CN110093421B - 白血病mef2d基因断裂探针检测试剂盒 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了白血病MEF2D基因断裂探针检测试剂盒。本发明提供了一种用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针，由定位于染色体MEF2D基因着丝粒侧的两个BAC克隆片段(RP11‑964F7和RP11‑139I14)和定位于染色体MEF2D基因端粒侧的两个BAC克隆片段(RP11‑214H6和RP11‑1047J23)组成。本发明利用FISH技术检测MEF2D基因断裂相关的白血病，对患者进行个体化治疗，本发明探针可以全面检测涉及到MEF2D基因的全部易位，发现新的易位，应用的准确率高、特异性高、成功率高，荧光信号强，操作简便，能辅助优化MEF2D基因断裂相关的白血病的治疗和预后评估。

Description

白血病MEF2D基因断裂探针检测试剂盒
技术领域
本发明涉及生物技术领域，具体涉及白血病MEF2D基因断裂探针检测试剂盒。
背景技术
急性B淋巴细胞白血病(B-cell acute lymphoblastic leukemia,ALL)是儿童期最常见的恶性肿瘤。基于遗传学异常(基因融合、非整倍体)的分子分型有助于指导临床诊断、危险度分层以及靶向治疗，使B-ALL治愈率得以大幅提高。但是目前仍有约20％的患儿复发，究其原因在于风险分级指标不足、靶向治疗缺乏，发病机制研究不够深入。融合基因是儿童B-ALL发病的重要原因之一，并与ALL风险分级及靶向治疗相关[1,2]。因此，发现新的融合基因，并阐明其作用机制，对于揭示白血病发生发展机制、以及B-ALL危险度分层和靶向治疗具有重要意义。
儿童B-ALL中大量的染色体重排导致多种融合基因的形成，融合蛋白常发生功能异常。TEL-AML1、E2A-PBX1、BCR-ABL、MLL重排等发生于白血病早期，通过干扰造血发育、激酶通路、染色体重构等信号通路导致白血病发生。融合基因已广泛用于B-ALL的临床危险度分层，例如预后较好的TEL-AML1+、E2A-PBX1+患儿划为标危，预后差的BCR-ABL1+、MLL重排患儿划为高危。另外融合基因是重要的治疗靶点，酪氨酸激酶抑制剂(TKI)靶向治疗BCR-ABL1+或费城染色体样(Ph-like)患儿，极大地提高了治愈率[3]。因此研究者们一直致力于发现新的融合基因。近年来，国内外多个研究组报道了B-ALL中DUX4、MEF2D、ZNF384分别与伴侣基因发生融合[1,2,4-9]。
Myocyte enhancer factor2D(MEF2D)基因位于染色体1q22，是急性B淋巴细胞白血病(B-cell acute lymphoblastic leukemia,B-ALL)中新发现的遗传学异常。属于MEF2转录因子家族，具有结合和增强转录调控因子MCM1的结构域，主要功能是对细胞分化进行调节。急性白血病中染色体重排可导致MEF2D基因的异常高表达，从而促使白血病的形成和发展。伴有MEF2D基因重排的患者预后较差，可联合靶向药物治疗以提高疗效。累及MEF2D基因重排的对手基因有多个，目前已发现的有如下7个：B-cell CLL/lymphoma 9(BCL9,1q21),heterogeneous nuclear ribonucleoprotein U-like 1(HNRNPUL1,19q13.2),deleted in azoospermia-associated protein 1(DAZAP1,19p13.3),colonystimulating factor 1receptor(CSF1R,5q32),synovial sarcoma translocation,chromosome 18(SS18,18q11.2),signal transducer and activator of transcription6(STAT6,12q13.3),and Forkhead Box J2(FOXJ2,12p13.31)，常规PCR方法无法全部覆盖[10]。
MEF2D基因重排分别占儿童和青少年B-ALL患者的4.1％和6.5％，在年轻成人和成年人中的发生率分别为2.7％和1.8％。
目前检测MEF2D易位的传统的PCR方法，具有明确、快速的特点。在断裂位点上下游设计引物，利用PCR方法对该片段进行扩增。PCR方法的缺点在于仅能检测MEF2D易位的已知伙伴基因，并且断裂位点检测比较单一，因此不能全面检测涉及到MEF2D基因的全部易位，更不能发现新的易位。且该项技术检测的为RNA，由于RNA容易降解，PCR扩增易污染，故可能会出现假阴性或者假阳性的错误结果。
