CN108753779A - 牛lncRNA-133a及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应用和验证方法 - Google Patents

牛lncRNA-133a及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应用和验证方法 Download PDF

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    • C12Q2600/158Expression markers

Abstract

本发明涉及一种牛lncRNA‑133a序列及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应用和验证方法。本发明提供了一种牛肌肉发育相关的长链非编码RNAlncRNA‑133a的序列,本发明首次发现了lncRNA‑133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的功能,能够将lncRNA‑133a应用在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中。

Description

牛lncRNA-133a及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应 用和验证方法
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域,尤其是一种牛lncRNA-133a序列及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应用和验证方法。
背景技术
骨骼肌作为动物躯体最重要的组织之一,占重比高达40%。肌细胞作为骨骼肌的基本形成单位,它的分化发育直接影响到骨骼肌的发育形成。肌细胞的分化和生长发育过程是内在遗传、表观遗传和外在各种信号互作的结果,受到机体肌肉发育调节因子和调控通路的多层次精细调节。LncRNAs作为一种长链非编码RNA可以参与细胞的生长发育等许多生命过程。随着人们对LncRNAs研究的不断深入,研究者已经发现许多LncRNAs可以参与肌细胞的增殖和分化过程。尽管LncRNAs参与肌肉发育的研究已有很多,但是多集中于模式动物小鼠的研究上。近年来,随着生物检测技术及生物信息学分析技术的发展,通过对牛骨骼肌肌肉组织进行高通量测序分析已经获得了大量的与肌肉发育潜在相关的LncRNAs。针对这些获得的肌肉发育潜在相关的LncRNAs,研究者也开展了一些功能研究,并且证实了一些LncRNA,如:LncRNA HZ-5、LncRNA H19、lncMD等,确实参与了对牛骨骼肌肌细胞分化发育的调节。但相较小鼠C2C12成肌细胞生长发育相关LncRNA的报道,参与调节牛骨骼肌细胞生长发育的LncRNAs的相关报道仍然较少,测序获得的与牛肌肉发育相关的海量LncRNAs,还需要研究者不断挖掘和证实它们的功能。
骨骼肌卫星细胞的成肌分化和增殖可作为体外模拟骨骼肌生长发育的模型,LncRNAs作为一类参与肌肉发育的调控因子,可以利用骨骼肌卫星细胞的模型,通过过表达或干扰LncRNAs后,研究其对肌肉发育的调控作用。lncRNA-133a是新发现的一个与肌肉发育相关的LncRNA,但其在牛骨骼肌卫星细胞成肌分化和增殖过程中的作用尚不清楚。
肉牛作为一种重要的家畜动物,其产肉量和肉品质一直是人们关注的热点。通过研究lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞成肌分化和增殖中的作用,可以积累更多的关于肉牛骨骼肌生长发育机理的资料,为提高肉牛产肉量和肉品质的研究提供科学依据。
通过检索,尚未发现与本发明专利申请相关的专利公开文献。
发明内容
本发明目的在于克服现有技术的不足之处,提供一种牛lncRNA-133a序列及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应用和验证方法,本发明首次发现了lncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞成肌分化和促进牛骨骼肌卫星细胞增殖的功能。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:
一种牛lncRNA-133a,所述牛lncRNA-133a的核苷酸序列为SEQ1。
而且,所述牛lncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的功能。
如上所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用。
而且,所述应用为在促进牛骨骼肌卫星细胞成肌分化中的应用。
而且,所述应用为在促进牛骨骼肌卫星细胞增殖中的应用。
如上所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用的检测方法,步骤如下:
⑴在lncRNA-133a骨骼肌卫星细胞中转染lncRNA-133a真核细胞表达质粒,实现细胞内lncRNA-133a的过表达,设置对照组,诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天;收集细胞,检测对照组及实验组的骨骼肌卫星细胞分化标志基因MHC、MyoD和MyoG表达水平;
⑵在lncRNA-133a骨骼肌卫星细胞中转染lncRNA-133a真核细胞表达质粒,实现细胞内lncRNA-133a的过表达,设置对照组,转染后24h,即细胞增殖期,进行EdU细胞增殖检测牛骨骼肌卫星细胞增殖数;
当实验组过表达lncRNA-133a后,增殖细胞数显著高于对照组、实验组的MHC、MyoD和MyoG的表达水平显著高于对照组相时,则证明牛lncRNA-133a序列能够促进牛骨骼肌卫星细胞的增殖和分化。
