CN108760935B - 一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法 - Google Patents
一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法,具体步骤为:将预处理后的植物样品加入甲醇/盐酸混合提取液,依次经过超声、震荡和离心过程后,收集上清液,待用;然后在残渣中继续加入丙酮,依次经过超声、涡旋和离心过程后,收集上清液;将上述收集的上清液通过固相萃取柱分离,洗脱液为甲醇,收集的洗脱液经氮气吹干后用甲醇溶解;利用高效液相色谱测定甲醇溶解液中的磺胺类抗生素含量。本发明克服了现有植物中磺胺类抗生素残留的研究存在回收率低、试验过程繁琐、检出限较低的问题,提供了一种快捷、精确、高效的植物中磺胺类抗生素提取与检测的方法。
Description
技术领域
本发明属于环境技术领域,具体涉及一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法。
背景技术
磺胺类药物是指具有对氨基苯磺酰胺结构的一类药物的总称,是一类用于预防和治疗细菌感染性疾病的化学治疗药物。长期以来,磺胺类抗生素被大量用于人和动物的防病治病,同时添加于动物饲料中以提高饲料利用率和促进动物生长。大量使用的抗生素大部分以药物原形随粪尿排出,不断进入生态环境,成为新型重要环境污染物,对生态环境和人体健康构成严重威胁。当含有这些抗生素的畜禽粪便施用到农田后,就会造成抗生素在土壤中的残留。此外,抗生素在污水处理厂的去除率并不高,导致大量抗生素进入地表水,造成河流抗生素污染,并可能通过灌溉水进入农业土壤。抗生素水溶性较高,在土壤中的抗生素很容易被植物吸收累计,那么长期通过食物链摄入低浓度抗生素会对人体健康构成严重威胁。目前国内外对于磺胺类抗生素残留的研究主要集中在肉、蛋、奶等动物源食品方面,对于植物中磺胺类抗生素的污染调查研究鲜有报道,仅有的几种方法主要参照动物源食品中磺胺类抗生素的提取与测定,容易造成磺胺类抗生素回收率低;另外这些方法普遍存在试验过程繁琐、检出限较低的问题。
发明内容
本发明为了克服现有植物中磺胺类抗生素残留的研究存在回收率低、试验过程繁琐、检出限较低的问题,提供了一种快捷、精确、高效的植物中磺胺类抗生素提取与检测的方法。
本发明通过以下技术方案实现:
一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法,包括如下步骤:
步骤一、两次多步提取:称取液氮研磨处理过的植物样品于玻璃离心管中,加入甲醇/盐酸混合提取液,超声、涡旋、离心、后收集上清液,固相残渣中再加入丙酮提取液,超声、涡旋、离心后收集上清液,合并两次的上清液待用;
步骤二、固相萃取:将步骤一所得的上清液通过事先用甲醇和超纯水活化的Waters Oasis HLB固相萃取柱,再用甲醇洗脱固相萃取柱,收集全部洗脱液,最后将洗脱液在水浴下用氮气吹干,再加入甲醇溶解,溶液过滤膜后收集待测;
步骤三、色谱测定:通过高效液相色谱仪对步骤二过滤后的样品进行含量分析;
其中,甲醇/盐酸混合提取液中甲醇与盐酸的体积比为80:20-95:5。
本发明进一步改进方案为:
所述磺胺类抗生素为磺胺嘧啶,磺胺甲基嘧啶,磺胺-5-甲氧嘧啶,磺胺甲恶唑和磺胺间二甲氧嘧啶。
所述步骤一、称取0.5-1.0g液氮研磨处理过的植物样品于30mL玻璃离心管中,加入10mL甲醇/盐酸混合提取液,超声10-30min,涡旋2-5min,离心(4000r/min)10-30min后收集上清液,然后固相残渣中再加入10mL丙酮提取液,超声10-30min,涡旋2-5min,离心(4000r/min)10-30min后收集上清液,合并两次的上清液待用。
