CN109652353A - 一种工程菌株的构建方法 - Google Patents

一种工程菌株的构建方法 Download PDF

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CN109652353A CN201811588976.XA CN201811588976A CN109652353A CN 109652353 A CN109652353 A CN 109652353A CN 201811588976 A CN201811588976 A CN 201811588976A CN 109652353 A CN109652353 A CN 109652353A
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plasmid
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agrobacterium
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张国栋
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邹丹丹
徐春莹
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Abstract

本申请公开了一种工程菌株的构建方法，包括以下步骤：A、用提取待转化植物的DNA；B、分别获得DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因三种连锁基因表达盒；C、去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取；D、各个表达盒的连接；E、融合片段与pCAMBIA1300‑hpt‑质粒的连接。F、导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌。本发明工程菌株的构建方法，构建了双T‑DNA载体，其中一个T‑DNA区含有上述的三连锁基因，另一个T‑DNA区含有潮霉素或者卡那霉素等抗性基因，用于愈伤转化及植株再生阶段的筛选。

Description

一种工程菌株的构建方法
技术领域
本发明涉及基因工程遗传育种学和生物遗传改良技术领域，特别涉及一种工程菌株的构建方法。
背景技术
水稻作为世界上超过一半人口的主食，是最重要的粮食作物之一.在过去的半个多世纪里，水稻育种取得了巨大的成功。
水稻的单位产量实现了倍增，部分地方甚至提高至3倍，这为保障世界粮食安全作出了巨大的贡献.但近十几年来水稻的产量停滞不前，这一方面是由于在育种技术上没有新的突破以及遗传多样性在栽培品种中的逐步变窄，另一方面也是因为频繁发生的病虫害以及旱灾等自然灾害使得水稻生产损失惨重。
然而，世界人口的持续增长以及社会经济的快速发展导致对粮食的需求不断增加。针对这些问题，我国学者提出了培育绿色超级稻的设想，围绕水稻抗病虫、抗旱、营养高效利用、优质、高产等五大重要性状，对水稻品种进行全面改良以实现农业的可持续发展。而转基因技术作为一种新兴的育种手段，在实现绿色超级稻目标上将发挥重要作用.
水稻的转基因研究始于20世纪80年代末期，迄今已有大量的转基因水稻研究被报道。
水稻转基因技术始于原生质体培养，1985年首次成功地从水稻原生质体再生完整植株；1988年在粳稻品种中获得第一批转基因水稻植株；1990年从籼稻品种ChinsurahBoro II中获得第一例转基因籼稻植株；1990年李宝健等用农杆菌感染水稻组织获得转化愈伤组织；1991年利用水稻幼胚作为受体材料，用基因枪法，成功获得转基因植株，并且转化效率明显提高。
从此，幼胚作为转基因受体材料得到广泛研究应用。1993年用农杆菌法在粳稻品种上获得了转基因植株，此后，基因枪轰击法和农杆菌介导法作为最有价值的转化途径广泛用于水稻转基因研究。
根据第三代不育系的原理，我们最终拿到的不育系不含有任何转基因元件，而得到的保持系则仅含有：筛选标记基因-花粉致死基因-育性恢复基因三个基因，其中筛选标记基因是红色荧光蛋白(DsRed)，来自礁珊瑚(Discosoma sp.)，利用种子特异表达的启动子使DsRed基因在种子种特异表达来筛选不育系的种子；花粉致死基因是玉米α淀粉酶基因(ZmAA1)，来自玉米，可使携带该基因的花粉粒败育；育性恢复基因在水稻中一般是普通隐性核不育基因，来自水稻本身，可使相应基因突变体株系恢复育性。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于，提供了一种工程菌株的构建方法。本发方法将潮霉素抗性基因与红色荧光基因(DsRed)基因进行连锁后转化水稻成熟胚诱导的愈伤组织，在愈伤组织细胞培养筛选阶段加入潮霉素，同时结合红色荧光检测，快速、有效的筛选。
为解决上述技术问题，本发明提供了一种工程菌株的构建方法，包括以下步骤：
A、用提取待转化植物的DNA；
B、分别获得DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因三种连锁基因表达盒；
C、去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取；
D、各个表达盒的连接；
E、融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接。
F、导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌。
所述去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取步骤，进一步包括：
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4buffer 3μL，双蒸水定容到30μL，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒。
所述各个表达盒的连接步骤，进一步包括：EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR IF和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次。
所述融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接的步骤进一步包括：
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将上述连接产物连接到处理后的载体上。
所述导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌的步骤，进一步包括：取0.9-1.1μg的构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min；再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800mlYM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上；28℃培养到形成单菌落。
为解决上述技术问题，本发明还提供了一种如前述任一项所述构建方法，构建的工程菌株。
为解决上述技术问题，本发明还提供了一种去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的构建方法，包括以下步骤：
