CN108325510A - 一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 - Google Patents
一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 Download PDFInfo
- Publication number
- CN108325510A CN108325510A CN201810269330.9A CN201810269330A CN108325510A CN 108325510 A CN108325510 A CN 108325510A CN 201810269330 A CN201810269330 A CN 201810269330A CN 108325510 A CN108325510 A CN 108325510A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- saxitoxin
- antibody
- memory loss
- protein
- sepharose
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
- B01J20/281—Sorbents specially adapted for preparative, analytical or investigative chromatography
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/26—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism
- B01D15/38—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism involving specific interaction not covered by one or more of groups B01D15/265 - B01D15/36
- B01D15/3804—Affinity chromatography
- B01D15/3809—Affinity chromatography of the antigen-antibody type, e.g. protein A, G, L chromatography
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/50—Conditioning of the sorbent material or stationary liquid
- G01N30/56—Packing methods or coating methods
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/60—Construction of the column
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/50—Conditioning of the sorbent material or stationary liquid
- G01N30/56—Packing methods or coating methods
- G01N2030/562—Packing methods or coating methods packing
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Hematology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
本发明属于食品安全检测技术领域,具体涉及一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途,首先将采用环氧氯丙烷活化法活化的琼脂糖凝胶作为载体,然后将基因重组蛋白G偶联到载体上,得到了蛋白G‑sepharose,再将失忆性贝类毒素抗体连接到蛋白G‑sepharose上,得到了抗体—蛋白G—sepharose,再用交联剂进行交联,得到了抗体—蛋白G—sepharose填料,最后将抗体—蛋白G—sepharose填料装柱后形成了高纯度和亲和力的失忆性贝类毒素免疫亲和柱,充分利用基因重组蛋白G与失忆性贝类毒素抗体特异性结合的特点,失忆性贝类毒素抗体的Fab片段暴露在外,大幅度提高了基因重组蛋白G的抗体结合能力、失忆性贝类毒素的捕捉能力和失忆性贝类毒素的纯化效率。
Description
技术领域:
本发明属于食品安全检测技术领域,具体涉及一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途。
背景技术:
亲和柱是将与纯化对象有专一结合作用的物质连接在不溶性载体上,制成亲和吸附剂后所装的柱,多用做亲和层析。