所述步骤二、将步骤一所得的上清液通过事先用5mL甲醇和5mL超纯水活化的Waters Oasis HLB(6mL,500mg)固相萃取柱,再用5mL甲醇洗脱固相萃取柱,洗脱液速率2mL/min,收集全部洗脱液,最后将洗脱液在25-40度水浴下用氮气吹干,然后加入2mL甲醇溶解,溶液过0.45或0.22μm滤膜后收集于样品瓶中待测。
所述步骤三、所述高效液相色谱条件为:采用Waters2695高效液相色谱仪,波长为260-270nm;色谱柱选用Phenomenex Gemini C18色谱柱(250mm×4.6mm,5.0μm);流动相为甲醇和0.5%乙酸,柱温35℃,流速1mL/min,进样量20μL,梯度洗脱条件:0min,甲醇:0.5%乙酸体积比为10:90,15min,甲醇:0.5%乙酸体积比为30:70。
本发明的有益效果:
1、植物样品经液氮研磨不但可以达到破胞效果,将细胞磨成粉,使里边的磺胺类抗生素释放出来,而且可以低温保护磺胺类抗生素不易分解;
2、本发明所使用的提取液为盐酸/甲醇混合液,不但成分简单、制备简便、成本低廉,而且对磺胺类抗生素的提取效率高;
3、本发明的提取步骤仅涉及超声、涡旋与离心操作,这些操作步骤简单快速;
4、本发明所选用的Waters HLB固相萃取柱(6mL,500mg)对磺胺类抗生素的回收效率高,质量稳定;
5、本发明所采用的液相色谱梯度洗脱程序可在15min内即可实现5种磺胺类抗生素的有效分离,保留时间稳定。
附图说明
图1为5种磺胺类抗生素的色谱分离图;
其中,1-5分别为磺胺嘧啶,磺胺甲基嘧啶,磺胺-5-甲氧嘧啶,磺胺甲恶唑和磺胺间二甲氧嘧啶。
具体实施方式:
实施例1:本方法的线性范围、检出限、回收率和精准度
将5种磺胺类抗生素(磺胺嘧啶,磺胺甲基嘧啶,磺胺-5-甲氧嘧啶,磺胺甲恶唑和磺胺间二甲氧嘧啶)的标准品母液用高纯水稀释,配制成浓度为0.05、0.1、0.2、0.4、0.8、1.0 和5.0 mg/L的混合标准系列溶液,采用Waters2695高效液相色谱仪测定混合标准系列溶液,色谱条件为:检测器为紫外检测器,波长为265nm;Symmetry C18色谱柱(250mm×4.6mm,5.0μm);流动相为甲醇(A)和0.5%乙酸(B),柱温35℃,流速1mL/min,进样量20μL,梯度洗脱条件:0min,甲醇:0.5%乙酸体积比为10:90,15min,甲醇:0.5%乙酸体积比为30:70。得到5种磺胺类抗生素的色谱分离图(如图1),再计算出浓度(x)与峰面积(y)的线性关系和相关系数;以3倍信噪比求得5 种磺胺类抗生素的仪器检出限,结果详见表1。
向液氮研磨后的小白菜样品中添加50μg/kg的5种磺胺类抗生素的标准溶液,4次重复。样品加标处理后室温放置12小时,然后将5个样品按照如下过程进行处理:
步骤一、称取1.0g样品于30mL玻璃离心管中,加入10mL甲醇/盐酸混合提取液(体积比95:5),超声30min,涡旋 3min,离心(4000r/min)10min后收集上清液;固相残渣中再加入10mL丙酮,超声30min,涡旋 3min,离心(4000r/min)10min后收集上清液;
步骤二、合并上清液后,将其通过事先用5mL甲醇和5mL超纯水活化的WatersOasis HLB(6mL,500mg)固相萃取柱,萃取富集;再用5mL甲醇洗脱固相萃取柱,洗脱液速率2mL/min,收集全部洗脱液;洗脱液在37℃水浴下用氮气吹干,然后加入2mL甲醇溶解,溶液过0.22μm滤膜后收集于样品瓶中待测;
