CN108294317A - 一种核桃肽肠溶微丸及其制备方法 - Google Patents
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-
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- A—HUMAN NECESSITIES
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- A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
- A23V2002/00—Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs
Abstract
本发明涉及保健食品技术领域,尤其涉及一种核桃肽肠溶微丸及其制备方法。本发明制备的核桃肽肠溶微丸粒径为200~1000μm,在模拟胃液中120min释放度小于10%,在模拟肠液中45min释放度大于70%;而相比核桃肽原料,在小肠的吸收效率明显提高,具有更高的口服生物利用度。实验结果表明,以大鼠在体肠外翻模型评价了核桃肽原料和肠溶微丸的吸收情况,结果发现,核桃肽肠溶微丸的核桃肽累积吸收量、转运速率和表观渗透系数均显著性高于核桃肽原料组,充分证明本发明的肠溶微丸可以增加核桃肽的肠道吸收,提高核桃肽口服生物利用度。
Description
技术领域
本发明涉及保健食品技术领域,尤其涉及一种核桃肽肠溶微丸及其制备方法。
背景技术
核桃又名胡桃、羌桃、万岁子等,是胡桃科核桃属植物。目前国内对核桃的研究主要以干核桃为主,虽然核桃加工制品也逐渐增加,但也仅限于核桃油、核桃露、核桃粉、琥珀桃仁等产品。核桃中蛋白质干重占14~28%,是一种优质的植物蛋白资源。核桃肽作为核桃粕蛋白酶解提取物,含有18种氨基酸,其中包括8种为人体必需氨基酸,还含有较多的健脑物质——天门冬氨酸、谷氨酸、精氨酸等,具有抗氧化、抑菌、ACE抑制等一系列营养保健功效。目前对核桃多肽的研究还较少,市场上相应的产品极少,以核桃蛋白粉、核桃蛋白乳、核桃多肽饮料及核桃多肽片为主要剂型。
核桃肽作为一种天然多肽,其口服吸收面临很大的挑战。胃部的极酸性环境和胃蛋白酶作用易使核桃肽变性、降解,一方面影响其生物活性,另一方面不利于其后续在小肠部位的吸收。因此,需对核桃肽进行保护避免胃环境对其破坏。目前上市的核桃肽类产品均未能很好解决核桃肽口服吸收利用度低的问题。
近年来,微丸制剂尤其是缓控释微丸制剂受到广泛关注,成为缓控释制剂发展的趋势。对于缓控释微丸,薄膜包衣技术得到越来越广泛的应用。但是微丸的制备通常难以实现包封率和载药量的皆良好,并且包材对活性物质释放度的影响可能直接导致生物利用度的降低。因此,如何将核桃肽制成微丸剂,且提高生物利用度仍在不断的研发中。
发明内容
有鉴于此,本发明要解决的技术问题在于提供一种核桃肽肠溶微丸及其制备方法,本发明提供的核桃肽肠溶微丸的包封率和载药量皆良好,且释放度和生物利用度较高。
本发明提供的核桃肽肠溶微丸,由内至外依次由素丸素丸、隔离包衣层和肠溶包衣层组成;
所述素丸由核桃肽、赋形剂和/或丸芯、粘合剂、吸收促进剂、生物粘附剂组成;
所述赋形剂选自蔗糖、环糊精、淀粉、甘露醇、木糖醇、山梨醇、微晶纤维素、乳糖、低聚半乳糖、辛烯基琥珀酸淀粉钠、醋酸纤维素、预胶化淀粉中至少一种;
所述丸芯为蔗糖丸芯或微晶纤维素丸芯;
所述粘合剂选自聚乙烯吡咯烷酮、羟甲基纤维素钠、甲基纤维素、羟丙基纤维素、羟丙基甲基纤维素、乙基纤维素、聚乙二醇4000、聚乙二醇6000中至少一种;
所述吸收促进剂选自胆酸钠、癸酸钠、维生素E-TPGS、去氧胆酸钠、泊洛沙姆中至少一种;
所述生物粘附剂选自卡波姆、壳聚糖、海藻酸钠、海藻酸钙、魔芋胶、黄原胶、阿拉伯胶、角叉菜胶、可得然胶、明胶、瓜尔胶、西黄蓍胶中至少一种;
所述隔离包衣层由水溶性高分子材料和抗粘剂A组成或为预混隔离层包衣料;其中所述水溶性高分子材料为羟丙纤维素、羟丙甲纤维素中至少一种;所述抗粘剂A为滑石粉、微粉硅胶、硬脂酸镁中至少一种;所述预混隔离层包衣料为
所述肠溶包衣层由疏水性高分子材料和组分B组成或为预混肠溶包衣料;所述组分B由增塑剂B和/或抗粘剂B组成;所述疏水性高分子材料选自聚丙烯酸树脂、乙基纤维素、醋酸纤维素、羟丙基甲基纤维素酞酸酯中至少一种;所述增塑剂B选自柠檬酸三乙酯、聚乙二醇、三醋酸甘油酯、枸橼酸酯、邻苯二甲酸酯中至少一种;所述抗粘剂B选自滑石粉、微粉硅胶、硬脂酸镁中至少一种;所述预混肠溶包衣料为或
一些实施例中,所述赋形剂选自环糊精、淀粉、微晶纤维素、乳糖、辛烯基琥珀酸淀粉钠中至少一种。
一些实施例中,所述丸芯为蔗糖丸芯或微晶纤维素丸芯。
一些实施例中,所述粘合剂选自聚乙烯吡咯烷酮、羟甲基纤维素钠、甲基纤维素、聚乙二醇4000中至少一种。
一些实施例中,所述吸收促进剂选自胆酸钠、癸酸钠、维生素E-TPGS、去氧胆酸钠中至少一种;
一些实施例中,所述生物粘附剂选自卡波姆、壳聚糖、海藻酸钠、魔芋胶、黄原胶中至少一种;
一些实施例中,所述水溶性高分子材料为羟丙纤维素或羟丙甲纤维素;
一些实施例中,所述抗粘剂A为滑石粉或硬脂酸镁;
一些实施例中,所述疏水性高分子材料为 L30D-55,L100-55、聚丙烯酸树脂III号或醋酸纤维素;
一些实施例中,所述增塑剂B为柠檬酸三乙酯、聚乙二醇、三醋酸甘油酯、枸橼酸酯、邻苯二甲酸酯中至少一种;
一些实施例中,所述抗粘剂B为滑石粉或微粉硅胶;
本发明中,所述素丸、隔离包衣层和肠溶包衣层的质量比为(970~1020):(52~200):(100~300)。
本发明中,所述素丸中各组分的质量份为:
本发明中,所述隔离包衣层中水溶性高分子材料和抗粘剂A的质量比为(49~194):(3~6)。
