CN110055271B - 一种促进根瘤菌和植物之间的共生效应方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种促进根瘤菌和植物之间的共生效应方法。本发明构建慢生根瘤菌USDA110 bll4347基因过表达菌株,其接种豆科植物进行共生,与不接种菌的空白对照豆科植物相比,能够明显增强豆科植物株高,鲜重,统计学分析具有极显著差异;bll4347基因过表达菌株与豆科植物根毛早期粘附(共培养4h)实验表明,比空载表达质粒菌株具有更强的粘附根毛能力;bll4347基因过表达菌株接种豆科植物,测定结瘤中菌总固氮酶活表明,与空载表达质粒菌株接种的豆科植物相比,能够明显的提高结瘤中总固氮酶活,可以显著提升植物的固氮能力,可作为生物固氮的新技术应用于工、农业生产,有很大的价值,值得大面积推广应用。
Description
技术领域
本发明涉及根瘤菌技术领域,更具体地,涉及一种促进根瘤菌和植物之间的共生效应方法。
背景技术
根瘤菌是与豆科植物共生,形成根瘤并固定空气中的氮气供植物营养的一类杆状细菌,能促使植物异常增生的一类革兰氏染色阴性需氧杆菌。根瘤菌属和慢性根瘤菌属都能从豆科植物根毛侵入根内形成根瘤。
这种共生体系具有很强的固氮能力。已知全世界豆科植物近两万种。根瘤菌是通过豆科植物根毛、侧根杈口(如花生)或其他部位侵入,形成侵入线,进到根的皮层,刺激宿主皮层细胞分裂,形成根瘤,根瘤菌从侵入线进到根瘤细胞,继续繁殖,根瘤中含有根瘤菌的细胞群构成含菌组织。根瘤菌进入这些宿主细胞后被一层膜套包围,有些菌在膜套内能继续繁殖,大量增加根瘤内的根瘤菌数,以后停止增殖,成为成熟的类菌体;宿主细胞与根瘤菌共同合成豆血红蛋白,分布在膜套内外,作为氧的载体,调节膜套内外的氧量。类菌体执行固氮功能,将分子氮还原成NH4+,分泌至根瘤细胞内,并合成酰胺类或酰尿类化合物,输出根瘤,由根的传导组织运输至宿主地上部分供利用。与宿主的共生关系是宿主为根瘤菌提供良好的居住环境、碳源和能源以及其他必需营养,而根瘤菌则为宿主提供氮素营养。
虽然空气成分中约有80%的氮,但一般植物无法直接利用,仅仅花生、大豆、苜蓿等豆科植物,可以通过与微生物的共生固氮作用,才可以把空气中的分子态氮转变为植物可以利用的氨态氮。而人工施用化学氮肥流失率往往大于50%。这远远不能满足目前当今农业发展的需要。
因此急需一种促进植物利用分子氮的方法。
发明内容
本发明的目的是为了克服现有技术的不足,提供一种促进根瘤菌和植物之间的共生效应方法,以促进植物利用分子氮。
本发明的第一个目的是提供bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进根瘤菌和植物之间的共生效应的应用。
本发明的第二个目的是提供bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进植物根瘤形成中的应用。
本发明的第三个目的是提供bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在提高在植物根毛早期的黏附能力中的应用。
本发明的第四个目的是提供bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进植物生长中的应用。
本发明的第五个目的是提供bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进固氮酶活性的应用。
本发明的第六个目的是提供一种促进根瘤菌和植物之间的共生效应、促进植物根瘤形成、提高在植物根毛早期黏附能力和/或促进植物生长方法。
为了实现上述目的,本发明是通过以下技术方案予以实现的:
本发明将bll4347基因过表达到慢生根瘤菌USDA110中,和华夏三号豆科植株共生(流程如图1),表明过表达bll4347的菌株比对照空载质粒表达菌株与植物共生具有更强的固氮能力,同时具有更强的粘附效果,为未来生产更高效的固氮菌株提供了理论支持。
因此本发明要求保护以下内容:
bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进根瘤菌和植物之间的共生效应的应用。
bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进植物根瘤形成中的应用。
bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在提高在植物根毛早期黏附能力中的应用。
所述早期为植物根毛与固氮微生物接触的早期。
bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进植物生长中的应用。
优选地,所述促进植物生长为提高株高、提高鲜重、提高根部结瘤数量,结瘤鲜重和/或提高根鲜重中的一种或几种。
优选地,所述植物为豆科植物。
优选地,所述豆科植物为大豆华夏三号。
优选地,所述根瘤菌为慢生根瘤菌Bradyrhizobium japonicum USDA110。
本发明还要求保护bll4347基因、bll4347蛋白、bll4347基因的激活剂和/或bll4347蛋白的激活剂在促进固氮酶活性的应用。
本发明还要求保护一种促进根瘤菌和植物之间的共生效应、促进植物根瘤形成、提高在植物根毛早期黏附能力和/或促进植物生长方法,提高植物体内bll4347基因/蛋白的表达量,并将植物与根瘤菌共生培养。
优选地,提高植物体内bll4347基因/蛋白的表达量的方法为将bll4347基因遗传转化植物。
优选地,将bll4347基因遗传转化的方法,包括以下步骤:
S1. 扩增慢生根瘤菌Bradyrhizobium japonicum USDA110 bll4347基因;
S2. 将克隆产物连接入原核表达载体,得到重组原核表达载体;
S3. 重组原核表达载体转化宿主菌,得到重组菌株;
S4. 重组菌株与植物共培养。
优选地,步骤S1中,PCR扩增程序为:98℃ 30s;98℃ 10s,60℃ 30s,72℃ 1min,34个循环;72℃ 5min;12℃,∞。
优选地,步骤S1中,PCR扩增引物为:
上游引物CGTGGTCAAGGTGCTTGACGAACACG;
下游引物TCAATGATGATGATGATGATGCGCCACCCGGCTGTGCGTCTC。
优选地,步骤S2中,原核表达载体为pBBR1MCS-5。
优选地,步骤S3中,宿主菌为慢生根瘤菌。
优选地,步骤S3中,电击法转化宿主菌。
更优选地,步骤S3中,电击法转化慢生根瘤菌的方法为:重组原核表达载体质粒与宿主菌感受态细胞混合均匀;转移到电击杯中,脉冲18kV/cm,电压:1800V,电阻200 Ω,电容:25μF进行电击;电击之后的菌液,迅速转移到不加抗生素的AG液体培养基中复苏,之后涂到含有相应抗生素的AG固体培养基平板中。
更优选地,步骤S3中,复苏的条件为28~30℃,200~220rpm,12~20h。
更优选地,步骤S3中,复苏的条件为30℃,200rpm,20h。
更优选地,步骤S3中,无抗生素的AG液体培养基与感受态细胞的体积比为3~10:1。
更优选地,步骤S3中,无抗生素的AG液体培养基与感受态细胞的体积比为5:1。
一种慢生根瘤菌的感受态细胞的制备方法,包括以下步骤:
S1. 慢生根瘤菌原始菌株在AG固体培养基上培养,28~30℃培养箱培养5~6天,长出单菌落后转入100mlAG液体培养基培养,220 rpm,30℃,培养至OD600约为0.8~1.0;
S2. 分装成45ml菌液两管,取菌液预冷,离心去上清;
S3. 加入预冷的ddH2O,并离心去上清;
S4. 重复S3两次;
S5. 加入10%甘油溶液,离心去上清,
S6. 加入10%甘油溶液,离心去上清,分装成100ul感受态菌液,进行-80℃保存。
优选地,步骤S2全程冰上进行。
优选地,离心4℃,7000~8000g,7~15min
更优选地,离心4℃,8000g,10min。
优选地,以体积计,菌液:预冷的ddH2O:步骤S5中加入的甘油:步骤S6中加入的甘油=90~100:40~60:2~4:1~2。
更优选地,以体积计,菌液:预冷的ddH2O:步骤S5中加入的甘油:步骤S6中加入的甘油=95:50:2:1
与现有技术相比,本发明具有如下有益效果:
发明人通过分子生物学实验构建慢生根瘤菌USDA110 bll4347基因过表达菌株,bll4347基因过表达菌株接种豆科植物共生实验表明,与不接种菌的空白对照豆科植物相比,能够明显增强豆科植物株高,鲜重,统计学分析具有极显著差异;bll4347基因过表达菌株与豆科植物根毛早期(共培养4h)粘附实验表明,比空载表达质粒菌株具有更强的粘附根毛能力;bll4347基因过表达菌株接种豆科植物,测定结瘤中菌总固氮酶活表明,与空载表达质粒菌株接种的豆科植物相比,能够明显的提高结瘤中总固氮酶活,可以显著提升植物的固氮能力,可作为生物固氮的新技术应用于工、农业生产,有很大的价值,值得大面积推广应用。
