CN108285878A - 高产甘露醇的柠檬明串株菌hm1菌株及发酵制备甘露醇的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1菌株及发酵制备甘露醇的方法,更详细地涉及可高产甘露醇的柠檬明串珠菌及利用柠檬明串珠菌HM1发酵制备甘露醇的方法以及柠檬明串珠菌HM1菌株及其发酵生产的甘露醇在食品医药化工上的应用。本发明利用响应面设计对柠檬明串珠菌HM1产甘露醇的发酵条件进行优化,建立了因素与响应值之间的二次回归模型,可快速有效的研究多个因素之间的交互作用对响应值的影响。相比于以往的优化试验,具有试验次数少、周期短、综合性好等优点,在生物学领域具有广泛的应用前景。
Description
技术领域
本发明涉及高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1菌株及发酵制备甘 露醇的方法,更详细地涉及可高产甘露醇的柠檬明串珠菌及利用柠檬 明串珠菌HM1发酵制备甘露醇的方法、以及柠檬明串珠菌HM1菌株 及其发酵生产的甘露醇在食品医药化工上的应用。
背景技术
甘露醇(Mannitol)又名D-甘露糖醇(D-Mannitol),具有清凉的甜味, 不易吸潮,热量低、无毒、无副作用等特点。在人体生理代谢中,甘 露醇被人体吸收后的代谢不依靠胰岛素,不提高血糖值。甘露醇不会 作为口腔微生物的营养源,可抑制突变链球菌的生长繁殖。
由于甘露醇具有特殊的物理和化学性质,因此在食品、医药和化 工等行业有着广泛应用。在医药上,甘露醇作为高渗降压药,能快速 降低颅内压,还可用作输液和针剂配料、各种片剂的赋型剂和矫味剂、 干冻针剂的载体;在化学工业上,甘露醇可以作为合成树脂和涂料的 原料、聚氯乙烯的增塑剂、合成洗涤剂的助洗剂及织物柔软剂等;在 食品工业上,甘露醇可作食品的防粘剂,也可作糖尿病、肥胖病人的 低热值食品和低糖食品的甜味剂和功能性食品添加剂。
甘露醇作为一种应用广泛的功能性糖醇,其生产方法有自然提取 法、化学合成法和生物转化法。其中,利用生物转化法中的微生物发 酵法进行甘露醇的生产,安全无毒,绿色环保,是目前最具有潜力的 生产方法。能够发酵生产甘露醇的微生物有酵母菌、丝状真菌和乳酸 菌,其中以异型发酵乳酸菌居多。异型发酵乳酸菌为食品级微生物, 利用该微生物进行甘露醇的生产,安全无毒,绿色环保。
甘露醇作为一种功能性糖醇,在医药、食品和化工领域已得到了 广泛了应用。近些年,随着甘露醇使用量的增多及应用领域的扩大, 甘露醇的市场需求量不断增加,市场前景广阔。
发明内容
本发明对柠檬明串珠菌进行化学诱变,筛选具有高产甘露醇能力 的诱变菌株,对其进行发酵特性的研究,提升诱变菌株的甘露醇生产 量。为甘露醇的生物制造提供优良菌株,同时,促进饲料行业的发展, 对绿色饲料添加剂的开发与应用起到推动和创新的作用。
本发明涉及生物材料样品保藏“CGMCC No.14234”,于2017年6 月12日保藏至中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(北京 市朝阳区北辰西路1号院3号),并命名为柠檬明串珠菌Leuconostoc citreum。
