CN109402269B - 一种检测miRNA-217-5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途 - Google Patents
一种检测miRNA-217-5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提出一种检测miRNA‑217‑5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途,包括miRNA,所述miRNA为miRNA(miRNA‑217‑5p),其核苷酸序列如SEQ ID No.1所示,所述miRNA的靶基因为样腱蛋白1(CHRDL1),所述miRNA在氧化应激过程中高表达,通过下调的样腱蛋白1(CHRDL1)基因的表达,参与小肠上皮的氧化应激应答。本发明提出的miRNA(miR‑217‑5p)与鸭肠道氧化应激有很好的相关性,通过有效性和分子生物学验证,miR‑217‑5p的表达量在应激组和对照组样本间的差异极显著,且可以调节靶基因的表达,应用于抗逆蛋(肉)鸭的辅助遗传育种中,可实现早期辅助选择。
Description
技术领域
本发明涉及分子标记领域,尤其涉及一种检测miRNA-217-5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途。
背景技术
鸭是一种胆小、易惊的家禽。随着鸭规模化、设施化养殖的发展,蛋鸭笼养成为一种重要的生产方式,逐渐在蛋鸭生产中推广应用,在标准化笼养流程中,免疫、运输、上笼、环境温度变化等各种有害刺激,可使鸭生产性能降低,极大的影响养殖效率,有害刺激易诱发氧化应激反应。应激发生时,血液流向肌肉、脑等组织,小肠组织发生缺血,又最迟得到恢复,肠道持续缺氧造成氧化应激,不仅会影响肠道屏障和吸收功能,还可导致消化道黏膜的损伤,引发肠细菌异位,诱发多种疾病。
microRNA(miRNA)是一类长度约20-24nt的非编码单链小分子RNA,可以通过与靶基因mRNA的3’UTR互补结合对靶基因进行转录后调控,在细胞增殖、分化和凋亡、细胞氧化应激应答、肿瘤形成等生理过程中发挥重要的调控作用。
miRNA参与动物应激应答是通过结合靶基因mRNA的3’UTR进行负调控实现的。如果仅通过生物信息学分析预测,将得到大量互作基因,对其筛选和验证难度巨大。而通过同一组织,特定生理时期RNA-seq和miRNA-seq测序,并进行关联分析,会更加准确获得相应生理过程的功能miRNA及其靶向基因。因此,本发明提出一种检测miRNA-217-5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途,以解决现有技术中的不足之处。
发明内容
针对上述问题,本发明提出的miRNA(miR-217-5p)与鸭肠道氧化应激有很好的相关性,通过有效性和分子生物学验证,miR-217-5p在应激组和对照组样本间的差异极显著,在应用于抗逆蛋(肉)鸭的辅助遗传育种中,可实现早期辅助选择,同时本发明提供的检测miR-217-5p表达水平的荧光定量PCR试剂盒包含了从RNA提取到荧光定量实验所需的整套试剂,即方便使用,又保证了结果的一致性。
本发明提出一种检测miRNA-217-5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途,包括miRNA,所述miRNA为应激过程中上调的miRNA(miRNA-217-5p),其核苷酸序列如SEQ IDNo.1所示,所述miRNA的靶基因为样腱蛋白1(CHRDL1),所述miRNA通过下调的样腱蛋白1(CHRDL1)基因的表达,参与小肠上皮的氧化应激应答。
进一步改进在于:所述miRNA通过下调的样腱蛋白1(CHRDL1)基因的表达,在小肠上皮的氧化应激过程中发挥促进细胞增殖作用。
进一步改进在于:所述miRNA表达水平及其下调的样腱蛋白1(CHRDL1)基因的表达是通过RT-qPCR检测,根据鸭小肠组织中的所述miRNA的表达水平,判断鸭小肠抗氧化能力并进行筛选。
进一步改进在于:检测鸭小肠组织中的所述miRNA的表达水平,包括如下步骤:
步骤一:提取待测鸭小肠组织中含有miRNA的总RNA;
步骤二:设计目标miRNA和内参miRNA(U6)的特异性茎环引物,利用反转录酶进行miRNA反转录;
步骤三:采用miRNA特异的正向引物,以及通用下游引物,利用荧光定量PCR试剂盒进行miRNA(miRNA-217-5p)和内参miRNA的扩增;
步骤四:扩增后利用2-△△Ct法计算获得miRNA(miRNA-217-5p)的表达水平。
进一步改进在于:所述荧光定量PCR试剂盒包括反转录试剂、miRNA(miRNA-217-5p)的茎环引物,miRNA(miRNA-217-5p)上游引物和下游引物;内参miRNA(U6)的特异性茎环引物,U6上游引物和下游引物;荧光定量PCR反应试剂;
