CN108913609A - 一种酿酒酵母st28-61的筛选及其在酿造啤酒中的应用 - Google Patents

一种酿酒酵母st28-61的筛选及其在酿造啤酒中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种酿酒酵母ST28‑61的筛选及其在酿造啤酒中的应用。本发明公开的酿酒酵母在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏编号为CGMCC No.16029。本发明的酿酒酵母可以用来酿造啤酒，且利用本发明的酿酒酵母酿造啤酒双乙酰产生量较少，酒精生成量较高，又能缩短酒龄，具有较高的发酵能力，耐酒精能力，以及耐受啤酒花的防腐能力(酵母发酵不受啤酒花抑制)，在主发酵过程中双乙酰产生量已经低于GB4927—2008国家标准，因而不需要后发酵工艺过程，能够解决目前我国酿造啤酒发酵周期较长的问题。

Description

一种酿酒酵母ST28-61的筛选及其在酿造啤酒中的应用
技术领域
本发明涉及生物技术领域中，一种酿酒酵母ST28-61的筛选及其在酿造啤酒中的应用。
背景技术
酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)是以出芽繁殖为主的单细胞真核微生物，细胞形态有卵形、长卵形(椭圆形)，于YEPD培养基平板上菌落大小为4～5mm，表面光滑凸起，老龄表面呈放射性伞状，质地湿润，颜色呈乳白色。在麦芽汁液体培养基中发酵，表面产生气泡和泡沫，菌体悬浮于培养基中呈混浊状，发酵后期菌体细胞沉积于容器底部，发酵液变得澄清。优良酿酒酵母于25～30℃能发酵葡萄汁产生良好的果香和酒香。其发酵最适为pH4.0～4.5，具有较高的发酵能力，能将糖分发酵完全，耐受高浓度的乙醇和二氧化硫(正常添加到葡萄汁中的防腐剂)的能力较强，并具有较好的凝聚力和快速沉降能力。
空间微生物由于受到太空微重力效应、高真空、极端温差、弱磁场和高能粒子(电子、质子、重离子)辐射等诱变作用，可显著提高突变频率而发生基因突变，将导致其生物学性状(如个体形态、菌落特征、生理生化特性、免疫原性等)、发酵生产性能(如生物量、产物量、酶活力、效价、发酵速度等)发生改变。目前国内外学者对空间微生物的研究主要集中在空间病原菌、空间腐蚀菌和微生物制药方面，而国内学者对酿酒酵母酿造啤酒的研究尚未报道。目前我国采用下面发酵酵母，即葡萄汁酵母(S.uvaram)酿造啤酒，其传统发酵周期长，后发酵双乙酰还原慢，酒龄较长，从而影响了啤酒企业的经济效益。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是如何酿造啤酒。
为解决上述技术问题，本发明首先提供了一株酿酒酵母，所述酿酒酵母为酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61，其在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏编号为CGMCC No.16029。
本发明还提供了一种菌剂，其活性成分为所述酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)F-H-ST28-61。
上述菌剂的用途可为酿造啤酒。
上述菌剂中，所述菌剂还可以包括载体。所述载体可为固体载体或液体载体。所述固体载体可为糖醇类、蛋白类或维生素类物质；所述糖醇类载体可为海澡糖、乳糖、蔗糖、麦芽糊精、麦芽糖、蔗糖、果糖、甘露醇和山梨醇中的至少一种；所述蛋白类载体为脱脂乳粉、乳清粉、酵母粉和酪蛋白的至少一种；所述维生素类载体可为维生素C和/或维生素E。所述液体载体可为甘油、植物油或水。所述菌剂中，所述活性成分可以以培养的活细胞、活细胞的发酵液、细胞培养物的滤液或细胞与滤液的混合物的形式存在。所述组合物的剂型可为多种剂型，如液剂、乳剂、悬浮剂、粉剂、颗粒剂、可湿性粉剂或水分散粒剂。
本发明还提供了酿造啤酒的方法，所述方法包括：利用所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61进行发酵，得到啤酒。
上述方法中，啤酒通过将所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61在啤酒花与麦芽汁的混合液中进行发酵得到。
上述方法中，所述混合液中啤酒花的含量可为a1)或a2)：
a1)0.02～0.05mg/100mL；a2)0.035mg/100mL。
上述方法中，所述麦芽汁可为11°P麦芽汁。