失忆性贝类毒素(Amnesic shellfish poisoning,ASP)的主要成分是一种具有生理活性的氨基酸类物质-软骨藻酸(Domoic acid,DA),是由某些拟菱形藻属和菱形藻属的海洋硅藻产生的;DA是谷氨酸的一种异构体,是浮游植物代谢的产物,一种兴奋性脯氨酸衍生物和神经毒素,红藻氨酸受体的兴奋剂,能够牢固结合谷氨酸受体,作用于兴奋性的氨基酸受体和突触传递素,提高钙离子的渗透性,使细胞长时间处于去极化的兴奋状态而导致死亡。当某些种类的硅藻大量发生时,双壳贝类、虾蟹类、头足类等较为低等的海洋动物,就能通过摄食藻类饵料而在体内积累大量的DA,低等的海洋动物一旦被海洋哺乳类动物摄食,就可能引起海洋哺乳类动物中毒或死亡。通过对该毒素的病理学研究发现,DA能与人类中枢神经系统(大脑海马)的谷氨酸受体结合,引起神经系统麻痹,并能导致大脑损伤;轻者引起神志不清和记忆丧失,重者引起死亡。在1987年发生爱德华王子岛贝类中毒事件之后,加拿大政府就制定了贝肉中DA的限量标准。随后,美国、欧洲、以及澳大利亚等纷纷采用欧盟标准,即20μg DA g-1贝肉;根据欧盟委员会指令(2002/226/EC),一旦发现贝类样品中DA含量超标,则立刻关闭养殖场或捕捞水域。过去的研究认为双壳贝类在积累了大量DA的情况下往往没有任何不良症状,但随着研究的深入,发现赤潮毒素对双壳贝类有多种亚致死或致死性影响;例如,产麻痹性贝毒Paralytic Shellfish Toxins(PST)的塔玛亚历山大藻对双壳贝类孵化率、存活率、运动能力、滤食率和生长都有影响,同时还能抑制贝类闭壳运动、滤食率和清滤率;含有ASP的拟菱形藻P.multiserie会引起太平洋牡蛎Crassostreagigas呼吸性酸中毒和缺氧现象以及血液性质的变化;与此同时,毒藻赤潮还可能是造成养殖贝类大量死亡的主要原因。
研究人员已经开发出了多种DA检测方法,包括小鼠生物检测、HPLLC-MS、荧光HPLC、GC-MS、TLC(薄层色谱)、氨基酸分析、CE(毛细管电泳)、CEC(Capillaryelectrochromatography)、ELISA、受体结合实验(Receptor binding assay)等,其中荧光HPLC和受体结合实验的灵敏度(limits of detection,LOD)能达到0.001-0.002μg mL-1,而ELISA方法的检测下限(LOD)对贝肉样品是3.3μgkg-1,对海水样品是6.8ngL-1;小鼠生物检测是由Yasumoto等建立的,在小鼠腹腔注射酸性提取液,记录小鼠的死亡时间,使用“鼠单位”(Mu)来表达,美国公职分析化学家协会(AOAC)定义一个鼠单位为一只20g重的小白鼠在腹腔注射后15min内死亡的毒素最小剂量,小鼠生物检测由于时间较长,不能确定毒素的组成成分,定量困难,假阳性高(通常是由脂肪酸引起),重现性差,又不够灵敏(只适合检测40-100μg g-1以上浓度的DA),已经不适用于20μg g-1的DA限量标准了。欧盟的官方DA检测方法是高效液相色谱(HPLC)法,液相色谱法的具体流程是试样经甲醇提取,强阴离子固相萃取柱净化,液相色谱分离,二极管阵列或紫外检测器进行定量分析;而ELISA法及其试剂盒(ASP Direct cELISAtest kits,Biosense Laboratories,Norway)也因具有方便、快速、灵敏等特点,于2006年被国际分析化学家协会(AOAC)核准为官方检测方法。
中国于2016年制定了贝类中失忆性贝类毒素的测定(GB5009.198—2016),规定酶联免疫吸附法和高效液相色谱法测定贝类产品中ASP。中国专利201210554663.9公开的一种失忆性贝毒分子印迹整体柱的制备方法和应用,将适当配比的模板分子、功能单体、交联剂、致孔剂(十二醇、1,4-丁二醇)溶解于二甲基亚砜中,超声混合5分钟、静置20分钟,加入引发剂(偶氮二异丁腈)占单体总量的0.5-1%,充氮除氧5分钟,将此溶液充满石英毛细管,封端,60-70℃恒温聚合12-14小时,将毛细管连接到高效液相色谱输液泵上,清洗除去模板分子和致孔剂,最后得到具有良好分离效果的毛细管整体柱,所述分子印迹整体柱是以软骨藻酸为模板分子,甲基丙烯酰胺和/或甲基丙烯酸为功能单体,十二醇和/或1,4-丁二醇为致孔剂,二甲亚砜为溶剂,偶氮二异丁腈为引发剂,哌嗪双丙烯酰胺为交联剂,超声溶解混匀,通氮除氧,灌注在经过γ-(甲基丙烯酰氧基)-三甲氧基硅烷修饰的25-250μm内径的石英毛细管中,封端;制备的印迹整体柱用于贝类样品中失忆类贝毒的萃取或富集,将制备的印迹整体柱连接到高效液相色谱中,并在液相色谱中实现失忆类贝毒的分离、富集与检测。
对于失忆性贝类毒素的液相色谱检测来说,样品采集和前处理是目前分析方法中的瓶颈,也是测定误差的主要来源,样品前处理分为提取和净化2个步骤,实验中大多采用固相萃取柱对样品提取液中的失忆性贝类毒素进行净化,可以说样品的前处理技术是目前失忆性贝类毒素分析研究的难点和热点之一。蛋白G是一种G型链球菌细胞壁上的蛋白,能特异性的与多种动物抗体的Fc部位相结合,具有很高的亲和力,抗体由两条重链和两条轻链构成,抗体分为Fab区和Fc区,其中,Fab区是抗原结合的区域,蛋白G与抗体结合后,抗体的Fab区域游离在外,不影响抗体的抗原结合能力。因此,需要研发设计一种操作简单和净化效率高的失忆性贝类毒素免疫亲和柱,利用失忆性贝类毒素特异性抗体对待检样本中的失忆性贝类毒素进行分离和净化,很有社会和经济价值,应用前景广阔。