miRNA(miRNA-217-5p)茎环引物为:
CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGATCCAATC;
miRNA(miRNA-217-5p)上游引物为:
CTGGTAGGTACTGCATCAGGAACTG;
miRNA(miRNA-217-5p)下游引物为:
TCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGC;
内参miRNA(U6)的特异性茎环引物为:
GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACAAAAATATG;
U6上游引物为:CTCGCTTCGGCAGCACA;
U6下游引物为:AACGCTTCACGAATTTGCGT。
本发明的有益效果为:本发明提出的miRNA(miR-217-5p)与鸭肠道氧化应激有很好的相关性,通过有效性和分子生物学验证,miR-217-5p表达水平在应激组和对照组样本间的差异极显著,在应用于抗逆蛋(肉)鸭的辅助遗传育种中,可实现早期辅助选择,同时本发明提供的检测miR-217-5p表达水平的荧光定量PCR试剂盒包含了从RNA提取到荧光定量实验所需的整套试剂,即方便使用,又保证了结果的一致性,利用筛选获得的分子标记辅助选择抗应激能力这一复杂性状,并对育种群体进行选择提高,可降低应激影响,节省饲养成本,提高鸭养殖效率。
附图说明
图1为本发明中CHRDL1的3’UTR与miR-217-5p的结合位点示意图。
图2为本发明miR-217-5p在应激组/对照组中的相对表达量结果示意图。
图3本发明中CHRDL1在氧化应激组/对照组中的相对表达量结果示意图。
图4为本发明miR-217-5p靶向CHRDL1基因的双荧光素酶验证结果示意图。
图5为本发明中转染miR-217-5p mimic后进行小肠上皮细胞氧化应激处理miR-217-5p的表达和CHRDL1表达情况示意图。
图6为本发明中转染miR-217-5p mimic后进行小肠上皮细胞氧化应激处理小肠上皮细胞增殖情况示意图。
具体实施方式
为了加深对本发明的理解,下面将结合实施例对本发明做进一步详述,本实施例仅用于解释本发明,并不构成对本发明保护范围的限定。
实施例一
根据图1所示,本实施例提出基于NGS技术的miRNA和mRNA联合分析获得肠道氧化应激关键基因(CHRDL1)及其调控miRNA(miR-217-5p)。
(1)实验动物和样本准备
以出雏的荆江鸭雏鸭为实验素材来源,对其进行高温运输应激处理,处理时长为8h,处理后立即屠宰,采集血液样本和小肠样本,然后将采集的小肠样本部分迅速放入液氮中冻存;
将应激组和对照组小肠样本采样后,每组各选取3只雏鸭样本作为实验组小肠样本和对照组小肠样本,将选出的实验组和对照组小肠样本利用商用试剂盒提取总RNA,分别构建用于miRNA和mRNA测序的cDNA文库再将构建好的文库送测序公司进行测序。
(2)基于高通量测序结果分析表达差异miRNA和mRNA
将获得的测序结果进行分析,将两组实验鸭小肠miRNA测序结果中fold-change<0.5或>2且FPKM≥10,p<0.05的miRNA定义为差异表达miRNA;将fold-change<0.5或>2且两组中各基因的FPKM≥10,p<0.05的mRNA定义为差异表达mRNA。
(3)差异表达miRNA和mRNA联合分析进行关键miRNA筛选
利用Targetscan算法,基于UCSC数据库的鸡的全基因数据,通过测序结果基因组比对,miRNA与3’UTR的匹配,对所有差异表达miRNA与差异表达mRNA进行联合分析,通过进一步分析发现,差异表达miRNA的靶基因CHRDL1能够作为BMP信号通路抑制剂发挥作用,参与细胞增殖与凋亡;
靶基因预测结果表明,CHRDL1的3’UTR区与miRNA-217-5p的转录调控区有8个碱基互补结合,如图1所示,在氧化应激过程中,CHRDL1为下调基因,miRNA-217-5p表达量上调,为上调miRNA,符合miRNA具有负调控功能的特点,即miRNA对能够负调控靶基因转录,因此,在小肠氧化应激过程中,miR-217-5p表达上调,通过下调CHRDL1的表达,激活BMP信号通路,促进细胞增殖。
实施例二
根据图2、3所示,本实施例提出群体验证miR-217-5p标记与肠道应激的相关性的方法,用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)对测序获得的关键miRNA(miR-217-5p)及基因(CHRDL1)的表达进行样本鉴定。
(1)实验样本准备
