CN108864265A

CN108864265A - 蛋白质TabZIP60在调控植物根系发育中的应用

Info

Publication number: CN108864265A
Application number: CN201810745124.0A
Authority: CN
Inventors: 童依平; 杨军波; 何雪; 赵学强; 滕婉; 马文英
Original assignee: Institute of Genetics and Developmental Biology of CAS
Current assignee: Institute of Genetics and Developmental Biology of CAS
Priority date: 2018-07-09
Filing date: 2018-07-09
Publication date: 2018-11-23
Anticipated expiration: 2038-07-09
Also published as: CN108864265B

Abstract

本发明公开了一种蛋白质TabZIP60在调控植物根系发育中应用。本发明提供了TabZIP60蛋白或其相关生物材料在调控植物根系发育中的应用；所述相关生物材料为能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子或含有所述核酸分子的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系。本发明所提供的TabZIP60蛋白调控植物根系发育：与野生型植物相比，TabZIP60超量表达转基因植物的根系干重和/或总侧根长均显著降低；TabZIP60减量表达转基因植物的根系干重和/或总侧根长均显著增加。因此，可以利用蛋白质TabZIP60调控植物根系发育。本发明对选育高产植物新材料的具有重要应用价值。

Description

蛋白质TabZIP60在调控植物根系发育中的应用

技术领域

本发明涉及生物技术领域，具体涉及蛋白质TabZIP60在调控植物根系发育中应用。

背景技术

根是植物生长发育的重要器官，主要功能是吸收、输导、支持、合成和贮藏。植物通过根系从土壤中吸收水分、矿物质及其它营养成分，因此，根系对植物的生长发育极其重要。而单、双子叶植物的根系之间存在显著不同。因此，尽管近几年在拟南芥根系发育的研究中取得了较大进展，但对粮食作物如小麦等的相关机制了解并不多。

小麦是主要粮食作物，而在半干旱的旱作农业区，水资源贫乏成为限制小麦高产的主要因子，植物个体间竞争最强烈的环境资源是土壤水分和养分，而根系是竞争水分和肥料最主要的器官。根系生长发育状况与作物产量密切相关。鉴于根系在高效吸收水肥方面的重要性，科学家认为遗传改良农作物根系形态构型是实现第二次绿色革命、进一步提高产量的关键。

发明内容

本发明的目的是提供一种蛋白质TabZIP60在调控植物根系发育中应用。

第一方面，本发明要求保护TabZIP60蛋白或其相关生物材料在调控植物根系发育中的应用。

所述相关生物材料可为能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子或含有所述核酸分子的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系。

进一步地，所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性降低，促进植物根系发育；所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性提高，抑制植物根系发育。

其中，所述植物根系发育可体现为如下中至少一种：

(a1)植物根系干重；

(a2)植物总侧根长。

更进一步地，在高氮(2mM N)条件下：所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性降低(即所述TabZIP60蛋白或其编码基因减量表达)，植物根系干重增加和/或总侧根长增加；所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性提高(即所述TabZIP60蛋白或其编码基因超量表达)，根系干重降低和/或总侧根长变短。在低氮(0.2mM N)条件下，所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性降低(即所述TabZIP60蛋白或其编码基因减量表达)，植物总侧根长增加。

第二方面，本发明要求保护一种培育根系干重增加和/或总侧根长增加的植物品种的方法。

本发明所提供的培育根系干重增加和/或总侧根长增加的植物品种的方法，可包括使受体植物中TabZIP60蛋白的表达量和/或活性降低的步骤。

进一步，本发明提供了一种培育根系干重增加和/或总侧根长增加的转基因植物的方法。

本发明所提供的培育根系干重增加和/或总侧根长增加的转基因植物的方法，具体可包括如下步骤：对受体植物中TabZIP60蛋白的编码基因进行抑制表达，得到转基因植物；所述转基因植物与所述受体植物相比根系干重增加和/或总侧根长增加。

第三方面，本发明要求保护一种培育根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低的植物品种的方法。

本发明所提供的培育根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低的植物品种的方法，可包括使受体植物中TabZIP60蛋白的表达量和/或活性提高的步骤。