本发明的目的在于,提供一种高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其 特征在于,以甲基磺酸乙酯(EMS)作为化学诱变剂,诱变柠檬明串珠菌。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,通过 磷酸转酮酶途径代谢生成甘露醇。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述 EMS的浓度为0.5~1%的范围,处理时间为15-60分钟。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述 EMS处理条件为0.5%EMS,处理45min。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述 诱变柠檬明串珠菌经果糖的改良MRS-果糖培养基中发酵培养得到。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述 果糖质量浓度设置成50g/L~200g/L的范围。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述 发酵温度选自20℃~40℃的范围。
本发明所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述 发酵的初始pH设置成5.0~7.5的范围。
本发明还提供一种柠檬明串珠菌HM1菌株在食品医药化工中的应 用。
本发明进一步提供一种制备甘露醇的方法,其特征在于,包括 利用权利要求1至9中所述柠檬明串珠菌HM1的发酵步骤。
本发明所述的方法制备的甘露醇在食品医药化工中的应用。
甘露醇作为柠檬明串珠菌发酵过程中的代谢产物,在食品、医药 和化工领域有着广泛的应用。在医药行业,甘露醇具有利尿、降压等 功效,可作为片剂的赋形剂和口中清凉剂等;在食品行业,甘露醇可 作为功能性糖醇供减肥和糖尿病患者食用,食品中加入甘露醇可改善 口感、延长食品的货架期;在化工领域,可作为乳化剂、分散剂和保 湿剂等。
附图说明
图1为示出根据本发明的EMS不同处理条件对柠檬明串珠菌95 细胞存活率的影响结果的图表。
图2为示出根据本发明的柠檬明串珠菌95EMS诱变处理筛选结 果的图片。
图3为示出根据本发明的柠檬明串珠菌KM20EMS诱变处理筛选 结果的图片。
图4为示出根据本发明的柠檬明串珠菌E28EMS诱变处理筛选结 果的图片。
图5为图示根据本发明的甘露醇标准曲线。
图6为图示根据本发明的果糖标准曲线。
图7为图示根据本发明的柠檬酸串珠菌95-9生长曲线。
图8的a部分为示出根据本发明的不同碳源质量浓度下甘露醇含 量的变化的图表,图8的b部分为示出根据本发明的不同碳源质量浓 度下果糖含量的变化的图表。
图9的a部分为示出根据本发明的不同氮源种类下甘露醇含量的 变化的图表,图9的b部分为示出根据本发明的不同氮源种类下果糖 含量的变化的图表。
图10的a部分为示出根据本发明的不同氮源质量浓度下甘露醇含 量的变化的图表,图10的b部分为示出根据本发明的不同氮源质量浓 度下果糖含量的变化的图表。
图11的a部分为示出根据本发明的不同温度条件下甘露糖含量的 变化的图表,图11的b部分为示出根据本发明的不同温度条件下果糖 含量的变化的图表。
图12的a部分为示出根据本发明的不同发酵初始pH条件下甘露 醇含量的变化的图表,图12的b部分为示出根据本发明的不同发酵初 始pH条件下果糖含量的变化的图表。
图13为示出根据本发明的碳源质量浓度与温度对甘露醇产量影 响的响应面和等高线图。
图14为示出根据本发明的碳源质量浓度与发酵初始pH对甘露醇 产量影响的响应面和等高线图。
图15为示出根据本发明的温度与发酵初始pH对甘露醇产量影响 的响应面和等高线图。
具体实施方式
实施例1:高产甘露醇柠檬明串珠菌的筛选
