CN110036976B - 一种阻断鸡禽白血病病毒垂直传播的方法及其应用 - Google Patents

一种阻断鸡禽白血病病毒垂直传播的方法及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种阻断鸡禽白血病病毒垂直传播的方法及其应用,发明人首次发现禽白血病病毒的垂直传递是由禽白血病阳性鸡的生殖系统来源的外泌体携带、介导并且感染受体鸡和后代小鸡的,提供了一种通过干预禽白血病阳性公鸡的精液外泌体从而阻断ALV垂直传播的方法和阻断剂。其有益效果在于,本发明所公开的与禽白血病病毒垂直传播相关的外泌体为治疗或预防禽白血病提供了新靶点,并且提供的阻断方法不受毒株亚群、变异的影响,从传播途径进行统一切断,针对范围广,方法简单快速,效果好。

Description

一种阻断鸡禽白血病病毒垂直传播的方法及其应用
技术领域
本发明属于动物医学技术领域,更具体地,涉及一种阻断鸡禽白血病病毒垂直传播的方法及其应用。
背景技术
禽白血病是由反转录病毒科、α反转录病毒属的禽白血病病毒(Avian LeukosisVirus,ALV)及肉瘤病毒群引起的禽类多种肿瘤性疾病的统称,ALV引起的禽类造血组织中某些细胞成分过度增生为主的肿瘤性疾病,包括髓细胞性白血病、成髓细胞白血病、成红细胞性白血病和淋巴细胞性白血病,是威胁世界养禽业的主要疾病之一,给世界养禽业带来巨大损失。将禽白血病/肉瘤病毒群病毒划分为A-K 11个亚群,感染鸡的禽白血病病毒包括ALVA-E、J和K共7个亚群。
J亚群具有感染率高、传播速度快、宿主范围广、致死率高等特点,给养禽业造成了严重的危害和巨大的经济损失,引起了国内外兽医界的高度重视。ALV-J水平传播感染情况与鸡的年龄水平传播感染情况与鸡的年龄相关,较小年龄的禽类接触病毒后倾向于产生耐受的病毒血症,并大几率发生肿瘤;而在较老年龄的禽类接触病毒导致其产生免疫,可能会或不释放病毒。
垂直传播垂是ALV-J发生的主要途径。垂直传播主要是指亲本鸡的体内病毒通过种蛋传给下一代。垂直传播的的存在,使得淋巴白血病在鸡群中世代存在提供了途径。而母鸡较公鸡更容易发生淋巴白血病,因此,切断垂直传播途径尤为重要。
目前国内外尚无可有效防治J亚群禽白血病的药物和商品化疫苗,仅能通过淘汰阳性鸡、加强生物安全措施以达到控制的目的。减少种鸡群的感染率和建立无白血病的种鸡群是控制本病的最有效措施。种鸡在育成期和产蛋期各进行2次检测,淘汰阳性鸡。从蛋清和阴道拭子试验阴性的母鸡选择受精蛋进行孵化,在隔离条件下出雏、饲养,连续进行4代,建立无病鸡群。但由于费时长、成本高、技术复杂,一般种鸡场还难以实行。
发明内容
本发明针对于以上问题,提供一种简单、快速阻断鸡的禽白血病病毒垂直传播的方法,所述方法为干预禽白血病阳性亲本生殖系统来源的外泌体。
本发明在研究感染禽白血病鸡的过程中,发现了禽白血病病毒的垂直传播依赖于亲本生殖系统来源的外泌体的参与,禽白血病病毒通过被此类外泌体包裹,运输,进而进入到子代胚体中,又在外泌体的帮助下不断增殖,感染细胞。
禽白血病阳性亲本生殖系统来源的外泌体,例如,阳性父本中运输禽白血病病毒的是精液外泌体,精液外泌体主要来源于其生殖细胞,阳性母本运输亲白血病病毒传播的外泌体的主要来源于其生殖道上皮细胞。
进一步,所述外泌体为禽白血病阳性父本的精液外泌体。
实际生产过程中,垂直传播是ALV发生的主要途径,且发明人发现阳性父本即阳性公鸡中精液外泌体中含有禽白血病病毒,且精液外泌体还是介导该类病毒从亲代传递到子代的重要载体。