另外，现有的检测MEF2D易位的方法还有RNA测序联合PCR验证法。利用高通量RNA测序技术，可以发现已知和未知的MEF2D易位。该方法，先通过RNA测序技术完成序列测定，再通过生物信息学方法对所测的序列片段与人类基因信息库进行拼接和比对，再通过软件开发的算法，进行基因易位分析。得到计算机分析结果后，再利用PCR方法，在断裂点附近设计引物，进行PCR方法的验证[11-14]。该方法的缺点在于：RNA测序对样本质量的要求极高，如若提取的RNA质控不达标，将无法进行后续实验。由于高通量测序获得的片段仅有100-300bp长度，因此且该方法对数据分析人员的要求极高，即使同一个样本，应用不同分析软件及标准，都会得出不同的结果。即使有经验的分析人员，也可能对同一样本的解读结果产生差异。因此，在临床应用中，很难独立应用该技术，必须联合PCR方法对分析出的阳性结果进行验证。由于该方法的操作复杂，用时长，很难满足临床诊断快速的需求。另外，该方法检测成本昂贵，都是限制其推广应用的瓶颈问题。
参考文献：
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Figure BDA0002054464600000031
K,Marcucci G,Bloomfield CD,Stock W,Kornblau S,Kantarjian HM,Konopleva M,Paietta E,Willman CL,Loh ML,Hunger SP,Mullighan CG.Genomic analyses identifyrecurrent MEF2D fusions in acute lymphoblastic leukaemia.Nat Commun.2016；7:13331.
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Figure BDA0002054464600000041
H,Orsmark-Pietras C,Rissler M,Ehrencrona H,Nilsson L,Richter J,Fioretos T.RNA-seq identifies clinically relevant fusiongenes in leukemia including a novel MEF2D/CSF1R fusion responsive toimatinib.Leukemia.2014 Apr；28(4):977-9.
[12]Suzuki K,Okuno Y,Kawashima N,Muramatsu H,Okuno T,Wang X,KataokaS,Sekiya Y,Hamada M,Murakami N,Kojima D,Narita K,Narita A,Sakaguchi H,Sakaguchi K,Yoshida N,Nishio N,Hama A,Takahashi Y,Kudo K,Kato K,KojimaS.MEF2D-BCL9 Fusion Gene Is Associated With High-Risk Acute B-Cell PrecursorLymphoblastic Leukemia in Adolescents.J Clin Oncol.2016 Oct1；34(28):3451-9.
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Figure BDA0002054464600000042
K,Marcucci G,Bloomfield CD,Stock W,Kornblau S,Kantarjian HM,Konopleva M,Paietta E,Willman CL,Loh ML,Hunger SP,Mullighan CG.Genomic analyses identifyrecurrent MEF2D fusions in acute lymphoblastic leukaemia.Nat Commun.2016Nov8；7:13331.
[14]Ohki K,Kiyokawa N,Saito Y,Hirabayashi S,Nakabayashi K,Ichikawa H,Momozawa Y,Okamura K,Yoshimi A,Ogata-Kawata H,Sakamoto H,Kato M,Fukushima K,Hasegawa D,Fukushima H,Imai M,Kajiwara R,Koike T,Komori I,Matsui A,Mori M,Moriwaki K,Noguchi Y,Park MJ,Ueda T,Yamamoto S,Matsuda K,Yoshida T,MatsumotoK,Hata K,Kubo M,Matsubara Y,Takahashi H,Fukushima T,Hayashi Y,Koh K,Manabe A,Ohara A；Tokyo Children’s Cancer Study Group(TCCSG).Clinical and molecularcharacteristics of MEF2D fusion-positive B-cell precursor acute lymphoblasticleukemia in childhood,including a novel translocation resulting in MEF2D-HNRNPH1 gene fusion.Haematologica.2019 Jan；104(1):128-137.