取40只初生荆江鸭雏鸭,半数进行运输应激处理,半数作为对照组,然后经长途运输8h后进行屠宰,采集血样和小肠组织样本,并将小肠组织样本采集后迅速放入液氮中冻存,根据血液中氧化应激指标,每组选择出6只具有极端表型值的个体。
(2)miRNA-217-5p差异表达验证
提取小肠总RNA:利用Trizol法提取小肠中的总RNA。其中,CHRDL1mRNA反转录及定量的条件为:利用ReverTra Ace qPCR RT Kit(Toyobo,日本)试剂盒进行反转录;THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix Kit(Toyobo,日本)进行qRT-PCR,引物为(F:AATGTGCCACGGTTTCC;R:TCCTTCTACTTTCTGAGGGTAT)检测每次设置3个平行管反应,以β-actin作为内参,引物序列为(F:ATGTCGCCCTGGATTTCG;R:CACAGGACTCCATACCCAAGAA),PCR程序为:98℃、10s;(94℃、15s,60℃、30s)40个循环;
miR-217-5p定量的条件为:利用试剂盒进行反转录ReverTra Ace qPCR RT Kit(Toyobo,日本)试剂盒进行反转录,使用茎环引物进行miRNA的反转录;miR-217-5p的茎环引物为:CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGATCCAATC;
内参miRNA(U6)的特异性茎环引物为:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACAAAAATATG;
THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix Kit(Toyobo,日本)进行qRT-PCR,检测每次设置3个平行,以U6作为内参。
miR-217-5p上游引物为:CTGGTAGGTACTGCATCAGGAACTG;
miR-217-5p下游引物为:TCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGC;
U6的上游引物为:CTCGCTTCGGCAGCACA;
U6的下游引物为:AACGCTTCACGAATTTGCGT;
PCR反应程序为:98℃10s;(94℃15s,60℃30s)40个循环。
miRNA和基因的表达量利用2-△△Ct法进行计算,统计采用t检验,P<0.05和P<0.01定义为有统计学意义,分析各组之间的表达差异。
qPCR结果表明,miR-217-5p表达量在应激组和对照组间差异极显著,如图2所示;同时CHRDL1基因表达量在两组间差异极显著如图3所示。
实施例三
根据图4、5、6所示,本实施例提出miRNA miR-217-5p对小肠上皮细胞CHRDL1基因表达及氧化应激应答的调控。
(1)质粒的构建及miR-217-5p mimics的合成
CHRDL1载体构建:根据ensemble上鸭CHRDL1的3’UTR序列设计引物,然后提取鸭小肠中的RNA,并反转录为cDNA,利用PCR方法,扩增CHRDL1的3’UTR序列,其中包括miR-217-5p结合位点,再经过回收、纯化等步骤,将目的片段克隆到pmirGLO载体中,具体的实验步骤包括对CHRDL1的3’UTR序列进行酶切位点分析,并根据载体序列信息,选择PmeI和XhoI两个酶切位点,对PCR产物进行酶切;利用试剂盒进行目的片段的纯化、酶切和回收;将PCR产物与pmirGLO载体连接和进行菌落PCR测序后获得CHRDL1载体。
(2)双荧光素酶实验验证CHRDL1与miR-217-5p的靶向结合
以原代分离的鸭小肠上皮细胞为实验载体,采用脂质体3000将CHRDL1双荧光素酶表达载体和miR-217-5p的mimics转染细胞;
试验分为对照组和处理组,具体分组如下:a.处理组(miR-217-5p mimic):miR-217-5p的mimics和CHRDL1表达载体共转染;b.对照组(NC):Negative control和CHRDL1表达载体共转染;c.空白对照组(BC):CHRDL1表达载体转染;
在转染前一天,将细胞接种至24孔板,当细胞融合度达80%时,即可进行转染,转染体系为50μl,每孔具体转染体系如下:处理组:50μl opti-MEM+1.5μlLipofectamine3000+1μl miR-217-5p mimics(20μM)+0.5μg CHRDL13’UTR表达载体;对照组:50μl opti-MEM+1.5μl Lipofectamine 3000+1.5μl NC(20μM)+0.5μg CHRDL13’UTR表达载体;空白对照组:50μl opti-MEM+1.5μl Lipofectamine 3000+0.5μg CHRDL13’UTR表达载体;