本发明中,所述肠溶包衣层中疏水性高分子材料、增塑剂B、抗粘剂B的质量比为(45~250):(2~55):(0~35)。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽600份、淀粉200份、环糊精95份、聚氧乙烯吡咯烷酮5份、胆酸钠50份、壳聚糖30份、海藻酸钠20份;
HPMC-E5 76份、滑石粉4份;
L30D-55 45份、柠檬酸三乙酯55份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽200份、淀粉150份、微晶纤维素550份、羟甲基纤维素钠10份、聚乙二醇400030份、聚乙烯吡咯烷酮10份、去氧胆酸钠10份、卡波姆5份、魔芋胶5份;
HPC 194份、滑石粉6份;
醋酸纤维素210份、聚乙二醇20份、邻苯二甲酸酯20份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
蔗糖丸芯530份、羟甲基纤维素钠50份、核桃肽400份、维生素E-TPGS 20份、黄原胶10份;
将55份
将 L100-55 150份、枸橼酸酯15份、滑石粉35份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
PVP30份,MCC丸芯568份、核桃肽300份、乳糖100份、魔芋胶1份、去氧胆酸钠1份;
HPC 49份、滑石粉3份;
聚丙烯酸树脂III号130份、三醋酸甘油酯5份、微粉硅胶4份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽300份、黄原胶10份、胆酸钠20份、PVP50份、MCC丸芯620份;
100份;
醋酸纤维素250份、聚乙二醇25份、邻苯二甲酸酯25份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽400份、胆酸钠20份、魔芋胶6份、黄原胶6份、羟甲基纤维素钠20份、蔗糖丸芯548份;
80份;
230份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽350份、微晶纤维素500份、辛烯基琥珀酸淀粉钠80份、羟丙基甲基纤维素20份、胆酸钠20份、壳聚糖30份;
HPC 60份、硬脂酸镁4份;
L30D-55 165份、柠檬酸三乙酯2份、滑石粉13份;
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽400份、微晶纤维素500份、甲基纤维素50份、胆酸钠20份、魔芋胶50份;
羟丙甲纤维素145份和硬脂酸镁5份;
800份。
一些实施例中,所述核桃肽肠溶微丸由如下质量份的原料制成:
核桃肽400份、微晶纤维素500份、甲基纤维素50份、胆酸钠20份、魔芋胶50份;
将80份;
将200份。
本发明所述的核桃肽肠溶微丸的制备方法,其特征在于,包括:
以包衣锅法、离心-流化造丸法、挤出滚圆法、球状成型机制丸法、高剪切制粒法、热熔融挤出法或丸芯上药法制备素丸;
以流化床法或锅包衣法对所述素丸进行隔离层包衣后,再采用流化床法或包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
一些实施例中,所述制备方法以包衣锅法制备素丸后,以流化床法对素丸进行隔离层包衣后,再采用包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
一些具体实施例中,所述包衣锅法以85vol%的乙醇制备软材,过30目筛得湿颗粒。包衣锅的转速为60~80r/min,密封滚动10~30min,然后40~60℃,干燥1~2h,然后过20~24目筛制得素丸。所述流化床法包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为30℃,包衣后干燥时间为30min。
一些具体实施例中,所述包衣锅法以40vol%的乙醇制备软材,过60目筛得湿颗粒。包衣锅的转速为60~80r/min,密封滚动10~30min,然后40~60℃,干燥1~2h,然后过40~42目筛制得素丸。所述流化床法包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为25~30℃,包衣后干燥时间为10min。
一些实施例中,所述制备方法以离心-流化造丸法制备素丸后,以流化床法对素丸进行隔离层包衣后,再采用包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
一些具体实施例中,离心-流化造丸法以10wt%羟甲基纤维素钠水溶液为黏合剂,喷雾黏合剂4min后,继续抛光2min,40℃流化床干燥2h,过16~18目筛制得素丸。所述流化床法包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为25~30℃,包衣后干燥时间为10min。
一些具体实施例中,离心-流化造丸法以10wt%PVP水溶液为黏合剂,喷雾黏合剂2min后,继续抛光2min,40℃流化床干燥2h,过35~40目筛制得素丸。所述流化床法包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。
一些实施例中,所述制备方法以丸芯上药法制备素丸后,以流化床法对素丸进行隔离层包衣后,再采用包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