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4buffer 3μL，双蒸水定容到30μL，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒。
为解决上述技术问题，本发明还提供了一种DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因连锁基因表达盒的连接方法，包括以下步骤：EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR I F和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次。
为解决上述技术问题，本发明还提供了一种融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接方法，包括以下步骤：
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将上述连接产物连接到处理后的载体上。
为解决上述技术问题，本发明还提供了一种转化农杆菌的方法，包括以下步骤：取0.9-1.1μg的构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min；再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800m1YM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上；28℃培养到形成单菌落。
本发明有益效果包括：本发明一种工程菌株的构建方法，构建了双T-DNA载体，其中一个T-DNA区含有上述的三连锁基因，另一个T-DNA区含有潮霉素或者卡那霉素等抗性基因，用于愈伤转化及植株再生阶段的筛选。
附图说明
图1为本发明实施例所述去除Hyg抗性基因后的p CAMBIA1300质粒图谱；
图2为本发明实施例所述DsRED表达盒电泳检测图；
图3为本发明实施例所述EAT1表达盒电泳检测图；
图4为本发明实施例所述ZMAA1表达盒电泳检测。
具体实施方式
下面结合实施例详述本发明。为使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚、明确，以下对本发明进一步详细说明，但本发明并不局限于这些实施例。
本发明将潮霉素抗性基因与红色荧光基因(DsRed)基因进行连锁后转化水稻成熟胚诱导的愈伤组织，在愈伤组织细胞培养筛选阶段加入潮霉素，同时结合红色荧光检测，快速、有效的的筛选。
本发明一实施例中，提供了一种工程菌株的构建方法，包括以下步骤：
A、用提取待转化植物的DNA；
B、分别获得DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因三种连锁基因表达盒；
C、去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取；
D、各个表达盒的连接；
E、融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接。
F、导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌。
所述去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取步骤，进一步包括：
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4buffer 3μL，双蒸水定容到30μ L，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒。
所述各个表达盒的连接步骤，进一步包括：EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR I F和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次。
所述融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接的步骤进一步包括：
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将上述连接产物连接到处理后的载体上。
所述导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌的步骤，进一步包括：取0.9-1.1μg的构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min；再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800mlYM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上；28℃培养到形成单菌落。
本发明另一实施例中，提供了一种如前述任一项所述构建方法，构建的工程菌株。
本发明另一实施例中，提供了一种去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的构建方法，包括以下步骤：
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4buffer 3μL，双蒸水定容到30μL，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒。
本发明另一实施例中，提供了一种DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因连锁基因表达盒的连接方法，包括以下步骤：EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR I F和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次。
本发明另一实施例中，提供了一种融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接方法，包括以下步骤：
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将上述连接产物连接到处理后的载体上。
本发明另一实施例中，提供了一种转化农杆菌的方法，包括以下步骤：取0.9-1.1μg的构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min；再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800mlYM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上；28℃培养到形成单菌落。
本发明另一实施例中，采用以下技术方案予以实现：
A、DsRed基因表达盒的获得；
B、EAT1基因表达盒的获得
C、ZmAA基因表达和盒的获得
D、双T载体的改造
E、各表达盒的连接
实验步骤：
1、用CTAB法提取水稻的DNA，具体操作如下：
1.1.用液氮研磨1g左右植物组织，将研磨后的粉末转移到预冷的离心管中；
1.2.向离心管中加入500μL2×CTAB(已预热至65℃)，颠倒混匀后在65℃水浴中放置30～60min，期间要上下颠倒混匀数次；
1.3.取出离心管，加入等体积的24∶1(三氯甲烷：异戊醇)，上下颠倒混匀；
1.4.12000rpm，离心10min，取出后将上层水相转移至一新的离心管中；
