CN110628693A - 小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法 - Google Patents
小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明涉及小麦原生质体的制备,具体涉及一种小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法,包括如下步骤:将预处理液放置于冰上预冷,然后迅速切下小麦胚根的根尖,将根尖放入预处理液中,冰上预处理1小时;将预处理好的根尖放入酶解液中,然后在23℃避光振荡酶解2h;酶解后的溶液用300目细胞筛过滤两次,100‑300g,4℃离心5‑10min;小心去除上清,然后加入清洗液清洗细胞,100‑300g,4℃离心5‑10min;小心去除上清,然后用8%g/ml的甘露醇溶液重悬细胞,即得原生质体悬浮液。每克小麦胚根可获得8.25×106个原生质体,细胞活力高达96.43%。
Description
技术领域
本发明涉及小麦原生质体的制备,具体涉及一种小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法。
背景技术
小麦原生质体的分离主要采用酶解法,根据不同的组织,选择不同的酶液成分和比例。其原理是:由纤维素酶、果胶酶和半纤维素酶配制而成的溶液对细胞壁成分进行降解,从而使原生质体释放出来。原生质体的产率和活力与材料来源、生理状态、酶液的组成以及原生质体制备方法有关。
目前对于小麦原生质体制备方法的研究相对较少,席海秀等人报道了小麦幼苗叶肉细胞原生质体的分离方法(席海秀,艾可筠,佟少明.普通小麦幼苗叶肉细胞原生质体分离方法的优化[J].生物技术通报,2016,32(4):68-73.),张小红等人报道了小麦愈伤组织原生质体的分离方法(张小红,闵东红,邵景侠.小麦愈伤组织诱导及原生质体的分离与纯化[J].中国农学通报,2010,26(21):49-53.)。
现有的小麦原生质体制备方法中,材料的获得周期较长,且获得量较少,如愈伤组织;材料处理时,需要将其切成较小的细条,如小麦苗叶片以及胚芽鞘的处理。目前,还未见到小麦胚根原生质体制备的相关报道。
发明内容
为弥补上述领域存在的不足,本发明提供一种小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法,材料易获得,且周期较短,无需切碎等步骤,酶液成分较简单,酶解时无需抽真空,且制备的原生质体纯度较高,数量多,活力高。
本发明请求保护的技术方案如下:
小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)将预处理液放置于冰上预冷,然后迅速切下小麦胚根的根尖,将根尖放入预处理液中,冰上预处理1小时;
(2)将预处理好的根尖放入酶解液中,然后在23℃避光振荡酶解2h;
(3)酶解后的溶液用300目细胞筛过滤两次,100-300g,4℃离心5-10min;
(4)小心去除上清,然后加入清洗液清洗细胞,100-300g,4℃离心5-10min;
(5)小心去除上清,然后用8%g/ml的甘露醇溶液重悬细胞,即得原生质体悬浮液;
所述预处理液含有MES,KCL,MgCl2,D-甘露醇,CaCl2,pH 5.5;
所述酶解液含有MES,KCL,MgCl2,D-甘露醇,纤维素酶R-10,果胶酶,CaCl2,BSA,pH5.5;
所述清洗液含有MES,KCL,MgCl2,D-甘露醇,BSA,pH 5.5。
在本发明的优选实施例中,
所述预处理液含有0.08M MES,0.1M KCL,0.02M MgCl2,0.6M D-甘露醇,0.02MCaCl2,pH 5.5;
所述酶解液含有0.08M MES,0.1M KCL,0.02M MgCl2,0.6M D-甘露醇,1.5%g/ml纤维素酶R-10,0.1%g/ml果胶酶,0.02M CaCl2,0.1%g/ml BSA,pH 5.5;
所述清洗液含有0.08M MES,0.1M KCL,0.02M MgCl2,0.4M D-甘露醇,0.1%g/mlBSA,pH 5.5。
优选切下小麦胚根的根尖0.5-1cm。
优选使用预处理液15mL,酶解液15mL,清洗液20ml。
优选用8%g/ml的甘露醇溶液将原生质体悬浮液定容至500-1000ul。
所述步骤(2)中,振荡酶解的振荡速度优选为150rpm/min。
所述步骤(3)和(4)中,优选300g,4℃离心5min。
本发明针对小麦胚根的原生质体制备优化了酶解液的配方,同时增加了冰浴预处理步骤,在本领域中首次以小麦胚根为材料获得了高产率、高活力的原生质体。采用本发明的方法制备原生质体,每克小麦胚根可获得8.25×106个原生质体,细胞活力高达96.43%。