本发明采用甲基磺酸乙酯(ethylmethyl sulfonate,EMS)作为化学诱 变剂,分别对三株产甘露醇的柠檬明串珠菌(Leuconostoc citreum 95, Leuconostoc citreum E28,Leuconostoc citreum KM 20)进行化学诱变, 确定EMS诱变处理柠檬明串珠菌的最佳条件,筛选能够高产甘露醇的 诱变菌株。
本发明采用柠檬明串珠菌95、E28、KM20,均为延边大学农学院 食品科学系食品科学实验室保存菌种,其中柠檬明串珠菌E28由自制 辣白菜分离得到。
在本发明中,蛋白胨、MRS琼脂、MRS肉汤(青岛高科园海博生 物技术有限公司,生化试剂);酵母膏、甘露醇(北京奥博星生物技术有 限责任公司,生化试剂);磷酸氢二钾、氯化钠、硫酸亚铁、硫酸锰、 氯化钙、柠檬酸、柠檬酸钠、果糖(天津市科密欧化学试剂有限公司, 分析纯);硫酸镁(沈阳市试剂五厂,分析纯);葡萄糖(天津市北辰方正 试剂厂,分析纯);甲基磺酸乙酯(西格玛化学公司)。
在本发明中,培养基与溶液的配制按照以下方法进行:
1.菌种活化与初培养
MRS培养基(/L):蛋白胨10g,牛肉浸粉5g,酵母浸粉4g,葡 萄糖20g,磷酸氢二钾2g,柠檬酸三铵2g,醋酸钠5g,硫酸镁0.2g, 硫酸锰0.05g,琼脂15g,吐温80 1mL,pH 6.2±0.2,121℃高压灭菌15~20min。
MRS肉汤(/L):蛋白胨10g,牛肉粉8g,酵母粉4g,葡萄糖20g, 磷酸氢二钾2g,柠檬酸氢二铵2g,乙酸钠5g,硫酸镁0.2g,硫酸锰 0.04g,吐温80 1mL,pH 5.7±0.2,118℃高压灭菌15min。
2.筛选培养基
MRS-果糖固体培养基(/L):酵母膏5g,蛋白胨5g,K2HPO4 20g, 果糖10g,盐混合溶液10mL,琼脂20g,自然pH,121℃高压灭菌15 min(果糖单独灭菌)。
MRS-葡萄糖固体培养基(/L):酵母膏5g,蛋白胨5g,K2HPO4 20g,葡萄糖10g,盐混合溶液10mL,琼脂20g,自然pH,121℃高 压灭菌15min(葡萄糖单独灭菌)。
3.种子与发酵培养基
种子培养基(/L):同MRS肉汤
发酵培养基(/L):酵母膏5g,蛋白胨5g,K2HPO4 20g,果糖30g, 盐混合溶液10mL,自然pH,121℃高压灭菌15min(果糖单独灭菌)。
4.溶液
盐混合溶液(g/L):MgSO4·H2O 20,NaCl 1,FeSO4 2,MnSO4 14, CaCl2·H2O 13。紫外杀菌30min,0.22μm水系滤膜过滤。
柠檬酸-柠檬酸钠缓冲溶液(pH 5.5):配制0.1M的柠檬酸和柠檬 酸钠溶液各100mL,按不同比例将两种溶液混合至pH 5.5。
0.85%氯化钠溶液:称取0.85g氯化钠溶解于蒸馏水中,定容至 100mL。
5.菌种活化
将保藏于-80℃冰箱中的3株柠檬明串珠菌在室温下解冻,挑取 一菌环的细胞在MRS培养基中划线活化,30℃倒置培养24h,4℃保藏 用于后期实验。
6.EMS诱变柠檬明串珠菌
以柠檬明串珠菌95为实验菌株,挑取活化后的单一菌落,接种于 1.5mL的MRS肉汤中,30℃静置培养24h,以1%的接种量接种到25mL MRS肉汤中,确定菌株生长进入对数期的培养时间。将培养到达对数 期的菌悬液离心(6000r/min,10min)后倒弃上清液,加入10mLpH为 5.5的柠檬酸缓冲溶液清洗2次,倒弃缓冲液,将菌体溶解于同体积的 缓冲溶液中,取1.5mL溶液用EMS进行诱变处理,将处理后的菌体清 洗,经梯度稀释(0.85%的NaCl)后涂布平板。30℃倒置培养24h,通过 菌落计数的方法计算菌株的细胞存活率。以不加EMS的菌悬液为对照 组,每组三个平行。