进一步，本发明提供了一种培育根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低的转基因植物的方法。

本发明所提供的培育根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低的转基因植物的方法，具体可包括如下步骤：向受体植物中导入能够表达TabZIP60蛋白的核酸分子，得到转基因植物；所述转基因植物与所述受体植物相比根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低。

在该方法中，所述根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低具体为高氮(2mM N)条件下的根系干重降低和/或总侧根长变短和/或地上干重降低。

在第二方面中，所述“对受体植物中TabZIP60蛋白的编码基因进行抑制表达”可通过向所述受体植物中导入含有如式(I)所示的DNA片段的干扰载体实现；

SEQ_正向-X-SEQ_反向(I)

所述SEQ_正向的序列为SEQ ID No.3的第1-435位；

所述SEQ_反向的序列与所述SEQ_正向的序列反向互补(具体为SEQ ID No.3的第617-1051位)；

所述X是所述SEQ_正向与所述SEQ_反向之间的间隔序列，在序列上，所述X与所述SEQ_正向及所述SEQ_反向均不互补。

在本发明中，式(I)中所述X具体如SEQ ID No.3的第442-610位所示。

更加具体的，式(I)所示的DNA片段的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示。

在本发明的具体实施方式中，所述干扰载体具体为将所述如式(I)所示的DNA片段插入到pUbi-163载体的多克隆位点处(BamH I和KpnI)所得的重组质粒。

在第三方面中，所述“向受体植物中导入能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子”可通过向所述受体植物中导入含有所述TabZIP60蛋白的编码基因的重组表达载体实现。

所述重组表达载体可用现有的植物表达载体构建。所述植物表达载体包括双元农杆菌载体和可用于植物微弹轰击的载体等，如pCAMBIA-1300-221、pGreen0029、pCAMBIA3301、pCAMBIA1300、pBI121、pBin19、pCAMBIA2301、pCAMBIA1301-UbiN或其它衍生植物表达载体。所述植物表达载体还可包含外源基因的3’端非翻译区域，即包含聚腺苷酸信号和任何其它参与mRNA加工或基因表达的DNA片段。所述聚腺苷酸信号可引导聚腺苷酸加入到mRNA前体的3’端。使用所述基因构建重组表达载体时，在其转录起始核苷酸前可加上任何一种增强型、组成型、组织特异型或诱导型启动子，例如花椰菜花叶病毒(CAMV)35S启动子、泛素基因Ubiquitin启动子(pUbi)、胁迫诱导型启动子rd29A等，它们可单独使用或与其它的植物启动子结合使用；此外，使用本发明的基因构建重组表达载体时，还可使用增强子，包括翻译增强子或转录增强子，这些增强子区域可以是ATG起始密码子或邻接区域起始密码子等，但必需与编码序列的阅读框相同，以保证整个序列的正确翻译。所述翻译控制信号和起始密码子的来源是广泛的，可以是天然的，也可以是合成的。翻译起始区域可以来自转录起始区域或结构基因。为了便于对转基因植物细胞或植物进行鉴定及筛选，可对所用重组表达载体进行加工，如加入可在植物中表达的编码可产生颜色变化的酶或发光化合物的基因、具有抗性的抗生素标记物或是抗化学试剂标记基因等。也可不加任何选择性标记基因，直接以逆境筛选转化植株。

在本发明中，所述重组载体中启动所述TabZIP60蛋白的编码基因转录的启动子为Ubi启动子。

更加具体的，所述重组表达载体为将所述TabZIP60蛋白的编码基因插入到pUbi-163载体的多克隆位点处(Hind III和EcoR I)所得的重组质粒。

在上述方法中，将携带有所述TabZIP60蛋白的编码基因的所述重组表达载体或者携带有所述如式(I)所示的DNA片段的所述的干扰载体导入所述受体植物，具体可为：通过使用Ti质粒、Ri质粒、植物病毒载体、直接DNA转化、显微注射、电导、农杆菌介导等常规生物学方法转化植物细胞或组织，并将转化的植物组织培育成植株。

在第一方面、第二方面和第三方面中，所述TabZIP60蛋白均可为如下任一所示蛋白质：

(A1)氨基酸序列为SEQ ID No.1的蛋白质；

(A2)将SEQ ID No.1所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质；

(A3)与(A1)-(A2)中任一所限定的氨基酸序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且具有相同功能的蛋白质；