转染后24h,采用双荧光素酶报告系统检测过处理组和对照组的荧光活性,如图4所示结果表明,与对照组相比,共转染miR-217-5p mimics和CHRDL1表达载体的处理组,荧光素酶活性极显著下降;
结果表明,miR-217-5p能够特异性结合CHRDL1的3’UTR,CHRDL1是miR-217-5p的靶基因之一。
(3)miR-217-5p mimics转染后,原代培养的鸭小肠上皮细胞氧化应激模型CHRDL1表达和细胞增殖变化。
通过在小肠上皮细胞中转染20nM浓度的miR-217-5p mimics,使miR-217-5p过表达,转染12h后,对细胞进行氧化应激处理(150μM过氧化氢处理),结果表明,miR-217-5pmimics转染具能够下调CHRDL1表达;
通过在小肠上皮细胞中转染20nM浓度的miR-217-5p mimics,使miR-217-5p过表达,转染12h后,对细胞进行氧化应激处理(150μM过氧化氢处理),处理4h后,通过CKK-8法检测细胞增殖情况,结果表明,在氧化应激处理后,miR-217-5p mimics转染组小肠上皮细胞活力强。
实施例四
检测鸭小肠组织中miR-217-5p表达水平的荧光定量PCR试剂盒。
所述试剂盒包括:反转录试剂、miR-217-5p和U6的茎环引物、miR-217-5p和U6的上下游引物、荧光定量PCR反应液;
反转录试剂:购自Toyobo公司的反转录试剂盒ReverTra Ace qPCR RT Kit;具体成分为:miR-217-5p茎环引物:CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGATCCAATC;U6茎环引物:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACAAAAATATG;
荧光定量PCR反应液:购自Toyobo公司的THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix Kit,具体成分为buffer,ddH 2 O;
miR-217-5p上游引物为:CTGGTAGGTACTGCATCAGGAACTG;
miR-217-5p下游引物为:TCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGC;
U6的上游引物为:CTCGCTTCGGCAGCACA;
U6的下游引物为:AACGCTTCACGAATTTGCGT;
所述试剂盒的工作程序为:98℃、10s(step1);94℃、15s,60℃、30s(step2,45个循环);37℃、30s(step3)。
本发明提出的miRNA(miR-217-5p)与鸭肠道氧化应激有很好的相关性,通过有效性和分子生物学验证,miR-217-5p在应激组和对照组样本间的差异极显著,在应用于抗逆蛋(肉)鸭的辅助遗传育种中,可实现早期辅助选择,同时本发明提供的检测miR-217-5p表达水平的荧光定量PCR试剂盒包含了从RNA提取到荧光定量实验所需的整套试剂,即方便使用,又保证了结果的一致性。
以上显示和描述了本发明的基本原理、主要特征和优点。本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明精神和范围的前提下,本发明还会有各种变化和改进,这些变化和改进都落入要求保护的本发明范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等效物界定。
序列表
序列表
<110> 湖北省农业科学院畜牧兽医研究所
<120> 一种与鸭肠道氧化应激相关的miRNA及其应用
<160> 11
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 21
<212> RNA
<213> 鸭miRNA(anhimidae)
<400> 1
uugugcuuga ucuaaccaug u 21
<210> 2
<211> 44
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ctcaactggt gtcgtggagt cggcaattca gttgagacat ggtt 44
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
ctggtaggtt gtgcttgatc ta 22
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
tcaactggtg tcgtggagtc ggc 23
<210> 5
<211> 53
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gtcgtatcca gtgcagggtc cgaggtattc gcactggata cgacaaaaat atg 53