发明内容:
本发明的发明目的在于克服现有技术存在的缺点,设计一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途,使亲和柱的结构简单,亲和柱的制备方法操作简便,亲和柱使用时的净化效率高。
为了实现上述目的,本发明涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的主体结构包括柱体、盖板、进样口、第一筛板、填料、第二筛板和出样口;圆管状结构的柱体的顶部设置有圆形片状结构的盖板,盖板的中心设置有圆管状结构的进样口,柱体的内部上部空间为空腔,柱体的内部中间设置有开设有筛孔的圆形片状结构的第一筛板,柱体的内部下部空间填充有填料,柱体的底部设置有开设有筛孔的圆形片状结构的第二筛板,第二筛板上设置有上宽下窄的锥形管状结构的出样口;填料为腹泻性贝类毒素抗体-蛋白G-sepharose填料。
本发明涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法的具体工艺过程包括活化、偶联、连接、交联和装柱共五个步骤:
(一)活化:用蒸馏水充分冲洗浓度为2%的预溶胀琼脂糖凝胶sepharose4B,洗去琼脂糖凝胶sepharose4B中残存的乙醇,蒸馏水与琼脂糖凝胶sepharose4B的体积比为20:1,用漏斗过滤掉液体,得到湿凝胶,称取5克湿凝胶与7.5毫升摩尔质量为0.8M的NaOH水溶液、2毫升质量百分比浓度为30%的环氧氯丙烷水溶液和5毫升浓度为2mg/mL的NaBH4水溶液在温度为25℃的条件下下进行8小时的摇床反应,反应结束后,用50毫升蒸馏水洗涤湿凝胶,洗去湿凝胶中混杂的环氧氯丙烷,完成琼脂糖凝胶sepharose4B的活化,活化后的琼脂糖凝胶sepharose4B作为载体备用;
(二)偶联:取1克载体用偶联缓冲液洗涤3次,将载体加入20毫升浓度为2mg/mL的基因重组蛋白G中在室温条件下偶联4小时,偶联缓冲液选取为pH值为8.9的摩尔质量为0.1M的NaHCO3水溶液和摩尔质量为0.8M的NaCl水溶液的混合液,将偶联后的载体用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤3次,得到偶联有基因重组蛋白G的琼脂糖凝胶sepharose4B,简称为蛋白G-sepharose;
(三)连接:将失忆性贝类毒素抗体溶解于pH值为7.4和浓度为20mM的PBS中,得到10毫升浓度为2mg/mL的抗体,将蛋白G-sepharose用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤3次,PBS的每次使用量为30毫升,将抗体加入到洗涤过的蛋白G-sepharose中在室温条件下结合30分钟,得到连接有抗体的蛋白G-sepharose,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤连接有抗体的蛋白G-sepharose 3次,PBS的每次使用量为30毫升,连接有抗体的蛋白G-sepharose简称为抗体—蛋白G—sepharose;
(四)交联:用pH值为9.0和浓度为0.1M的硼酸缓冲液洗涤抗体—蛋白G—sepharose 3次,硼酸缓冲液的每次使用量为30毫升,在抗体—蛋白G—sepharose中加入pH值为9.0和浓度为0.1M的硼酸缓冲液以及交联剂,交联剂为庚二亚氨酸二甲酯,当抗体—蛋白G—sepharose的浓度为20mM时停止交联剂的加入,使抗体—蛋白G—sepharose、硼酸缓冲液和交联剂在室温条件下交联1小时,加入pH值为9.0和浓度为50mM的乙醇胺终止交联,并用浓度为50mM的乙醇胺封闭10分钟,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤交联后的抗体—蛋白G—sepharose 3次,得到抗体—蛋白G—sepharose填料;
(五)装柱:将用10毫升pH值为7.4和浓度为20mM的PBS重悬后的抗体—蛋白G—sepharose填料装入到柱体1的下部空间中,得到失忆性贝类毒素免疫亲和柱,完成失忆性贝类毒素免疫亲和柱的制备;抗体—蛋白G—sepharose填料的装入量根据需要制备的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的容量选取。
本发明涉及的琼脂糖凝胶能够被溴化氰活化的琼脂糖凝胶、交联的琼脂糖凝胶、聚丙烯酸琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺琼脂糖凝胶、葡聚糖凝胶或纤维素代替;失忆性贝类毒素抗体包括单克隆抗体和多克隆抗体。
本发明涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的用途包括净化和富集贝肉、粮食、水产和食品领域中的失忆性贝类毒素。