附图说明
图1为研究流程图。
图2为过表达慢生根瘤菌bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5的菌落形态测定;1为对照空载表达质粒菌株PAO1-pBBR1MCS-5;2为过表达菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347。
图3为过表达了慢生根瘤菌bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5生长曲线测定。
图4为过表达了慢生根瘤菌bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5刚果红染色实验分析;1为对照空载表达质粒菌株PAO1-pBBR1MCS-5;2为过表达菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347。
图5为过表达了慢生根瘤菌bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5生物膜分析;1为对照空载表达质粒菌株PAO1-pBBR1MCS-5;2为过表达菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347。
图6为根瘤菌粘附大豆根芽实验,使用paired t test,双侧检验P=0.0032,即P<0.05,具有显著差异。
图7为根瘤菌和植物共生实验模式图;CK为接种了等量培养基的植株;1为接种慢生根瘤菌的植株。
图8为根瘤菌和植物共生实验;A共培养40天后植株;B 植株同一位置叶子;C共培养40天后植株根;CK为接种了等量培养基的植株;1为接种对照空载表达质粒菌株USDA110-pBBR1MCS-5的植株;2为接种过表达菌株USDA110-pBBR1MCS-5-bll4347的植株。
图9为根瘤菌和豆科植物共生统计学数据分析;A为株高;B为植物鲜重;C为瘤重D为固氮酶活实验;CK为接种了等量培养基的植株,1为接种对照空载表达质粒菌株USDA110-pBBR1MCS-5的植株,2为接种过表达菌株USDA110-pBBR1MCS-5-bll4347的植株。
图10为结瘤根瘤菌分离实验;A:在AG固体平板涂布结瘤表面细菌;B:AG固体平板涂布结瘤表面消毒后的细菌;C:在含有200ug/ml硫酸庆大霉素和100ug/ml壮观霉素抗生素AG固体平板涂布结瘤表面消毒后的细菌;D:在含有200ug/ml硫酸庆大霉素和100ug/ml壮观霉素抗生素AG固体平板涂布结瘤内部共生菌。
图11为结瘤内部共生菌检测;2000bp marker左:16sDNA通用引物检测电泳图;2000bp marker右:pBBR1MCS-5质粒通用引物检测电泳图。
具体实施方式
下面结合说明书附图和具体实施例对本发明作出进一步地详细阐述,所述实施例只用于解释本发明,并非用于限定本发明的范围。下述实施例中所使用的试验方法如无特殊说明,均为常规方法;所使用的材料、试剂等,如无特殊说明,为可从商业途径得到的试剂和材料。
实施例1 bll4347基因的扩增
一、bll4347基因的扩增
(1)实验方法
利用NEB高保真Q5聚合酶,以慢生根瘤菌B. japonicum USDA110基因组为模板,进行PCR扩增。
PCR扩增程序为:98℃ 30s;98℃ 10s,60℃ 30s,72℃ 1min,34个循环;72℃5min;12℃,∞。
PCR扩增引物为:
上游引物为
CCCAAGCTTCGTGGTCAAGGTGCTTGACGAACACG;
下游引物为
AAAACTGCAGTCAATGATGATGATGATGATGCGCCACCCGGCTGTGCGTCTC。
(2)实验结果
扩增得到含有慢生根瘤菌USDA110 bll4347(Gene ID: 1052137,即NC_004463.1:c 4803313- 4804380)基因的产物。