(A4)在(A1)-(A3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。

相应的，在第一方面、第二方面和第三方面中，所述“能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子”均可为所述TabZIP60蛋白的编码基因。更进一步，所述TabZIP60蛋白的编码基因具体可如下任一所述的DNA分子：

(B1)SEQ ID No.2所示的DNA分子；

(B2)在严格条件下与(B1)限定的DNA分子杂交且编码所述TabZIP60蛋白的DNA分子；

(B3)与(B1)或(B2)限定的DNA序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码所述TabZIP60蛋白的DNA分子。

上述严格条件可为用6×SSC，0.5％SDS的溶液，在65℃下杂交，然后用2×SSC，0.1％SDS和1×SSC，0.1％SDS各洗膜一次。

在第一方面、第二方面和第三方面中，所述植物均可为单子叶植物，也可为双子叶植物。

进一步地，所述单子叶植物可为禾本科植物。

更进一步地，所述禾本科植物可为小麦。

在本发明的具体实施方式中，所述植物具体为小麦品种KN199(科农199)。

实验证明，本发明所提供的蛋白质TabZIP60调控植物根系发育：与野生型植物相比，高氮条件下，TabZIP60超量表达转基因植物的根系干重和/或总侧根长均显著降低；TabZIP60减量表达转基因植物的根系干重和/或总侧根长均显著增加。低氮条件下，TabZIP60减量表达转基因植物的总侧根长显著增加。因此，可以利用蛋白质TabZIP60调控植物根系发育。本发明对选育高产植物新材料的具有重要应用价值。

附图说明

图1为TabZIP60转基因系的表达量鉴定。其中，A为TabZIP60超量表达鉴定。B为TabZIP60减量表达鉴定。NC代表空载对照。图中表达量是相对于TaActin的表达量。图中数据为3个重复的平均值±S.E.。*代表差异达到P<0.05显著性。

图2为TabZIP60超量表达系的苗期根系表型。其中，A为TabZIP60超量表达系的根系形态。标尺为20mm。B为地上部干重。C为根系干重。D为总侧根长。E为最长主根长。A-E均为左侧为高氮条件，右侧为低氮条件。图中数据为平均值±S.E.(n≥3)。*代表差异达到P<0.05显著性。

图3为TabZIP60减量表达系的苗期根系表型。其中，A为TabZIP60减量表达系的根系形态。标尺为20mm。B为地上部干重。C为根系干重。D为总侧根长。E为最长主根长。A-E均为左侧为高氮条件，右侧为低氮条件。图中数据为平均值±S.E.(n≥3)。*代表差异达到P<0.05显著性。

具体实施方式

下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。

下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。

小麦品种KN199(科农199)：遗传所李俊明培育的品种，公众可从商业途径得到或从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得。

pUbi-163载体：记载于“Shao,A.,Ma,W.Y.,Zhao,X.Q.,Hu,M.Y.,He,X.,Teng,W.,Li,H.,and Tong,Y.P.(2017).The auxin biosynthetic TRYPTOPHAN AMINOTRANSFERASERELATED TaTAR2.1-3A increases grain yield of wheat.Plant Physiol.174,2274-2288.”一文，公众可从申请人处获得，仅可用于重复本发明实验使用。