一些具体实施例中,所述丸芯上药法以5wt%PVP水溶液为上药包衣液,包衣温度35~40℃,雾化压力0.16~0.18MPa。包衣后40℃干燥15min,过48~50目筛制得素丸。所述流化床法包衣温度为40~45℃,雾化压力0.16~0.18Mpa包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为25~30℃,包衣后干燥时间为15min。
一些具体实施例中,所述丸芯上药法以2wt%PVP水溶液为上药包衣液,包衣温度35~40℃,雾化压力0.16~0.18MPa。包衣后40℃干燥15min,过48~50目筛制得素丸。所述流化床法包衣温度为40~45℃,雾化压力0.16~0.18Mpa包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为35~40℃,包衣后干燥时间为15min。
一些实施例中,所述制备方法以球状成型机制丸法制备素丸后,以流化床法对素丸进行隔离层包衣后,再采用包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
一些具体实施例中,所述球状成型机制丸法以80vol%乙醇制软材,经40目筛网制粒,置于球状成型机高速滚动成丸,流化床40℃干燥30min,过24~28筛制得素丸;所述流化床法包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为30℃,包衣后干燥时间为15min。
一些实施例中,所述制备方法以挤出滚圆法制备素丸后,以流化床法对素丸进行隔离层包衣后,再采用包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
一些具体实施例中,所述挤出滚圆法以90vol%乙醇制软材,用80目挤出滚圆机挤出,950rpm滚动成丸后,流化床40℃干燥30min,过60~70目筛制得素丸;所述流化床法包衣温度为40℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为40~45℃,包衣后干燥时间为15min。
一些具体实施例中,所述挤出滚圆法以90vol%乙醇制软材,用28目挤出滚圆机挤出,950rpm滚动成丸后,流化床40℃干燥30min,过20~24目筛制得素丸;所述流化床法包衣温度为40~50℃,包衣后干燥时间为15min。所述包衣锅法的包衣温度为40~45℃,包衣后干燥时间为30min。
本发明所述的核桃肽肠溶微丸在制备改善记忆力的保健品中的应用。
本发明提供的核桃肽肠溶微丸能够清除DPPH、OH,具有良好的抗氧化能力,且能够提高大鼠对平台所在位置的空间记忆能力,提高大鼠穿越水迷宫的速度。
本发明还提供了一种改善记忆力的保健品,包括本发明所述的核桃肽肠溶微丸和保健品中可接受的辅料。
本发明提供的保健品中,所述核桃肽肠溶微丸的质量分数为55%。
所述保健品中,所述辅料为微晶纤维素、微晶纤维素和硬脂酸镁。其中,微晶纤维素、微晶纤维素和硬脂酸镁的质量比为84:36:3。
所述保健品的剂型为片剂。
本发明提供的核桃肽肠溶微丸由内至外依次由素丸、隔离包衣层和肠溶包衣层组成;所述素丸由核桃肽、赋形剂和/或丸芯、粘合剂、吸收促进剂、生物粘附剂组成;本发明制备的核桃肽肠溶微丸粒径为200~1000μm,在模拟胃液中120min释放度小于10%,在模拟肠液中45min释放度大于70%;而相比核桃肽原料,在小肠的吸收效率明显提高,具有更高的口服生物利用度。实验结果表明,以大鼠在体肠外翻模型评价了核桃肽原料和肠溶微丸的吸收情况,结果发现,核桃肽肠溶微丸的核桃肽累积吸收量、转运速率和表观渗透系数均显著性高于核桃肽原料组,充分证明本发明的肠溶微丸可以增加核桃肽的肠道吸收,提高核桃肽口服生物利用度。
附图说明
图1示实施例7球状制丸法核桃肽肠溶微丸丸芯图;
图2示实施例8制备核桃肽肠溶微丸与核桃肽原料吸收百分率;其中,图2-a示Asp的吸收百分率,图2-b示Glu的吸收百分率,图2-c示Gly的吸收百分率,图2-d示Arg的吸收百分率;*表示与原料组比较吸收百分率有显著性差异,p<0.05;**表示与原料组比较吸收百分率有极显著性差异p<0.01;
图3示实施例8制备的核桃肽肠溶微丸与核桃肽原料吸收速率常数;其中,图3-a示Asp的吸收速率常数,图3-b示Glu的吸收速率常数,图3-c示Gly的吸收速率常数,图3-d示Arg的吸收速率常数;#表示与原料组比较吸收速率常数有显著性差异,p<0.05;##表示与原料组比较吸收速率常数有极显著性差异p<0.01;
图4示实施例8核桃肽肠溶微丸与核桃肽原料有效渗透系数;其中,图4-a示Asp的渗透系数,图4-b示Glu的渗透系数,图4-c示Gly的渗透系数,图4-d示Arg的渗透系数;&表示与原料组比较有效渗透系数有显著性差异,p<0.05;&&表示与原料组比较有效渗透系数有极显著性差异p<0.01;
图5示核桃多肽原料在人工胃液中DPPH·清除率;
图6示核桃多肽原料在人工胃液中·OH清除率;
图7示实施例8制得的核桃肽肠溶微丸的十二指肠段累计透过量;其中,图7-a示Asp的累计透过量,图7-b示Glu的累计透过量,图7-c示Gly的累计透过量,图7-d示Arg的累计透过量;其中,示游离氨基酸示实施例8核桃肽肠溶微丸;
图8示实施例8制得的核桃肽肠溶微丸的空肠段累计透过量;其中,图8-a示Asp的累计透过量,图8-b示Glu的累计透过量,图8-c示Gly的累计透过量,图8-d示Arg的累计透过量;其中,示游离氨基酸示实施例8核桃肽肠溶微丸;
图9示实施例8制得的核桃肽肠溶微丸的回肠段累计透过量;其中,图9-a示Asp的累计透过量,图9-b示Glu的累计透过量,图9-c示Gly的累计透过量,图9-d示Arg的累计透过量;其中,示游离氨基酸示实施例8核桃肽肠溶微丸;