实施例2 重组原核表达载体的构建及重组原核表达载体转化铜绿假单胞菌PAO1
一、实验方法
1、重组原核表达载体的构建
将实施例1的扩增产物连接至克隆载体,并转化至大肠杆菌进行培养后测序,保留阳性菌株,提取质粒。
用Hind III和Pst I 内切酶同时切割基因片段产物和pBBR1MCS-5原核表达载体质粒。然后用T4连接酶连接。
得到重组原核表达载体pBBR1MCS-5-bll4347。转化大肠杆菌之后筛选得到阳性重组菌株。
2、重组原核表达载体转化铜绿假单胞菌PAO1
上一步制备得到的阳性重组原核表达载体pBBR1MCS-5-bll4347和空载体pBBR1MCS-5转化铜绿假单胞菌PAO1。
铜绿假单胞菌PAO1电击感受态细胞的制备,包括以下步骤:
(1)铜绿假单胞菌PAO1过夜摇8h,取6mL做感受态,分装到3个2mL灭菌的离心管中,室温10000rpm,2min,去上清;
(2)用过滤除菌的10%蔗糖重悬,洗一次,室温10000rpm,1min,去上清;
(3)重复2步骤两次;
(4)用10%甘油浓缩成100μl,用于电击构建好的质粒。
连接产物pBBR1MCS-5-bll4347 和空载体pBBR1MCS-5分别转化制备的铜绿假单胞菌PAO1电击感受态细胞,具体步骤为:
(1)构建的慢生根瘤菌质粒DNA 100ng加到制备的100μL PAO1感受态中,混合均匀;
(2)取全部,转移到0.1cm的电击杯中,脉冲18kV/cm(参数:电压:1800V,电阻200Ω,电容:25uF);
(3)电击之后的菌液,迅速转移到500μl不加抗生素的LB液体培养基中37℃,200rpm复苏1h。
(4)取100μl涂在有50ug/ml庆大霉素抗生素的LB固体培养基上,置37℃培养箱中培养。
二、实验结果
得到过表达了慢生根瘤菌bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5。
实施例3 过表达bll4347基因对铜绿假单胞菌的影响
一、菌落形态测定
1、实验方法
将实施例2中构建好的转化子PAO1-pBBR1MCS-5 和PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347单克隆于含50μg/mL庆大霉素LB 液体培养基中220rpm,37℃过夜培养,再1:100稀释,取2ul垂直滴加在含有刚果红LB抗性平皿上,培养36h,用体视显微镜拍摄过表达组和对照组的菌落状态。
2、实验结果
结果如图2所示,过表达了慢生根瘤菌bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5相比,能够直接影响PAO1菌落的表型,表面粗糙且菌落不光滑。
二、生长曲线的测定
1、实验方法
将实施例2中构建好的转化子PAO1-pBBR1MCS-5 和PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347单克隆于含50μg/mL庆大霉素LB 液体培养基中220rpm,37℃过夜培养,然后按照1:100的比例加入含有50μg/mL庆大霉素LB 液体中,取200μl加到测生长曲线的平板中,用测生长曲线的仪器检测,每组8个重复,重复三次实验结果。
2、实验结果
结果如图3所示,过表达了慢生根瘤菌USDA110 bll4347的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347 和空白质粒菌株PAO1-pBBR1MCS-5相比,生长速率没有影响。后面的实验,排除了生长速率的影响。
三、刚果红染色实验分析
1、实验方法
将构建的转化子PAO1-pBBR1MCS-5 、PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347单克隆于含50μg/mL庆大霉素LB 液体培养基中220rpm,37℃过夜培养,按照1:100稀释加入到含50μg/mL庆大霉素LB 液体培养基中。吸取2μl垂直滴到含有0.04%的刚果红及50μg/mL庆大霉素LB固体培养基表面于37℃培养箱培养。
2、实验结果