7.EMS最佳诱变条件的确定
分别考察EMS的不同浓度(0.5、1%)和不同处理时间(15、30、45、 60min)对柠檬明串珠菌95诱变优劣的影响,通过计算菌株的细胞存活 率来确定EMS诱变处理的最佳条件,最佳条件下菌株的细胞存活率为 30%~50%。
8.诱变菌株的筛选
确定最佳诱变条件后,将3株柠檬明串珠菌经EMS处理,用缓冲 溶液清洗三次,然后用0.85%的氯化钠溶液进行梯度稀释,将稀释后的 菌悬液涂布于MRS-果糖固体培养基中30℃培养24h,观察菌落的大小, 第一轮挑选出形态较小的菌落,然后将小菌落分别点样于MRS-果糖和 MRS-葡萄糖固体培养基中。30℃培养24h,筛选在MRS-果糖固体培养 基中生长受到抑制,而在MRS-葡萄糖固体培养基中长势良好的菌株。
9.发酵试验
为评估诱变菌株的甘露醇生产能力,将保藏的诱变菌株在MRS培 养基中活化,挑取单一菌落接种于1mL MRS肉汤中,30℃静置培养 24h作为种子培养液,将种子液以1%的接种量接种到含有3%果糖的改 良MRS-果糖培养基中,30℃发酵培养24h,通过测定菌株的甘露醇产 量筛选出能够高产甘露醇的诱变菌株。
在本发明中,采用高效液相色谱测定甘露醇产量,首先,
标准溶液的配制:精密称取甘露醇标准品5g,用去离子水定容至 50mL,配制成质量浓度为0.1g/mL的标准溶液。
标准曲线的绘制:将标准溶液逐级稀释成五种不同质量浓度(10、 5、2.5、1.25、0.625mg/mL)的标准工作液,分别定容于10mL容量瓶中, 上样前用0.22μm的水系滤膜过滤。进样量20μL,以甘露醇的质量浓 度为横坐标,峰面积为纵坐标,绘制标准曲线。
样品前处理:将发酵过程中定期取出的发酵液离心(13000r/min, 5min),取上清液适量用去离子水稀释后经0.22μm的水系滤膜过滤, 上机检测。
分析条件:色谱柱为Shodex SC1011配位体交换色谱柱 (8.0mm×300mm,6μm);柱温为80℃;流动相为去离子水,用0.22μm 水系滤膜过滤、脱气后上机;流速0.6mL/min;进样体积20μL;检测 器为示差折光检测器,检测池温度40℃。
计算公式:X=C×V
式中:X-发酵液中的甘露醇产量(g/L)
C-样品稀释液中的甘露醇浓度(g/L)
V-稀释倍数
其次,菌株细胞存活率的计算,
细胞存活率%=X/Y×100%
式中:Y-对照组菌落总数
X-诱变处理组菌落总数
如上所述,在不同浓度EMS和不同处理时间对柠檬明串珠菌95 细胞存活率的影响结果如图1所示。用1%的EMS处理菌株,处理15min 和30min时细胞存活率在20%左右,处理45min时菌株的细胞存活率 显著增高达到50%以上,超出了最佳存活率的范围。用0.5%的EMS 处理菌株,随着时间的延长,菌株的细胞存活率整体呈下降趋势,处 理30min和45min时,存活率在最佳存活率范围之内,为保证诱变效 果良好,确定EMS处理条件为0.5%EMS,处理45min。
对于产甘露醇诱变菌株的筛选中,本发明将经EMS处理后的诱变 菌株涂抹于含有1%果糖的MRS-果糖固体培养基中,进行初筛。假设 柠檬明串珠菌的果糖激酶基因发生了突变,则以果糖作为唯一碳源的 磷酸转酮酶代谢途径受到影响,细胞生长就会受到抑制。通过观察培 养基中诱变菌株的生长状态,菌落小的菌株即为果糖激酶基因发生诱 变的菌株。将目标菌株分别接种于MRS-果糖固体培养基和MRS-葡萄 糖固体培养基中,筛选果糖培养基中生长受到抑制,葡萄糖培养基中 长势良好的菌株为目标菌株。在进行复筛的同时排除两种情况,一种 是经EMS诱变后在果糖培养基和葡萄糖培养基中生长都受到抑制的菌株,另一种是菌株在诱变后重新利用果糖激酶在果糖培养基中长势良 好的菌株。