实施例1、转TabZIP60基因小麦的构建

一、转TabZIP60基因植株的制备

(一)TabZIP60基因的获得

1、提取小麦品种KN199的总RNA，反转录得到其基因组cDNA。

2、以步骤1得到的cDNA为模板，以如下引物为引物进行PCR扩增构建超量表达TabZIP60转基因系小麦所需序列：

TabZIP60-OE-F：5’-AAGCTTATGGATTTTCCGGGAGGGAGCGGG-3’(下划线所示序列为Hind III酶切识别位点)；

TabZIP60-OE-R：5’-GAATTCTTACCAAGGGCCCGTCAGCGTCCTC-3’(下划线所示序列为EcoR I酶切识别位点)。

以如下引物为引物进行PCR扩增构建减量表达TabZIP60转基因系小麦所需序列：

TabZIP60-RNAi-F1：5’-GGATCCCCTATGGTGAATCCTCTGTCC-3’(下划线所示序列为BamHⅠ酶切识别位点)；

TabZIP60-RNAi-R1：5’-GAATTCTTGCCTGCTAACCTTCTCG-3’(下划线所示序列为EcoRⅠ酶切识别位点)；

TabZIP60-RNAi-F2：5’-GGTACCCCTATGGTGAATCCTCTGTCC-3’(下划线所示序列为KpnI酶切识别位点)；

TabZIP60-RNAi-R2：5’-AAGCTTTTGCCTGCTAACCTTCTCG-3’(下划线所示序列为HindIII酶切识别位点)。

PCR体系：模板cDNA 4μl，KOD plus DNA聚合酶1μl，10×PCR buffer for KODplus 4μl，dNTPs(2mM each)4μl，25mM的MgSO₄2μl，上下游引物各20mM，再用双蒸水将反应体系补足至40μl。

PCR反应程序：98℃2min；98℃30sec，58℃30sec，68℃45sec，38个循环。

用于超量表达TabZIP60基因的PCR产物(记为PCR产物1)的核苷酸序列为“5’-AAGCTT+SEQ ID No.2+GAATTC-3’”。其中，SEQ ID No.2为TabZIP60基因的cDNA序列(编码SEQ ID No.1所示的TabZIP60蛋白)。

减量表达TabZIP60基因的PCR产物有两种，其一记为PCR产物2，另一记为PCR产物3；其中PCR产物2的核苷酸序列为“5’-GGATCC+SEQ ID No.2的第595-1029位+GAATTC-3’”，PCR产物3的核苷酸序列为“5’-GGTACC+SEQ ID No.2的第595-1029位+AAGCTT-3’”。

(二)TabZIP60基因克隆载体的构建

用Hind III和EcoR I双酶切上述PCR产物1，得到基因片段；Hind III和EcoR I双酶切pUbi-163载体，得到载体大片段，将基因片段与载体大片段连接，得到重组质粒，将其命名为pUbi-163-TabZIP60，将重组质粒送测序，结果正确。pUbi-163-TabZIP60中TabZIP60基因由Ubi启动子启动。pUbi-163-TabZIP60载体的结构描述：将SEQ ID No.2所示DNA片段替换pUbi-163载体的酶切位点Hind III和EcoR I之间的小片段后所得的重组质粒。

用BamHⅠ和EcoRⅠ双酶切上述PCR产物2，得到基因片段S1，用KpnI和HindIII双酶切上述PCR产物3，得到基因片段S2，用EcoRⅠ和KpnI酶切pUbi-163载体回收载体内含子片段S3，用BamHI和KpnI酶切pUbi-163载体回收载体骨架V1。然后将V1、S3分别与S1、S2连接构建成pUbi-TabZIP60-RNAi载体。测序并酶切验证。

pUbi-TabZIP60-RNAi载体的结构描述：将SEQ ID No.3所示DNA片段替换pUbi-163载体的酶切位点BamHⅠ和KpnI之间的小片段后所得的重组质粒。SEQ ID No.3的第1-435位为茎环结构双链部分的正向序列，第436-441位为EcoR I的识别序列，第442-610位为内含子序列，第611-616位为HindIII的识别序列，第617-1051位为茎环结构双链部分的反向序列。

(三)转基因小麦的获得

将pUbi-163-TabZIP60载体和pUbi-TabZIP60-RNAi载体用基因枪的方法分别转入野生型小麦KN199中，得到T0代TabZIP60超量表达和减量表达转基因小麦。提取T0代TabZIP60超量表达和减量表达转基因小麦叶片的基因组DNA，以其作为模板，用各自的上游引物和下游引物进行PCR扩增，得到1000bp和800bp左右的片段，即为阳性T0代TabZIP60超量表达和减量表达转基因小麦。

用于鉴定TabZIP60超量表达转基因小麦的引物：

上游引物T-OE pF：5’-AAGCTTATGGATTTTCCGGGAGGGAGCGGG-3’；

下游引物T-OE pR：5’-GAATTCTTACCAAGGGCCCGTCAGCGTCCTC-3’。

用于鉴定TabZIP60减量表达转基因小麦的引物：

上游引物T-RNAi pF：5'-TCGGAGTAGAATACTGTTTCAAACTACC-3'(Ubi上的序列)；

下游引物T-RNAi pR：5'-AATGGTGATCATCCAGCTCTC-3'(内含子上的序列)。

将上述鉴定为阳性的T0代转TabZIP60超量表达和减量表达转基因小麦培养至T2代，T1-T2代按照T0代的鉴定方法进行鉴定，收获种子，后续实验均采用T2代TabZIP60超量表达和减量表达转基因小麦。