1.5.向离心管中加入2倍体积预冷的无水乙醇，-20℃沉淀15min至过夜；
1.6.12000rpm离心10min，去上清，然后加入700μL70％的乙醇，上下颠倒数次，洗涤沉淀；12000rpm离心5min，去上清，重复该过程1次；
1.7.12000rpm离心10min，去上清，倒置于吸水纸上数分钟，最后置于超净台中吹干；
1.8.在离心管中加入30～50μL的灭菌去离子水或者TE溶液，4℃放置数小时使其充分溶解。
2、各表达盒的获得
(1)以1中的DNA为模板，以EAT1-F：
EAT1-R：为引物扩增水稻EAT1基因表达盒，扩增体系如下：
PCR扩增程序：94℃预变性5min；94℃，变性1min；56℃(视不同引物对而定)，退火1min；72℃，延伸1min(视片段长度而定，1kb/min)，30～35cycle；72℃，延伸10min；4℃保存。
(2)以含有DsRED片段的pGDR质粒为模板，利用DsRed-F： 引物扩增获得DsRED基因表达盒，扩增体系如下：
双蒸水定容到20μL
扩增程序：
(3)以玉米DNA为模板，以ZmAA-F： 为引物扩增得到基因ZmAA1基因表达盒。
3、去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取。
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4buffer 3μL，双蒸水定容到30μL，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒
4、各表达盒的连接
1.EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR I F和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次，具体反应体系如下：
2.PCR反应程序如下：
5、融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将步骤4中的连接产物连接到处理后的载体上，连接体系
4℃ 16hour
6、将上述反应液取10μL导入到农杆菌中，形成可以用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌菌株EHA105。
农杆菌感受态细胞的制各
取-70℃保存的农杆菌于含50μg/ml利福平平板划线，28℃培养。
挑取单菌落接种于5ml YM液体培养基中，220rpm 28℃振荡培养12-16hr。
取2ml菌液转接于100ml YM液体培养基中，28℃220rpm振荡培养至OD600＝0.5。
转入无菌离心管，5000rpm离心5min，去上清液。
加入10ml预冷的0.1M的CaCl2溶液，轻轻悬浮细胞，冰上放置20min。4℃5000rpm离心5min，去上清。
加入4ml预冷的含15％甘油的0.1M的CaCl2溶液，轻轻悬浮。
农杆菌悬浮液分装于无菌Eppendorf管中，每管200μl冻存于-70℃。
转化农杆菌
取1μg左右的上述构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min。再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800mlYM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上。28℃培养到形成单菌落，
本发明提供了一种基于DsRED荧光蛋白基因为报告基因的不含潮霉素抗性基因的工程菌株。
本发明还提供了一种将片段进行融合，然后转化载体的一种实验新思路。
其它说明
1、各表达盒扩增所需引物
DsRed-F：
DsRed-R：
DsRed-F-EcoR IZmAA-F：
ZmAA-R：
EAT1-F：
EAT1-R：
EAT1-R-Hind III
以上所述，仅是本发明的几个实施例，并非对本发明做任何形式的限制，虽然本发明以较佳实施例揭示如上，然而并非用以限制本发明，任何熟悉本专业的技术人员，在不脱离本发明技术方案的范围内，利用上述揭示的技术内容做出些许的变动或修饰均等同于等效实施案例，均属于本发明技术方案保护范围内。
序列表
<110> 青岛袁策集团有限公司
<120> 一种工程菌株的构建方法
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1875
<212> DNA
<213> Oryza.sativa L.
<400> 1
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ggactggggc cccgggatga tctgcagcga cgacacgcag tactcggacg ggacggggca 540
ccgcgacacg ggcgaggggt tcgcggcggc gcccgacatc gaccacctca acccgcgcgt 600
gcagcgggag ctctccgcct ggctcaactg gctcaggtcc gacgccgtgg ggttcgacgg 660
ctggcgcctc gacttcgcca agggctactc gccggccgtc gccagaatgt acgtggagag 720
cacggggccg ccgagcttcg tcgtcgcgga gatatggaac tcgctgagct acagcgggga 780
cggcaagccg gcgcccaacc aggaccagtg ccggcaggag ctgctggact ggacgcgggc 840
cgtcggcggg cccgccatgg cgttcgactt ccccaccaag ggcctgctgc aggcgggcgt 900
gcagggggag ctgtggcggc tgcgcgacag ctccggcaac gcggccggcc tgatcgggtg 960
ggcgcccgag aaggccgtca ccttcgtcga caaccatgac accgggtcga cgcagaagct 1020
ctggccgttc ccatccgaca aggtcatgca gggctacgcc tacatcctca cccatccagg 1080
agtcccctgc attttctacg accacatgtt cgactggaac ctgaagcagg agatatccac 1140
gctgtctgcc atcagggcgc ggaacggcat ccgcgccggg agcaagctgc ggatcctcgt 1200
ggcggacgcg gacgcgtacg tggccgtcgt cgacgagaag gtcatggtga agatcgggac 1260
aaggtacggc gtgagcagcg tggtcccgtc ggatttccac ccggcggcgc acggcaagga 1320
ctactgcgtc tgggagaaag cgagcctccg cgtcccggcg gggcgccacc tctagcagct 1380
cagattgctc agtcttgtgc tgcattgcaa acacagcagc acgacactgc ataacgtctt 1440
ttccttaatt tcctgaattt taccttttcc tagttcaatt tcatatatgt atttctacat 1500
gtacacacta tcacaatcag ataaataaac aagcttggtc acctgaaag 1549
<210> 3
<211> 2802
<212> DNA
<213> Zea mays L.