而且,所述真核细胞表达质粒为pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a,所述对照组为以空质粒pCDNA3.1-EGFP转染牛骨骼肌卫星细胞;
利用qRT-PCR及Westernblotting检测对照组及实验组的牛骨骼肌卫星细胞分化标志基因表达水平。
而且,具体步骤如下:
⑴细胞培养
常规复苏冻存的原代牛骨骼肌卫星细胞,加入增殖培养基中并置于37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中培养,该增殖培养基为含体积分数20%的胎牛血清、100IU·mL-1青霉素和链霉素的DMEM,待增殖细胞融合度达80-90%时更换分化培养基,该分化培养基为含体积分数2%马血清的DMEM;
⑵牛骨骼肌卫星细胞转染
增殖期细胞融合度达50%时,利用脂质体转染试剂转染pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a,为实验组,以空质粒pCDNA3.1-EGFP转染细胞作为对照组,转染后24h时,即细胞增殖期,增殖培养基更换为分化培养基,诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天;
⑶牛骨骼肌卫星细胞增殖、分化能力的检测
EdU细胞增殖检测:细胞在转染后24小时,即增殖期细胞,检测实验组和对照组细胞的增殖情况;
⑷牛骨骼肌卫星细胞中分化标记因子表达水平的检测
①mRNA水平检测:在诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天时,即DM2期,收集实验组和对照组细胞,Trizol裂解并提取总RNA,取4μg总RNA反转录为cDNA,采用qRT-PCR法检测各分化标记因子基因MHC、MYOD、MYOG的表达;
qRT-PCR反应体系为20μL:0.5μL上游引物F、0.5μL下游引物R、2.0μL 5×稀释cDNA、10μL 2×All-in-OneTM qPCR Mix、7.0μLRNase free water;反应条件:95℃10min;95℃10s、60℃20s、72℃15s,重复40个循环;
②蛋白水平检测:细胞在DM2期时被蛋白裂解液裂解,收集蛋白,通过Westernblotting检测分化标志基因MHC的蛋白表达。
本发明取得的优点和积极效果为:
1、本发明提供了一种牛肌肉发育相关的长链非编码RNA lncRNA-133a的序列,本发明首次发现了lncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的功能,能够将lncRNA-133a应用在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中。
2.本发明提供了lncRNA-133a在促进牛骨骼肌卫星细胞成肌分化和促进牛骨骼肌卫星细胞增殖中的应用,将pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a真核表达载体转染至牛骨骼肌卫星细胞内使细胞内lncRNA-133a的过量表达,过表达lncRNA-133a的牛骨骼肌卫星细胞与过表达对照核苷酸序列的细胞相比,显著促进了牛骨骼肌卫星细胞的增殖和成肌分化。
附图说明
图1为本发明中将pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a真核表达载体转染牛骨骼肌卫星细胞24小时后与对照组比较细胞增殖情况的图片;
图2为本发明中将pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a真核表达载体转染牛骨骼肌卫星细胞后,在诱导分化2天时(DM2)与对照组间分化标记因子MHC、MYOD、MYOG在mRNA水平的表达情况比较图;
图3为本发明中将pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a真核表达载体转染牛骨骼肌卫星细胞后,在诱导分化2天时(DM2)与对照组间分化标记因子MHC在蛋白水平的表达情况比较图。
具体实施方式
下面详细叙述本发明的实施例,需要说明的是,本实施例是叙述性的,不是限定性的,不能以此限定本发明的保护范围。
本发明中所使用的原料,如无特殊说明,均为常规的市售产品;本发明中所使用的方法,如无特殊说明,均为本领域的常规方法。
一种牛lncRNA-133a,所述牛lncRNA-133a的核苷酸序列为SEQ1。
进一步地,所述牛lncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的功能。
如上所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用。
进一步地,所述应用为在促进牛骨骼肌卫星细胞成肌分化中的应用。
进一步地,所述应用为在促进牛骨骼肌卫星细胞增殖中的应用。
如上所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用的检测方法,步骤如下:
⑴在lncRNA-133a骨骼肌卫星细胞中转染lncRNA-133a真核细胞表达质粒,实现细胞内lncRNA-133a的过表达,设置对照组,诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天;收集细胞,检测对照组及实验组的骨骼肌卫星细胞分化标志基因MHC、MyoD和MyoG表达水平;
⑵在lncRNA-133a骨骼肌卫星细胞中转染lncRNA-133a真核细胞表达质粒,实现细胞内lncRNA-133a的过表达,设置对照组,转染后24h,即细胞增殖期,进行EdU细胞增殖检测牛骨骼肌卫星细胞增殖数;
