CN109042738B - 一种不动杆菌及其在AHLs介导致病的致病菌防治中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种不动杆菌及其在AHLs介导致病的致病菌防治中的应用。本发明研究发现，不动杆菌针对群体感应信号分子AHLs具有较好的降解活性，且降解效果稳定并显著，为AHLs介导致病的致病菌的生物防治提供了一种新的途径和方法。同时，本发明提供了一株对群体感应信号分子AHLs具有显著降解活性的不动杆菌菌株XN‑10，于2018年8月16日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏号为GDMCC NO：60436。该菌株活性稳定，在群体淬灭、防治依赖AHLs介导致病的致病菌以及植物病害方面，有巨大的应用潜力。本发明不仅可以减少化学农药的使用，为以生物防治逐渐替代化学防治提供了新的途径。

Description

一种不动杆菌及其在AHLs介导致病的致病菌防治中的应用
技术领域
本发明属于病害生物防治技术领域。更具体地，涉及一种不动杆菌及其在AHLs介导致病的致病菌防治中的应用。
背景技术
微生物能通过监测胞外自身或者其它微生物分泌的信号分子的浓度来感知群体密度的变化，当浓度达到某一阈值时，会使目标基因表达，形成群体行为，完成单独一个细菌无法完成的行为，即群体感应现象（Quorumsensing, QS）（Whiteley M, Diggle S P,Greenberg E P. Progress in and promise ofbacterial quorum sensing research[J]. Nature. 2017, 551(7680): 313-320.）。群体感应与微生物多种生物功能有关，如：生物发光、固氮基因调控、生物膜形成、抗生素调控、细菌群体移动性、Ti质粒接合转移等。（Fuqua W C, Winans S C,Greenberg E P.Quorum sensing in bacteria: the Luxr-Luxi family of cell density-responsive transcriptional regulatorst [J].Journalof Bacteriology,1994,176(2):269-275）。群体感应也广泛存在于微生物群体中，无论是在革兰氏阴性菌还是革兰氏阳性菌当中，都有其体系的存在。其中，革兰氏阴性菌特有的群体感应信号分子是N-酰基高丝氨酸内酯类物质（N-Acylhomoserine lactones，AHLs），该类物质大都具有相同的高丝氨酸内酯环状的结构，且都具有N-酰基碳链，但是这类物质的区别在于N-酰基碳链长度以及3-位侧链的取代差异，比如N-(3-oxododecanoyl)-L-homoserine lactone(OdDHL)、N-(3-oxohexanoyl)-L-homoserinelactone(OHHL) 和N-(3-oxooctanoyl)-L-homoserine lactone， (OOHL)均属于AHLs，其差别在于N-酰基碳链长度不同。除了这类传统的AHLs，近年来一些新的AHLs陆续被发现，如：异戊酰基-高丝氨酸内酯（Isovaleryl-homoserine lactone）、羧化酰基-高丝氨酸内酯（carboxyl-AHLs）、芳基-高丝氨酸内酯（Aryl-homoserine lactone）和香豆酰基-高丝氨酸内酯（p-coumaroyl-HSL）等。
在于革兰氏阴性菌中，AHLs 信号存在广泛。其中包括植物致病菌果胶杆菌（Pectobacterium）、迪卡氏菌（Dickeya）、人体致病菌绿脓杆菌（Pseudomonas aeruginosa）等，该信号调控着致病菌的致病力，如：OHHL 为植物致病菌胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种（Pectobacterium carotovorum subsp.carotovora, Pcc） 的群体感应信号分子，调控着水解酶的产生；OdDHL为人体致病菌绿脓杆菌(Pseudomonasaeruginosa)的群体感应信号分子，其介导着生物膜的形成(Huang J J ,Han J I ,Zhang L H ,et al .Utilizationof acyl-hom oserine lactone quorum signals for growth by a soil pseudomonadand Pseudomonas aeruginosa PAO1[J] .Applied and Environmental Microbiology,2003,69(10):5941-5949.)。在农业生产中，由AHLs信号分子介导致病的Pcc可引起植物软腐病。软腐病为世界性的植物病害，在热带和亚热带地区危害更为严重。因此，寻找相应的解决方法，解决农业生产的病害问题，提高生产产量和效率，具有重大的实际意义。