实验同时设置向野生型小麦品种KN199中导入pUbi-163载体的空载对照(下文简称空载对照植株)。

二、转基因植株的检测

(一)DNA水平检测

分别提取T2代TabZIP60超量表达小麦、TabZIP60减量表达小麦以及野生型小麦KN199的叶片的DNA，分别以其为模板，以T-OE pF和T-OE pR(具体序列同上)为引物鉴定TabZIP60超量表达系，以T-RNAi pF和T-RNAi pR为引物(具体序列同上)鉴定TabZIP60减量表达系，同时以各自的载体为阳性对照(PC)，以野生型小麦KN199号作为阴性对照(WT)。

PCR反应体系：DNA模板(约20ng/μl)2μl；正向引物(10μM)0.5μl；反向引物(10μM)0.5μl；10×PCR扩增缓冲液2μl；dNTP Mixture 1μl；TaqDNA聚合酶0.2μl；ddH₂O补足至20μl。

PCR反应程序：94℃，3min；94℃30s，60℃30s，72℃40s，40个循环；72℃5min。

TabZIP60超量表达小麦的目的PCR扩增条带为1000bp左右，TabZIP60减量表达小麦的目的PCR扩增条带为800bp左右。野生型小麦KN199没有目的条带，三个T2代TabZIP60超量表达小麦株系(60OE1、60OE2和60OE3)和三个T2代TabZIP60减量表达小麦株系(60R1、60R2和60R3)经初步鉴定为阳性小麦。

(二)RNA水平检测

1、分别提取T2代TabZIP60超量表达小麦、TabZIP60减量表达小麦以及野生型小麦KN199的茎和根的总RNA，并反转录成cDNA。

2、分别以步骤1得到的cDNA为模板，以TabZIP60RT pF和TabZIP60RT pR为引物进行RT-PCR，扩增TabZIP60基因，同时以TaActin pF和TaActin pR为引物进行RT-PCR，扩增内参基因TaActin。

引物如下：

上游引物TabZIP60RT pF：5’-TTCCCTCAGAGCAACATGTTTG-3’；

下游引物TabZIP60RT pR：5’-CGACGGCGAAACCATAGC-3’；

上游引物TaActin pF：5'-ACCTTCAGTTGCCCAGCAAT-3'；

下游引物TaActin pR：5'-CAGAGTCGAGCACAATACCAGTTG-3'。

PCR体系：DNA模板(约20ng/μl)2μl；上游引物(10μM)0.4μl；下游引物(10μM)0.4μl；2×mixture(light Cycler SYBR Green I master,Roche)10μl；ddH₂O补足至20μl。

PCR程序：94℃，5min；94℃20s，60℃20s，72℃15s，45个循环。

定量分析：采用Roche LightCycler 480Ⅱrealtime PCR仪分析其CT值。以TaActin基因为内参，T2代TabZIP60转基因小麦和野生型小麦KN199中的TabZIP60基因用2^-Δct进行相对定量。

60OE1、60OE2和60OE3三个T2代TabZIP60超量表达小麦以及60R1、60R2和60R3三个T2代TabZIP60减量表达小麦中TabZIP60基因的检测结果如图1所示。

图1表明，与野生型小麦KN199相比，60OE1、60OE2和60OE3三个T2代TabZIP60超量表达小麦中TabZIP60基因的表达量显著增加。而60R1、60R2和60R3三个T2代TabZIP60减量表达小麦中TabZIP60基因的表达量显著。

经过步骤(一)的DNA水平检测和步骤(二)的RNA水平检测确定60OE1、60OE2和60OE3三个T2代TabZIP60超量表达小麦以及60R1、60R2和60R3三个T2代TabZIP60减量表达小麦构建成功。

实施例2、TabZIP60转基因小麦的根系表型鉴定

供试小麦：三个T2代TabZIP60超量表达小麦60OE1、60OE2和60OE3，三个T2代TabZIP60减量表达小麦60R1、60R2和60R3，野生型小麦KN199，以及空载对照植株(NC)。