图10示实验例6制备的微丸压片。
具体实施方式
本发明提供了一种核桃肽肠溶微丸及其制备方法,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
本发明采用的仪器皆为普通市售品,皆可于市场购得。其中,所述核桃肽参照中国发明专利CN105063152A提供的方法制备。
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1
(1)丸芯
核桃肽600g、淀粉200g、环糊精95g、聚氧乙烯吡咯烷酮5g、胆酸钠50g、壳聚糖30g、海藻酸钠20g,混合均匀,85%乙醇制软材,过30目筛得湿颗粒。将湿颗粒置于60~80r/min的包衣锅中,密封滚动10~30min,开盖,锅壁加热至40~60℃,干燥滚动1~2h,丸芯烘箱干燥,20~24目筛网筛分即得丸芯(粒径700~830μm)。
(2)隔离层包衣
将HPMC-E5 76g、滑石粉4g均匀分散于水中得隔离层包衣液;取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将 L30D-55 45g、柠檬酸三乙酯55g均匀分散于水中得肠溶层包衣液;取(2)中隔离层包衣微丸1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度30℃,包衣完成后继续干燥30min,即得肠溶层包衣微丸(粒径700~830μm)。
实施例2
(1)丸芯
核桃肽200g、淀粉150g、微晶纤维素550g、羟甲基纤维素钠10g、聚乙二醇400030g、聚乙烯吡咯烷酮10g、去氧胆酸钠10g、卡波姆5g、魔芋胶5g,混合均匀,40%乙醇制软材过60目筛得湿颗粒。将湿颗粒置于60~80r/min的包衣锅中,密封滚动10~30min后,开盖,锅壁加热至40~60℃,干燥滚动1~2h,流化床干燥,40~42目筛网筛分即得丸芯(粒径355~380μm)。
(2)隔离层包衣
将HPC 194g、滑石粉6g均匀分散于水中得隔离层包衣液。取1中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将醋酸纤维素210g、聚乙二醇20g、邻苯二甲酸酯20g均匀分散于丙酮-乙醇混合溶剂得肠溶包衣液。取(2)中隔离层包衣微丸1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度为25~30℃,包衣完成后继续干燥10min,即得肠溶层包衣微丸(粒径355~380μm)。
实施例3
(1)丸芯
将蔗糖丸芯530g置于离心造粒机中,以10%羟甲基纤维素钠水溶液500g为黏合剂,核桃肽400g、维生素E-TPGS 20g、黄原胶10g置于加料斗内,开启喷浆,喷雾黏合剂4min后,供核桃肽层积完成后,降低喷浆转速,继续抛光2min,出料,室温晾至近干后,40℃流化床干燥2h,16~18目筛网筛分得丸芯(粒径880~1000μm)。
(2)隔离层包衣
将55g均匀分散于水中得包衣液。取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将 L100-55 150g、枸橼酸酯15g、滑石粉35g均匀分散于95%乙醇得包衣液,取(2)中隔离层包衣丸芯1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度25~30℃,包衣完成后继续干燥30min,即得肠溶层包衣微丸(粒径880~1000μm)。
实施例4
(1)丸芯
以10%PVP水溶液300g为黏合剂,将MCC丸芯568g置于离心造粒机中,核桃肽300g、乳糖100g、魔芋胶1g、去氧胆酸钠1g置加料斗内;开启喷浆,喷雾黏合剂2min后,供核桃肽层积完成后降低喷浆转速,继续抛光2min,出料,室温晾至近干后,40℃流化床干燥2h,35~40目筛网筛分得丸芯(粒径380~425μm)。
(2)隔离层包衣
将HPC 49g、滑石粉3g均匀分散于水中得隔离层包衣液。取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将聚丙烯酸树脂Ⅲ号130g、三醋酸甘油酯5g、微粉硅胶4g均匀分散于90%乙醇得包衣液取(2)中隔离层包衣丸芯1000g,采用流化床底喷包衣,包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得肠溶层包衣微丸(粒径380~425μm)。
实施例5
(1)丸芯
将核桃肽300g、黄原胶10g、胆酸钠20g溶于1000g浓度为5%PVP水溶液中,作为上药包衣液,取MCC丸芯620g,采用流化床包衣技术。控制包衣温度35~40℃,雾化压力0.16~0.18MPa。包衣完成后继续40℃干燥15min,48~50目筛网筛分得核桃肽丸芯(粒径270~300μm)。
(2)隔离层包衣
将100g均匀分散于水中得隔离层包衣液。取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。控制包衣温度40~45℃,雾化压力0.16~0.18Mpa,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将醋酸纤维素250g、聚乙二醇25g、邻苯二甲酸酯25g均匀分散于丙酮-乙醇混合液得肠溶层包衣液。取(2)中隔离层包衣微丸1000g,采用流化床底喷包衣。包衣温度25~30℃,包衣完成后继续干燥15min,即得肠溶层包衣丸芯(粒径270~300μm)。
实施例6
(1)丸芯