进一步,所述干预为人工受精时,封闭或阻断禽白血病阳性父本的精液外泌体。
本发明所提供的方法是干预参与运输所述禽白血病病毒的外泌体的功能,而阻断该传播途径,特别是,当亲本中父本为感染者或携带者时,只需在人工授精时,将其精液外泌体封闭或阻断,即可达到干预目的。
进一步,所述禽白血病病毒为ALV-A、ALV-B、ALV-C、ALV-D、ALV-E、ALV-J或ALV-K的一种或多种。
进一步,所述禽白血病病毒为ALV-J时,是本发明一个较优的实施方式,但并不局限于该亚群的病毒。
本发明同时保护所述阻断鸡的禽白血病病毒垂直传播的方法在鸡抗病育种中的应用。
本发明所提供的阻断鸡的禽白血病病毒垂直传播的方法,能够提高种公鸡利用率,ALV目前没有疫苗,生产上,很多具有优越生产性能的种公鸡一旦感染ALV,只能淘汰,人工受精的过程中阻断精液外泌体,可以阻断禽白血病病毒经公鸡精液垂直传播,对高生产性能种公鸡和濒危品种尤为重要;此外,能够减少生产环节,提高生产效率,生产过程中,个体感染情况具有一定的不确定性,常出现假阳性或假阴性,造成潜在ALV传播,增加生产工作量和感染风险,需要不断净化和淘汰,本发明所述阻断方法,可以阻断禽白血病病毒经公鸡精液垂直传播,更方便快速的杜绝这种潜在威胁。
本发明公开一种鸡的禽白血病病毒垂直传播的阻断剂,所述阻断剂为外泌体的封闭物。
利用外泌体封闭物将外泌体及其包裹在内的物质封存,阻止外泌体被目的细胞所吸收,进而阻止包裹于内的病毒遗传信息的释放。
进一步,所述封闭物包括外泌体抗体。
进一步,所述外泌体抗体为外泌体的跨膜蛋白抗体或热休克蛋白抗体中的一种或多种。
外泌体有由磷脂双分子层组成的胞外膜泡状结构,研究表明,外泌体跨膜蛋白与病毒入侵、肿瘤进展相关同时也与病毒介导的细胞融合相关,封闭这些蛋白,能够干预外泌体功能,从而抑制病毒的入侵、融合或增殖,起到阻断病毒的作用。
进一步,所述跨膜蛋白为CD9、CD63或CD81的一种或多种,所述热休克蛋白为HSP70。
本发明的研究过程中发现,在精液中添加CD9、CD63、CD81和/或HSP70能有效抑制禽白血病病毒的复制和表达,从而阻断该病毒在子代细胞中增殖和传播。
为了实现上述目的,本发明是通过以下方案予以实现的:
发明人通过外泌体RNA的高通量测序和RT-PCR与Western Blot的检测,发现阳性精液外泌体可以携带病毒的遗传物质,并且可以体外感染DF-1细胞,在实际生产中,发明人用人工授精的方法模拟外泌体在垂直传播中的作用,验证了阳性公鸡的精液外泌体能够携带病毒成分感染母鸡,并且通过鸡蛋感染后代小鸡,并且通过封闭外泌体的跨膜蛋白,限制了ALV在细胞内的增殖,从而阻断了外泌体介导的ALV对母鸡和小鸡的感染。
相对于现有技术,本发明具有如下的优点及效果:
(1)本发明首次发现外泌体抗体可以结合到精液外泌体细胞膜上,抑制外泌体中ALV病毒的传播,从而抑制精液中ALV的感染能力,进而阻断禽白血病病毒经公鸡精液垂直传播,为治疗或预防禽白血病提供了新靶点;
(2)提高种公鸡利用率,ALV目前没有疫苗,生产上,很多具有优越生产性能的种公鸡一旦感染ALV,只能淘汰,本发明所使用的方法可以阻断禽白血病病毒经公鸡精液垂直传播,对高生产性能种公鸡和濒危品种尤为重要;
(3)减少生产环节,提高生产效率,生产过程中,个体感染情况具有一定的不确定性,常出现假阳性或假阴性,造成潜在ALV传播,增加生产工作量和感染风险,需要不断净化和淘汰,本发明的阻断方法可以阻断禽白血病病毒经公鸡精液垂直传播,因此能很好的杜绝这种潜在威胁;