图2为柠檬明串珠菌95的筛选结果。经初筛,共有13株诱变菌 株满足在MRS-果糖固体培养基中的生长要求,将这些菌株进行复筛, 通过比较可以看出,95-8、95-9、95-12这3株诱变菌株符合在两种培 养基中的生长要求,为目标菌株。
图3为柠檬明串珠菌KM20的筛选结果。经初筛,共有11株诱变 菌株满足在MRS-果糖固体培养基中的生长要求,将这些菌株进行复 筛,通过比较可以看出,KM20-1、KM20-10这2株诱变菌株符合在两 种培养基中的生长要求,为目标菌株。
图4为柠檬明串珠菌E28的筛选结果。经初筛,共有19株诱变菌 株满足在MRS-果糖固体培养基中的生长要求,将这些菌株进行复筛, 通过比较可以看出,E28-14、E28-17、E28-19这3株诱变菌株符合在 两种培养基中的生长要求,为目标菌株。
以下,为比较诱变菌株与原菌株的甘露醇生产能力,将原菌株与 筛选出来的诱变菌株接种到MRS-果糖发酵培养基中,发酵培养24小 时后取样、离心,利用高效液相色谱法测定发酵液中的甘露醇产量, 甘露醇标准曲线如图5所示。如图5所示,以甘露醇的质量浓度(g/L) 为横坐标,峰面积为纵坐标绘制标准曲线,在0.625~10g/L范围内,甘 露醇的质量浓度与峰面积的线性关系良好,拟合度高。线性回归方程 为y=264977.829387x-2619.569875相关系数R2=0.999995。
诱变菌株与原菌株的甘露醇产量如表1、表2和表3所示。
表1柠檬明串珠菌95与诱变菌株的甘露醇产量
表2柠檬明串珠菌E28与诱变菌株的甘露醇产量
表3柠檬明串珠菌KM20与诱变菌株的甘露醇产量
由表可知,柠檬明串珠菌E28和KM20经诱变后,诱变菌株的甘 露醇产量均没有原菌株高,柠檬明串珠菌95经诱变后,三株诱变菌株 的甘露醇产量均高于原菌株,其中95-9菌株的甘露醇产量最高为 10.29g/L。
将诱变后得到的95-9菌株命名为柠檬明串珠菌HM1,在中国微生 物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏(CGMCC No:14234)
实施例2:高产甘露醇诱变菌株的发酵条件
通过单因素和响应面试验对诱变菌株进行发酵条件优化,获得诱 变菌株产甘露醇的最佳发酵条件。
本实施方式中,柠檬明串珠菌HM1,由实施例1诱变筛选得到。
本实施方式中,作为基础发酵培养基(g/L)采用以下组合:蛋白胨 10,酵母膏5,柠檬酸铵2,磷酸氢二钠2,硫酸镁0.1,硫酸锰0.05, 果糖作为底物,pH6.5,121℃高压灭菌15min(果糖单独灭菌)
将经诱变后筛选得到的诱变菌株加入15%的甘油保藏于-80℃冰 箱中。待实验前将菌株在室温下解冻,接种一菌环的细胞在固体培养 基中划线活化,30℃倒置培养24h,4℃保藏用于后期实验。
取4℃保藏的平板,挑取单一菌落接种于20mL的MRS肉汤中, 30℃,120r/min条件下震荡培养12h,作为种子培养液。
将种子培养液以1%的接种量接种到装有100mL发酵培养基的 250mL锥形瓶中,30℃、120r/min震荡培养72h,发酵过程定期(0、4、 8、12、16、20、24、36、48、60、72h)取样测定甘露醇和果糖含量。
挑取活化好的单一菌落于20mLMRS肉汤中30℃培养12h,以1% 的接种量接种到100mL液体培养基中,30℃静置培养,每隔4h测定菌 液的吸光度值(OD600)和pH值,以时间为横坐标,吸光度值为纵坐标绘 制生长曲线。