本发明涉及的基因重组蛋白G的基因序列为GenBank CAA27638.1在大肠杆菌中表达出了与失忆性贝类毒素抗体的高亲和力,基因重组蛋白G的1个分子的蛋白G可以结合3个分子的失忆性贝类毒素抗体,并且只有失忆性贝类毒素抗体能与基因重组蛋白G结合,其余抗体均不能与基因重组蛋白G结合,特异性高,以基因重组蛋白G为基础制备的失忆性贝类毒素免疫亲和柱具有特异性高,失忆性贝类毒素结合量大,纯化效率高的特点。
本发明与现有技术相比,首先将采用环氧氯丙烷活化法活化的琼脂糖凝胶作为载体,然后将基因重组蛋白G偶联到载体上,得到了蛋白G-sepharose,再将失忆性贝类毒素抗体连接到蛋白G-sepharose上,得到了抗体—蛋白G—sepharose,再用交联剂进行交联,得到了抗体—蛋白G—sepharose填料,最后将抗体—蛋白G—sepharose填料装柱后形成了高纯度和亲和力的失忆性贝类毒素免疫亲和柱,充分利用基因重组蛋白G与失忆性贝类毒素抗体特异性结合的特点,失忆性贝类毒素抗体的Fab片段暴露在外,大幅度提高了基因重组蛋白G的抗体结合能力、失忆性贝类毒素的捕捉能力和失忆性贝类毒素的纯化效率;其亲和柱的结构简单,亲和柱制备方法操作简便,充分保证了抗体的抗原结合能力,亲和柱不需纯化处理即可直接用于高效液相色谱检测和荧光仪检测,降低了时间和经济成本。
附图说明:
图1为本发明实施例1涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的主体结构原理示意图。
图2为本发明实施例2涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法的流程框图。
具体实施方式:
下面通过实施例并结合附图对本发明做进一步描述。
实施例1:
本实施例涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的主体结构包括柱体1、盖板2、进样口3、第一筛板4、填料5、第二筛板6和出样口7;圆管状结构的柱体1的顶部设置有圆形片状结构的盖板2,盖板2的中心设置有圆管状结构的进样口3,柱体1的内部上部空间为空腔,柱体1的内部中间设置有开设有筛孔的圆形片状结构的第一筛板4,柱体1的内部下部空间填充有填料5,柱体1的底部设置有开设有筛孔的圆形片状结构的第二筛板6,第二筛板6上设置有上宽下窄的锥形管状结构的出样口7;填料5为失忆性贝类毒素抗体-蛋白G-sepharose填料。
实施例2:
本实施例涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法的具体工艺过程包括活化、偶联、连接、交联和装柱共五个步骤:
(一)活化:用蒸馏水充分冲洗浓度为2%的预溶胀琼脂糖凝胶sepharose4B,洗去琼脂糖凝胶sepharose4B中残存的乙醇,蒸馏水与琼脂糖凝胶sepharose4B的体积比为20:1,用漏斗过滤掉液体,得到湿凝胶,称取5克湿凝胶与7.5毫升摩尔质量为0.8M的NaOH(氢氧化钠)水溶液、2毫升质量百分比浓度为30%的环氧氯丙烷水溶液和5毫升浓度为2mg/mL的NaBH4(硼氢化钠)水溶液在温度为25℃的条件下下进行8小时的摇床反应,反应结束后,用50毫升蒸馏水洗涤湿凝胶,洗去湿凝胶中混杂的环氧氯丙烷,完成琼脂糖凝胶sepharose4B的活化,活化后的琼脂糖凝胶sepharose4B作为载体备用;
(二)偶联:取1克载体用偶联缓冲液洗涤3次,将载体加入20毫升浓度为2mg/mL的基因重组蛋白G中在室温条件下偶联4小时,偶联缓冲液选取为pH值为8.9的摩尔质量为0.1M的NaHCO3(碳酸氢钠)水溶液和摩尔质量为0.8M的NaCl(氯化钠)水溶液的混合液,将偶联后的载体用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS(磷酸盐缓冲液)洗涤3次,得到偶联有基因重组蛋白G的琼脂糖凝胶sepharose4B,简称为蛋白G-sepharose;
(三)连接:将失忆性贝类毒素抗体溶解于pH值为7.4和浓度为20mM的PBS中,得到10毫升浓度为2mg/mL的抗体,将蛋白G-sepharose用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤3次,PBS的每次使用量为30毫升,将抗体加入到洗涤过的蛋白G-sepharose中在室温条件下结合30分钟,得到连接有抗体的蛋白G-sepharose,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤连接有抗体的蛋白G-sepharose 3次,PBS的每次使用量为30毫升,连接有抗体的蛋白G-sepharose简称为抗体—蛋白G—sepharose;
(四)交联:用pH值为9.0和浓度为0.1M的硼酸缓冲液洗涤抗体—蛋白G—sepharose 3次,硼酸缓冲液的每次使用量为30毫升,在抗体—蛋白G—sepharose中加入pH值为9.0和浓度为0.1M的硼酸缓冲液以及交联剂,交联剂为庚二亚氨酸二甲酯,当抗体—蛋白G—sepharose的浓度为20mM时停止交联剂的加入,使抗体—蛋白G—sepharose、硼酸缓冲液和交联剂在室温条件下交联1小时,加入pH值为9.0和浓度为50mM的乙醇胺终止交联,并用浓度为50mM的乙醇胺封闭10分钟,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤交联后的抗体—蛋白G—sepharose 3次,得到抗体—蛋白G—sepharose填料;