将核桃肽400g、胆酸钠20g、魔芋胶6g、黄原胶6g溶于1000g浓度为2%的羟甲基纤维素钠水溶液作为上药包衣液,取蔗糖丸芯548g,采用流化床包衣控制包衣温度35~40℃,雾化压力0.16~0.18MPa。包衣完成后继续40℃流化干燥15min,48~50目筛网筛分得核桃肽丸芯(粒径270~300μm)。
(2)隔离包衣
80g均匀分散于水中得隔离层包衣液。取(1)中核桃肽丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。控制包衣温度40~45℃;雾化压力0.16~0.18Mpa,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将230g均匀分散于水中得肠溶包衣液。取(2)中隔离层包衣丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。包衣温度35~40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得肠溶层包衣微丸(粒径270~300μm)。
实施例7
(1)丸芯
将核桃肽350g、微晶纤维素500g、辛烯基琥珀酸淀粉钠80g、羟丙基甲基纤维素20g、胆酸钠20g、壳聚糖30g,干法混合,80%乙醇制软材,经40目筛网制粒,置于球状成型机高速滚动成丸,流化床40℃干燥30min,24~28目筛网筛分得丸芯(粒径600~700μm)。
(2)隔离层包衣
将HPC 60g、硬脂酸镁4g均匀分散于水中得隔离层包衣液。取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将 L30D-55 165g、柠檬酸三乙酯2g、滑石粉13g均匀分散于水中得肠溶层包衣液。取(2)中隔离层包衣丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。包衣温度30℃,包衣完成后继续干燥15min,即得肠溶层包衣微丸(粒径600~700μm)。
实施例8
(1)丸芯
将核桃肽400g、MCC 500g、甲基纤维素50g、胆酸钠20g、魔芋胶50g,干法混合,90%乙醇制软材,用80目经挤出滚圆机挤出并以950rpm滚动成丸后,流化床40℃干燥30min,60~70目筛网筛分得丸芯(粒径212~250μm)。
(2)隔离层包衣
将HPMC 145g、硬脂酸镁5g均匀分散于水中得包衣液。取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。包衣温度40℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将300g均匀分散于水中得肠溶包衣液。取(2)中隔离层包衣丸芯,采用包衣锅包衣。包衣温度40~45℃,包衣完成后继续干燥15min,即得肠溶层包衣微丸(粒径212~250μm)。
实施例9
(1)丸芯
将核桃肽400g、MCC 500g、甲基纤维素50g、胆酸钠20g、魔芋胶50g,干法混合,90%乙醇制软材,用28目经挤出滚圆机挤出并以950rpm滚动成丸后,流化床40℃干燥30min,20~24目筛网筛分得丸芯(粒径700~830μm)。
(2)隔离层包衣
将80g均匀分散于水中得包衣液。取(1)中丸芯1000g,采用流化床底喷包衣。包衣温度40~50℃,包衣完成后继续干燥15min,即得隔离层包衣丸芯。
(3)肠溶层包衣
将200g均匀分散于水中得肠溶包衣液。取(2)中隔离层包衣丸芯,采用流化床底喷包衣。包衣温度40~50℃,包衣完成后继续干燥30min,即得肠溶层包衣微丸(粒径700~830μm)。
实验例1释放度测定
准确称取0.2g各实施例制得的核桃肽微丸,于碾钵中碾碎,加水稀释至200mL,BCA法测定核桃肽含量,计算各微丸载药量。
表1实施例1-9中核桃肽微丸载药量
实施例 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 |
载药量(%) | 32.8 | 8.9 | 20.3 | 16.3 | 13.6 | 19.6 | 18.1 | 19.1 | 19.7 |
按照中国药典2015版规定释放度测定法第一法(转篮法)进行试验。转速为100rpm,温度37士0.5℃。先以900mL pH1.2盐酸溶液为介质,2h后改用900mL pH6.8的磷酸盐缓冲液。定时取样5mL过滤,同时补充等量等温的新鲜溶出介质,BCA法测定核桃肽的含量,计算累积释放度。
表2实施例1-9中核桃肽微丸在模拟胃液中释放度
实施例 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 |
模拟胃液中释放度(%) | 8.6 | 1.5 | 4.5 | 7.8 | 1.3 | 3.2 | 7.5 | 0.4 | 4.2 |
从试验结果可知,各实施例制得微丸在模拟胃液中2h释放度均小于10%,符合药典中肠溶制剂的要求。
表3实施例1-9中核桃肽模拟肠液中释放度
从试验结果可知,各实施例制得微丸在模拟肠液中45min释放度均大于70%,符合药典中肠溶制剂的要求。
实验例2核桃肽肠溶微丸在体肠吸收评价
试验动物:SD大鼠,雄性,200~300g,SPF级,由湖北省实验动物研究中心提供。
取禁食48h的大鼠,取37℃供试药液50mL以1mL·min-1灌流肠段10min,腹腔注射水合氯醛麻醉后,将大鼠固定于恒温手术台上,沿腹中线剪开长约3~4cm的开口,于十二指肠,空肠,回肠各肠段(实验研究的肠段区间皆取10cm,各肠段区间如下:十二指肠段自幽门1cm处开始;空肠段离幽门15cm处开始;回肠段自盲肠上行20cm处开始)两端切口,用37℃的K-R将内容物冲洗干净,插管并结扎固定。取37℃供试药液50mL以1mL·min-1灌流肠段10min,然后将流速降至0.25mL·min-1,同时开始计时,约30min后,吸收达到稳定状态。进口处用已知重量的装供试液EP管的灌流,出口处用另一已知重量EP管收集,每隔15min迅速更换供试小瓶和收集小瓶,称重,计算灌入和收集的供试液重量。实验结束后处死大鼠,剪下被考察的肠段,测量长度(l)和内径(r)。