附图说明
图1.采用本发明的方法制备的小麦胚根原生质体;台盼蓝染色,显微镜LEICADM2500,20X。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明进行详细阐述,需要理解的是,下述实施例仅作为解释和说明,不用于限制本发明的范围。
生物材料
小麦种子:品种“东选3号”。该小麦材料本实验室亦有保存,申请人声明可自申请日起二十年内向公众发放用于验证实验。
试剂耗材
MES:英文名2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid的简称,中文名为2-(N-吗啉)乙磺酸,购自北京索莱宝科技有限公司,货号M8010;
D-甘露醇:购自北京酷来搏科技有限公司,货号GM7091;
KCL、MgCl2、CaCl2:购自国药集团化学试剂有限公司;
纤维素酶R-10:购自北京索莱宝科技有限公司,货号C8260;
果胶酶:购自上海源叶生物科技有限公司,货号S10007;
离析酶R-10:购自北京索莱宝科技有限公司,货号M8190;
BSA:购自北京中创宏达科技有限公司,品牌为Biofroxx;
300目细胞筛(40um):购自北京中创宏达科技有限公司;
台盼蓝染色剂:购自北京索莱宝科技有限公司,品牌为Gibco。
本发明中未特别说明的实验试剂,均为本领域常规试剂,可商购获得或按照本领域常规方法配制而得,规格为实验室纯级即可;未特别说明的实验方法,均按照本领域常规方法。
实施例1.配制用于制备原生质体悬浮液的溶液
①预处理液
配方为:MES(0.08M)、KCL(0.1M)、MgCl2(0.02M)、D-甘露醇(0.6M)、CaCl2(0.02M)。
配制方法:按照配方称取各组分;在ddH2O中加入MES、KCL、MgCl2、D-甘露醇,得混合液;用Tris-Hcl(1M,PH=8)将混合液的pH调至5.5,然后55℃水浴10min至溶液透亮;向溶液中加入CaCl2,溶解后得预处理液。
②酶解液
配方为:MES(0.08M)、KCL(0.1M)、MgCl2(0.02M)、D-甘露醇(0.6M)、纤维素酶R-10(1.5%g/ml)、果胶酶(0.1%g/ml)、CaCl2(0.02M)、BSA(0.1%g/ml)。
配制方法:按照配方称取各组分;在ddH2O中加入MES、KCL、MgCl2、D-甘露醇、纤维素酶R-10、果胶酶,得混合液;用Tris-Hcl(1M,PH=8)将混合液的pH调至5.5,然后55℃水浴10min至溶液透亮;加入CaCl2及BSA,溶解后得酶解液。
③清洗液
配方为:MES(0.08M)、KCL(0.1M)、MgCl2(0.02M)、D-甘露醇(0.4M)、BSA(0.1%g/ml)。
配制方法:按照配方称取各组分;在ddH2O中加入MES、KCL、MgCl2、D-甘露醇,得混合液;用Tris-Hcl(1M,PH=8)将混合液的pH调至5.5,然后55℃水浴10min至溶液透亮;加入BSA,溶解后得清洗液。
④8%的甘露醇溶液:称取80g D-甘露醇,溶解于ddH2O中,定容至1000ml。
实施例2.小麦胚根原生质体悬浮液的制备
1.培养小麦种子
选用小麦品种“东选三号”,将种子放在培养皿中加水中浸泡5~6h后,用30%的次氯酸钠溶液浸泡5min消毒,用灭菌水重复冲洗3-4次,加入少许灭菌水浸泡,放于5℃冰箱中黑暗处理3d,再置于培养箱(温度25℃,相对湿度60%,16h光照,8h黑暗)中培养,取培养至第5-7d的麦苗的胚根为材料。
2.制备原生质体悬浮液
方法一:
使用实施例1中配制的各溶液,按照如下步骤制备小麦胚根原生质体悬浮液:
(1)把15mL的预处理液放置于冰上预冷,然后迅速切下小麦种子胚根,取长度为0.5-1cm的根尖,总重量约1.5g,将根尖放入冰上的预处理液中预处理1小时;
(2)将预处理好的小麦胚根放入15mL酶解液中,之后将其放置摇床中避光酶解2h,23℃,150rpm/min;
(3)酶解后的溶液用300目细胞筛(40um)过滤两次,300g,4℃离心5min;
(4)离心后的溶液小心的去除上清,之后加入20ml清洗液清洗细胞,再次300g,4℃离心5min;
(5)去除上清后用8%的甘露醇溶液定容至500-1000ul即可。
方法二:
使用实施例1中配制的各溶液,按照如下步骤制备小麦胚根原生质体悬浮液:
(1)迅速切下小麦种子胚根,取长度为0.5-1cm的根尖,总重量约1.5g,将根尖放入15mL酶解液中,之后将其放置摇床中避光酶解2h,23℃,150rpm/min;
(2)酶解后的溶液用300目细胞筛(40um)过滤两次,300g,4℃离心5min;