(4)ALV易发生变异,很难针对各种亚群或变异型研发有统一功效的疫苗,而本发明所提供的方法不受毒株亚群、变异的影响,从传播途径进行统一切断,针对范围广,方法简单快速,效果好。
附图说明
图1为精液外泌体电镜下形态,其中A:8600×的视野观察;B:14000×的视野观察;C:18000×的视野观察。
图2为外泌体的标记蛋白western blot结果图。
图3为外泌体的病毒全基因组分段扩增。
图4为western检测外泌体的病毒蛋白表达情况图。
图5为用10nm胶体金颗粒标记gp85蛋白的免疫电镜照片。
图6为ALV-J特异性扩增图,其中M:DL2000marker,1:阴性对照,2:control,3:PBS4:50μg外泌体5:100μg外泌体。
图7为阳性外泌体感染细胞后病毒蛋白表达。
图8为不同封闭物对病毒增殖的抑制作用。
图9为不同封闭物对病毒蛋白表达的抑制作用。
图10为D组后代小鸡血浆感染细胞的间接免疫荧光,其中,荧光标记gp85,
A:D组后代小鸡血浆感染细胞 B:空白对照。
具体实施方式
以下结合具体实施例来进一步说明本发明,但实施例并不对本发明做任何形式的限定。除非特别说明,本发明采用的试剂、方法和设备为本技术领域常规试剂、方法和设备。
除非特别说明,本发明所用试剂和材料均为市购。
以下实施例中所使用的DF-1细胞为商品化细胞;SPF母鸡购自广东大华农有限公司SPF实验动物中心。
以下实施例以ALV-J病毒感染的情况为例。
实施例1
精液外泌体中内含物(ALV-J病毒成分)的确认
1)精液样品中外泌体的提取与纯化:用ALV-J感染公鸡,并采血检测病毒血症和p27抗体以确认公鸡持续带毒。分别采集感染了3只ALV-J公鸡和3只健康公鸡的精液,-80℃保存备用。以下实施例中,SEP为健康外泌体,SEN为阳性外泌体。
将精液样品进行4℃梯度离心,分别为1000g,10min;2400g,10min;10000g,30min以去除细胞和细胞碎片,用0.22μm滤膜过滤大分子杂质,用Exo-quick试剂盒(外泌体提取试剂盒)以4∶1的比例混合精液样品上清,过夜(>12h)孵育,收集1500g,30min,4℃离心后的沉淀,用1/10原液体积的PBS重悬。
用Exosome-CD63 immunomagnetic bead试剂盒对初步提取的外泌体进行纯化。
2)精液外泌体的鉴定:
透射电镜观察外泌体形态,方法如下:
(1)取20μL外泌体悬浮液滴加到铜网上,室温静置5min使之吸附,滤纸吸去多余的液体;
(2)滴加2%的醋酸双氧铀于铜网上,室温染色不超过3min,滤纸吸干负染液后,自然晾干;
(3)将载有样品的铜网置于透射电镜中观察exosome的形态和大小。
电镜结果见图1,从精液中分离纯化的外泌体是有双层膜的囊泡,具有典型的cup-shaped结构,大小比较均一,证明提取纯化的为外泌体。
3)检测外泌体标志蛋白CD81、CD63、Hsp70,以及内质网蛋白GRP7和病毒蛋白gp37分别在健康外泌体(1~3),阳性公鸡精液外泌体(4~6),ALV-J病毒,阳性DF-1细胞和阳性精液中的分布情况(结果见图2)。注阳性DF-1为实施例2中用阳性精液外泌体感染的阳性细胞。
外泌体里含有许多生物活性的蛋白,有些是与外泌体的形成和分泌相关的;本实施例选取了几个重要的外泌体蛋白进行western blot检测;分别是外泌体的跨膜蛋白:CD9、CD63和分子伴侣HSP70蛋白,其中,GPR7为内质网标记蛋白,gp37为ALV-J病毒标记蛋白。
结果如图2所示,感染了ALV-J的阳性精液外泌体提取物和健康的精液外泌体提取物都能检测到外泌体的相关蛋白CD9、CD63和HSP70,且都没有GPR7,表明所提取的产物是外泌体;阳性精液外泌体,阳性公鸡细胞和阳性精浆中都含有外泌体和ALV-J病毒蛋白gp37,表明ALV-J病毒的阳性感染跟含有病毒成分的外泌体有关。
4)阳性感染细胞和阳性公鸡精液外泌体RNA的RT-PCR
(1)TRIZOL Reagent分别提取阳性感染细胞和阳性公鸡精液外泌体的RNA;
(2)分别反转录exo-RNA合成cDNA。
表1:反转录体系1
Figure BSA0000182978090000061
表2:反转录体系2
Figure BSA0000182978090000062
42℃ 2min后将混合溶液加入反转录体系2,反应条件37℃ 15min,85℃5s,4℃保存。
(3)全基因组分片段(片段A、B和C)PCR扩增
表3:ALV-J扩增片段引物序列和参数
Figure BSA0000182978090000071
表4:PCR反应体系3
Figure BSA0000182978090000072
94℃ 7min;94℃30s;56℃,30s;72℃2min;30个循环;72℃10min;4℃终止反应。
从图3结果可以看出,阳性感染细胞和阳性公鸡精液外泌体RNA能够扩增出ALV-J病毒蛋白的RNA序列,表明感染了ALV-J病毒的阳性细胞和公鸡精液外泌体中都含有ALV-J病毒的全基因组序列。
5)Western Blot检测外泌体里的病毒蛋白gp85和p27,检验阳性外泌体的病毒蛋白表达情况。
图4结果表明,以ALV-J病毒颗粒为阳性对照,在阳性精液外泌体中均有ALV-J病毒蛋白gp85和p27表达,而在健康公鸡精液外泌体中则没有对应ALV-J病毒蛋白的表达,表明阳性公鸡精液外泌体中含有ALV-J病毒的蛋白,为反转录病毒出芽提供了条件。
6)免疫电镜观察阳性精液外泌体中的病毒蛋白
(1)取20μL外泌体悬浮液滴加到铜网上,室温静置5min使之吸附,滤纸吸去多余的液体
(2)在铜网上滴加4%多聚甲醛静置10min,将外泌体固定;
(3)将铜网置于BSA封闭液中室温1h;
(4)将铜网置于一滴gp85抗体液中室温1h;
(5)铜网用PBS洗涤5次后,用10nm胶体金颗粒标记gp85抗体;
(6)最后再用醋酸双氧铀进行负染,透射电镜观察。
gp85抗体能够与外泌体中的标记蛋白gp85特异性结合,再用胶体金颗粒标记gp85抗体进行观察,结果见图5,电镜中观察到胶体金颗粒的位置即为外泌体中的gp85蛋白的位置,证明阳性外泌体中存在ALV-J病毒蛋白。
以上结果表明,禽白血病阳性公鸡的精液外泌体中含有ALV-J病毒的遗传和感染成分。
实施例2
ALV-J阳性鸡精液外泌体的感染性
1)阳性外泌体体外感染DF-1细胞:
(1)按照1×106/孔的比例接种DF-1细胞到六孔板,细胞密度到60-70%左右,加入50μg和100μg实施例1中得到的纯化了的阳性精液外泌体,孵育2h;
(2)换2%维持液,维持5天;
(3)用TRIZOL Reagent提取细胞RNA进行PCR检测。
表5:ALV-J特异性检测引物序列和参数
Figure BSA0000182978090000081
表6:扩增反应体系
Figure BSA0000182978090000082