本发明的实施方式中,对果糖质量浓度、氮源种类、氮源质量浓 度、发酵温度和发酵初始pH这五个因素做了单因素条件的优化,确定 诱变菌株发酵产甘露醇的较优条件。
保证基础发酵培养基中其余成分不变,将果糖质量浓度设置成 50g/L、100g/L、150g/L和200g/L。在初始pH6.5,30℃条件下发酵72h。 研究不同碳源质量浓度对菌株发酵产甘露醇的影响,确定较优的果糖 质量浓度,后续因素实验在前一个因素的较优条件下进行。
氮源种类对菌株发酵产甘露醇的影响
确定较优果糖质量浓度后,将基础发酵培养基中的有机氮源分别 替换为蛋白胨、酵母膏、牛肉膏和酪蛋白四种单一氮源,在不改变有 机氮源的添加量(15g/L)的前提下,以基础发酵培养基中的氮源为对照, 研究不同种类的单一氮源对菌株发酵产甘露醇的影响,确定较优的单 一氮源种类。
氮源质量浓度对菌株发酵产甘露醇的影响
确定较优氮源种类后,将氮源的质量浓度设置成7.5g/L、15g/L、 22.5g/L、30g/L、37.5g/L、45g/L,研究不同氮源质量浓度对菌株发酵 产甘露醇的影响,确定较优氮源质量浓度。
发酵温度对诱变菌株发酵产甘露醇的影响
确定较优的培养基成分后,对发酵条件进行优化。将发酵温度设 置成20℃、25℃、30℃、35℃、40℃,其余发酵条件不变,研究不同 发酵温度对菌株发酵产甘露醇的影响,确定较优的发酵温度。
发酵初始pH对诱变菌株发酵产甘露醇的影响
确定较优发酵温度后,将发酵的初始pH设置成5.0、5.5、6.0、 6.5、7.0、7.5,其余发酵条件不变,研究不同发酵初始pH对菌株发酵 产甘露醇的影响,确定较优的发酵初始pH。
综合单因素的试验结果,选取影响较大的三个因素,以60h发酵 液中的甘露醇产量为响应值,根据Box-Benhnken设计原理对诱变菌株 产甘露醇的发酵条件进行优化,试验结果利用Design-Expert 8.0进行分 析。
在本发明中,上述菌体生物量采用紫外分光光度计在600nm下测 定发酵液的吸光度值。
在本发明中,甘露醇、果糖含量测定中,测定方法与前述的甘露 醇产量的测定:高效液相色谱相同,因此不再详述。
在本发明中,甘露醇转化率的计算如下:
甘露醇转化率%=X/Y×100%
式中:Y-果糖消耗量(g/L)
X-甘露醇含量(g/L)
在本发明中,甘露醇生产容量的计算如下:
生产容量g/L·h=X/Y
式中:Y-发酵时间(h)
X-甘露醇含量(g/L)
如图6所示,以果糖的质量浓度(g/L)为横坐标,峰面积为纵坐标 绘制标准曲线,在0.625~10g/L范围内,果糖的质量浓度与峰面积的线 性关系良好,拟合度高。线性回归方程为y=268711.4708817x– 1531.6026667相关系数R2=0.9999996。
从图7中可以看出,95-9在0~4h处于迟缓期,4~16h处于对数期, 16h后进入稳定期,pH值起初时随着时间的延长不断下降,进入稳定 期后,保持平稳不变。适宜的接种龄有利于菌株的后期发酵和目标产 物的合成,一般来讲,接种龄以菌株生长对数期的后期为宜。从生长 曲线可以看出,95-9的对数期的后期在12~16h,故确定柠檬明串珠菌 95-9的接种龄为12h。
在本发明中,不同碳源质量浓度下,菌株发酵过程中的甘露醇和 果糖含量变化如图8的a部分和b部分所示。随着发酵时间的延长, 甘露醇的含量整体呈上升趋势,果糖的含量整体呈下降趋势,48h后趋 于平稳,说明菌株在早期生长阶段将果糖转化为甘露醇,在发酵后期 不消耗生成的甘露醇。发酵60h时,不同碳源质量浓度对甘露醇产量 的影响如表4所示。
表4碳源质量浓度对甘露醇产量的影响
注:同行肩标字母相同表示差异不显著(P>0.05),大写字母不同 表示差异极显著(P<0.01),小写字母不同表示差异显著(P<0.05),下表 同。