上述方法中，所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61在所述混合液中的接种量可为b1)或b2)或b3)：
b1)6.2×106CFU/mL～3.2×107CFU/mL(2％和10％体积比接种量下接种的活菌量)；
b2)6.2×106CFU/mL～1.28×107CFU/mL(2％和4％体积比接种量下接种的活菌量)；
b3)9.6×106CFU/mL(3％体积比接种量下接种的活菌量)。
上述方法中，在发酵前可先对所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)进行培养，将得到的培养液接种至所述混合液中可进行进一步的发酵。所述培养的时间可为c1)或c2)：
c1)10h～24h；c2)14h。
上述方法中，所述发酵的温度可为d1)或d2)：
d1)8℃～15℃；d2)12℃。
上述方法中，所述发酵的时间可为e1)或e2)：
e1)5天～9天；e2)7天。
上述方法中，所述发酵可为啤酒发过过程中的主发酵。
所述酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61，或，所述菌剂的下述任一应用也属于本发明的保护范围：
B1)酿造啤酒；
B2)制备酿造啤酒的产品。
本发明的酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61在主发酵过程中，双乙酰产生量较少(主发酵阶段发酵液中双乙酰含量小于0.1mg/L)，酒精生成量较高(主发酵阶段发酵液中乙醇含量大于3％(V/V))，又能缩短酒龄(后发酵时间)，后发酵的主要目的是还原双乙酰为2,3-丁二醇，使成品啤酒双乙酰含量符合GB4927—2008国家标准中小于0.1mg/L的要求。而目前我国酿造啤酒的葡萄汁酵母在主发酵阶段双乙酰产生量较高(双乙酰含量大于0.1mg/L，成品啤酒风味变劣，有馊饭味)，因此需要较长的后发酵时间(一般需15-30天)，使酵母菌还原双乙酰，以达到降低双乙酰含量，减少成品啤酒馊饭味的目的。本发明的酿酒酵母具有较高的发酵能力，耐酒精能力，以及耐受啤酒花的防腐能力(酵母发酵不受啤酒花抑制)，在主发酵过程中双乙酰产生量已经低于GB4927—2008国家标准，因而不需要后发酵工艺过程，故能够解决目前我国酿造啤酒发酵周期较长的问题。
生物材料保藏说明
生物材料的分类命名：酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)
生物材料的菌株编号：F-H-ST28-61
生物材料的保藏单位名称：中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心
生物材料的保藏单位简称：CGMCC
生物材料的保藏单位地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，中国科学院微生物研究所，邮政编码：100101
生物材料的保藏日期：2018年6月29日
生物材料的保藏中心登记入册编号：CGMCC No.16029
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述，给出的实施例仅为了阐明本发明，而不是为了限制本发明的范围。下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂、仪器等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。下述实施例中，如无特殊说明，序列表中各核苷酸序列的第1位均为相应DNA的5′末端核苷酸，末位均为相应DNA的3′末端核苷酸。
实施例1、空间酿酒酵母发酵性能优良菌株的筛选
(一)菌株的分离纯化
1、菌株
空间酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)ST28：由地面酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)GT28经天宫二号和神州十一号飞船搭载返回的太空诱变菌种，保藏于富乐顿生物工程科技(北京)有限公司航天微生物菌种库。为了区别航天搭载前后的菌株差异，将地面酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)GT28搭载之后的太空诱变菌株标记为空间酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)ST28。