(3)离心后的溶液小心的去除上清,之后加入20ml清洗液清洗细胞,再次300g,4℃离心5min;
(4)去除上清后用8%的甘露醇溶液定容至500-1000ul即可。
方法三:
使用实施例1中配制的各溶液制备小麦胚根原生质体悬浮液,除了预处理时间设置为30分钟,其余步骤同方法一。
方法四:
使用实施例1中配制的各溶液制备小麦胚根原生质体悬浮液,除了预处理时间设置为1.5小时,其余步骤同方法一。
方法五:
首先,配制如下溶液:
①预处理液
配方为:MES(0.02M)、D-甘露醇(0.4M)。
配制方法:按照配方称取各组分;在ddH2O中加入MES、D-甘露醇,得混合液;用Tris-Hcl(1M,PH=8)将混合液的pH调至5.5,然后55℃水浴10min至溶液透亮,得预处理液。
②酶解液
配方为:MES(0.02M)、KCL(0.02M)、D-甘露醇(0.4M)、纤维素酶R-10(1.5%g/ml)、离析酶R-10(0.45%g/ml)、CaCl2(0.01M)、BSA(0.1%g/ml)。
配制方法:按照配方称取各组分;在ddH2O中加入MES、KCL、D-甘露醇、纤维素酶R-10、离析酶R-10,得混合液;用Tris-Hcl(1M,PH=8)将混合液的pH调至5.5,然后55℃水浴10min至溶液透亮;加入CaCl2及BSA,溶解后得酶解液。
③清洗液
配方为:MES(0.02M)、KCL(0.02M)、D-甘露醇(0.4M)、BSA(0.1%g/ml)。
配制方法:按照配方称取各组分;在ddH2O中加入MES、KCL、D-甘露醇,得混合液;用Tris-Hcl(1M,PH=8)将混合液的pH调至5.5,然后55℃水浴10min至溶液透亮;加入BSA,溶解后得清洗液。
然后按照方法二中的步骤(1)-(4)制备小麦胚根原生质体悬浮液。
3.台盼蓝染色计数
将制备的小麦胚根原生质体悬浮液与4%台盼蓝染色剂按照9:1的体积比混匀,然后滴入0.1mm,25×16型血球计数板计数槽中,制成临时装片后置于普通光学显微镜下,在三分钟内分别统计活细胞数及死细胞数(死细胞为蓝色,活细胞呈无色透明状),每个样品计数3个重复,取平均值。利用以下公式计算原生质体总数和活力:
原生质体总数=活细胞总数+死细胞总数;
原生质体活力=活细胞总数/(活细胞总数+死细胞总数)×100%。
结果如表1所示,采用方法一制备的小麦胚根原生质体悬浮液的原生质体总数最多,活力最高。
表1.不同方法制备的小麦胚根原生质体的数量和活力对比
制备方法 | 原生质体总数 | 原生质体活力 |
方法一 | 8.25×10<sup>6</sup>个/g | 96.43% |
方法二 | 5.72×10<sup>6</sup>个/g | 92.06% |
方法三 | 7.65×10<sup>6</sup>个/g | 94.25% |
方法四 | 8.19×10<sup>6</sup>个/g | 94.02% |
方法五 | 2.08×10<sup>6</sup>个/g | 87.31% |
Claims (7)
1.小麦胚根原生质体悬浮液的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)将预处理液放置于冰上预冷,然后迅速切下小麦胚根的根尖,将根尖放入预处理液中,冰上预处理1小时;
(2)将预处理好的根尖放入酶解液中,然后在23℃避光振荡酶解2h;
(3)酶解后的溶液用300目细胞筛过滤两次,100-300g,4℃离心5-10min;
(4)小心去除上清,然后加入清洗液清洗细胞,100-300g,4℃离心5-10min;
(5)小心去除上清,然后用8%g/ml的甘露醇溶液重悬细胞,即得原生质体悬浮液;
所述预处理液含有MES,KCL,MgCl2,D-甘露醇,CaCl2,pH 5.5;
所述酶解液含有MES,KCL,MgCl2,D-甘露醇,纤维素酶R-10,果胶酶,CaCl2,BSA,pH 5.5;
所述清洗液含有MES,KCL,MgCl2,D-甘露醇,BSA,pH 5.5。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,
所述预处理液含有0.08M MES,0.1M KCL,0.02M MgCl2,0.6M D-甘露醇,0.02M CaCl2,pH 5.5;
所述酶解液含有0.08M MES,0.1M KCL,0.02M MgCl2,0.6M D-甘露醇,1.5%g/ml纤维素酶R-10,0.1%g/ml果胶酶,0.02M CaCl2,0.1%g/ml BSA,pH 5.5;
所述清洗液含有0.08M MES,0.1M KCL,0.02M MgCl2,0.4M D-甘露醇,0.1%g/ml BSA,pH 5.5。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,切下小麦胚根的根尖0.5-1cm。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,使用预处理液15mL,酶解液15mL,清洗液20ml。