采用氨基酸柱前衍生法分别测定供试液和收集液中天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸和精氨酸含量,计算核桃肽吸收速率常数(Ka)、表观吸收系数(Papp)、有效吸收系数。
V=πr2l
Vin=min/ρin
Vout=mout/ρout
P%=(1-Cout/Cin×Vout/Vin)×100%
Ka=(1-Cout/Cin×Vout/Vin)×QinV
Peff=-Qinln(Cout/Cin×Vout/Vin)/2πrl
以上公式中:V为灌流肠段的体积(mL),Vin和Vout分别为密度校正后肠道进出口灌流液的体积(mL),min和mout分别为进出口灌流液的质量(g),ρin和ρout分别为供试液和收集液的密度,Cin和Cout分别为肠道进出口灌流液的药物浓度(μg/mL),Qin为灌流速度(mL/min)。
实施例8制得的核桃肽肠溶微丸及核桃肽原料在各肠断的吸收情况见图2~4。由实验结果可知,相比核桃肽原料药,核桃肽肠溶微丸在各肠段的吸收速率常数、表观吸收系数、有效吸收系数均有显著提高(或有提高趋势)。可认为本发明提供的核桃肽肠溶微丸有效地提高了核桃肽的小肠吸收效率,从而赋予核桃肽更高的口服生物利用度。
实验例3核桃多肽在人工胃液中的抗氧化活性变化
1.核桃多肽清除DPPH·测定
1.1方法
样品配制:称取核桃多肽原料适量,加入37℃预热的人工胃液适量,配成4mg/mL的核桃多肽溶液,摇匀,于37℃水浴下振荡(50rpm)温孵,于不同时间点0min、30min、45min、60min取样,稀释50倍,检测其DPPH·清除率。
检测方法:室温条件下,将1mL超纯水与1mL79μg/mL的DPPH·乙醇溶液混合,放置30min,用50%乙醇作参比于517nm处测定吸光度A对;测定样品清除能力时,将1mL样品与1mL79μg/mL的DPPH·乙醇溶液混合,放置30min后,以同浓度样品作为参比测定其吸光度A样。自由基清除率按下列公式计算:
1.2结果及分析
由图5可知,核桃多肽原料在人工胃液中孵育60min后,其DPPH·的清除率明显下降。说明胃酸能显著降低核桃多肽原料对DPPH·清除率,间接证明核桃肽肠溶微丸的包衣层可以保护内部的含药丸芯不被胃酸作用,从而保留核桃多肽对DPPH·清除能力。
2.核桃多肽清除·OH测定
2.1方法
样品配制:称取核桃多肽原料适量,加入37℃预热的人工胃液适量,配成4mg/mL的核桃多肽溶液,摇匀,于37℃水浴下振荡(50rpm)温孵,于不同时间点0min、30min、45min、60min取样,稀释1倍后,检测其·OH清除率。
检测方法:室温条件下,配制用超纯水分别配制4mol/L的FeSO4·7H2O、过氧化氢溶液,用无水乙醇配制4mol/L的水杨酸。按顺序分别加入供试样品、硫酸亚铁溶液、水杨酸混匀,反应10min后,加入一定量的过氧化氢溶液混匀,于37℃反应20min,于510nm检测吸光度。
其中A0为空白对照的吸光度值,Ax为加样品的吸光度值,Ax0为不加显色剂的吸光度值。
2.2结果及分析
由图6可知,核桃多肽原料在人工胃液中孵育15min后,其·OH的清除率清除率明显下降。说明胃酸能显著降低核桃多肽原料对·OH清除率,间接证明核桃肽肠溶微丸的包衣层可以保护内部的含药丸芯不被胃酸作用,从而保留核桃多肽对·OH清除能力。
3.核桃多肽总抗氧化能力测定
3.1方法
样品配制:称取核桃多肽原料适量,加入37℃预热的人工胃液适量,配成4mg/mL的核桃多肽溶液,摇匀,于37℃水浴下振荡(50rpm)温孵,于不同时间点0min、30min、45min、60min取样,稀释20倍后,加FRAP工作液,检测其吸光度。
FRAP工作液的配制:300mmol/L醋酸盐缓冲液、10mmol/L TPTZ的40mmol/L盐酸溶液,20mmol/L FeCl3溶液,以10:1:1的体积比混合,备用。
FeSO4系列浓度溶液的配制:精密称取FeSO40.0139g,加水溶解稀释,配制成0.05mmol/L、0.1mmol/L、0.2mmol/L、0.3mmol/L、0.4mmol/L、0.5mmol/L的溶液。
3.2结果及分析
表4核桃多肽胃液孵育样品总抗氧化能力
孵育时间(min) | 摩尔当量(mmol/mmol) |
0 | 7.19±0.14 |
15 | 5.07±0.18 |
30 | 5.62±0.22 |
45 | 5.82±0.22 |
60 | 5.73±0.13 |
以上所述仅是本发明的优选实施方式,并非对本发明作任何形式上的限制。应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
实验例4核桃肽肠溶微丸离体肠吸收评价
取健康的SD雄性大鼠禁食48h,每组4只,腹腔注射10%水合氯醛(4mL/kg),待大鼠麻醉后固定在手术板上。剖开腹腔,分别迅速取出约15cm长的十二指肠、空肠、回肠(十二指肠段从幽门开始,空肠段离幽门15cm处开始,回肠段自盲肠上行20cm开始)。清理肠系膜上的脂肪组织,放入4℃的K-R营养液中漂洗数秒;用细玻璃棒翻转肠段,冲洗肠段内容物,手术线分别将翻转后的各肠段结扎成10cm长的小囊,一端扎紧,另一端固定于玻璃细管上,供取样和补充营养液用,每个小囊中加入2mL的K-R液。将肠囊悬浮在40mL供试品溶液中,37℃水浴保温,持续通入95%氧气维持细胞活性。