2、菌株活化
将冻存于-80℃冰柜的地面酿酒酵母GT28和空间酿酒酵母ST28甘油保藏管分别按2％～3％(体积百分数)接入5mL YEPD液体培养基中，28℃培养22～24h，如此连续3代活化后的菌液用于后续分离纯化试验。
3、菌株的分离纯化
(1)梯度稀释：取上述第3代活化好的菌液1mL加入到99mL含有0.1％(体积百分数)吐温-80的无菌生理盐水中，采用无菌均质器拍打10min，拍击次数为6T/Sec，得到10-2稀释液。取10-2稀释液1mL加入到9mL无菌生理盐水中，采用漩涡振荡器充分振荡1～2min，得到10-3稀释液。如此10倍递增稀释至10-6。
(2)涂布接种平板：分别取吸10-5、10-6稀释液100μL，滴于标记好的YEPD固体培养基平板中央，用玻璃涂布棒在平板上先上下和左右涂布，再转圈涂布均匀，每个稀释梯度做5个平行。
(3)分离培养：将接种后的YEPD培养基平板，置于湿盒中，28℃培养1～2d后观察菌落特征，与地面酿酒酵母GT28相比，挑选菌落相对较大、独立、形态不同的单菌落，进行后续的纯化培养。
(4)纯化培养：挑取YEPD培养基平板上的单菌落接种至10mL YEPD固体培养基试管斜面上，28℃培养2d至长出菌苔。
以地面酿酒酵母GT28的个体形态和菌落特征为对照，在YEPD培养基平板上从空间酿酒酵母ST28中分离纯化得到102株菌株，分别标记菌株代号为ST28-1至ST28-102。
YEPD液体培养基：FM828安琪酵母粉10g、蛋白胨20g、D-(+)-麦芽糖20g，去离子水定容至1000mL，pH6.2±0.2。
YEPD固体培养基：在YEPD液体培养基(1000mL)中加入琼脂粉17g得到的培养基。
FM828安琪酵母粉：安琪酵母股份有限公司。
蛋白胨：北京奥博星生物技术有限责任公司。
D-(+)-麦芽糖：北京生物科技股份有限公司。
无菌均质器：型号SCIENTZ-Ⅱ，宁波新芝生物科技股份有限公司。
(二)空间酿酒酵母生物量的测定
将步骤(一)得到的102株空间酿酒酵母的YEPD液体培养物，分别按2％～3％(体积百分数)的接种量接入盛有10mL液体YEPD培养基的试管中，另以地面酿酒酵母GT28菌株作为对照，于28℃培养22～24h，以YEPD液体培养基作空白调零，在波长560nm下用紫外-可见分光光度计测定菌悬液的OD值(光密度值)。比较各菌株培养液OD值的大小，从中筛选出生物量高于地面菌株的优良菌株，结果见表1。
表1空间酿酒酵母ST28培养24h生物量(OD值)结果
由表1可见，与地面酿酒酵母GT28生物量比较，在102株分离纯化的空间酿酒酵母ST28中，其中有50株空间酿酒酵母均高于地面酿酒酵母GT28，这50株菌分别为ST28-1、ST28-2、ST28-4、ST28-5、ST28-6、ST28-7、ST28-8、ST28-9、ST28-10、ST28-11、ST28-12、ST28-13、ST28-14、ST28-17、ST28-18、ST28-19、ST28-20、ST28-22、ST28-23、ST28-24、ST28-25、ST28-27、ST28-28、ST28-30、ST28-31、ST28-32、ST28-33、ST28-34、ST28-35、ST28-36、ST28-39、ST28-40、ST28-41、ST28-44、ST28-45、ST28-46、ST28-47、ST28-48、ST28-49、ST28-50、ST28-51、ST28-52、ST28-57、ST28-59、ST28-61、ST28-62、ST28-63、ST28-91、ST28-96、ST28-97，说明该50株空间酿酒酵母在太空条件下相关基因发生了正突变。
(三)空间酿酒酵母糖发酵试验
将步骤(一)得到的102株空间酿酒酵母的YEPD液体培养物，分别按2％～3％(体积百分数)的接种量接入带有杜氏小管(体积为300μL)的盛有10mL液体YEPD培养基的试管中，另以地面酿酒酵母GT28作为对照，于15℃培养24～48h后，记录各菌株产气量及液面泡沫产气高度，结果如表2所示。选出产气量较多(酒精发酵速度较快)、泡沫较高的菌株，即得到发酵性能优良菌株。
表2空间酿酒酵母ST28发酵糖类产气及泡沫高度结果
注：菌株产气量≤1/4杜氏小管体积的记为“+”，1/4～2/4(菌株产气量大于1/4小于等于2/4杜氏小管体积)标记为“++”，2/4～3/4(菌株产气量大于2/4小于等于3/4杜氏小管体积)标记为“+++”，菌株产气量大于3/4杜氏小管体积记为“++++”；