结果如图4所示,36小时后,过表达了慢生根瘤菌USDA110bll4347基因的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347能够更好的结合培养基中刚果红成分。由于刚果红是结合细菌胞外多糖(EPSII)成分的一种染料,从而说明了,在PAO1中过表达了的bll4347能够增加胞外多糖的产生。
四、生物膜分析
1、实验方法
将构建的转化子PAO1-pBBR1MCS-5 、PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347单克隆于含50μg/mL庆大霉素LB 液体培养基中220rpm,37℃过夜培养,然后按照1:100稀释加入到含有2ml50μg/mL庆大霉素LB培养基的无菌玻璃试管中,每个组3个重复,重复三次实验,于37℃,450rpm培养12小时;用ddH2O洗一次,除去结合不充分的细胞;加入已灭菌0.4%的结晶紫,用于结合细胞的膜成分,静置培养20min;用ddH2O洗3次,除去没有结合在膜上多余的结晶紫;放烘箱烘干,实验结果拍照。
2、实验结果
结果如图5所示,过表达了慢生根瘤菌USDA110 bll4347的菌株PAO1-pBBR1MCS-5-bll4347 和对照菌株PAO1-pBBR1MCS-5相比,能够明显增加铜绿假单胞菌PAO1生物膜的形成。
实施例4重组原核表达载体转化电击慢生根瘤菌
一、慢生根瘤菌(Bradyrhizobium japonicum USDA110)电击感受态的制备
(1)实验方法
慢生根瘤菌(Bradyrhizobium japonicum USDA110)原始菌株在AG(yeastextract 1g,L-(+)-Arabinose 1g,Gluconic acid sodium salt 1g,15g Agar;1000mlddH2O)固体平板上划线,至于30℃培养箱培养5~6天,挑取单克隆菌株,接种到100ml AG液体培养基中,220 rpm,30℃,培养至OD600约为0.8~1.0,制备感受态;
以下所有步骤均在冰上,超净工作台中操作:
100ml菌液和ddH2O分别冰上预冷半小时,分装至50ml无菌管中,8000g 4℃离心10min,去上清,加入25ml预冷 ddH2O,8000g 4℃离心10min,去上清,重复两次
加入2ml 10%甘油,转移至2ml无菌管中,8000g 4℃离心5min,去上清,最后加入1ml 10%甘油,制备成感受态菌液,每管100μl。
二、重组原核表达载体转化电击慢生根瘤菌
(1)实验方法
实施例2制备得到的pBBR1MCS-5-bll4347和空载体pBBR1MCS-5分别转化慢生根瘤菌,电击慢生根瘤菌(Bradyrhizobium japonicum USDA110),操作如下:
构建的慢生根瘤菌质粒DNA 100ng加到制备的100μL慢生根瘤菌(Bradyrhizobium japonicumUSDA110)感受态中,混合均匀;
取全部,转移到0.1cm的电击杯中,脉冲18kV/cm(参数:电压:1800V,电阻200 Ω,电容:25uF);
电击之后的菌液,迅速转移到500μl不加抗生素的AG液体培养基中30℃,200rpm复苏20h,之后取100μL 涂到含有200μg/ml庆大霉素的AG固体培养基平板中。
二、实验结果
得到过表达了慢生根瘤菌bll4347基因的菌株USDA110-pBBR1MCS-5-bll4347和空白质粒菌株USDA110-pBBR1MCS-5。
实施例5 根瘤菌和植物共生实验
一、实验方法
1、种子消毒
(1)挑选质量大小接近的华夏三号大豆种子置于50ml无菌离心管中,用25ml无菌ddH2O洗三次,洗去浮尘和表面杂质;
(2)再用25ml 100%酒精和30%双氧水混合液(V:V=3:1)在摇床上轻微震荡10min进行种子表面消毒;
(3)最后用25ml无菌的ddH2O洗三次,把洗好的种子置于25ml无菌水中,4℃过夜萌发。
2、种子培养
第二天转移到含有1% agar 固体培养皿中,置于20℃黑暗环境中培养3~5天。
3、共培养