发明内容
本发明的目的在于针对白血病MEF2D基因断裂检测，建立一种基于荧光原位杂交法的MEF2D基因结构断裂的检测探针及应用试剂盒。
第一方面，本发明要求保护一种用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针，由定位于染色体MEF2D基因着丝粒侧的两个BAC克隆片段和定位于染色体MEF2D基因端粒侧的两个BAC克隆片段组成；
所述定位于染色体MEF2D基因着丝粒侧的两个BAC克隆片段为BAC克隆片段RP11-964F7和BAC克隆片段RP11-139I14；
所述定位于染色体MEF2D基因端粒侧的两个BAC克隆片段为BAC克隆片段RP11-214H6和BAC克隆片段RP11-1047J23。
进一步地，所述BAC克隆片段RP11-964F7定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,081,575-156,303,458位。所述BAC克隆片段RP11-139I14定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,245,829-156,422,950位。所述BAC克隆片段RP11-214H6定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,493,142-156,659,194位。所述BAC克隆片段RP11-1047J23定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,569,239-156,781,762位。
进一步地，所述BAC克隆片段RP11-964F7和所述BAC克隆片段RP11-139I14标记有相同颜色的荧光信号；所述BAC克隆片段RP11-214H6和所述BAC克隆片段RP11-1047J23标记有另一种相同颜色的荧光信号。
在本发明中，所述BAC克隆片段RP11-964F7和所述BAC克隆片段RP11-139I14标记有绿色荧光信号；所述BAC克隆片段RP11-214H6和所述BAC克隆片段RP11-1047J23标记有红色荧光信号。
在本发明的具体实施例方式中，所述绿色荧光信号和所述红色荧光信号均为采用缺口平移法标记到相应探针上的。利用缺口平移法，将相应的BAC克隆片段用Sptectrumgreen-dUTP标记为绿色荧光，将相应的BAC克隆片段用Sptectrum orange-dUTP标记为红色荧光。
第二方面，本发明要求保护用于检测染色体MEF2D基因断裂的试剂盒。
本发明所要求保护的用于检测染色体MEF2D基因断裂的试剂盒，含有前文第一方面中所述的用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针。
进一步地，所述试剂盒中含有探针杂交液和4’,6-二脒基-2-苯基吲哚复染剂(DAPI染色剂)。
所述探针杂交液由前文第一方面所述用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针与Human Cot-1DNA、杂交缓冲液和纯水按比例配合而成。
所述4’,6-二脒基-2-苯基吲哚复染剂(DAPI染色剂)主要用于细胞核DNA染色。
第三方面，本发明要求保护前文第一方面所述的用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针或前文第二方面所述的试剂盒在检测染色体MEF2D基因断裂中的应用。
第四方面，本发明要求保护前文第一方面所述的用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针或前文第二方面所述的试剂盒在制备用于对染色体MEF2D基因断裂相关疾病进行诊断、治疗和/或预后评估的产品中的应用。
进一步地，所述染色体MEF2D基因断裂相关疾病可为白血病，如初发或复发急性B淋巴细胞白血病。