步骤三、采用Waters2695高效液相色谱仪测定样品瓶溶液中的磺胺类抗生素含量,其具体条件参数为:检测器为紫外检测器,波长为265nm;Symmetry C18色谱柱(250mm×4.6mm,5.0μm);流动相为甲醇(A)和0.5%乙酸(B),柱温35℃,流速1mL/min,进样量20μL,梯度洗脱条件:0min,甲醇:0.5%乙酸体积比为10:90,15min,甲醇:0.5%乙酸体积比为30:70。
根据检测结果计算小白菜中磺胺类抗生素回收率和精准度,结果见表1。
表1 5种磺胺类抗生素的线性关系、相关系数和检出限
从表1的结果可以看出,5种磺胺类药物在0.05~5.0mg/L范围内线性关系良好,检出限均小于2.0 μg/L。小白菜样品在50.00μg/kg抗生素加标水平下,回收率在90.2%以上,相对标准偏差在3.5%以内。此方法操作简便,灵敏度、准确度、精密度均满足残留分析的要求。
实施例2:对比本发明与其它方法测定的回收率、精确度和高效性
本方法的具体过程如下:
步骤一、采集人为抗生素污染土壤(添加上述5种磺胺类抗生素,总浓度为5mg/kg)上种植的萝卜,然后其进行液氮研磨处理,获得粉末状样品;
称取1.0g上述样品及加50μg/kg抗生素的样品于30mL玻璃离心管中,加入10mL甲醇/盐酸混合提取液(体积比95:5),超声30min,涡旋 3min,离心(4000r/min)10min后收集上清液;固相残渣中再加入10mL丙酮,超声30min,涡旋 3min,离心(4000r/min)10min后收集上清液;
步骤二、合并上清液后,将其通过事先用5mL甲醇和5mL超纯水活化的WatersOasis HLB(6mL,500mg)固相萃取柱,萃取富集;再用5mL甲醇洗脱固相萃取柱,洗脱液速率2mL/min,收集全部洗脱液;洗脱液在37℃水浴下用氮气吹干,然后加入2mL甲醇溶解,溶液过0.22μm滤膜后收集于样品瓶中待测;
步骤三、采用Waters2695高效液相色谱仪测定样品瓶溶液中的磺胺类抗生素含量,其具体条件参数为:检测器为紫外检测器,波长为265nm;Symmetry C18色谱柱(250mm×4.6mm,5.0μm);流动相为甲醇(A)和0.5%乙酸(B),柱温35℃,流速1mL/min,进样量20μL,梯度洗脱条件:0min,甲醇:0.5%乙酸体积比为10:90,15min,甲醇:0.5%乙酸体积比为30:70。
根据检测结果计算萝卜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率,结果见表2。
方法1:(文献来源:包艳萍, 李彦文, 莫测辉, 等. 固相萃取-高效液相色谱法分析蔬菜中6种磺胺类抗生素[J]. 环境化学, 2010, 29(3):513-518.)测定具体过程如下:
称取1.00g冻干磨碎的蔬菜样品及加标样品置于50mL离心管中,加5mL乙腈(添加2g无水硫酸钠、0.1g乙酸钠、0.1g Na2EDTA),振荡20min,超声提取25min,10℃下离心(8000r·min-1) 15min,收集上清液,残渣用上述方法反复提取2次,合并上清液;用10mL正己烷液-液萃取上清液2次;收集下层液体于鸡心瓶中,于旋转蒸发仪上减压蒸发至1mL左右;先用20mL Na2EDTA缓冲液稀释浓缩液,再过C18柱(6mL甲醇和蒸馏水预先活化),然后将上清液过柱,控制流速在70-120滴· min-1,最后用6mL蒸馏水冲洗,3mL甲醇洗脱, 控制流速在40滴·min-1;将收集的洗脱液在40℃水浴下用氮气吹至近干,用1mL甲醇-水(1:1,V/V)复溶,溶液过0.22μm膜,收集于样品瓶中待测。
液相色谱条件:色谱柱:Symmetry C18 (4.6mm×250mm,5μm);流动相:磷酸水溶液(0.01mol·L-1)和乙腈; 流速:1.0mL·min-1;进样体积:20μL;柱温:25℃;检测波长:270nm。