(五)装柱:将用10毫升pH值为7.4和浓度为20mM的PBS重悬后的抗体—蛋白G—sepharose填料装入到柱体1的下部空间中,得到失忆性贝类毒素免疫亲和柱,完成失忆性贝类毒素免疫亲和柱的制备;抗体—蛋白G—sepharose填料的装入量根据需要制备的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的容量选取。
实施例3:
本实施例涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱净化和富集贝肉中的失忆性贝类毒素的具体工艺过程为:首先,在置有2.0g均质贝肉的一号50毫升具塞离心管中加入10毫升质量百分比浓度为80%的甲醇水溶液,涡旋振荡2min后超声提取10min,再以7000r/min的转速离心5min,将上清液移至二号50毫升具塞离心管中,再向一号50毫升具塞离心管中加入10毫升质量百分比浓度为80%的甲醇水溶液,涡旋振荡2min后超声提取10min,冷却至室温后,再以7000r/min的转速离心5min,再次将上清液移至二号50毫升具塞离心管中,移取5mL上清液至三号50毫升离心管中后加入20毫升PBS对上清液进行稀释;其次,取出在室温条件下平衡30分钟后的失忆性贝类毒素免疫亲和柱,将进样口3与注射器的针筒连接,注射器接入到气控操作架上,调节气控操作架的气泵压力,使三号50毫升离心管中的混合液经注射器流过失忆性贝类毒素免疫亲和柱以实现三号50毫升离心管中的混合液的净化目的;然后,调节气控操作架的气泵压力,使6毫升质量百分比浓度为20%甲醇水溶液以2-3滴/秒的流速经注射器流过失忆性贝类毒素免疫亲和柱,对失忆性贝类毒素免疫亲和柱进行淋洗,待失忆性贝类毒素免疫亲和柱内的残留液流净,取3毫升质量百分比为2%的氨水/甲醇溶液并使其以1滴/秒的流速经注射器流过失忆性贝类毒素免疫亲和柱,收集洗脱液,将洗脱液置于50℃的条件下用氮气吹干后用1毫升质量百分比浓度为80%的甲醇水溶液复溶成样品溶液;最后,将用0.22μm过滤器过滤后的样品溶液置于高效液相色谱中进行检测。
实施例4:
本实施例涉及的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法的具体工艺过程包括活化、偶联、连接、交联和装柱共五个步骤:
(一)活化:用蒸馏水充分冲洗浓度为2%的预溶胀琼脂糖凝胶sepharose2B,洗去琼脂糖凝胶sepharose2B中残存的乙醇,蒸馏水与琼脂糖凝胶sepharose2B的体积比为20:1,用漏斗过滤掉液体,得到湿凝胶,称取5克湿凝胶与7.5毫升摩尔质量为0.8M的NaOH水溶液、2毫升质量百分比浓度为30%的环氧氯丙烷水溶液和5毫升浓度为2mg/mL的NaBH4水溶液在温度为25℃的条件下下进行8小时的摇床反应,反应结束后,用50毫升蒸馏水洗涤湿凝胶,洗去湿凝胶中混杂的环氧氯丙烷,完成琼脂糖凝胶sepharose2B的活化,活化后的琼脂糖凝胶sepharose2B作为载体备用;
(二)偶联:按照每克载体配比30-200nmol基因重组蛋白G的比例取载体和基因重组蛋白G置于pH值为8.8的摩尔质量为0.1M的NaHCO3水溶液和摩尔质量为0.5M的NaCl水溶液构成的偶联缓冲液中偶联,当在室温条件下时,偶联2小时,当在4℃条件下时,偶联过夜,偶联产物与pH值为8.0的摩尔质量为1M的Tris.HCl(三(羟甲基)氨基甲烷)缓冲液在室温条件下反应2小时后用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS(磷酸盐缓冲液)洗涤,得到偶联有基因重组蛋白G的琼脂糖凝胶sepharose2B,简称为蛋白G-sepharose;
(三)连接:将失忆性贝类毒素抗体溶解于pH值为7.4和浓度为20mM的PBS中,得到10毫升浓度为2mg/mL的抗体,将蛋白G-sepharose用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤3次,PBS的每次使用量为30毫升,按照每克蛋白G-sepharose配比200nmol-1.2umol抗体的比例将抗体加入到洗涤过的蛋白G-sepharose中在室温条件下反应30分钟,得到连接有抗体的蛋白G-sepharose,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤连接有抗体的蛋白G-sepharose3次,PBS的每次使用量为30毫升,连接有抗体的蛋白G-sepharose简称为抗体—蛋白G—sepharose;
(四)交联:用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤抗体—蛋白G—sepharose,在抗体—蛋白G—sepharose中加入浓度为0.2M的三乙醇胺与浓度为20mM的二甲基庚二酸脂构成的pH值为9.0的交联剂在室温条件下反应1小时,加入pH值为7.4和浓度为20mM的乙醇胺终止反应,用含有质量百分比为0.01%的硫柳汞的pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤交联后的抗体—蛋白G—sepharose,得到抗体—蛋白G—sepharose填料;