本发明的优点和效果在于利用FISH技术检测MEF2D基因断裂相关的白血病，从而对患儿进行个体化治疗，该荧光原位杂交多克隆分离探针可以全面检测涉及到MEF2D基因断裂的全部易位，发现新的易位，应用的准确率高、特异性高、成功率高，荧光信号强，操作简便，能辅助优化MEF2D基因断裂相关的白血病的治疗和预后评估。
附图说明
图1为荧光原位杂交多克隆分离探针定位模式示意图。
图2为B-ALL患儿骨髓培养细胞MEF2D基因断裂阴性对照图。
图3为免疫性血小板减少性紫癜(immune thrombocytopenic purpura,ITP)患儿骨髓培养细胞MEF2D基因断裂阴性对照图。
图4为B-ALL患儿骨髓培养细胞MEF2D基因断裂阳性图。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
实施例1、MEF2D基因断裂检测探针、试剂盒的制备及使用方法
本发明的技术思路是：
荧光原位杂交是利用标记有荧光素的探针特异性与染色体和(或)基因位点相结合，通过荧光显微镜观察荧光信号的类型，从而检测染色体和相应基因变化的方法，具有安全、经济、快速、灵敏度高、检测信号强、杂交特异性高、能同时显示多种颜色等优点，而且弥补了传统方法对间期细胞、复杂核型细胞以及染色体微缺失无法诊断的缺陷。同时荧光原位杂交技术应用于石蜡包埋的样本上进行回顾性研究，大大降低了对研究样本的要求。基于近年来荧光原位杂交技术的快速发展，本发明就根据荧光原位杂交的原理，提出了一种检测白血病MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针及试剂盒应用。
1、多克隆DNA探针的制备：
通过http://genome.ucsc.edu(GRCh37/hg19)查找1号染色体MEF2D基因两侧(即端粒侧和着丝粒侧)对应的细菌人工染色体(BAC克隆)，两侧分别选择2个大小相近的BAC克隆片段，控制两侧BAC克隆长度大于200Kb,且位于待检基因的两侧，同侧片段相互之间可能存在一定的序列重叠。按上述要求选取MEF2D着丝粒侧BAC克隆片段为RP11-964F7(chr1:156,081,575-156,303,458，片段长度约为222Kb)和RP11-139I14(chr1:156,245,829-156,422,950，片段长度约为177Kb)；MEF2D端粒侧BAC克隆片段为RP11-214H6(chr1:156,493,142-156,659,194，片段长度约为166Kb)和RP11-1047J23(chr1:156,569,239-156,781,762，片段长度约为213Kb)。
并在http://projects.tcag.ca/cgi-bin/efish/index.cgi对所选BAC克隆进行特异性分析，明确所选BAC片段在1号染色体上的特异性。本发明中的荧光原位杂交多克隆分享探针定位模式如图1所示。从Invitrogen公司购置相应BAC克隆，经培养后提取质粒，利用缺口平移法，将着丝粒侧质粒用Sptectrum green-dUTP(广州安必平医药科技股份有限公司产品，货号为FKY-1901-GL)标记为绿色荧光，将端粒侧质粒用Sptectrum orange-dUTP((广州安必平医药科技股份有限公司产品，货号为FKY-1901-OL)标记为红色荧光，两端颜色可以互换。用于荧光标记的试剂盒中包括10×缓冲液A、dNTPs/dUTP混合物和酶系D三个组分。建议标记条件12℃标记16小时，90℃10分钟。标记体系如下：10×缓冲液A 5μl；dNTPs/dUTP混合物5μl；酶系D5μl；质粒(500ng/μL)5μl；纯化水补足50μl。
2、多克隆DNA探针试剂盒的制备
将步骤1标记好的探针与Human Cot-1DNA、杂交缓冲液、纯化水按比例配制备成探针杂交液，-20℃避光冷冻保存。
其中，用于探针杂交液配制的试剂采购于广州安必平医药科技股份有限公司，试剂盒名称杂交缓冲液A系列，货号FKY-1902-Z1。试剂结合探针后可配制成用于FISH杂交的杂交液。试剂盒包括一个组分，主要成分为杂交缓冲液A系列和Human Cot-1DNA。配制好的杂交液可用于FISH杂交。探针杂交液配制如下(总体积10μl)：杂交缓冲液A 7μl；红色探针1μl；绿色探针1μl；纯化水1μl。