根茎长到4.5cm左右,挑选质量相同状态的种子,自根尖向上剪取根部3cm,用清水洗涤一次,放入含有3ml AT buffer(20×AT buffer:KH2PO 4 214g pH7.3 dH2O 1000 mL)的5ml 离心管中,滴加100μL OD600=0.5的实施例4制备的菌液,于30℃培养箱中共培养4h,除去AT buffer,加入3ml ddH2O于30℃,400rpm 摇床震荡5min,再用3ml ddH2O洗涤2次,转移至新含有3ml ddH2O的5ml离心管中,每管加入3个灭菌的小钢珠,30℃,500rpm震荡20min,每管取100μl涂布在含有200μg/ml硫酸庆大霉素的AG固体平皿中,10天之后,统计平皿中的菌落数,每次3个生物学重复,重复3次。
二、实验结果
结果如图6所示,过表达了慢生根瘤菌USDA110 bll4347的菌株USDA110-pBBR1MCS-5-bll4347 和对照菌株USDA110-pBBR1MCS-5相比,在豆科植物根毛与根瘤菌接触的早期,具有较强的根毛黏附能力。从而更利于菌株定殖到植物根毛周围,为下一步菌侵入根毛,形成结瘤做准备。
实施例6 根瘤菌和植物共生实验
一、实验方法
1、种子消毒
(1)挑选质量大小接近的华夏三号大豆种子置于50ml无菌离心管中,用25ml无菌ddH2O洗三次,洗去浮尘和表面杂质;
(2)再用25ml 100%酒精和30%双氧水(V:V=3:1)在摇床上轻微震荡10min进行种子表面消毒;
(3)最后用25ml无菌的ddH2O洗三次,把洗好的种子置于25ml无菌水中,4℃过夜萌发。
2、种子培养
第二天转移到含有1% agar 固体培养皿中,置于20℃黑暗环境中培养3~5天,根茎长到3~4cm左右,挑选相同状态的种子,转移至灭菌的双层盒中(上层为蛭石,下层为植物培养液),26℃14h,80%光照,20℃10h黑暗,在恒温光照培养箱中培养。
当豆芽接触到盖子时,去盖,加入石英砂覆盖蛭石(石英砂覆盖能够减少水分散失和隔绝细菌和真菌);当植物长出第一片真叶时,分为4组,直接用移液枪在幼苗真叶两侧接种2ml OD600=0.5的实施例4制备的菌液,打入蛭石中,共培养40天。
植物培养液成分:
无氮培养基:大量元素NaH2PO4 0.6mM、K2SO4 0.3mM、CaCl2·2H2O 0.3mM、MgCl2·6H2O 0.6mM、FeSO4·7H2O 0.045mM、EDTA·2Na 0.045mM;微量元素H3BO3 50μM、MnSO4·5H2O9μM、CuSO4·5H2O 0.3μM、ZnSO4·7H2O 0.7μM、NaMoO4·2H2O 0.1μM,pH=5.5;
有氮培养基:在无氮培养基加入1mM KNO3。
其中在植物生长前期,即前两次灌溉为有氮培养基,其余时间为无氮培养基。
实验设置:
空白对照组:接种根瘤菌培养基培养40天植株;
空载体组:接种转化了空载质粒的根瘤菌USDA110-pBBR1MCS-5共培养40天植株;
过表达组:接种转化bll4347基因的重组根瘤菌株USDA110-pBBR1MCS-5-bll4347共培养40天植株。
接种是指用移液枪在幼苗真叶两侧将2ml OD600=0.5菌液加入蛭石中。
二、实验结果
如图7和8所示,接种根瘤菌培养基的空白对照组植株,生长状态较差,植株矮小,枝叶枯黄,并且叶片较小;与空白对照组相比,接种空载体组和过表达组植株中,明显促进植株生长,改善枝叶枯黄状态;接种过表达组USDA110-pBBR1MCS-5-bll4347植株和接种空载体组USDA110-pBBR1MCS-5植株相比,植株生长状态较好。从而说明慢生根瘤菌USDA110bll4347基因在参与了植物共生过程。
实施例7 根瘤菌和豆科植物共生统计学数据分析
一、实验方法
将实施例6制备的华夏三号大豆植株培养至40天,用剪刀分离植株根部和植株,根部用清水轻轻洗涤,除去粘附在根表面的蛭石,统计株高(土壤以上部分),植物鲜重,瘤重,总固氮酶活。每组三个重复,重复三次实验结果。
二、实验结果
结果如图9所示,空载体组和过表达组中慢生根瘤菌USDA110能够显著促进株高,增加植株鲜重,并且能够有效结瘤;而不加菌的植株,植株矮小,根部没有结瘤产生。从而说明根瘤菌能够和豆科植物有效共生,促进植物生长。接种USDA110-PBBR1MCS-5-bll4347的过表达组与接种USDA110-pBBR1MCS-5的空载体组相比,瘤鲜重,植株地上部性状显示提升。由于实验用的培养液营养元素较少,蛭石的作用也只是固定植物,不提供营养。所以共培养40天后,差异并不会很大,但是足以说明,bll4347在比对照较好的情况下,固氮酶活提高。
实施例8 固氮酶活实验