5.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,用8%g/ml的甘露醇溶液将原生质体悬浮液定容至500-1000ul。
6.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述步骤(2)中,振荡酶解的振荡速度为150rpm/min。
7.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述步骤(3)和(4)中,300g,4℃离心5min。
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113025556A (zh) * | 2021-04-26 | 2021-06-25 | 东北师范大学 | 一种小麦原生质体、细胞质和叶绿体的分离方法 |
CN114940966A (zh) * | 2022-06-20 | 2022-08-26 | 安阳工学院 | 一种番茄根尖原生质体单细胞悬液的制备方法及应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101289652A (zh) * | 2008-06-16 | 2008-10-22 | 中国农业大学 | 一种提取蔷薇科植物根原生质体的方法 |
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Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101289652A (zh) * | 2008-06-16 | 2008-10-22 | 中国农业大学 | 一种提取蔷薇科植物根原生质体的方法 |
Non-Patent Citations (12)
Title |
---|
J. B. POWER等: "《Fusion of Isolated Plant Protoplasts》", 《NATURE》 * |
LIU BAO等: "《Establishing embryogenic cell suspension cultures in wheat by an alternative simple method》", 《江苏农业学报》 * |
P. K. EVANS等: "《Isolation of Protoplasts from Cereal Leaves》", 《PLANTA》 * |
中国科学院遗传研究所五室二组: "《植物原生质体的游离和融合》", 《遗传学报》 * |
吴昌谋编著: "《育种原理与方法》", 31 December 1995, 广西师范大学出版社 * |
孙鹤等: "《玉米、小麦、水稻原生质体制备条件优化》", 《生物工程学报》 * |
席海秀等: "《普通小麦幼苗叶肉细胞原生质体分离方法的优化》", 《生物技术通报》 * |
张小红等: "《小麦愈伤组织诱导及原生质体的分离与纯化》", 《中国农学通报》 * |
彭章等: "《茶树叶片和胚根原生质体的分离及PEG诱导融合》", 《作物学报》 * |
松尾孝领等著: "《育种手册 第一分册-育种原理》", 28 February 1983, 上海科学技术出版社 * |
王旻主编: "《生物工程》", 31 August 2015, 中国医药科技出版社 * |
陈世昌等主编: "《植物组织培养》", 30 June 2016, 重庆大学出版社 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113025556A (zh) * | 2021-04-26 | 2021-06-25 | 东北师范大学 | 一种小麦原生质体、细胞质和叶绿体的分离方法 |
CN113025556B (zh) * | 2021-04-26 | 2023-08-29 | 东北师范大学 | 一种小麦原生质体、细胞质和叶绿体的分离方法 |
CN114940966A (zh) * | 2022-06-20 | 2022-08-26 | 安阳工学院 | 一种番茄根尖原生质体单细胞悬液的制备方法及应用 |
CN114940966B (zh) * | 2022-06-20 | 2023-09-29 | 安阳工学院 | 一种番茄根尖原生质体单细胞悬液的制备方法及应用 |
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