AHLs降解菌可以通过降解信号分子，使信号分子控制在一定的阀值以下，从而干扰群体感应系统，抑制致病菌致病因子的表达，达到防治效果。这就是以群体感应信号分子为靶标的一种新的生物防治策略，即群体淬灭（Quorum quenching, QQ）。使用群体淬灭这种方法不仅对病原菌不会产生选择压力，减少抗病性的产生，同时，具有操作简便、环境友好、效率高、经济实用且持续周期长等优点。在当今国际上微生物病害防治技术研究中，寻找稳定高效的淬灭菌是国际的前沿和热点。
发明内容
本发明要解决的技术问题是弥补现有的植物病原菌生物防治技术的不足，提供一种可以高效降解群体感应信号分子AHLs的生防菌株，即不动杆菌，对群体感应信号分子AHLs有显著的降解作用，具有防治依赖AHLs致病的病原菌的巨大潜力，对解决农药或抗生素滥用及耐药性问题具有重大现实意义。
本发明的目的是提供不动杆菌在降解群体感应信号分子AHLs或防治AHLs介导致病的致病菌中的应用。
本发明另一目的是提供一株可降解群体感应信号分子AHLs的不动杆菌菌株XN-10及其在AHLs介导致病的致病菌防治中的应用。
本发明上述目的通过以下技术方案实现：
本发明从采自广州华南农业大学校农场蔬菜地土壤中，经人工筛选分离纯化鉴定获得一株可降解群体感应信号分子AHLs的不动杆菌（Acinetobacter tandoii）菌株XN-10，并于2018年8月16日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏号为GDMCC NO：60436。
本发明对该菌株XN-10进行了不同抗生素敏感性分析。该菌株XN-10对氨苄青霉素和羧苄青霉素的抗性达到400μg/mL以上，对庆大霉素的抗性达到50μg/mL，对卡那霉素的抗性达到10μg/mL，对硫酸新霉素抗性达到5μg/mL，对链霉素，氯霉素和四环素的抗性分别达到300μg/mL、20μg/mL和200μg/mL。
本发明提供的不动杆菌（Acinetobacter tandoii）菌株XN-10对群体感应信号分子 AHLs 有显著的降解作用。可在以 OHHL 为唯一碳源的培养基中正常生长，在 96h 内对初始浓度为0.5 mM的群体感应信号分子 OHHL 降解率达到65%以上，因此，在防治 AHLs 介导的致病菌危害方面有巨大的应用潜力。
因此，以下应用均应在本发明的保护范围之内：
不动杆菌在降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害中的应用。
不动杆菌在制备降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害的制剂产品中的应用。
不动杆菌菌株XN-10在降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害中的应用。
不动杆菌菌株XN-10在制备降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害的制剂产品中的应用。
其中，所述AHLs信号类物质不仅包括传统的AHLs信号分子：N-(3-氧代己酰)-L-高丝氨酸内酯（N-(3-oxohexanoyl)-L-homoserine lactone，OHHL）、N-(3-氧代辛酰)-L-高丝氨酸内酯（N-(3-oxooctanoyl)-L-homoserine lactone，OOHL），OOHL）和N-(3-氧代癸酰)-L-高丝氨酸内酯（N-(3-oxododecanoyl)-L-homoserine lactone，OdDHL）， 还包括一些新的特殊的AHLs，如：异戊酰基-高丝氨酸内酯（Isovaleryl-homoserine lactone）、羧化酰基-高丝氨酸内酯（carboxyl-AHLs）、芳基-高丝氨酸内酯（Aryl-homoserine lactone）和香豆酰基-高丝氨酸内酯（p-coumaroyl-HSL）。
另外，一种防治依赖AHLs致病的致病菌病害的方法，用不动杆菌的菌液对作物进行处理。