本发明所提供的多克隆DNA探针试剂盒中含有上述探针杂交液和4’,6-二脒基-2-苯基吲哚复染剂(DAPI染色剂)(主要用于细胞核DNA染色)。
3、荧光原位杂交过程：
(1)胃蛋白酶消化处理
胃蛋白酶溶液配制：400μl1M HCl加入40ml纯化水中，置于37±1℃恒温水浴锅中，使用前加入75μl10％胃蛋白酶，混匀，使用一天后更换。将滴好细胞的载玻片放入37±1℃的1×PBS中孵育5分钟；取出玻片，再将其放入37±1℃胃蛋白酶溶液中消化3～10分钟(可通过预试验确定酶效力)；取出玻片，再将其放入1×PBS室温洗涤3分钟；取出玻片，再将其放入1％多聚甲醛/PBS室温固定10分钟；取出玻片，再将其放入1×PBS室温洗涤3分钟；取出玻片，再将其放入70％、90％、100％梯度乙醇脱水各2分钟；取出玻片，室温晾干。
(2)样品和探针同时变性/杂交(避光操作)
从-20±5℃冰箱中取出探针杂交液，震荡混匀，瞬时离心；加10μl的探针杂交液到杂交区域，迅速盖上盖玻片，轻压使探针均匀分布，避免产生气泡；用橡皮胶沿盖玻片边缘封片，完全覆盖盖玻片和载玻片接触的部位；湿润原位杂交仪湿度条，将玻片置于原位杂交仪上，关闭原位杂交仪盖，设置“Denat&Hyb”程序，变性78±1℃2分钟，杂交37±1℃10～18小时(若无杂交仪，可使用替代仪器，如恒温热台进行变性，电热烘箱/或水浴锅进行杂交，需注意温度准确及保持杂交湿度)。
(3)杂交后洗涤及复染(避光操作)
洗涤前30分钟，将配制好的0.3％NP-40/SSC，放入72±1℃的水浴中，测量以确保温度合适；关闭杂交仪电源，将玻片取出，轻轻撕去橡皮胶，移去盖玻片(若盖玻片难以去除，可以将其放入0.1％NP-40/2×SSC中微微摇晃，以利于其脱落)；玻片放入72±1℃0.3％NP-40/SSC中2分钟；取出玻片，再将其放入室温0.1％NP-40/2×SSC中30秒；取出玻片，再将其放入室温70％、90％、100％乙醇中各2分钟脱水；取出玻片，暗处自然干燥玻片；
室温，滴加10μl的4’,6-二脒基-2-苯基吲哚复染剂(DAPI染色剂)到盖玻片，载玻片目标区域朝下，轻放于盖玻片上，轻压，避免产生气泡，在暗处存放，待观察。
(4)结果判定：参照通行的双色探针使用标准，在暗室中使用荧光显微镜DAPI/FIFC/TexasRed三色滤光镜激发，100倍物镜下观察间期细胞，判别荧光信号。每一张玻片至少计数400个互不重叠的细胞核，并观察到明确的荧光信号，才能确定免疫荧光原位杂交检测有效。
使用荧光显微镜可以观察到两种信号类型：(1)正常信号：在未发生MEF2D基因断裂的骨髓细胞中，由于双色信号相距较近而出现红绿连续信号或者黄色信号(红绿双色叠加的效果)，信号点的数量取决于细胞核内1号染色体数目；(2)分离信号：当发生MEF2D基因断裂时，导致分别标记在MEF2D基因两端的红绿信号出现分离。只有当红绿信号分离同时出现且距离一个信号直径以上时，才能记为分离信号。每一列玻片的整个核心区域至少有400个互不重叠的细胞核，在核心区域有超过10％的肿瘤细胞核出现红绿分离信号，判断荧光原位杂交阳性；未出现红绿信号分离，则判断荧光原位杂交阴性；单独出现红色或绿色信号则不计数。
实施例2、MEF2D基因断裂检测探针、试剂盒的实际应用
本实施例对40例临床确诊的ALL儿童患者(40例患儿中30例为B-ALL，10例为T-ALL；其监护人知情并同意)的骨髓为待测样本，制备骨髓滴片样本，利用实施例1中的探针试剂盒进行MEF2D基因断裂与否的检测，具体参见方法参见实施例1步骤3。
结果显示：30例临床诊断B-ALL患者的骨髓细胞滴片标本中2例符合荧光原位杂交诊断标准，判断为阳性，其余28例诊断为阴性。10例临床诊断T-ALL患者的骨髓细胞滴片标本中，均未检测出基因断裂信号，判断为阴性。图2为B-ALL患儿阴性对照病例，在肿瘤细胞核内和中期分裂相中见2个红绿融合信号；图3为ITP患儿阴性对照病例，在肿瘤细胞核内和中期分裂相中见2个红绿融合信号；图4为B-ALL患儿MEF2D基因断裂阳性病例，在肿瘤细胞核内见1个红绿融合信号，1个红信号和1个绿信号。我们对2例MEF2D基因断裂阳性病例的骨髓细胞标本进行了PCR验证，证实阳性患儿骨髓细胞发生了MEF2D-BCL9基因融合。我们对其余38例应用MEF2D基因断裂探针检测阴性的骨髓细胞标本同时进行已知的涉及MEF2D基因的7种融合进行了PCR验证，证实全部为阴性。