根据检测结果计算蔬菜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率,结果见表2。
方法2:(文献来源:刘雪, 余晟, 韦彩云, 等. 固相萃取-高效液相法测定蔬菜中6种磺胺类药物[J]. 食品科学, 2013, 34(2):204-208.)具体过程如下:
蔬菜清洗干净后,吹干,匀浆;称取5.0匀浆后的蔬菜样品及加标样品于50mL离心管中,加25mL甲醇,15g无水硫酸钠,振荡10min后超声15min,在5000r/min离心15min,将上清液过滤;离心管中的残渣再用甲醇重复提取2次,合并3次甲醇提取液;用旋转蒸发仪蒸发至1mL左右,用水稀释至500mL,pH值调节到7.0;然后将300mL的样品溶液通过Waters C18萃取柱进行固相萃取,用100mL水冲洗萃取柱,真空抽干10min除水;随后用3mL 0.3mol/L醋酸铵和甲醇混合溶液(3:7,V/V)进行洗脱,收集洗脱液。
液相色谱条件:色谱柱:Symmetry C18柱(4.6mm×250mm,5μm);流动相:磷酸(0.01mol/L,pH2.5):乙腈=80:20(V/V);柱温:室温;流速:1.0mL/min;进样量:20μL;检测器:紫外检测器;检测波长:270nm。
根据检测结果计算蔬菜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率,结果见表2。
表2 萝卜或蔬菜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率
注:括号中为回收率。
本发明及另外两种方法提取和测定两个植物样品中5种磺胺类抗生素过程总耗时分别约4、8、6个小时;由表2可见,本发明测定结果的标准差较其它两种方法小,回收率较其它两种方法高。
实施例3:不同提取液对磺胺嘧啶残留状况及回收率的影响
步骤一、采集人为抗生素污染土壤(添加上述5种磺胺类抗生素,总浓度为5mg/kg)上种植的萝卜,然后其进行液氮研磨处理,获得粉末状样品;称取1.0g上述样品及加50μg/kg抗生素的样品于30mL玻璃离心管中,加入10mL甲醇/盐酸混合提取液(体积比95:5),超声30min,涡旋 3min,离心(4000r/min)10min后收集上清液;固相残渣中再加入10mL丙酮,超声30min,涡旋 3min,离心(4000r/min)10min后收集上清液;
步骤二、合并上清液后,将其通过事先用5mL甲醇和5mL超纯水活化的WatersOasis HLB(6mL,500mg)固相萃取柱,萃取富集;再用5mL甲醇洗脱固相萃取柱,洗脱液速率2mL/min,收集全部洗脱液;洗脱液在37度水浴下用氮气吹至近干,然后加入2mL甲醇溶解,溶液过0.22μm滤膜后收集于样品瓶中待测;
步骤三、采用Waters2695高效液相色谱仪测定样品瓶溶液中的磺胺类抗生素含量,其具体条件参数为:检测器为紫外检测器,波长为265nm;Symmetry C18色谱柱(250mm×4.6mm,5.0μm);流动相为甲醇(A)和0.5%乙酸(B),柱温35℃,流速1mL/min,进样量20μL,梯度洗脱条件:0min,甲醇:0.5%乙酸体积比为10:90,15min,甲醇:0.5%乙酸体积比为30:70。
根据检测结果计算萝卜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率,结果见表3。
将本发明步骤一中的甲醇/盐酸混合提取液替换为乙腈,其他方法不变,对抗生素污染土壤(添加上述5种磺胺类抗生素,总浓度为5mg/kg)上种植的萝卜进行提取和检测,根据检测结果计算萝卜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率,结果见表3。