(五)装柱:将抗体—蛋白G—sepharose填料装入到柱体1的下部空间中,得到失忆性贝类毒素免疫亲和柱,置于4℃的环境中保存,完成失忆性贝类毒素免疫亲和柱的制备;抗体—蛋白G—sepharose填料的装入量根据需要制备的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的容量选取。
Claims (6)
1.一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱,其特征在于主体结构包括柱体、盖板、进样口、第一筛板、填料、第二筛板和出样口;圆管状结构的柱体的顶部设置有圆形片状结构的盖板,盖板的中心设置有圆管状结构的进样口,柱体的内部上部空间为空腔,柱体的内部中间设置有开设有筛孔的圆形片状结构的第一筛板,柱体的内部下部空间填充有填料,柱体的底部设置有开设有筛孔的圆形片状结构的第二筛板,第二筛板上设置有上宽下窄的锥形管状结构的出样口;填料为腹泻性贝类毒素抗体-蛋白G-sepharose填料。
2.一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法,其特征在于具体工艺过程包括活化、偶联、连接、交联和装柱共五个步骤:
(一)活化:用蒸馏水充分冲洗浓度为2%的预溶胀琼脂糖凝胶sepharose4B,洗去琼脂糖凝胶sepharose4B中残存的乙醇,蒸馏水与琼脂糖凝胶sepharose4B的体积比为20:1,用漏斗过滤掉液体,得到湿凝胶,称取5克湿凝胶与7.5毫升摩尔质量为0.8M的NaOH水溶液、2毫升质量百分比浓度为30%的环氧氯丙烷水溶液和5毫升浓度为2mg/mL的NaBH4水溶液在温度为25℃的条件下下进行8小时的摇床反应,反应结束后,用50毫升蒸馏水洗涤湿凝胶,洗去湿凝胶中混杂的环氧氯丙烷,完成琼脂糖凝胶sepharose4B的活化,活化后的琼脂糖凝胶sepharose4B作为载体备用;
(二)偶联:取1克载体用偶联缓冲液洗涤3次,将载体加入20毫升浓度为2mg/mL的基因重组蛋白G中在室温条件下偶联4小时,偶联缓冲液选取为pH值为8.9的摩尔质量为0.1M的NaHCO3水溶液和摩尔质量为0.8M的NaCl水溶液的混合液,将偶联后的载体用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤3次,得到偶联有基因重组蛋白G的琼脂糖凝胶sepharose4B,简称为蛋白G-sepharose;
(三)连接:将失忆性贝类毒素抗体溶解于pH值为7.4和浓度为20mM的PBS中,得到10毫升浓度为2mg/mL的抗体,将蛋白G-sepharose用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤3次,PBS的每次使用量为30毫升,将抗体加入到洗涤过的蛋白G-sepharose中在室温条件下结合30分钟,得到连接有抗体的蛋白G-sepharose,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤连接有抗体的蛋白G-sepharose 3次,PBS的每次使用量为30毫升,连接有抗体的蛋白G-sepharose简称为抗体—蛋白G—sepharose;
(四)交联:用pH值为9.0和浓度为0.1M的硼酸缓冲液洗涤抗体—蛋白G—sepharose 3次,硼酸缓冲液的每次使用量为30毫升,在抗体—蛋白G—sepharose中加入pH值为9.0和浓度为0.1M的硼酸缓冲液以及交联剂,交联剂为庚二亚氨酸二甲酯,当抗体—蛋白G—sepharose的浓度为20mM时停止交联剂的加入,使抗体—蛋白G—sepharose、硼酸缓冲液和交联剂在室温条件下交联1小时,加入pH值为9.0和浓度为50mM的乙醇胺终止交联,并用浓度为50mM的乙醇胺封闭10分钟,用pH值为7.4和浓度为20mM的PBS洗涤交联后的抗体—蛋白G—sepharose 3次,得到抗体—蛋白G—sepharose填料;
(五)装柱:将用10毫升pH值为7.4和浓度为20mM的PBS重悬后的抗体—蛋白G—sepharose填料装入到柱体1的下部空间中,得到失忆性贝类毒素免疫亲和柱,完成失忆性贝类毒素免疫亲和柱的制备;抗体—蛋白G—sepharose填料的装入量根据需要制备的失忆性贝类毒素免疫亲和柱的容量选取。