液面泡沫高度≤2mm记为“P”，2～4mm(液面泡沫高度大于2mm小于等于4mm)记为“PP”，4～6mm(液面泡沫高度大于4mm小于6mm)记为“PPP”，液面泡沫高度大于等于6mm记为“PPPP”。
由表2可见，与地面原始的酿酒酵母GT28产气量比较，在102株分离纯化的空间酿酒酵母菌株中，其中有25株空间酿酒酵母均高于地面原始酿酒酵母GT28。这25株菌株分别为ST28-4、ST28-5、ST28-7、ST28-8、ST28-9、ST28-10、ST28-12、ST28-13、ST28-14、ST28-17、ST28-19、ST28-20、ST28-24、ST28-47、ST28-48、ST28-50、ST28-53、ST28-54、ST28-61、ST28-74、ST28-76、ST28-78、ST28-84、ST28-85、ST28-87，说明该25株空间酿酒酵母在太空条件下相关基因发生了正突变。
综合表1和表2生物量和糖发酵试验结果，筛选出既产气量高，又生物量高的菌株ST28-4、ST28-5、ST28-7、ST28-8、ST28-10、ST28-12、ST28-13、ST28-14、ST28-17、ST28-19、ST28-20、ST28-24、ST28-47、ST28-48、ST28-50、ST28-61、ST28-87，这些菌株为发酵啤酒性能优良的菌株。
(四)空间酿酒酵母的遗传稳定性
将步骤(二)和(三)筛选得到的生物量较高且发酵性能优良的空间酿酒酵母ST28-4、ST28-5、ST28-7、ST28-8、ST28-10、ST28-12、ST28-13、ST28-14、ST28-17、ST28-19、ST28-20、ST28-24、ST28-47、ST28-48、ST28-50、ST28-61、ST28-87，于10mL液体YEPD培养基中连续传代(接种量2％～3％，28℃培养22～24h)50代后，重复测定生物量和糖发酵试验结果如表3所示。
表3 50代传代的空间酿酒酵母生物量和产气量、泡沫高度结果
注：菌株产气量≤1/4杜氏小管体积的记为“+”，1/4～2/4(菌株产气量大于1/4小于等于2/4杜氏小管体积)标记为“++”，2/4～3/4(菌株产气量大于2/4小于等于3/4杜氏小管体积)标记为“+++”，菌株产气量大于3/4杜氏小管体积记为“++++”；
液面泡沫高度≤2mm记为“P”，2～4mm(液面泡沫高度大于2mm小于等于4mm)记为“PP”，4～6mm(液面泡沫高度大于4mm小于6mm)记为“PPP”，液面泡沫高度大于等于6mm记为“PPPP”。
由表3可见，经50代传代后，空间酿酒酵母ST28-61菌株50代后的OD值(生物量)和产气量、泡沫高度均高于地面酿酒酵母GT28菌株，显示其遗传最稳定。ST28-14菌株的OD值最高，但产气量和泡沫高度低于地面酿酒酵母GT28菌株；ST28-4和ST28-10菌株的OD值和泡沫高度与地面酿酒酵母GT28持平。
结论：空间酿酒酵母ST28-61菌株发酵性能优良，且遗传稳定性最好，可成为酿造啤酒的最有潜力菌株。
(四)空间酿酒酵母的形态学鉴定与分子生物学鉴定
将ST28-61菌株在40倍显微镜下观察细胞形态为椭圆形，两端出芽繁殖。于YEPD培养基平板上菌落大小为4～5mm，形状为圆形、表面光滑凸起、边缘整齐、质地粘稠、乳白色。
检测ST28-61菌株的24S rDNA，其序列如序列表的序列1所示。24S rDNA鉴定结果显示ST28-61菌株与酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)的相似性达到100％。经过形态学及24S rDNA鉴定，可以确定ST28-61菌株为酿酒酵母。
(五)空间酿酒酵母ST28-61菌株的保藏
将ST28-61菌株命名为酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61菌株，该菌株于2018年6月29日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC；地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，中国科学院微生物研究所；邮编：100101)，保藏编号为CGMCC NO.16029。酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61菌株简称为空间酿酒酵母ST28-61。
实施例2、空间酿酒酵母ST28-61菌株的啤酒发酵试验
本实施例中接种量单位％均为体积百分比。