一、实验方法
将实施例6制备的华夏三号大豆植株培养至40天,用剪刀将植株根部和植株分离,根部用清水轻轻洗涤,除去粘附在根表面的蛭石。摘取根部全部结瘤,擦干,放入50ml玻璃管中。以电石为材料,用排水法制备乙炔气体,用5ml乙炔换取5ml玻璃管中的空气,密封,放入30℃培养箱静置反应2h。用GC色谱测定乙烯峰面积。
调节氮气、氢气、空气流速比,氮气流速30ml/min。氢气流量:210ml/min;空气(大)流量130ml/min;空气(小)流量70ml/min。
控制面板中,前进样检测温度180℃,柱箱温度160℃,后检测及辅助温度220℃。
先用氮气,乙炔气体标品进行检测,记录标品出峰时间。再注射检测样品,用图峰面积表示固氮酶活相对能力。进样时,用100μl反应气体注入进样孔进行检测。用气相色谱仪的氢火焰离子检测器模块乙烯峰面积。
二、实验结果
如图10所示,用乙烯峰面积间接表示总的固氮酶活,发现过表达了USDA110-PBBRTMCS-5-bll4347的过表达组与接种了USDA110-pBBR1MCS-5空载体菌株的空载体组相比,能够明显的提高总固氮酶活。
实施例9 根瘤菌分离实验
一、实验方法
为了确定目标根瘤菌能够到达植株根部,帮助参与植物根瘤形成,影响豆科植物固氮过程。将实施例6制备的华夏三号大豆植株培养至40天,摘取形成的结瘤,选取6~8个,进行分离验证(以分离空载质粒为例),具体步骤为:
(1)从同一株植株根部摘取6-8不同大小的结瘤放入5ml离心管中,加入1ml无菌水,吸50μl涂布在没有抗性的AG固体平板A上(目的验证结瘤表面有无其他细菌存在);再加入2ml,用3ml无菌水洗三次;
(2)倒去水,加入100%酒精和30%双氧水各1ml,消毒5min;
(3)倒去液体,用3ml无菌水洗涤5次;加入1ml无菌水,吸取50μl分别涂布在AG、加有含有200ug/ml硫酸庆大霉素和100ug/ml壮观霉素抗生素AG固体平板B和C上(目的是验证是否消毒干净);
(4)倒去液体,用无菌的涂布棒碾碎,看到结瘤中根瘤菌红色的豆血红蛋白流出。加入1ml无菌水,轻微震荡,悬浮菌体,吸50μl涂布含有200ug/ml硫酸庆大霉素和100ug/ml壮观霉素抗生素AG固体平板D上(目的是得到结瘤内部的目的菌)。
(5)30℃恒温培养7-10天,长出来的D板的单克隆做16sDNA和pBBR1MCS-5质粒引物检测。
16s rDNA通用引物:
27F:AGAGTTTGATCCTGGCTCAG
1492R:GGTTACCTTGTTACGACTT
pBBR1MCS-5质粒通用引物:
M13F:TGTAAAACGACGGCCAGT
M13R:CAGGAAACAGCTATGACC
二、实验结果
如图10所示,C板无菌落长出,说明结瘤表面消毒干净,D板长出的菌落为结瘤内部菌。
如图11所示,对结瘤内部菌落PCR鉴定,产物送公司测序分析,分析结果比对分析,检测到质粒pBBR1MCS-5存在,16sDNA测序结果分析,为目的菌株USDA110。表明质粒在慢生根瘤菌和豆科植物共生过程中,能够稳定存在,并且慢生根瘤菌USDA110参与了结瘤的形成,并在结瘤中存在。
Claims (3)
1.过表达bll4347基因的载体在促进根瘤菌和植物之间的共生效应中的应用,其特征在于,所述bll4347基因的序列为NC_004463.1:4803313-4804380,所述植物为豆科植物,所述根瘤菌为慢生根瘤菌Bradyrhizobium japonicum USDA110,且所述促进根瘤菌和植物之间的共生效应为促进植物根瘤形成、提高植物根毛早期黏附能力、促进植物生长或提高固氮酶活性。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述豆科植物为大豆华夏3号。
3.一种促进植物根瘤形成、提高植物根毛早期黏附能力和/或促进植物生长的方法,其特征在于,提高植物体内bll4347基因的表达量,并将植物与根瘤菌共生培养;所述bll4347基因的序列为NC_004463.1:4803313-4804380,所述植物为豆科植物,所述根瘤菌为慢生根瘤菌Bradyrhizobium japonicum USDA110。
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