3.根据权利要求1所述的失忆性贝类毒素免疫亲和柱,其特征在于用途包括净化和富集贝肉、粮食、水产和食品领域中的失忆性贝类毒素,净化和富集贝肉中的失忆性贝类毒素的具体工艺过程为:首先,在置有2.0g均质贝肉的一号50毫升具塞离心管中加入10毫升质量百分比浓度为80%的甲醇水溶液,涡旋振荡2min后超声提取10min,再以7000r/min的转速离心5min,将上清液移至二号50毫升具塞离心管中,再向一号50毫升具塞离心管中加入10毫升质量百分比浓度为80%的甲醇水溶液,涡旋振荡2min后超声提取10min,冷却至室温后,再以7000r/min的转速离心5min,再次将上清液移至二号50毫升具塞离心管中,移取5mL上清液至三号50毫升离心管中后加入20毫升PBS对上清液进行稀释;其次,取出在室温条件下平衡30分钟后的失忆性贝类毒素免疫亲和柱,将进样口3与注射器的针筒连接,注射器接入到气控操作架上,调节气控操作架的气泵压力,使三号50毫升离心管中的混合液经注射器流过失忆性贝类毒素免疫亲和柱以实现三号50毫升离心管中的混合液的净化目的;然后,调节气控操作架的气泵压力,使6毫升质量百分比浓度为20%甲醇水溶液以2-3滴/秒的流速经注射器流过失忆性贝类毒素免疫亲和柱,对失忆性贝类毒素免疫亲和柱进行淋洗,待失忆性贝类毒素免疫亲和柱内的残留液流净,取3毫升质量百分比为2%的氨水/甲醇溶液并使其以1滴/秒的流速经注射器流过失忆性贝类毒素免疫亲和柱,收集洗脱液,将洗脱液置于50℃的条件下用氮气吹干后用1毫升质量百分比浓度为80%的甲醇水溶液复溶成样品溶液;最后,将用0.22μm过滤器过滤后的样品溶液置于高效液相色谱中进行检测。
4.根据权利要求2所述的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法,其特征在于琼脂糖凝胶能够被溴化氰活化的琼脂糖凝胶、交联的琼脂糖凝胶、聚丙烯酸琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺琼脂糖凝胶、葡聚糖凝胶或纤维素代替;失忆性贝类毒素抗体包括单克隆抗体和多克隆抗体。
5.根据权利要求2所述的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法,其特征在于基因重组蛋白G的基因序列为GenBank CAA27638.1在大肠杆菌中表达出了与失忆性贝类毒素抗体的高亲和力,基因重组蛋白G的1个分子的蛋白G可以结合3个分子的失忆性贝类毒素抗体,并且只有失忆性贝类毒素抗体能与基因重组蛋白G结合,其余抗体均不能与基因重组蛋白G结合,特异性高,以基因重组蛋白G为基础制备的失忆性贝类毒素免疫亲和柱具有特异性高,失忆性贝类毒素结合量大,纯化效率高的特点。
6.根据权利要求2所述的失忆性贝类毒素免疫亲和柱制备方法,其特征在于所述琼脂糖凝胶sepharose4B替换为琼脂糖凝胶sepharose2B。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201810269330.9A CN108325510A (zh) | 2018-03-29 | 2018-03-29 | 一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201810269330.9A CN108325510A (zh) | 2018-03-29 | 2018-03-29 | 一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN108325510A true CN108325510A (zh) | 2018-07-27 |
Family
ID=62931701
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201810269330.9A Pending CN108325510A (zh) | 2018-03-29 | 2018-03-29 | 一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN108325510A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111308077A (zh) * | 2020-03-02 | 2020-06-19 | 品测(上海)检测科技有限公司 | 一种神经贝类毒素免疫亲和柱的制备方法及应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104117229A (zh) * | 2013-04-28 | 2014-10-29 | 北京华安麦科生物技术有限公司 | 一种黄曲霉毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 |
CN106669638A (zh) * | 2017-01-22 | 2017-05-17 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种包被蛋白g的苏丹红ⅰ免疫亲和柱及其制备方法 |
CN106706829A (zh) * | 2016-12-08 | 2017-05-24 | 浙江省海洋水产研究所 | 免疫亲和净化‑液相色谱串联质谱测定贝类中腹泻性贝类毒素的方法 |
CN106970223A (zh) * | 2017-03-07 | 2017-07-21 | 中国农业科学院油料作物研究所 | 净化伏马毒素b1、黄曲霉毒素b1等五种真菌毒素免疫吸附剂及复合亲和柱 |
-
2018