<400> 3
ttataagacg gagctcattg tcgctcgtca gcgggttgat gctgaaactt cctattgtgg 60
gtttgtatgc ctcctcccgt ccgacctgag cgttaaaatc tccgataact atctgcacat 120
gggcagcaga tgtgctccat ctccaactgc gtatagaaga tctccgtctc gtcatcggag 180
tttccaaggt gcggactgta cacattaata atgctgaggt tgaagaacct gccacggatt 240
cttagcctgc acattcgctc attgatcgat caccatccga tcacccactt tcgcatctcc 300
cctatgatca ggaacaccga accgagctca tgcttttcaa cccctgctct ggtagattat 360
gcagtcactg cgatggaggc gctccgaaac ccctttccag cgcaactctt gtagtgctac 420
tatttcgaag ccgtcctcgt ccataagaat gcgggtgctt tcaggtgccg tgagtgatct 480
gcagttccat gtctcgagtt tccaatcgtg tgttttgttt cgcagcattg gtctataatc 540
gttgaatccg attcgaaact tcatggtttt cgatcgttgc gtttatattg agggaggctt 600
gcaaggctgc ttccccgaca cctcatctcg tcggagggac ccgtaggaca ggagggacga 660
ccagccgccc ctaacaagga gaacagaggc tagctatccc cctccactca atttagccat 720
atcacccatc ttcccaaggg attgggtttt cacgtttacc caagctcaga tatttggaga 780
gacatgttac cattctatac gccgggaacg tattgaattg aagtgaggtg gagagtctat 840
gttaatcttc aagaggcttc ggatccatac tatatacaat atgagagatg gttttcataa 900
tattgggaaa aattcatctg agcatctcca tctcaaacgc agcttaggaa ggacaaagct 960
aagatgtctc aaagacgtat ttgaagtact ggggactata catgtctgtc agtccagcat 1020
cgtccgcggc ggacaagtat tttgaagtgg agaactttct catgaccagt tgacagccag 1080
cacaactcaa catcaatgtt ggtgtcggac ttgatttttg atccctgata agtgagtttt 1140
gaacgatttc aaagatacga tcacctcgcc caagttggtg gttttcggcc cctttaactt 1200
caacccgagg ctaagtgccg atcgctcgat cctttggaaa gctaggatag aagagcctca 1260
aaccaatgat gtctatgtca tctatgtttg gtgcggatac accgccagtg aaacaagtgt 1320
aataagaata aactttgatt atttaatatt tttttacctt cgcataatgt atttgacgaa 1380
cttaccatga tttatatctg ttggcaaaat gagacaattt attcatgttc tgcgtatact 1440
ttaatgatca tcgtattgca acatgcttgt ttaaccatta tttatcaaac attacttttc 1500
tctctacttg tgcacagtaa agcaggtgcc atttgcttaa cactaacaaa agctgtacaa 1560
atactgggga cggttccgag gtccgacgat cgtccgagtt ttcccttata aaagcgccgc 1620
gatcgtaacg taaagatcat cagtagaatt tgctcttttc cacagttcac aggtgaataa 1680
acgatgaagc ttgcctcctc cgagaacgtc atcaccgagt tcatgcgctt caaggtgcgc 1740
atggagggca ccgtgaacgg ccacgagttc gagatcgagg gcgagggcga gggccgcccc 1800
tacgagggcc acaacaccgt gaagctgaag gtgaccaagg gcggccccct gcccttcgcc 1860
tgggacatcc tgtcccccca gttccagtac ggctccaagg tgtacgtgaa gcaccccgcc 1920
gacatccccg actacaagaa gctgtccttc cccgagggct tcaagtggga gcgcgtgatg 1980
aacttcgagg acggcggcgt ggcgaccgtg acccaggact cctccctgca ggacggctgc 2040
ttcatctaca aggtgaagtt catcggcgtg aacttcccct ccgacggccc cgtgatgcag 2100
aagaagacca tgggctggga ggcctccacc gagcgcctgt acccccgcga cggcgtgctg 2160
aagggcgaga cccacaaggc cctgaagctg aaggacggcg gccactacct ggtggagttc 2220