核桃多肽微丸供试品溶液:称取实施例8制备核桃肽肠溶微丸,加人工胃液孵育60min后,调节pH至7.2,加入一定量K-R营养液配制成含核桃多肽浓度为4mg/mL的供试品溶液,即得。
游离氨基酸供试品溶液:根据核桃多肽原料氨基酸分析结果,按配制浓度为4mg/mL核桃多肽中含有氨基酸的量称取天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸、精氨酸按比例混合,加入K-R营养液溶解,即得。
在预设的时间点(15,30,45,60,90,120min)取0.5mL肠囊液待测,并补充等体积的空白K-R营养液。实验结束后取出不同肠段,测量实验肠段自然伸展状态下的长度和宽度。取200μL待测样品进行水解,过滤挥干后,采用异硫氰酸苯酯对氨基酸进行柱前衍生,进高效液相检测(扣除相应肠段未加药品的空白K-R营养液孵育的肠吸收)。
计算各肠囊不同时间点累积吸收量(Qi),再根据各段肠囊对时间做线性回归,直线的斜率即为吸收速率常数(Ka)。
累积透过量:
表观渗透系数:
其中Q为不同肠段单位面积药物累积吸收量(μg·cm-2);A为各段肠囊自然伸展的内表面积;Cn为不同时间点从肠囊内取出液体药物浓度(μg/mL);V0为肠囊内初始加入K-R液体积(mL),V为不同时间点从肠囊内取出液体体积(mL)。
结果分析:
由图7、8、9可见,微丸在各肠段的累积透过量有差异:十二指肠>空肠≈回肠;在十二指肠、空肠、回肠,微丸累积透过量曲线均高于游离氨基酸;天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸在各肠段的2h累积透过量,微丸高于游离氨基酸,且大部分具有极显著性差异;精氨酸在十二指肠的2h累积透过量,微丸极显著高于游离氨基酸,在空肠段、回肠段比较无显著性差异;天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸、精氨酸在各肠段的累积透过量,微丸相对于游离氨基酸分别提高了3.9、2.7、3.3倍。
表5天冬氨酸在各肠段吸收速率常数和表观渗透系数
Ka/(*10-2min-1);Papp/(*10-4cm·min-1)。
**表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有极显著性差异,P<0.01;#表示与游离氨基酸组比较表观渗透系数有显著性差异,P<0.05。
表6谷氨酸在各肠段吸收速率常数和表观渗透系数
Ka/(*10-2min-1);Papp/(*10-4cm·min-1)。
*表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有显著性差异,P<0.05;**表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有极显著性差异,P<0.01;#表示与游离氨基酸组比较表观渗透系数有显著性差异,P<0.05。
表7甘氨酸在各肠段吸收速率常数和表观渗透系数
Ka/(*10-2min-1);Papp/(*10-4cm·min-1)。
*表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有显著性差异,P<0.05;**表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有极显著性差异,P<0.01;#表示与游离氨基酸组比较表观渗透系数有显著性差异,P<0.05;##表示与游离氨基酸组比较表观渗透系数有极显著性差异,P<0.01。
表8精氨酸在各肠段吸收速率常数和表观渗透系数
Ka/(*10-2min-1);Papp/(*10-4cm·min-1)。
*表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有显著性差异,P<0.05;**表示与游离氨基酸组比较吸收速率常数有极显著性差异,P<0.01;#表示与游离氨基酸组比较表观渗透系数有显著性差异,P<0.05;##表示与游离氨基酸组比较表观渗透系数有极显著性差异,P<0.01。
由表5、6、7、8可见,微丸与游离氨基酸比较,天冬氨酸、谷氨酸、精氨酸在各肠段的吸收速率常数、表观渗透系数,均显著性提高;甘氨酸在十二指肠的吸收速率常数、表观渗透系数,均显著性提高,在空肠、回肠段,微丸略低于游离氨基酸,差异无显著性
实验例5辅助改善记忆评价—Morris水迷宫实验
实验分组:
本实验例采用实施例8制备的微丸。将核桃肽原料和核桃肽微丸分别添加至正常饲料中,配制成含核桃肽的饲料。80只昆明小鼠适应性喂养3天后,随机分为8组,每组各10只,分别为空白组、模型组、核桃肽原料低、中、高剂量组(Y1、Y2、Y3)以及核桃肽微丸低、中、高剂量组(W1、W2、W3)。空白组、模型组给予正常饲料;核桃肽原料组给予含核桃肽原料的饲料,通过小鼠进食量控制其核桃肽给药量分别为0.3g/kg、1g/kg、3g/kg;核桃肽微丸组给予含核桃肽微丸的饲料,通过小鼠进食量控制其核桃肽给药量分别为0.3g/kg、1g/kg、3g/kg。
连续给药后,实验前一天,大鼠自由游泳2min以熟悉环境,其间引导动物站上平台10s。次日开始训练,训练期间继续给样。
定位航行试验:用于测量实验动物对水迷宫学习和记忆获得的能力。训练天数依据动物的学习能力确定,每完成4个象限的训练当1个循环,动物每次从1个象限的入水点入水,将动物面向池壁放入水中,仪器自动记录动物寻找并爬上平台的路线图、动物从入水到找到水下隐蔽平台并站立其上所需时间(逃避潜伏期)及游泳总路程。如果动物在90s内未找到平台,则需将其引至平台,这时潜伏期以90s计,让动物在平台停留10s后,再放回笼中。如此重复完成4个象限的试验,象限选择和各实验组动物训练顺序应随机确定或交叉进行。直至80-90%以上的动物在规定时间内找到平台或至少完成3个循环的试验,可终止试验。