并且，含有不动杆菌或其菌液的可降解群体感应信号分子AHLs的降解菌剂，以及依赖AHLs致病的致病菌或其引起的植物病害的生防菌剂，也应在本发明的保护范围之内。
优选地，所述不动杆菌为所述不动杆菌菌株XN-10。
优选地，所述依赖AHLs致病的致病菌包括：果胶杆菌（Pectobacterium）、迪卡氏菌（Dickeya）和/或绿脓杆菌（Pseudomonas aeruginosa）。
另外，制备上述菌株 XN-10 菌液的最适培养基为Luria-Bertani（LB）培养基，其配方为：胰蛋白胨 10.0 g/L，酵母提取物 5.0 g/L，氯化钠 10.0 g/L，pH 6.8～7.2，121℃灭菌 20 min。
本发明具有以下有益效果：
本发明研究发现，不动杆菌针对群体感应信号分子 AHLs具有较好的降解活性，且降解效果稳定并显著，为 AHLs 介导致病的致病菌的生物防治提供了一种新的途径和方法。
同时，本发明提供了一株对群体感应信号分子AHLs具有显著降解活性的不动杆菌菌株 XN-10，可利用AHLs作为唯一碳源进行生长，且菌株活性稳定，在群体淬灭、防治依赖AHLs 介导致病的致病菌以及植物病害方面，有巨大的应用潜力。本发明不仅可以减少化学农药的使用，为以生物防治逐渐替代化学防治提供了新的途径。
附图说明
图 1 为本发明的菌株XN-10在LB培养基上的菌落形态图。
图 2 为本发明的菌株XN-10的扫描电镜图。
图 3 为本发明的菌株XN-10的系统进化树分析图。
图 4 为本发明的菌株XN-10在不同抗生素中的生长情况图。
图 5 为本发明的菌株XN-10对OHHL降解活性测定图。（CK为未添加淬灭菌的空白对照组）
图 6 为本发明的菌株XN-10对 OHHL 降解的 HPLC 图（图 A 为未接种菌株XN-10的对照图，图 B、C、D、E、F分别为菌株 XN-10 对 OHHL降解0d，1d，2d，3d，4d的降解高效液相色谱图）。
图 7为本发明的菌株 XN-10以OHHL为唯一碳源的生长曲线和降解曲线图
图 8 为本发明的菌株XN-10、E. coli、B23分别与Z3-3共同接种于马铃薯块茎24h 后的发病情况。
图 9 为本发明的菌株XN-10、E. coli、B23分别与Z3-3共同接种于白菜梗 24h 后的发病情况。
图 10 为本发明的菌株XN-10、E. coli、B23分别与Z3-3共同接种于胡萝卜24h 后的发病情况。
具体实施方式
以下结合说明书附图和具体实施例来进一步说明本发明，但实施例并不对本发明做任何形式的限定。除非特别说明，本发明采用的试剂、方法和设备为本技术领域常规试剂、方法和设备。
除非特别说明，以下实施例所用试剂和材料均为市购。
以下实施例中所用到的培养基及试剂如下：
Luria-Bertani（LB）培养基：胰蛋白胨 10.0 g/L，酵母提取物 5.0 g/L，氯化钠10.0 g/L，pH 6.8～7.2，121℃灭菌 20 min。LB 固体培养基配方是在液体培养基中加入1.5%（w/v）的琼脂。
基础盐培养基（MSM）：(NH4)2SO4，2.0g/L；CaCl2·2H2O，0.01g/L；Na2HPO4·12H2O，1.5g/L； KH2PO4，1.5g/L；MgSO4·7H2O，0.2g/L；FeSO4·7H2O，0.001g/L；pH 6.5。
基础培养基（MM）：K2HPO4，10.5g/L；KH2PO4，4.5g/L；(NH4)2SO4，2.0g/L；Mannitol，2.0g/L；Glycerol，2.0g/L；MgSO4·7H2O，0.2g/L；CaCl2，0.01g/L；FeSO4，0.005g/L；MnCl2，0.002 g/L；pH 6.5。
OHHL 采购自上海有德化工科技有限公司，X-gal、培养基所需试剂均采购自广州齐湘、华奇盛等公司。
实施例1 AHLs 淬灭菌XN-10的分离、筛选
1、土样采集：
采集自华南农业大学校农场的土壤样本作为微生物源。
土样于 2017 年 7 月 30 日采集自广东省广州市华南农业大学校农场蔬菜地，在此地进行取样、装袋。作为微生物源带回实验室进行菌株的分离与筛选。
2、菌株的富集培养：
制备基础盐培养基（MSM），在 250 mL 三角瓶内装入 50 mL 的 MSM 培养基，121℃灭菌 20 min，冷却后在无菌条件下加入OHHL 母液（浓度为100mm/L，溶剂为乙腈），使OHHL 最终浓度为 5 μmol/L，除此之外加入土样5 g，放置于 30℃、200 rpm 摇床培养 7 d后，按 10%的接种量转接到 OHHL 浓度为 10 μmol/L 的 MSM 培养基中。相同条件培养 7d 后，再按10%的接种量转接到OHHL 浓度为 20 μmol/L 的 MSM 培养基中，再以相同条件培养 7 d。以此类推，不断增加 OHHL 的浓度至80μmol/L。