反应条件:50℃,30min;94℃,5min;94℃,30s;56℃,30s;72℃,30s,34个循环;72℃,5min;4℃终止反应;用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。
结果显示,见图6,DF-1细胞经阳性外泌体共同孵育后,细胞中有检测到ALV-J病毒RNA,证明ALV-J病毒能够通过外泌体进入细胞内,并且增殖。
(4)用RIPABuffer提取细胞蛋白进行Western Blot检测。
结果表明,见图7,DF-1细胞经阳性外泌体共同孵育后,细胞中有检测到ALV-J病毒的标记蛋白(本实施例中标记蛋白为gp85),证明ALV-J病毒能够通过外泌体进入细胞内,并且利用细胞内物质进行病毒蛋白的翻译复制。
实施例3
一种ALV-J病毒垂直传播的阻断剂
(1)按照1×106/孔的比例接种DF-1细胞到六孔板,细胞密度到60-70%左右,分成9组,分别为加入50μg纯化了的阳性精液外泌体和5μg标记蛋白封闭物的实验组(4组)和只添加阳性精液外泌体,不添加对应标记蛋白封闭物的对照组(4组),孵育细胞,收取12h,24h,36h和72h的细胞中ALV-J病毒RNA和蛋白进行检测。其中,本实施例选取外泌体常见的标记蛋白CD9、CD63、CD81和HSP70进行封闭。空白组为既不添加阳性外泌体也不添加封闭物的纯DF-1细胞培养。
封闭效果见图8,相比对照组,实验组中CD9、CD63、CD81和HSP70四种蛋白的封闭物的添加都能有效减少了ALV-J病毒在细胞内的增殖数量,降低了阳性外泌体对于细胞的感染,图9的结果表明,以ALV-J病毒蛋白gp37为指示蛋白,除了空白对照,添加有标记蛋白封闭物的实验组中,ALV-J病毒蛋白几乎没有表达,图8和图9共同说明,蛋白CD9、CD63、CD81和HSP70的封闭物都能有效抑制阳性外泌体对细胞的感染。
实施例4
一种阻断ALV-J垂直传播的方法
将15只26-27周龄SPF母鸡分为5组(如表7),进行人工授精。其中SEP为健康外泌体,SEN为阳性外泌体,选用的阻断方法为E组:在SEP中添加阻断剂CD81,添加量为终浓度50μg/mL,其他为对照组。
表7:动物实验分组
Figure BSA0000182978090000101
1)母鸡病毒血症检测
授精后两周开始对各组母鸡进行每周采血检测:采集血液(不加抗凝剂),放置37℃恒温箱2h,待析出血清后收集,用AXYGEN病毒核酸提取试剂盒提取病毒RNA(具体方法参考说明书)进行RT-PCR。
ALV-J特异性检测引物序列如下:
5’GGATGAGGTGACTAAGA;3’CGAACCAAAGGTAACACACG。
表8:扩增反应体系
Figure BSA0000182978090000102
反应条件:50℃,30min;94℃,5min;94℃,30s;56℃,30s;72℃,30s,34个循环;72℃,5min;4℃终止反应;用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。
2)母鸡p27抗体检测(一种试剂盒检测,检测外泌体攻毒后母鸡的感染情况):采集血液(不加抗凝剂),放置37℃恒温箱2h,待析出血清后收集;用Avian Leukosis VirusSubgroup J Antibody Test Kit进行抗体检测,具体方法参考试剂盒使用说明书。
3)母鸡病毒分离
(1)采母鸡抗凝血,用0.22μm滤膜过滤后与DMEM培养基1∶1稀释,用2mL接种长成单层的DF-1细胞,设置空白对照,2h后换含2%胎牛血清的DMEM维持液,培养至5天;