从表中可以看出,随着碳源质量浓度的升高,甘露醇的产量、果 糖转化率和生产容量呈先上升后下降的趋势,当浓度为150g/L时,三 项指标达到最大值,均显著高于其它浓度(P<0.01)。随着浓度继续升高, 甘露醇的产量下降,这可能是由于过高的果糖浓度抑制了菌株的生长, 从而导致果糖向甘露醇的转化降低。故确定较优的碳源质量浓度为150g/L。
在本发明中,不同氮源种类下,菌株发酵过程中的甘露醇和果糖 含量变化如图9的a部分和9的b部分所示。其变化趋势同碳源质量 浓度。发酵48h时,不同氮源种类对甘露醇产量的影响如表5所示。
表5氮源种类对甘露醇产量的影响
比较四种单一氮源对诱变菌株的甘露醇产量、果糖转化率和生产 容量的影响,蛋白胨组的甘露醇产量和生产容量显著高于其它组 (P<0.01),虽然酪蛋白组的果糖转化率显著高于其他组(P<0.01),但该 组的甘露醇产量和生产容量显著低于其它组(P<0.01)。综上所述,选择 蛋白胨为培养基中的有机氮源成分,并对蛋白胨的质量浓度做进一步 的优化。
在本发明中,不同氮源质量浓度下,菌株发酵过程中的甘露醇和 果糖含量变化如图10的a部分和b部分所示。其变化趋势同碳源质量 浓度。发酵60h时,不同氮源质量浓度对甘露醇产量的影响如表6所 示。
表6氮源质量浓度对甘露醇产量的影响
由表可知,菌株的甘露产量与生产容量随着氮源质量浓度的升高 而升高,当浓度高于30g/L时,各组间差异不显著;菌株的果糖转化率 整体呈下降趋势,浓度高于22.5g/L时,各组间差异不显著。当浓度为 30g/L时,虽然甘露醇的产量和生产容量未达到最大值,但甘露醇的产 量较最大值仅低了7.24%,影响不大,且此浓度下菌株的果糖转化率较 其后两组略有升高,因此考虑到成本问题,确定较优的氮源质量浓度 为30g/L。
在本发明中,不同温度条件下,菌株发酵过程中的甘露醇和果糖 含量变化如图11的a部分和b部分所示。其变化趋势同碳源质量浓度。 发酵60h时,不同温度对甘露醇产量的影响如表7所示。
表7发酵温度对甘露醇产量的影响
由表可知,菌株的甘露醇产量与生产容量随着温度的升高呈先上 升后下降的趋势,35℃与30℃两组间差异不显著,显著高于其它三组(P <0.01)。菌株的果糖转化率呈上升趋势,但相邻两种间差异不显著。当 温度为35℃时,菌株的甘露醇产量和生产容量最高,虽然果糖转化率 没有40℃组高,但两组间差异不显著,故确定较优的发酵温度为35℃。
在本发明中,不同发酵初始pH条件下,菌株发酵过程中的甘露醇 和果糖含量变化如图12的a部分和b部分所示。其变化趋势同碳源质 量浓度。发酵60h时,不同温度对甘露醇产量的影响如表3-5所示。
表8发酵初始pH对甘露醇产量的影响
由表可知,菌株的甘露醇产量与生产容量随着发酵初始pH的升高 呈上升趋势,pH为7.0和7.5两组间差异不显著,显著高于其它四组(P <0.01)。菌株的果糖转化率整体呈下降趋势,除pH为5.0组显著高于 其它组外,剩余五组间差异不显著。当pH为7.5时,虽然菌株的果糖 转化率不高,但甘露醇产量和生产容量显著高于5.0组,且为最高值, 故确定较优的发酵初始pH为7.5。
在本发明中,通过单因素试验对诱变菌株产甘露醇的发酵条件进 行初步优化,综合单因素试验结果,利用响应面试验,选取碳源质量 浓度(A)、温度(B)和发酵初始pH(C)这三个影响较大的因素做进一步的 优化,根据Box-Behnken优化原理进行方案设计与试验,试验因素与 水平如表9,方案组合与试验结果如表10。
表9响应面试验因素水平表
表10Box-Behnken试验设计与结果