当实验组过表达lncRNA-133a后,增殖细胞数显著高于对照组、实验组的MHC、MyoD和MyoG的表达水平显著高于对照组相时,则证明牛lncRNA-133a序列能够促进牛骨骼肌卫星细胞的增殖和分化。
较优地,所述真核细胞表达质粒为pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a,所述对照组为以空质粒pCDNA3.1-EGFP转染牛骨骼肌卫星细胞;
利用qRT-PCR及Westernblotting检测对照组及实验组的牛骨骼肌卫星细胞分化标志基因表达水平。
更进一步地,如上所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用的检测方法,具体步骤可以如下:
1.细胞培养
常规复苏冻存(例如,可以为实验室前期冻存的)的原代牛骨骼肌卫星细胞,使用增殖培养基:含体积分数20%的胎牛血清、100IU·mL-1青霉素和链霉素的DMEM,置于37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中培养。待增殖细胞融合度达80-90%时更换分化培养基:含体积分数2%马血清的DMEM。
2.牛骨骼肌卫星细胞转染
增殖期细胞融合度达50%时,利用转染试剂Lipfectamine3000按生产商家说明书转染pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a(pcDE-LNC组),以空质粒pCDNA3.1-EGFP(pcDE-NC组)转染细胞作为对照,转染后24h时,即细胞增殖期(G期),增殖培养基更换为分化培养基,诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天(DM2期)。
3.牛骨骼肌卫星细胞增殖、分化能力的检测
EdU细胞增殖检测:细胞在转染后24小时,即增殖期细胞(G期),按Cell-Light EdUApollo 567 In Vitro Imaging Kit试剂盒说明书检测pcDE-LNC组和pcDE-NC组细胞的增殖情况。如图1所示,过表达LncRNA-133a后,pcDE-LNC过表达组增殖细胞数显著高于pcDE-NC对照组,表明LncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞增殖的作用。
4.牛骨骼肌卫星细胞中分化标记因子表达水平的检测
(1)mRNA水平检测:在诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天时(DM2期),收集pcDE-LNC组和pcDE-NC组细胞,Trizol裂解并提取总RNA,取4μg总RNA反转录为cDNA,采用qRT-PCR法检测各分化标记因子基因(MHC、MYOD、MYOG)的表达。qRT-PCR反应体系为20μL:0.5μL上游引物F、0.5μL下游引物R、2.0μL 5×稀释cDNA、10μL 2×All-in-OneTM qPCRMix、7.0μL RNase free water。反应条件:95℃10min;95℃10s、60℃20s、72℃15s,重复40个循环。qRT-PCR反应引物信息如表1所示。如图2所示,过表达LncRNA-133a后,MHC、MyoD及MyoG的mRNA水平表达均呈显著上调趋势,表明LncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞分化的作用。
表1 qRT-PCR引物信息
(2)蛋白水平检测:细胞在DM2期时被蛋白裂解液裂解,收集蛋白,通过Westernblotting检测分化标志基因MHC(厂家:DSHB;货号:AB-2147781)的蛋白表达。如图3所示,过表达LncRNA-133a后,MHC在蛋白表达水平也呈显著上调,充分证明LncRNA-133a确实具有促进牛骨骼肌卫星细胞分化的作用。
序列SEQ1:
CGACTGGAGCACGAGGACACTGACCGGGATTCAGGGAGGTGGGGAGGGGTGAGACAAAGTCGCATCCGACGACCGAGACCCACGAAGGCACGCTGAAGGGTCGGGCGCGCCCTCCCCGGCCACCCGCGGAAGCAGGGTCCGGTCCATCCACGTCTCCGGACCCATCGGGACTTTGAAAAAGAAACAGCATGTGTGCCAGGAGACGCCTCGGGCGACCGGACCCCACGGGTTGGGGTGGGGCGGCCGCACACGCGCCCGCCTCTCCCCGTCAACCCTCACGACTCCGGCGGGCGGGTCCCCACCTCCGGAGTGGGGCCGAGGGCGAAGCAAACGCTCCTGAGGACGGCCCAGGAGGAGTCCGGACCGCCGAGCCCGAGTCCAGGCGCTCCGGGCAGGGAAGACCCTCTCCCTGCCCACCGCGGCGGCCCGGCCCAGGGAGGGTCCGGCCGGTCCTTCTCCGCGGCCACAGGGGCACGGGGAGATGCTGGTCGACCCGGTCCGGCCACCCCAGAACCTAACCCCGGAGCGCCGCGACGATCACCCTCCCCAGAAACCTAAAGAACCAATCTCCGACGACAGCAGGACGTCCCTAGGCCTCGGCGCCACCGGGACTGTCGCCGCCAGCATAGCCGGTGTCTGAGAGCTCTGCCTCGGGCCCGGCGGCTGAGTCACAACCCTCCTGAAGGGCTCGCCGAAGCTCCGGAGGGGGGGGGACAATATACAAGCGGCCGCCAGGTGGCTCCCGACAACCGGCTCGAACGTCCCGAGGACGGGTCGCTGTCGCCGGCCGCCGGGGACGCCACAGCGCCGGCCGCCCAAACGCCCGAGCTCGGCCCGGAGCCTCCGCCGCCGAGCGACGCGACGCGACGCGACCCCGGCCGCAGAGGAAGGGAGAGGAGCCGGGAGATCTCTCCCCTGGAGGCTGCCACGAAAGAGCCGCGATCCCCGCCCCCCCCCCGCCCCCCCCCCCCGCCACGCGATTCCAGGGTGGTGGGGGGACAATTCCACGGAGACGCGGGCGGGCGGGCGGGCGGCGGGGGCTCGGGGCGGGGTGGGCGGAGAGAGGGGGCACCAGTGACATCCCAGGAACCCCCGGCCCCCGGCCCCCCGAAAGAGGGGGGCGGGAGGGAGGGAGGGAGAAAAGGAGGGAGGGAGGGAGGGAGGGACCGGCAAAGCGAAACCAGGCAAGCGCTGCTGGGAGAACAAAGCAGGACTTTCGAAAGCAGACACGGACACAGACACACAAGCCTAGGAGTAAGAAAGGAAAAGAAGGAGACACTCGGACCCCCAAAAAAAAAAAAAAA。
尽管为说明目的公开了本发明的实施例,但是本领域的技术人员可以理解:在不脱离本发明及所附权利要求的精神和范围内,各种替换、变化和修改都是可能的,因此,本发明的范围不局限于实施例和附图所公开的内容。
序列表
<110> 天津农学院
<120> 牛lncRNA-133a及在牛骨骼肌卫星细胞增殖分化调控中的应用和验证方法
<130> 2018-6-7
<160> 9
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1304
<212> DNA
<213> 牛lncRNA-133a的核苷酸序列SEQ1(Unknown)
<400> 1
cgactggagc acgaggacac tgaccgggat tcagggaggt ggggaggggt gagacaaagt 60
cgcatccgac gaccgagacc cacgaaggca cgctgaaggg tcgggcgcgc cctccccggc 120
cacccgcgga agcagggtcc ggtccatcca cgtctccgga cccatcggga ctttgaaaaa 180
gaaacagcat gtgtgccagg agacgcctcg ggcgaccgga ccccacgggt tggggtgggg 240
cggccgcaca cgcgcccgcc tctccccgtc aaccctcacg actccggcgg gcgggtcccc 300
acctccggag tggggccgag ggcgaagcaa acgctcctga ggacggccca ggaggagtcc 360
ggaccgccga gcccgagtcc aggcgctccg ggcagggaag accctctccc tgcccaccgc 420
ggcggcccgg cccagggagg gtccggccgg tccttctccg cggccacagg ggcacgggga 480
gatgctggtc gacccggtcc ggccacccca gaacctaacc ccggagcgcc gcgacgatca 540
ccctccccag aaacctaaag aaccaatctc cgacgacagc aggacgtccc taggcctcgg 600
cgccaccggg actgtcgccg ccagcatagc cggtgtctga gagctctgcc tcgggcccgg 660
cggctgagtc acaaccctcc tgaagggctc gccgaagctc cggagggggg gggacaatat 720
acaagcggcc gccaggtggc tcccgacaac cggctcgaac gtcccgagga cgggtcgctg 780
tcgccggccg ccggggacgc cacagcgccg gccgcccaaa cgcccgagct cggcccggag 840
cctccgccgc cgagcgacgc gacgcgacgc gaccccggcc gcagaggaag ggagaggagc 900
cgggagatct ctcccctgga ggctgccacg aaagagccgc gatccccgcc ccccccccgc 960
cccccccccc cgccacgcga ttccagggtg gtggggggac aattccacgg agacgcgggc 1020
gggcgggcgg gcggcggggg ctcggggcgg ggtgggcgga gagagggggc accagtgaca 1080
tcccaggaac ccccggcccc cggccccccg aaagaggggg gcgggaggga gggagggaga 1140
aaaggaggga gggagggagg gagggaccgg caaagcgaaa ccaggcaagc gctgctggga 1200
gaacaaagca ggactttcga aagcagacac ggacacagac acacaagcct aggagtaaga 1260
aaggaaaaga aggagacact cggaccccca aaaaaaaaaa aaaa 1304
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> MHC F(Unknown)
<400> 2
gtggaatccg gaggcagaa 19
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> MHC R(Unknown)
<400> 3
ttttcgaagg tagggagcgg 20
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> MyoG F(Unknown)
<400> 4