(2)用细胞DNA提取试剂盒提取细胞DNA;
(3)PCR。
表9:病毒基因扩增引物
Figure BSA0000182978090000111
表10:病毒基因扩增反应体系
Figure BSA0000182978090000112
反应条件:98℃,5min;98℃,10s;57℃,5s;72℃,2min,30个循环;72℃,10min;4℃终止反应。
(4)胶回收并进行测序鉴定。
结果如表11:
表11:各实验组母鸡ALV病毒感染情况
Figure BSA0000182978090000121
如表11结果所示,经过连续8周的检测,A组母鸡(健康精液+ALV-J病毒液)并没有检测到病毒血症,这表明单独的ALV-J病毒并不能直接通过生殖道感染母鸡;D组母鸡(健康精液+SEP)却能检测到病毒血症,表明母鸡能被阳性精液外泌体通过人工授精感染上ALV-J;但是E组母鸡(健康精液+SEP+CD81)也没有检测到病毒血症,这表明CD81抗体可以抑制阳性外泌体的感染。
4)小鸡病毒血症检测(方法同母鸡病毒检测),结果如表12:
表12:A、B、C、D、E组母鸡和公鸡产下的小鸡感染情况
Figure BSA0000182978090000131
表12结果显示,A组小鸡(健康精液+ALV-J病毒液的后代)并没有检测到病毒血症,这表明单独的ALV-J病毒并不能直接通过胎盘传染小鸡;而D组的后代小鸡能检测到病毒血症,ALV-J病毒的垂直传播依赖于外泌体的辅助作用,并将D组小鸡血浆与DF-1细胞孵育,通过荧光抗体标记gp85蛋白进行间接免疫荧光(IFA)的观察(如图10);E组的后代小鸡并没有检测到病毒血症;以上结果这表明阳性外泌体可以通过垂直传播感染后代小鸡,并且能被CD81抗体阻断其传播。
5)D组小鸡(设空白对照)间接免疫荧光检测
(1)将采集的D组小鸡的抗凝血与60%DF-1细胞孵育2小时;
(2)换2%维持液,维持2天;
(3)细胞固定:500μL PBS洗涤细胞两次,加入250μL 4%多聚甲醛室温孵育15min
(4)穿透:500μL PBS洗涤三次后加入0.2%Triton X-100孵育5min
(5)封闭:加入500μL BSA封闭液于室温静置1h;
(6)抗体孵育:室温孵育gp85抗体室温1h,洗涤三次后,孵育对应的荧光二抗于室温30min;用荧光显微镜观察。
结果如图10显示,D组小鸡的细胞中有检测到荧光标记的gp85,表明D组小鸡的体内感染有ALV-J病毒。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (4)

1.一种鸡的禽白血病病毒垂直传播的阻断剂,其特征在于,所述阻断剂为外泌体的封闭物;所述封闭物包括外泌体抗体;所述外泌体抗体为外泌体的跨膜蛋白抗体或热休克蛋白抗体中的一种或多种;所述阻断剂通过干预禽白血病阳性亲本生殖系统来源的外泌体发挥其阻断作用;所述外泌体为禽白血病阳性父本的精液外泌体。
2.根据权利要求1所述的阻断剂,其特征在于,所述禽白血病病毒为ALV-A、ALV-B、ALV-C、ALV-D、ALV-E、ALV-J或ALV-K中的一种或多种。
3.根据权利要求2所述的阻断剂,其特征在于,所述禽白血病病毒为ALV-J。
4.根据权利要求1所述鸡的禽白血病病毒垂直传播的阻断剂,其特征在于,所述跨膜蛋白为CD9、CD63或CD81的一种或多种,所述热休克蛋白为HSP70。
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