aagtccatct acatggccaa gaagcccgtg cagctgcccg gctactacta cgtggacgcc 2280
aagctggaca tcacctccca caacgaggac tacaccatcg tggagcagta cgagcgcacc 2340
gagggccgcc accacctgtt cctgagatct cgagcaccac caccaccacc actaacctag 2400
gtagctgagc gcatgcgatc tcggcttcaa aacggtactg gattttggat tcaaacgaaa 2460
gccatcgcta caacagaaca aataaaagaa cattaatcaa aacgcataaa agatgggtta 2520
attgtattca ataaggagaa aagtaattcc tactagatag tttactatca cgcgaaagga 2580
tggccagtct tcactacggg aagacaacct cgctgggaat cgaaactctg tcaacgctgg 2640
aggtgccaac acatcttcgt aataaacatt tttacattta tccaggcgta aagaaacacg 2700
atttagttat caatttgtat ttttggttct tatgaagaat aaacttcttc aaattcactt 2760
ccacgaatat tccgtcccgt tccgccagtt ccattcgagc tc 2802

Claims (10)

1.一种工程菌株的构建方法，其特征在于，包括以下步骤：
A、用提取待转化植物的DNA；
B、分别获得DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因三种连锁基因表达盒；
C、去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取；
D、各个表达盒的连接；
E、融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接。
F、导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌。
2.根据权利要求1所述工程菌株的构建方法，其特征在于，所述去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的获取步骤，进一步包括：
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4 buffer 3μL，双蒸水定容到30μL，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒。
3.根据权利要求1所述工程菌株的构建方法，其特征在于，所述各个表达盒的连接步骤，进一步包括：EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR IF和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次。
4.根据权利要求1所述工程菌株的构建方法，其特征在于，所述融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接的步骤进一步包括：
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将上述连接产物连接到处理后的载体上。
5.根据权利要求1所述工程菌株的构建方法，其特征在于，所述导入到农杆菌中，形成能够用于介导转化植物细胞的工程菌农杆菌的步骤，进一步包括：取0.9-1.1μg的构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min；再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800mlYM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上；28℃培养到形成单菌落。
6.一种如权利要求1-5中任一项所述构建方法，构建的工程菌株。
7.一种去除Hpt基因的pCAMBIA1300质粒的构建方法，其特征在于，包括以下步骤：
首先用AscI将pCAMBIA1300质粒酶切后自连环化，得到去除Hpt基因的质粒pCAMBIA1300-hpt-，具体的酶切体系和酶切程序如下：
然后在体系中加入T4连接酶2μL和10xT4buffer 3μL，双蒸水定容到30μL，16℃下保持12hour，获得pCAMBIA1300-hpt-环状质粒。
8.一种DsRed基因、EAT1基因、ZmAA基因连锁基因表达盒的连接方法，其特征在于，包括以下步骤：EAT1表达盒、DsRed表达盒和ZmAA1表达盒三个片段的模板以1∶1∶1的个数比加入，使用KOD DNA聚合酶，在不添加引物的情况下空循环5次；然后利用DsRed-F-EcoR I F和EAT1-R-Hind III引物进行扩增循环35次。
9.一种融合片段与pCAMBIA1300-hpt-质粒的连接方法，其特征在于，包括以下步骤：
首先对pCAMBIA1300-hpt-环化的质粒双酶切，酶切体系如下：
37℃保温3hour
将上述连接产物连接到处理后的载体上。
10.一种转化农杆菌的方法，其特征在于，包括以下步骤：取0.9-1.1μg的构建好的质粒DNA加入到200ml农杆菌感受态细胞中，混匀后，冰浴30min，-70℃放置10min；再在37℃水浴5min或42℃水浴1min，接着冰浴2min，加入800mlYM液体培养基28℃，175rpm摇培3hr后涂在含50μg/ml Kanamycin的YM平板上；28℃培养到形成单菌落。
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