再将本发明步骤一中的甲醇/盐酸混合提取液替换为甲醇,其他方法不变,对抗生素污染土壤(添加上述5种磺胺类抗生素,总浓度为5mg/kg)上种植的萝卜进行提取和检测,根据检测结果计算萝卜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率,结果见表3。
表3 不同提取液对萝卜中磺胺类抗生素残留状况(μg/kg)及回收率的影响
由表3可知,与其它方法所用提取液相比,本发明所用提取液对植物中磺胺类抗生素的提取效率高。
综上所述,以上示例表明本方法对植物中磺胺类抗生素的提取与测定具有高效、快速、简便的特点。
Claims (3)
1.一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法,其特征在于包括如下步骤:
步骤一、两次多步提取:称取液氮研磨处理过的植物样品于玻璃离心管中,加入甲醇/盐酸混合提取液,超声、涡旋、离心后收集上清液,固相残渣中再加入丙酮提取液,超声、涡旋、离心后收集上清液,合并两次的上清液待用;
步骤二、固相萃取:将步骤一所得的上清液通过事先用甲醇和超纯水活化的WatersOasis HLB固相萃取柱,再用甲醇洗脱固相萃取柱,收集全部洗脱液,最后将洗脱液在水浴下用氮气吹干,再加入甲醇溶解,溶液过滤膜后收集待测;
步骤三、色谱测定:通过高效液相色谱仪对步骤二过滤后的样品进行含量分析;
其中,甲醇/盐酸混合提取液中甲醇与盐酸的体积比为80:20-95:5;
所述磺胺类抗生素为磺胺嘧啶,磺胺甲基嘧啶,磺胺-5-甲氧嘧啶,磺胺甲恶唑和磺胺间二甲氧嘧啶;
所述高效液相色谱条件为:采用Waters2695高效液相色谱仪,波长为260-270nm;色谱柱选用250mm×4.6mm,5.0μm的Phenomenex Gemini C18色谱柱;流动相为甲醇和0.5%乙酸,柱温35℃,流速1mL/min,进样量20μL,梯度洗脱条件:0min,甲醇:0.5%乙酸体积比为10:90,15min,甲醇:0.5%乙酸体积比为30:70。
2.根据权利要求1所述的一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法,其特征在于:所述步骤一、称取0.5-1.0g液氮研磨处理过的植物样品于30mL玻璃离心管中,加入10mL甲醇/盐酸混合提取液,超声10-30min,涡旋2-5min,以4000r/min的转速离心10-30min后收集上清液,然后固相残渣中再加入10mL丙酮提取液,超声10-30min,涡旋2-5min,以4000r/min的转速离心10-30min后收集上清液,合并两次的上清液待用。
3.根据权利要求1所述的一种植物中磺胺类抗生素提取与测定的方法,其特征在于:所述步骤二、将步骤一所得的上清液通过事先用5mL甲醇和5mL超纯水活化的6mL/500mg的Waters Oasis HLB固相萃取柱,再用5mL甲醇洗脱固相萃取柱,洗脱液速率2mL/min,收集全部洗脱液,最后将洗脱液在25-40℃水浴下用氮气吹干,然后加入2mL甲醇溶解,溶液过0.45μm或0.22μm滤膜后收集于样品瓶中待测。
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高效液相色谱法同时测定蔬菜中有机酸与磺胺类抗生素;徐慧敏 等;《分析试验室》;20161031;第35卷(第10期);1135-1139 * |
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CN108760935A (zh) | 2018-11-06 |
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