3、菌株分离纯化：
采用稀释、平板涂布法和平板划线法进行菌株的分离纯化。
取 1 mL 终 MSM 培养液，用无菌水将其稀释成浓度分别为 10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8的培养液，然后分别吸取各个浓度的培养液 100μL，在 LB 固体平板上涂布均匀、晾干，30℃培养 24h。挑取平板上长出的不同形态的单菌落，在 LB 固体平板反复划线培养纯化，直至分离出单菌落。分离纯化出的菌株用甘油保种法保存，待进一步实验检测降解活性。
4、菌株筛选：
利用报告菌株CF11（Agrobacterium tumefaciens）筛选能够降解OHHL的菌株。
将待筛选的菌株用 LB 固体培养基平板上活化，在 30℃培养箱培养 24h。挑取单菌落，接种至 LB 液体培养基，在30℃，200rpm 的条件下过夜（约12h）培养，得到菌液。取 1个 OD600 值的菌体与以OHHL（20μmol/L）为唯一碳源的1mLMSM培养基里混合均匀，得到1ml的待培养液。 将待培养液转移至 2 mL 离心管中，在 30℃，200rpm 的条件下培养 24h。24h 后，取 5μL 反应混合物点样至1cm宽的 MM琼脂条顶端，晾干，之后在下方点一排报告菌株的菌液。其中，报告菌株以28℃，200 rpm 的条件过夜（约12h）培养，MM琼脂条中含有浓度为 40 μg/mL的X-gal。将已经点有样本和报告菌株MM琼脂条放置于 28℃培养箱，并避光处理，放置24h 后观察实验结果。
结果分析：OHHL 具有扩散性，且扩散距离与其浓度成正比。当报告菌株CF11检测到环境中存在OHHL时，其β-半乳糖苷酶的基因开始表达，并向环境中（即MM琼脂条上）释放β-半乳糖苷酶。β-半乳糖苷酶可以将MM琼脂条中的无色化合物X-gal （5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷）酶解为半乳糖和深蓝色物质5-溴-4-靛蓝，5-溴-4-靛蓝可使整个报告菌株的菌落变成蓝色。
结果表明，反应混合物中含有的 OHHL 时，琼脂条上的报告菌株会变蓝，OHHL含量越多，报告菌株变蓝的距离越长。反之，反应混合物中不含有OHHL ，则报告菌株不变蓝。根据实验结果筛选出对 OHHL 降解效果最好的菌株，命名为降解菌 XN-10。
实施例2 AHLs 淬灭菌XN-10的鉴定
本实施例针对上述分离的降解菌 XN-10 进行了形态学特征及 16S rDNA系统发育分析，鉴定该菌株为不动杆菌（Acinetobacter tandoii）。具体如下：
（1）菌落形态特征：在 LB 固体平板上培养 48h，菌落扁平凸起，浅黄色，表面光滑不透明，边缘整齐，如图 1 所示；在 LB 液体培养基中呈扩散性混浊，好氧，30℃下生长良好。
（2）菌体形态特征：如图 2 所示，菌体呈短杆状，或近球形。
（3）16S rDNA 序列及系统进化分析：菌株 XN-10 的 16S rDNA 基因序列长度为1418 bp，与 NCBI 数据库（http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/）进行比对后发现，菌株 XN-10与 Acinetobacter tandoii具有较高的同源性，相似度达到99%以上，其系统进化树如图 3所示。
综上结果，降解菌 XN-10鉴定为不动杆菌（Acinetobacter tandoii），并于2018年8月16日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏号为GDMCC NO：60436，保藏地址为广州市先烈中路100号大院59号楼5楼。
实施例3 AHLs 淬灭菌XN-10的抗生素敏感性分析
为了能够更好地研究菌株 XN-10，本实施例对菌株 XN-10 进行了多种抗生素敏感性检测。
实验结果分析：如图 4 所示，该菌株XN-10对氨苄青霉素和羧苄青霉素的抗性达到400μg/mL以上，对庆大霉素的抗性达到50μg/mL，对卡那霉素的抗性达到10μg/mL，对硫酸新霉素抗性达到5μg/mL，对链霉素，氯霉素和四环素的抗性分别达到300μg/mL、20μg/mL和200μg/mL。这一结果利于后续研究中选取合适的抗生素作为参考。