空间探索试验:定位航行试验结束5天后,将水下平台撤除,按照定位航行试验的方法重复1个循环(共4个象限)的试验,动物每次从1个象限的入水点入水,记录90s内小鼠在水池4个象限中的游泳距离、路径、时间,据此推算平台所在象限数据占总距离、总时间的百分比及穿越平台的次数,用来反映大鼠对平台所在位置的空间记忆能力,以判断动物记忆储存及提取再现能力。
表9 Morris水迷宫实验数据表
总路程(mm) | 平均速度(mm/s) | 成功潜伏时间(s) | |
空白 | 10508.84 | 182.74 | 52.02 |
模型 | 17133.63 | 215.32 | 77.43 |
W1 | 15343.54 | 211.45 | 70.31 |
W2 | 16264.97 | 211.92 | 74.01 |
W3 | 14138.43 | 208.72 | 63.41 |
Y1 | 15699.00 | 199.78 | 75.36 |
Y2 | 14945.32 | 194.26 | 74.55 |
Y3 | 13029.18 | 177.30 | 71.88 |
正常组 | 9386.43 | 169.65 | 53.04 |
结果表明,本发明提供的核桃肽肠溶微丸能够改善动物记忆储存及提取在先能力。
实验例6微丸压片
称取实施例8制备的核桃肽肠溶微丸150g、微晶纤维素(PH-200)84g、微晶纤维素(UF-711)36g、硬脂酸镁3g,混合均匀,用Φ12冲头,于单冲压片机上压片。
片面光滑,平整,掰开后基本为整丸,未见破丸。片重约为0.51~0.54g,硬度约为60~90N,见附图10。
以上仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (10)
1.一种核桃肽肠溶微丸,其特征在于,由内至外依次由素丸素丸、隔离包衣层和肠溶包衣层组成;
所述素丸由核桃肽、赋形剂和/或丸芯、粘合剂、吸收促进剂、生物粘附剂组成;
所述赋形剂选自蔗糖、环糊精、淀粉、甘露醇、木糖醇、山梨醇、微晶纤维素、乳糖、低聚半乳糖、辛烯基琥珀酸淀粉钠、醋酸纤维素、预胶化淀粉中至少一种;
所述丸芯为蔗糖丸芯或微晶纤维素丸芯;
所述粘合剂选自聚乙烯吡咯烷酮、羟甲基纤维素钠、甲基纤维素、羟丙基纤维素、羟丙基甲基纤维素、乙基纤维素、聚乙二醇4000、聚乙二醇6000中至少一种;
所述吸收促进剂选自胆酸钠、癸酸钠、维生素E-TPGS、去氧胆酸钠、泊洛沙姆中至少一种;
所述生物粘附剂选自卡波姆、壳聚糖、海藻酸钠、海藻酸钙、魔芋胶、黄原胶、阿拉伯胶、角叉菜胶、可得然胶、明胶、瓜尔胶、西黄蓍胶中至少一种;
所述隔离包衣层由水溶性高分子材料和抗粘剂A组成或为预混隔离层包衣料;其中所述水溶性高分子材料为羟丙纤维素、羟丙甲纤维素中至少一种;所述抗粘剂A为滑石粉、微粉硅胶、硬脂酸镁中至少一种;所述预混隔离层包衣料为
所述肠溶包衣层由疏水性高分子材料和组分B组成或为预混肠溶包衣料;所述组分B由增塑剂B和/或抗粘剂B组成;所述疏水性高分子材料选自聚丙烯酸树脂、乙基纤维素、醋酸纤维素、羟丙基甲基纤维素酞酸酯中至少一种;所述增塑剂B选自柠檬酸三乙酯、聚乙二醇、三醋酸甘油酯、枸橼酸酯、邻苯二甲酸酯中至少一种;所述抗粘剂B选自滑石粉、微粉硅胶、硬脂酸镁中至少一种;所述预混肠溶包衣料为或
2.根据权利要求1所述的核桃肽肠溶微丸,其特征在于,所述素丸、隔离包衣层和肠溶包衣层的质量比为(970~1020):(52~200):(100~300)。
3.根据权利要求1所述的核桃肽肠溶微丸,其特征在于,所述素丸中各组分的质量份为:
4.根据权利要求1所述的核桃肽肠溶微丸,其特征在于,所述隔离包衣层中水溶性高分子材料和抗粘剂A的质量比为(49~194):(3~6)。
5.根据权利要求1所述的核桃肽肠溶微丸,其特征在于,所述肠溶包衣层中疏水性高分子材料、增塑剂B、抗粘剂B的质量比为(45~250):(2~55):(0~35)。
6.根据权利要求1~5任一项所述的核桃肽肠溶微丸,其特征在于,由如下质量份的原料制成:
核桃肽400份、微晶纤维素500份、甲基纤维素50份、胆酸钠20份、魔芋胶50份;
羟丙甲纤维素145份和硬脂酸镁5份;
800份。
7.权利要求1~6任一项所述的核桃肽肠溶微丸的制备方法,其特征在于,包括:
以包衣锅法、离心-流化造丸法、挤出滚圆法、球状成型机制丸法、高剪切制粒法、热熔融挤出法或丸芯上药法制备素丸;
以流化床法或锅包衣法对所述素丸进行隔离层包衣后,再采用流化床法或包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
8.根据权利要求7所述的制备方法,其特征在于,以挤出滚圆法制备素丸后,以流化床法对素丸进行隔离层包衣后,再采用包衣锅法进行肠溶层包衣,制得核桃肽肠溶微丸。
9.权利要求1~6任一项所述的核桃肽肠溶微丸,或权利要求7或8所述制备方法制得的核桃肽肠溶微丸在制备改善记忆力的保健品中的应用。
10.一种改善记忆力的保健品,其特征在于,包括权利要求1~6任一项所述的核桃肽肠溶微丸,或权利要求7或8所述制备方法制得的核桃肽肠溶微丸和保健品中可接受的辅料。
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---|---|---|---|
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