- 2018-03-29 CN CN201810269330.9A patent/CN108325510A/zh active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104117229A (zh) * | 2013-04-28 | 2014-10-29 | 北京华安麦科生物技术有限公司 | 一种黄曲霉毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 |
CN106706829A (zh) * | 2016-12-08 | 2017-05-24 | 浙江省海洋水产研究所 | 免疫亲和净化‑液相色谱串联质谱测定贝类中腹泻性贝类毒素的方法 |
CN106669638A (zh) * | 2017-01-22 | 2017-05-17 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种包被蛋白g的苏丹红ⅰ免疫亲和柱及其制备方法 |
CN106970223A (zh) * | 2017-03-07 | 2017-07-21 | 中国农业科学院油料作物研究所 | 净化伏马毒素b1、黄曲霉毒素b1等五种真菌毒素免疫吸附剂及复合亲和柱 |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111308077A (zh) * | 2020-03-02 | 2020-06-19 | 品测(上海)检测科技有限公司 | 一种神经贝类毒素免疫亲和柱的制备方法及应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101865924B (zh) | 基于免疫磁珠联合酶联免疫吸附试验检测伏马毒素的方法 | |
CN103157439B (zh) | 真菌毒素复合免疫吸附剂和免疫亲和柱与试剂盒及其应用 | |
CN104117229B (zh) | 一种黄曲霉毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN104569399B (zh) | 一种检测赭曲霉毒素a的试纸条及其应用 | |
CN103160471B (zh) | 赭曲霉毒素a杂交瘤细胞株和抗体与复合免疫吸附剂和免疫亲和柱与试剂盒及其应用 | |
CN103940925B (zh) | 高效液相色谱快速检测磺胺类抗生素的方法及应用 | |
CN105618013A (zh) | 一种以硅胶为基质的凝集素高效亲和色谱材料的制备方法 | |
CN103160470B (zh) | 杂交瘤细胞株和抗体与免疫吸附剂和免疫亲和柱与试剂盒及其应用 | |
CN103575889A (zh) | 一种检测万古霉素的试纸条及方法 | |
CN108325510A (zh) | 一种失忆性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN106669638A (zh) | 一种包被蛋白g的苏丹红ⅰ免疫亲和柱及其制备方法 | |
CN104117227B (zh) | 一种脱氧雪腐镰刀菌烯醇免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN108479114A (zh) | 一种腹泻性贝类毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN104174185A (zh) | 一种孔雀石绿免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN107063820A (zh) | 一种t2毒素适配体亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN201269879Y (zh) | 一种颜色颗粒免疫层析法检测三聚氰胺试纸条 | |
CN1233828C (zh) | 抗人血红蛋白检测试剂条及其含有的单克隆抗体 | |
CN108918885B (zh) | 一种特异性结合鱼类小清蛋白的核酸适配体、试剂盒及检测方法 | |
CN108553940A (zh) | 一种四环素类抗生素免疫亲和柱及其制备方法和用途 | |
CN102258987A (zh) | 壳聚糖载体的dmt单克隆抗体免疫亲和柱的制备及应用 | |
CN101993486A (zh) | 克伦特罗免疫原、包被原及其在胶体金试纸中的应用 | |
CN102707064B (zh) | 一种能灵敏检测出淡水鱼主要过敏原小清蛋白的方法 | |
CN103160472B (zh) | 黄曲霉毒素杂色曲霉素杂交瘤细胞株和抗体与免疫吸附剂和免疫亲和柱与试剂盒及其应用 | |
CN104448101B (zh) | 一种β-受体激动剂复合模板分子印迹聚合物的制备方法及应用 | |
CN104181300A (zh) | 一种伏马毒素免疫亲和柱及其制备方法和用途 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20180727 |
|
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |