感H1N1亚型灭活疫苗LN株、猪流感H3N2灭活抗原、H5N1基因重组病毒疫苗株Re-8株、H9N2亚型禽流感病毒灭活抗原、鸡新城疫活疫苗LaSota株(ND)、低致病性H7N9禽流感病毒灭活抗原、高致病性H7N9禽流感病毒灭活抗原;上述抗原均购自哈尔滨国生生物科技股份有限公司。
阴性对照组:纯净水;
阳性对照组:新发高致病性H7N9禽流感病毒HA全基因序列合成质粒。
其中新发高致病性H7N9禽流感病毒HA全基因序列合成质粒委托上海旭冠生物科技有限公司合成。
如图1所示,P(阳性对照组)出现扩增曲线,N(阴性对照组)未出现扩增曲线。
如图2所示,除P(阳性对照组)、高致病性H7N9禽流感病毒灭活抗原出现扩增曲线外,猪流感H1N1亚型灭活疫苗LN株、猪流感H3N2灭活抗原、H5N1基因重组病毒疫苗株Re-8株、H9N2亚型禽流感病毒灭活抗原、鸡新城疫活疫苗LaSota株(ND)、低致病性H7N9禽流感病毒灭活抗原和N(阴性对照组)均未出现扩增曲线。由此可见,本发明所建立的检测方法具备良好的特异性。
实施例4
灵敏度试验
取实施例1中高致病性H7N9禽流感病毒HA基因全序列合成质粒作为模板,用NanoDrop-1000 Spectrophotometer紫外分光光度计(厂家:美国NanoDrop Technologies公司)测定其浓度,根据阿伏伽德罗常数换算成目的基因拷贝数,以10倍梯度依次进行稀释,得到107~101共7个梯度的阳性标准品。
对经梯度稀释后的阳性标准品分别使用实施例2中的检测方法进行检测,验证该检测方法的灵敏度。
如图3所示,6个阳性标准品出现扩增曲线,其中最低浓度是拷贝数为102的阳性标准品,由此得出该检测方法的灵敏度为102拷贝数,具有良好的灵敏度。
实施例5
样品检测
鸡血液(1份),鸡肺脏组织(1份),鸡肉组织(2份),鸡咽肛拭子(2份)。
使用实施例2的检测方法对以上样品进行检测,并取实施例4中浓度梯度为104的质粒作为阳性对照组,取纯净水作为阴性对照组。
如图4所示,除P(阳性对照组)出现明显的扩增曲线外,6份鸡样品和N(阴性对照组)均未检测到荧光信号的变化,得出该6份鸡样品均未感染高致病性H7N9禽流感病毒。
为了验证此次检测的准确性,将该6份鸡样品在实验室中同时采用血清型方法进行鉴定,最终确认该6份样品中不含有高致病性H7N9禽流感病毒。
实施例6
重复性试验
取实施例4中稀释至103、104、105拷贝数的禽流感H7亚型HA基因质粒阳性标准品为模板,分别使用实施例2的反应体系和反应程序进行试验,单次试验重复数8个。
如图5~7所示,每次的多个检测结果高度重叠,检测结果完全一致,因此本发明所建立的检测方法具有良好的重复性。
实施例7
一种用于检测多杀性巴氏杆菌的试剂盒,包括实施例1中的引物和探针,阳性标准品(新发高致病性H7N9禽流感病毒HA全基因序列合成质粒)和阴性标准品(纯净水)。
Claims (10)
1.一种检测高致病性H7N9禽流感病毒的引物和探针,其特征在于,
所述引物的序列为:
F-引物:5’-AATGTTCCTGAGGTTCCAAAGGGAAAACGGACTGC-3’,
R-引物:5’-GAGTGCTTTTGTAATCTGCAGCAGTTCCCTCTCCC-3’;
所述探针的序列为:
5’-CGGGTTTCATTGAAAATGGATGGGAAGGCCTATTGATGGTTGGTATGGT-3’。
2.根据权利要求1所述的引物和探针,其特征在于,所述探针上标记有荧光基团、淬灭基团和THF,所述荧光基团与所述淬灭基团均标记在T碱基上,所述荧光基团与所述淬灭基团的间距为1~5nt;所述荧光基团与所述淬灭基团之间设有所述THF,所述THF距所述探针5’端≥30nt,所述THF距所述探针3’端≥15nt。
3.根据权利要求2所述的引物和探针,其特征在于,所述荧光基团包括FAM、TET、HEX、CY3或JOE中的一种,所述淬灭基团包括BHQ1、BHQ2、TAMRA、DABCYL、MGB或Eclipse中的一种。
4.根据权利要求2所述的引物和探针,其特征在于,所述探针的3’末端还标记有修饰基团。
5.根据权利要求4所述的引物和探针,其特征在于,所述修饰基因包括胺基、磷酸基团、生物素-TEG、巯基或C3-spacer中的一种。
6.一种用于检测高致病性H7N9禽流感病毒的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括权利要求2至5中任一项所述的引物和探针。
7.根据权利要求6所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括阳性标准品和阴性标准品。
8.一种非诊断目的的高致病性H7N9禽流感病毒的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)提取样品RNA;
(2)以所述样品RNA为模板,利用权利要求2至5中任一项所述的引物和探针进行实时荧光重组酶介导核酸扩增检测;
(3)收集荧光信号,得出样品检测结果。
9.根据权利要求8所述的检测方法,其特征在于,所述样品RNA的OD260/280为1.8~2.0。
10.根据权利要求8所述的检测方法,其特征在于,所述实时荧光重组酶介导核酸扩增检测的反应程序为:39℃40s,1个循环;39℃30s,30~40个循环。
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