根系表型鉴定在水培条件下进行，具体步骤如下：

将各供试小麦的种子用1％的双氧水过夜处理打破休眠，然后移栽到育苗盘上培养7天，待其长到两叶一心时选择长势一致的小麦幼苗分别移栽到高氮营养液(2mM N)和低氮营养液(0.2mM N)中培养，培养液配方详见如下表1。培养14天后，将地上部与根系分开，分别称取单株地上部和根系干重，用WinRHIZO根系扫描系统分析总侧根长和主根长度。

表1小麦水培营养液配方

试剂	高氮(mM)	低氮(mM)
			Ca(NO₃)₂	1.0	0.1
MgSO₄·7H₂O	1.0	1.0
			CaCl₂	2.5	3.4
H₃BO₃	0.001	0.001
			(NH₄)₆Mo₇O₂₄·4H₂O	0.00005	0.00005
CuSO₄·5H₂O	0.0005	0.0005
			ZnSO₄·7H₂O	0.001	0.001

结果显示：

(1)TabZIP60超量表达系的根系表型等鉴定结果如图2所示。

在高氮条件下，与受体亲本KN199相比，TabZIP60超量表达系(60OE1、60OE2和60OE3)表现出对小麦生长发育的抑制作用，测量数据显示TabZIP60超量表达系的地上部和根系干重均显著低于KN199。对根系形态分析的结果表明，超量表达TabZIP60转基因系的总侧根长显著低于KN199，而主根长则与KN199无显著差异。

在低氮条件下，与受体亲本KN199相比，TabZIP60超量表达系(60OE1、60OE2和60OE3)对小麦生长发育的抑制作用减弱，与KN199的地上部干重、根干重、主根长和侧根长等都无显著性差异。

(2)TabZIP60减量表达系的根系表型等鉴定结果如图3所示。

在高氮条件下，与受体亲本KN199相比，TabZIP60减量表达系(60R1、60R3和60R5)表现出对小麦生长发育的促进作用。TabZIP60减量表达系根系干重、总侧根长显著增加，而其它测定的性状地上部干重、主根长度等无显著性差异。

在低氮条件下，与受体亲本KN199相比，TabZIP60减量表达系对小麦生长发育的促进作用减弱，只有总侧根长显著增加，其它测定性状无显著性差异。

综上所述，TabZIP60与小麦根系的生长发育有关，影响了小麦侧根生长和根系生长发育。

<110> 中国科学院遗传与发育生物学研究所

<120> 蛋白质TabZIP60在调控植物根系发育中的应用

<130> GNCLN181340

<160> 3

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 361

<212> PRT

<213> Triticum aestivum L.

<400> 1

Met Asp Phe Pro Gly Gly Ser Gly Arg Pro Pro Pro Pro Pro Gln Gln

1 5 10 15

His Gln His Gln Leu Leu Pro Pro Met Thr Pro Leu Pro Leu Thr Arg

20 25 30

Gln Gly Ser Ser Val Tyr Ser Leu Thr Phe Asp Glu Phe Gln Ser Ala

35 40 45

Ile Gly Gly Pro Gly Lys Asp Phe Gly Ser Met Asn Met Asp Glu Leu

50 55 60

Leu Arg Asn Ile Trp Thr Ala Glu Glu Ser Gln Ala Ile Gly Ala Gly

65 70 75 80

Pro Asn Ala Ala Ala Ser Ser Ser Ala Ala Ala Gly Pro Asp His Gly

85 90 95

Gly Ile Gln Arg Gln Gly Ser Leu Thr Leu Pro Arg Thr Leu Ser Gln

100 105 110

Lys Thr Val Asp Glu Val Trp Arg Asp Met Met Phe Phe Gly Gly Pro

115 120 125

Ser Ala Ser Ala Ser Ala Ala Ala Glu Ala Pro Pro Pro Ala Gln Arg

130 135 140

Gln Gln Thr Leu Gly Glu Val Thr Leu Glu Glu Phe Leu Val Arg Ala

145 150 155 160

Gly Val Val Arg Glu Asp Met Pro Gly Pro Pro Pro Pro Val Ser Pro

165 170 175

Ala Pro Val Ala Gln Ala Pro Pro Pro Gln Pro Gln Met Leu Phe Pro

180 185 190

Gln Ser Asn Met Phe Ala Pro Met Val Asn Pro Leu Ser Leu Ala Asn

195 200 205

Gly Leu Met Thr Gly Ala Tyr Gly Gln Gly Gly Gly Gly Gly Gly Gly

210 215 220

Ala Pro Ala Met Val Ser Pro Ser Pro Thr Gly Arg Pro Val Met Ser

225 230 235 240

Asn Gly Tyr Gly Lys Met Glu Gly Leu Asn Leu Ser Ser Leu Ser Pro

245 250 255

Pro Pro Met Pro Tyr Val Phe Ser Gly Gly Leu Arg Gly Arg Lys Pro

260 265 270

Pro Ala Met Glu Lys Val Val Glu Arg Arg Gln Arg Arg Met Ile Lys

275 280 285

Asn Arg Glu Ser Ala Ala Arg Ser Arg Gln Arg Lys Gln Ser Tyr Met

290 295 300

Met Glu Leu Glu Thr Glu Val Ala Lys Leu Lys Glu Arg Asn Glu Glu

305 310 315 320

Leu Gln Arg Lys Gln Ala Glu Ile Leu Glu Arg Gln Lys Asn Glu Val

325 330 335

Phe Glu Lys Val Ser Arg Gln Ala Gly Pro Thr Ser Lys Arg Ile Cys

340 345 350

Leu Arg Arg Thr Leu Thr Gly Pro Trp

355 360

<210> 2

<211> 1086

<212> DNA

<213> Triticum aestivum L.

<400> 2

atggattttc cgggagggag cgggaggccg ccgccgccgc cgcagcagca ccagcaccag 60

ctgctgccgc cgatgacgcc gctgccgctc acgcgccagg gctcctcggt ctactcgctc 120

acgttcgacg agttccagag cgcgatcggc gggccgggca aggacttcgg atccatgaac 180

atggacgagc tcctccgcaa catctggacg gccgaggagt cgcaggccat cggcgccggc 240

cccaacgccg ccgcctcgtc ctccgccgcg gcggggccgg accacggcgg catccagcgc 300

cagggctccc tcacgctccc ccggacgctc agccagaaga ccgtcgacga ggtctggcgc 360

gacatgatgt tcttcggagg gccctccgcc tccgcctccg cggccgccga ggctcccccg 420

ccggcccaga ggcagcagac gctcggggag gtcacgctcg aggagttcct cgtgcgcgcc 480

ggcgtcgtgc gcgaggacat gccgggcccg ccgccgcccg tctcgccggc gcccgtggcc 540

caggcgccgc ctccgcagcc gcagatgctg ttccctcaga gcaacatgtt tgctcctatg 600

gtgaatcctc tgtccctggc gaatgggttg atgaccggag catacggaca gggaggaggc 660

ggtggtggtg gtgcgcccgc tatggtttcg ccgtcgccga cggggaggcc ggtcatgtcc 720

aacggctacg gcaagatgga aggcctcaac ttgtcctcgc tgtcgccgcc gccgatgccg 780

tatgttttca gcggcgggct gagggggagg aagccaccgg ccatggagaa ggtggtcgag 840

aggaggcagc ggcggatgat caagaaccgg gagtctgcgg cgaggtcgcg ccagaggaaa 900

cagagttaca tgatggaatt ggagactgag gtggcaaaac ttaaagagcg gaatgaggag 960

ttgcagagaa aacaggcgga gatcctagag aggcaaaaga atgaggtatt cgagaaggtt 1020

agcaggcaag ctggacctac ctcaaagagg atctgcctgc ggaggacgct gacgggccct 1080

tggtaa 1086

<210> 3

<211> 1051

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 3

cctatggtga atcctctgtc cctggcgaat gggttgatga ccggagcata cggacaggga 60

ggaggcggtg gtggtggtgc gcccgctatg gtttcgccgt cgccgacggg gaggccggtc 120

atgtccaacg gctacggcaa gatggaaggc ctcaacttgt cctcgctgtc gccgccgccg 180

atgccgtatg ttttcagcgg cgggctgagg gggaggaagc caccggccat ggagaaggtg 240

gtcgagagga ggcagcggcg gatgatcaag aaccgggagt ctgcggcgag gtcgcgccag 300

aggaaacaga gttacatgat ggaattggag actgaggtgg caaaacttaa agagcggaat 360

gaggagttgc agagaaaaca ggcggagatc ctagagaggc aaaagaatga ggtattcgag 420

aaggttagca ggcaagaatt caagcttacg tcctcccctg cgcggcgcgc aacaagggac 480

gacgacggca cccagataca aaaaaaaatg gtgatcatcc agctctctca agaaaatatc 540

aagttcttca gagttcagat tacacacact ctagcttgaa ctagtaggcg tgcttgatct 600

tgatcttacc aagcttttgc ctgctaacct tctcgaatac ctcattcttt tgcctctcta 660

ggatctccgc ctgttttctc tgcaactcct cattccgctc tttaagtttt gccacctcag 720

tctccaattc catcatgtaa ctctgtttcc tctggcgcga cctcgccgca gactcccggt 780

tcttgatcat ccgccgctgc ctcctctcga ccaccttctc catggccggt ggcttcctcc 840

ccctcagccc gccgctgaaa acatacggca tcggcggcgg cgacagcgag gacaagttga 900

ggccttccat cttgccgtag ccgttggaca tgaccggcct ccccgtcggc gacggcgaaa 960

ccatagcggg cgcaccacca ccaccgcctc ctccctgtcc gtatgctccg gtcatcaacc 1020

cattcgccag ggacagagga ttcaccatag g 1051

Claims

1.TabZIP60蛋白或其相关生物材料在调控植物根系发育中的应用；

所述相关生物材料为能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子或含有所述核酸分子的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系。

2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性降低，促进植物根系发育；所述TabZIP60蛋白或其编码基因在所述植物中的表达量和/或活性提高，抑制植物根系发育。

3.根据权利要求1或2所述的方法，其特征在于：所述植物根系发育体现为如下中至少一种：

(a1)植物根系干重；

(a2)植物总侧根长。

4.一种培育根系干重增加和/或总侧根长增加的植物品种的方法，包括使受体植物中TabZIP60蛋白的表达量和/或活性降低的步骤。

5.一种培育根系干重增加和/或总侧根长增加的转基因植物的方法，包括如下步骤：对受体植物中TabZIP60蛋白的编码基因进行抑制表达，得到转基因植物；所述转基因植物与所述受体植物相比根系干重增加和/或总侧根长增加。

6.一种培育根系干重降低和/或总侧根长变短的植物品种的方法，包括使受体植物中TabZIP60蛋白的表达量和/或活性提高的步骤。

7.一种培育根系干重降低和/或总侧根长变短的转基因植物的方法，包括如下步骤：向受体植物中导入能够表达TabZIP60蛋白的核酸分子，得到转基因植物；所述转基因植物与所述受体植物相比根系干重降低和/或总侧根长变短。

8.根据权利要求5或7所述的方法，其特征在于：权利要求5中，所述“对受体植物中TabZIP60蛋白的编码基因进行抑制表达”是通过向所述受体植物中导入含有如式(I)所示的DNA片段的干扰载体实现的；

SEQ_正向-X-SEQ_反向 (I)

所述SEQ_正向的序列为SEQ ID No.3的第1-435位；

所述SEQ_反向的序列与所述SEQ_正向的序列反向互补；

所述X是所述SEQ_正向与所述SEQ_反向之间的间隔序列，在序列上，所述X与所述SEQ_正向及所述SEQ_反向均不互补；

权利要求7中，所述“向受体植物中导入能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子”是通过向所述受体植物中导入含有所述TabZIP60蛋白的编码基因的重组表达载体实现的。

9.根据权利要求1-8中任一所述的应用或方法，其特征在于：所述TabZIP60蛋白为如下任一所示蛋白质：

(A1)氨基酸序列为SEQ ID No.1的蛋白质；

10.根据权利要求1-9中任一所述的应用或方法，其特征在于：所述“能够表达所述TabZIP60蛋白的核酸分子”为所述TabZIP60蛋白的编码基因；

进一步地，所述TabZIP60蛋白的编码基因是如下任一所述的DNA分子：

(B1)SEQ ID No.2所示的DNA分子；