实施例4 AHLs 淬灭菌XN-10对 OHHL 的降解活性检测
本实施例利用报告菌株CF11（Agrobacterium tumefaciens）检测菌株 XN-10对OHHL 的降解效果。
用 LB 固体培养基平板活化菌株 XN-10，将平板置于 30℃培养箱，培养24h。挑取单菌落接种至液体 LB 培养基中，以 30℃，200rpm 的条件过夜培养得到菌液。取 1 个OD600值的菌体，吸取以 OHHL 作为唯一碳源的 1mL MSM 培养基与菌体均匀混合后转移至2mL 离心管中，得到待培养液，其中 MSM 培养基中 OHHL 的浓度分别为 5μmol/L，10μmol/L，15μmol/L，20μmol/L，25μmol/L和30μmol/L。以 30℃，200rpm 的条件培养 24h。24 h 后，取 5μL 反应混合物点至1cm宽的琼脂条顶端，晾干，然后在下方依次点报告菌株（Agrobacteriumtumefaciens ）菌液。然后将已经点好反应混合物和报告菌株的琼脂条放置于28℃培养箱，进行避光处理，培养 24h 后观察实验结果。其中，琼脂条为含有X-gal（40μg/mL） 的 MM 板切条所得。CK为不含XN-10的空白对照。
实验结果如图5所示，CK 实验组的琼脂条自顶端起3/4的报告菌株均变为蓝色，CK组的反应混合物中含有OHHL。6个含有不同浓度OHHL的XN-10实验组的报告菌株均未变蓝，表明这6个实验组的反应混合物中不含有 OHHL，OHHL 已经完全被XN-10降解。
实施例5 利用 HPLC检测菌株 XN-10 降解 OHHL 的活性
将冻存于-80℃的菌株 XN-10 用 LB 固体板活化，30℃培养 24h 后挑取平板上的单菌落接种于液体 LB 培养基中，以 30℃，200 rpm 的条件过夜培养得到菌液。取 1 个OD600值的菌体，菌体用 1mL 的 MSM 培养基重悬，将重悬液加入 19 mL MSM 基础培养基中，并添加 OHHL 母液（溶剂为乙腈），使其最终浓度为 0.2 mmol/L。在 30℃，200 rpm 的条件下培养，于 0d、1d、2d、3d和4d五个时间点取样，并将样品中残余的 OHHL 提取出来，利用 HPLC 测定 OHHL 的残留量表示菌株 XN-10 对 OHHL 的降解情况。
OHHL 的提取方法：取7mL样品至 15 mL 离心管中，以 4000 rpm的速度离心10min 后，取 5 mL 上清液至 50 mL 分液漏斗中，并向分液漏斗中加入等体积的乙酸乙酯，剧烈震荡 3min 后，静置，分层，将下层溶液转移至 10 mL玻璃管中，上层萃取液经铺有滤纸的漏斗过滤到 50 mL 圆底烧瓶中。下层溶液按上述方法再进行 1 次萃取。2次滤液在圆底烧瓶中在45℃恒温下旋转蒸发至干燥，再用色谱乙腈洗2次涤圆底烧瓶，定容至 2 mL。最后经 0.45 μm 有机滤膜过滤至进样瓶，待使用 HPLC 法测定其残余量。
OHHL的HPLC 检测条件：HPLC 仪器型号：Waters 2695。色谱柱：C18 反相色谱柱（250μm×4.6mm×5μm）。流速为 0.5 mL/min。 柱温为 30℃。流动相：乙腈：水=70：30（v：v）。检测波长为 210 nm。进样量为 20 μL。
4、OHHL 降解率计算方法：降解率（%）=（1-A1/A0）×100，A1为降解菌处理后 OHHL残留浓度，A0为对照处理后的 OHHL 残留浓度。
结果分析：HPLC 检测结果如图 6 所示，图 A 为未接种菌株 XN-10 的对照图，图B、C、D、E、F分别为菌株 XN-10在0d，1d，2d，3d和4d 对 OHHL的降解图，降解率分别达到 0%，11%，15%，19%和65%，对应时间菌株 XN-10 的 OD600 值分别为0.001，0.245，0.240，0.273和0.290。实验表明，在以OHHL为唯一碳源存在的条件下，菌株XN-10能够有效降解 OHHL 并利用其生长。
由图 7可知，OHHL的降解与菌株生长呈正相关，在OHHL的存在下，菌株生长没有滞留期，迅速进入生长对数期，1d内为菌株生长的对数期，此时该菌株对OHHL的降解速率也最快。
实施例6 菌株XN-10对依赖 AHLs致病的致病菌防效研究
本实施例以植物软腐病致病菌胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种（Pectobacterium carotovorum subsp.carotovora, Pcc）Z3-3为例，研究菌株 XN-10 对依赖 AHLs 致病的致病菌的生防效果。