(一)ST28-61菌株最佳接种量和移种/培养时间的确定
将冻存于-80℃冰柜的空间酿酒酵母ST28-61菌株甘油保藏管按2％～3％接入盛有5mL液体YEPD培养基的试管中，28℃培养22～24h，如此连续3代活化后按2％、3％、4％、5％、10％接种量分别接入盛有10mL液体YEPD培养基的试管中(2％、3％、4％、5％、10％接种量下的活菌接种量分别为6.2×106CFU/mL、9.6×106CFU/mL、1.28×107CFU/mL、1.6×107CFU/mL、3.2×107CFU/mL)，28℃培养24h。于波长560nm下以紫外-可见分光光度计分别测定并记录培养至10h、12h、14h、16h、18h、20h、24h菌悬液的OD值(光密度值)，结果如表4所示。
表4 ST28-61菌株在不同接种量和移种/培养时间的生物量(OD值)结果
由表4可知，ST28-61菌株分别按2％、4％、10％接种量移种，由10h培养至16h时，菌悬液OD值随培养时间延长而增大至最高，即OD值为2.100，表明在16h时可达到对数生长期至稳定期的转折点(即对数生长期的末期)；而接种量为3％，由10h培养至14h时，即能达到对数生长期的末期。显示ST28-61菌株适宜的接种量为3％，较适宜的移种/培养时间为14h。
(二)ST28-61菌株的活化培养
将冻存于-80℃冰柜的空间酿酒酵母ST28-61与筛选过程中的空间酿酒酵母ST28-4、ST28-10、ST2-14空间酿酒酵母，以及地面酿酒酵母GT28甘油保藏管分别按3％接种量接入盛有5mL液体YEPD培养基试管中，28℃培养14h，如此连续3代活化后用于后续试验。
(三)ST28-61菌株扩大培养
将步骤(二)中活化3代的各菌株转接于盛有50mL 11°P麦芽汁的三角瓶中，28℃培养14h得到的培养液即为种子液，备用。
(四)啤酒发酵
将步骤(三)中的种子液按3％接种量移种至盛有400mL含有0.035mg/100mL啤酒花的11°P麦芽汁[即将啤酒花加入11°P麦芽汁中得到的啤酒花含量为0.035mg/100mL的混合物)]中，于8～15℃主发酵5～9d后，按照国标GB/T 4928—2008啤酒分析方法，分别测定主发酵(12℃条件)5d、7d、9d后，空间酿酒酵母ST28-4、ST28-10、ST2-14、ST28-61菌株和地面酿酒酵母GT28菌株发酵液中酒精度和双乙酰含量，并进行感官评价，结果见表5和6。
表5 不同发酵时间发酵液中酒精度、双乙酰含量
表6 不同菌株发酵7天时发酵液的感官评价
由表5可见，主发酵5d时，地面酿酒酵母GT28、ST28-4、ST28-10、ST28-14、ST28-61菌株酒精度分别为2.1403％、0.7477％、2.6982％、201450％、3.1076％，均未达到GB4927—2008国家标准(11°P啤酒的酒精度不低于3.2％)，但其中ST28-10、ST28-14、ST28-61菌株双乙酰产生量较低，分别为0.04mg/L、0.04mg/L、0.07mg/L，已达到GB4927—2008国家标准(双乙酰含量小于0.1mg/L)；
由表5可见，主发酵7d时，空间酿酒酵母ST28-61菌株发酵液中的酒精度最高，为4.6166％，说明该菌株耐受一定浓度的啤酒花能力较强；空间酿酒酵母ST28-10、ST28-14菌株次之，分别为4.3409％和3.6150％。空间酿酒酵母ST28-61、ST28-10、ST28-14菌株发酵液中的双乙酰含量分别为0.072mg/L、0.048mg/L、0.048mg/L，均已达到双乙酰含量小于0.1mg/L的GB4927—2008国家标准；
由表5可见，主发酵9d时，地面酿酒酵母GT28、ST28-4、ST28-10、ST28-14、ST28-61各菌株酒精度相较于主发酵7d时酒精度有所提升，双乙酰含量降低。
综上所述，空间酿酒酵母ST28-61菌株发酵含有啤酒花的麦芽汁生成的酒精度较高，且双乙酰含量较低，成熟的发酵液具有啤酒的香气，口味纯正、爽净、刹口、醇厚，无馊饭味等邪杂味(见表6)。而地面酿酒酵母GT28菌株发酵液中的双乙酰含量为0.900mg/L，超过了GB4927—2008国家标准(双乙酰含量小于0.1mg/L)，成熟的发酵液有明显馊饭味等邪杂味(见表6)。表明空间酿酒酵母ST28-61菌株的生长和发酵不受啤酒花的抑制，还原糖转化酒精能力较强，且双乙酰产生量较低，酒精度和双乙酰含量和均已达到GB4927—2008国家标准(11°P啤酒的酒精度不低于3.2％，双乙酰含量小于0.1mg/L)。