ggctgacaaa tgccagacta tcc 23
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> MyoG R(Unknown)
<400> 5
tggtcccttg ctttatctcc ct 22
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> MyoD F(Unknown)
<400> 6
gacggctctc tctgcaactt 20
<210> 7
<211> 16
<212> DNA
<213> MyoD R(Unknown)
<400> 7
cggcgcggat ccaggt 16
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> GAPDH F(Unknown)
<400> 8
acagtcaagg cagagaacgg 20
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> GAPDH R(Unknown)
<400> 9
ccagcatcac cccacttgat 20

Claims (8)

1.一种牛lncRNA-133a,其特征在于:所述牛lncRNA-133a的核苷酸序列为SEQ1。
2.根据权利要求1所述的牛lncRNA-133a,其特征在于:所述牛lncRNA-133a具有促进牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的功能。
3.如权利要求1所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用。
4.根据权利要求3所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用,其特征在于:所述应用为在促进牛骨骼肌卫星细胞成肌分化中的应用。
5.根据权利要求3所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用,其特征在于:所述应用为在促进牛骨骼肌卫星细胞增殖中的应用。
6.如权利要求3所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用的检测方法,其特征在于:步骤如下:
⑴在lncRNA-133a骨骼肌卫星细胞中转染lncRNA-133a真核细胞表达质粒,实现细胞内lncRNA-133a的过表达,设置对照组,诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天;收集细胞,检测对照组及实验组的骨骼肌卫星细胞分化标志基因MHC、MyoD和MyoG表达水平;
⑵在lncRNA-133a骨骼肌卫星细胞中转染lncRNA-133a真核细胞表达质粒,实现细胞内lncRNA-133a的过表达,设置对照组,转染后24h,即细胞增殖期,进行EdU细胞增殖检测牛骨骼肌卫星细胞增殖数;
当实验组过表达lncRNA-133a后,增殖细胞数显著高于对照组、实验组的MHC、MyoD和MyoG的表达水平显著高于对照组相时,则证明牛lncRNA-133a序列能够促进牛骨骼肌卫星细胞的增殖和分化。
7.根据权利要求6所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用的检测方法,其特征在于:所述真核细胞表达质粒为pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a,所述对照组为以空质粒pCDNA3.1-EGFP转染牛骨骼肌卫星细胞;
利用qRT-PCR及Westernblotting检测对照组及实验组的牛骨骼肌卫星细胞分化标志基因表达水平。
8.根据权利要求6所述的牛lncRNA-133a在牛骨骼肌卫星细胞的增殖分化调控中的应用的验证方法,其特征在于:具体步骤如下:
⑴细胞培养
常规复苏冻存的原代牛骨骼肌卫星细胞,加入增殖培养基中并置于37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱中培养,该增殖培养基为含体积分数20%的胎牛血清、100IU·mL-1青霉素和链霉素的DMEM,待增殖细胞融合度达80-90%时更换分化培养基,该分化培养基为含体积分数2%马血清的DMEM;
⑵牛骨骼肌卫星细胞转染
增殖期细胞融合度达50%时,利用脂质体转染试剂转染pCDNA3.1-EGFP-LncRNA-133a,为实验组,以空质粒pCDNA3.1-EGFP转染细胞作为对照组,转染后24h时,即细胞增殖期,增殖培养基更换为分化培养基,诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天;
⑶牛骨骼肌卫星细胞增殖、分化能力的检测
EdU细胞增殖检测:细胞在转染后24小时,即增殖期细胞,检测实验组和对照组细胞的增殖情况;
⑷牛骨骼肌卫星细胞中分化标记因子表达水平的检测
①mRNA水平检测:在诱导牛骨骼肌卫星细胞向成肌方向分化2天时,即DM2期,收集实验组和对照组细胞,Trizol裂解并提取总RNA,取4μg总RNA反转录为cDNA,采用qRT-PCR法检测各分化标记因子基因MHC、MYOD、MYOG的表达;
qRT-PCR反应体系为20μL:0.5μL上游引物F、0.5μL下游引物R、2.0μL 5×稀释cDNA、10μL 2×All-in-OneTM qPCR Mix、7.0μLRNase free water;反应条件:95℃10min;95℃10s、60℃20s、72℃15s,重复40个循环;
②蛋白水平检测:细胞在DM2期时被蛋白裂解液裂解,收集蛋白,通过Westernblotting检测分化标志基因MHC的蛋白表达。
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