本发明探针所采用的两组4个克隆片段尚未有相同探针使用，且克隆片段大小相对一致。每一种克隆片段标记信号强度较相似，同侧标记的探针信号不出现间断，信号强度较一般探针强，特异性高，充分考虑到应用于诊断试剂以及制备成诊断试剂盒时的探针的可靠性和有效性，符合应用于临床诊断的要求。利用荧光原位杂交技术，使用白血病MEF2D基因断裂探针检测MEF2D基因断裂准确、快速、经济且成功率高。从图3中可以看出利用该探针检测所有的ITP患儿均是阴性，而在图4中显示该探针检测B-ALL中MEF2D基因断裂阳性，细胞核中显示荧光信号清晰，信号亮度高。实验结果显示本发明在特异性强及敏感性高的优势，同时该探针穿透性强，信号清晰，信号亮度高符合制备成诊断试剂盒的要求。

Claims (7)

1.一种用于检测染色体MEF2D基因断裂的荧光原位杂交多克隆分离探针，由定位于染色体MEF2D基因着丝粒侧的两个BAC克隆片段和定位于染色体MEF2D基因端粒侧的两个BAC克隆片段组成；
所述定位于染色体MEF2D基因着丝粒侧的两个BAC克隆片段为BAC克隆片段RP11-964F7和BAC克隆片段RP11-139I14；
所述定位于染色体MEF2D基因端粒侧的两个BAC克隆片段为BAC克隆片段RP11-214H6和BAC克隆片段RP11-1047J23；
所述BAC克隆片段RP11-964F7定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,081,575-156,303,458位；
所述BAC克隆片段RP11-139I14定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,245,829-156,422,950位；
所述BAC克隆片段RP11-214H6定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,493,142-156,659,194位；
所述BAC克隆片段RP11-1047J23定位于GRCh37/hg19人类基因组的第1号染色体的第156,569,239-156,781,762位。
2.根据权利要求1所述的荧光原位杂交多克隆分离探针，其特征在于：所述BAC克隆片段RP11-964F7和所述BAC克隆片段RP11-139I14标记有相同颜色的荧光信号；所述BAC克隆片段RP11-214H6和所述BAC克隆片段RP11-1047J23标记有另一种相同颜色的荧光信号。
3.根据权利要求2所述的荧光原位杂交多克隆分离探针，其特征在于：所述BAC克隆片段RP11-964F7和所述BAC克隆片段RP11-139I14标记有绿色荧光信号；所述BAC克隆片段RP11-214H6和所述BAC克隆片段RP11-1047J23标记有红色荧光信号。
4.根据权利要求3所述的荧光原位杂交多克隆分离探针，其特征在于：所述绿色荧光信号和所述红色荧光信号均是采用缺口平移法标记到相应探针上的。
5.用于检测染色体MEF2D基因断裂的试剂盒，含有权利要求1-4中任一所述的荧光原位杂交多克隆分离探针。
6.根据权利要求5所述的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒中含有探针杂交液和4’,6-二脒基-2-苯基吲哚复染剂；
所述探针杂交液由所述荧光原位杂交多克隆分离探针与Human Cot-1DNA、杂交缓冲液和水按比例配合而成。
7.权利要求1-4中任一所述的荧光原位杂交多克隆分离探针或权利要求5或6所述的试剂盒在制备用于对染色体MEF2D基因断裂相关疾病进行诊断、治疗和/或预后评估的产品中的应用；
所述染色体MEF2D基因断裂相关疾病为白血病。
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