结论：空间酿酒酵母ST28-61菌株在低温主发酵阶段的发酵速度较快，酒精度较高，双乙酰生成量较低，符合GB4927—2008国家标准中双乙酰含量小于0.1mg/L的要求，可以无需后发酵工艺过程而极大缩短发酵周期。得到的成熟的发酵液具有啤酒的香气，口味纯正、爽净、刹口、醇厚，无馊饭味等邪杂味。显示空间酿酒酵母ST28-61菌株的发酵性能符合酿造啤酒的优良菌种特性。
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gccgttatat aacccctcta cgatggagga tggtttcaca ggttgttcgc cgagacgctc 60
tcttcttatc gataacgttc caatacgctc agtataaaaa aagattagcc gcagttggta 120
aaacctaaaa cgaccgtact tgcattatac ctcaagcacg cagagaaacc tctctttgga 180
aaaaaaacat ccaatgaaaa ggccagcaat ttcaagttaa ctccaaagag tatcactcac 240
taccaaacag aatgtttgag aaggaaatga cgctcaaaca ggcatgcccc ctggaatacc 300
aaggggcgca atgtgcgttc aaagattcga tgattcacgg aattctgcaa ttcacattac 360
gtatcgcatt tcgctgcgtt cttcatcgat gcgagaacca agagatccgt tgttgaaagt 420
ttttaatatt ttaaaatttc cagttacgaa aattcttgtt tttgacaaaa atttaatgaa 480
tagataaaat tgtttgtgtt tgttacctct gggccccgaa tgctcaaatg cccaaagaaa 540
aagttgcaaa gatatgaaaa ctccccagtg tgttgtattg aaacggtttt aattgtccta 600
taacaaaagc a 611

Claims (9)

1.酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61，其在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏编号为CGMCC No.16029。
2.一种菌剂，其活性成分为权利要求1所述的酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61。
3.根据权利要求2所述的菌剂，其特征在于：所述菌剂的用途是酿造啤酒。
4.酿造啤酒的方法，包括：利用权利要求1所述的酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)F-H-ST28-61进行发酵，得到啤酒。
5.根据权利要求4所述的方法，其特征在于：啤酒通过将权利要求1所述的酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61在啤酒花与麦芽汁的混合液进行发酵得到。
6.根据权利要求4或5所述的方法，其特征在于：所述混合液中啤酒花的含量为a1)或a2)：
a1)0.02～0.05mg/100mL；
a2)0.035mg/100mL。
7.根据权利要求4-6中任一所述的方法，其特征在于：所述麦芽汁为11°P麦芽汁。
8.根据权利要求5-7中任一所述的方法，其特征在于：权利要求1所述的酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61在所述混合液中的接种量为b1)或b2)或b3)：
b1)6.2×106CFU/mL～3.2×107CFU/mL；
b2)6.2×106CFU/mL～1.28×107CFU/mL；
b3)9.6×106CFU/mL；
和/或，所述发酵的温度为d1)或d2)：
d1)8℃～15℃；
d2)12℃；
和/或，所述发酵的时间为e1)或e2)：
e1)5天～9天；
e2)7天。
9.权利要求1所述的酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)F-H-ST28-61，或，权利要求2或3所述的菌剂的下述任一应用：
B1)酿造啤酒；
B2)制备酿造啤酒的产品。
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