1、实验方法
用 LB 固体培养基平板活化菌株 XN-10 ，Z3-3，E.coli和B23，用30℃培养箱培养。24h 后分别挑取平板上的单菌落，接种至液体 LB 培养基中，以 30℃，200 rpm 的条件过夜培养至OD600=2.0。其中，苏云金芽孢杆菌以色列亚种B23（Bacillus thuringiensis subsp.Israelensis） 为已知对OHHL 具有降解效果的菌株（Dong Y, Xu J, Li X, et al.AiiA, an enzyme that inactivates the acylhomoserinelactone quorum-sensingsignal and attenuates the virulence of Erwinia carotovora [J].Proceedings ofthe National Academy of Sciences, 2000, 97(7): 3526-3531.），E. coli 为已知对OHHL 无降解效果的菌株。在生防实验中，设置4个实验组：Z3-3+LB，Z3-3+E.coli，Z3-3+B23和Z3-3+XN-42。其中，实验组 Z3-3+LB为空白对照组；Z3-3+E.coli为阴性对照组，Z3-3+B23为阳性对照组。
选取新鲜的马铃薯，白菜和胡萝卜作为实验材料，将马铃薯和胡萝卜切成厚度约为0.3cm的切片，白菜梗切为约为6cm×4cm的小长方形块。将Z3-3菌液分别与B23、E.coli、XN-42的菌液和液体LB培养基以一定比例混合，使XN-10、E.coli、B23、Z3-3 最终OD600值约为 2.0。每个实验组的混合菌液取2μL 接种至马铃薯切片、白菜梗和胡萝卜切片中央。加入湿水棉花保湿并用保鲜膜密封放置28℃培养箱培养24h并观察结果。
2、结果分析：如图 8、图9和图10 所示，在马铃薯、白菜和胡萝卜的生防实验中，实验组Z3-3+LB和Z3-3+ E.coli的软腐病发病程度较实验组Z3-3+B23和Z3-3+XN-10的发病程度严重。即OHHL淬灭菌XN-42与致病菌共同接种较单独接种致病菌时软腐病病害症状明显减轻。
实验结果说明，菌株 XN-10 对胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种（Pectobacterium carotovorum subsp.carotovora, Pcc）Z3-3所引起的马铃薯软腐病，白菜软腐病和胡萝卜软腐病具有显著的防治效果。
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (5)

1.不动杆菌在降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害中的应用；所述不动杆菌为不动杆菌(Acinetobacter tandoii)菌株XN-10，其特征在于，该菌株于2018年8月16日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏号为GDMCC NO：60436；
所述群体感应信号分子AHLs为OHHL。
2.不动杆菌在制备降解群体感应信号分子AHLs、防治AHLs介导致病的致病菌、或防治依赖AHLs介导致病的植物病害的制剂产品中的应用；所述不动杆菌为不动杆菌(Acinetobacter tandoii)菌株XN-10，其特征在于，该菌株于2018年8月16日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏号为GDMCC NO：60436；
所述群体感应信号分子AHLs为OHHL。
3.一种防治依赖群体感应信号分子AHLs致病的致病菌病害的方法，其特征在于，用不动杆菌的菌液对作物进行处理；所述不动杆菌为权利要求1所述不动杆菌菌株XN-10；
所述群体感应信号分子AHLs为OHHL。
4.一种可降解群体感应信号分子AHLs的降解菌剂，其特征在于，含有不动杆菌或其菌液；所述不动杆菌为权利要求1所述不动杆菌菌株XN-10；
所述群体感应信号分子AHLs为OHHL。
5.一种依赖群体感应信号分子AHLs致病的致病菌或其引起的植物病害的生防菌剂，其特征在于，含有不动杆菌或其菌液；所述不动杆菌为权利要求1所述不动杆菌菌株XN-10；
所述群体感应信号分子AHLs为OHHL。
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