<210> 6
<211> 17
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
ctcgcttcgg cagcaca 17
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
aacgcttcac gaatttgcgt 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
tgggtgatgc caactgtcta 20
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
gtgggtttgc gagtgtcttt 20
<210> 10
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
atgtcgccct ggatttcg 18
<210> 11
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
cacaggactc catacccaag aa 22
Claims (4)
1.一种检测miRNA-217-5p的试剂在制备鸭肠道应激检测试剂中的用途,其特征在于:所述miRNA的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示,所述miRNA的靶基因为样腱蛋白1,所述miRNA通过下调样腱蛋白1基因的表达,参与小肠上皮的氧化应激应答。
2.根据权利要求1所述的用途,其特征在于:所述miRNA通过下调样腱蛋白1基因的表达,在小肠上皮的氧化应激过程中发挥促进细胞增殖作用。
3.根据权利要求2所述的用途,其特征在于:所述miRNA及样腱蛋白1基因的表达水平是通过RT-qPCR检测,根据鸭小肠组织中的所述miRNA的表达水平,判断鸭小肠抗氧化能力并进行筛选。
4.根据权利要求3所述的用途,其特征在于:RT-qPCR检测试剂盒包括反转录试剂、miRNA-217-5p茎环引物,miRNA-217-5p上游引物和下游引物;内参U6特异性茎环引物,U6上游引物和下游引物;荧光定量PCR反应试剂;
miRNA-217-5p茎环引物为:CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGATCCAATC;
miRNA-217-5p上游引物为:CTGGTAGGTACTGCATCAGGAACTG;
miRNA-217-5p下游引物为:TCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGC;
内参U6特异性茎环引物为:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACAAAAATATG;
U6上游引物为:CTCGCTTCGGCAGCACA;
U6下游引物为:AACGCTTCACGAATTTGCGT。
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN103866012A (zh) * | 2014-03-03 | 2014-06-18 | 吉林大学 | 可检测感染弓形虫的标识性mmu-miR-217-5p |
CN106119342A (zh) * | 2016-05-06 | 2016-11-16 | 江苏省家禽科学研究所 | 一种用于度量鸡性成熟启动时机的血清miRNA标志物及含有标志物的血清制备方法 |
CN107998149A (zh) * | 2017-12-11 | 2018-05-08 | 浙江大学 | NK细胞外泌体及相关miRNA在抗菌和抗肿瘤中的应用 |
-
2018
- 2018-12-07 CN CN201811495313.3A patent/CN109402269B/zh active Active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103866012A (zh) * | 2014-03-03 | 2014-06-18 | 吉林大学 | 可检测感染弓形虫的标识性mmu-miR-217-5p |
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Title |
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氡/α粒子照射致肺支气管细胞线粒体损伤及RNA表达改变;聂继华;《中国博士学位论文全文数据库(医药卫生科技辑)》;20131015(第10期);全文 * |
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