本发明利用Design-Expert 8.0软件对表5中的数据进行二次回归 分析,得到回归模型方程为:
Y=85.72+1.46A-19.59B-1.31C-6.16AB-3.16AC-2.41BC-15.27A2-20. 59B2-10.16C2
方差分析结果如表11。
表11二次回归方程方差分析
注:**,影响极显著(P<0.01);*,影响显著(P<0.05)。
由表6可知,二次回归模型极显著(P<0.0001),矢拟项不显著,说 明该模型能有效的反应甘露醇的产量变化。模型的决定系数R2=0.998 2,说明响应值与因素之间的线性关系显著;校正决定系数R2 Adj=0.995 9,表明该模型能够反映99.59%的响应值的变化。变异系数(2.08)较低, 信噪比高(58.829>4),说明模型的可信度高。综合以上试验结果,利用该模型可以较好的对甘露醇的产量变化进行分析和预测。
从表6中可以看出,一次项B影响极显著(P<0.01),A、C影响显 著(P<0.05),其影响程度大小为:B(温度)>A(碳源质量浓度)>C(发酵初 始pH)。二次项A2、B2、C2影响极显著。交互项AB、AC和BC影响 均极显著(P<0.01),说明碳源质量浓度、温度和发酵初始pH之间的两两交互作用对菌株的甘露醇产量的影响很大。
在本发明中,碳源质量浓度、温度和发酵初始pH之间的交互作用 对甘露醇产量的影响如图13、14、15所示。观察各因素的交互作用与 响应值构成的三维空间曲面图,曲面越陡峭,则代表该因素对响应值 的影响越大。等高线的形状反应了两因素之间的交互作用的显著程度, 两因素交互作用显著,则图形为椭圆形,两因素交互作用不显著,则 图形为圆形。从响应面图中可以看出,温度和碳源质量浓度对响应值 的影响较大,发酵初始pH的影响较小,从等高线图可以看出,碳源质 量浓度与温度之间的交互作用最为显著,其次是碳源质量浓度和发酵 初始pH。
通过二次回归模型求得甘露醇产量的最大值,其发酵条件为:碳 源质量浓度157.51g/L、温度32.52℃、发酵初始pH7.49,该条件下, 甘露醇产量的预测值为90.71g/L。为验证模型的可靠性,在最佳发酵条 件下进行发酵试验,考虑到实际操作问题,将发酵条件修正为:碳源 质量浓度158g/L、温度33℃,发酵初始pH7.50,在该条件下进行5次 平行试验,最终甘露醇的产量为88.03g/L,接近预测值,说明该模型可 有效的反映各因素对响应值的变化。较优化前(83.51g/L),甘露醇的产 量提高了5.41%。
Claims (12)
1.一种高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,以甲基磺酸乙酯(EMS)作为化学诱变剂,诱变柠檬明串珠菌。
2.根据权利要求1所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,通过磷酸转酮酶途径代谢生成甘露醇。
3.根据权利要求1所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述EMS的浓度为0.5~1%的范围,处理时间为15-60分钟。
4.根据权利要求3所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述EMS处理条件为0.5%EMS,处理45min。
5.根据权利要求1所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述诱变柠檬明串珠菌经果糖的改良MRS-果糖培养基中发酵培养得到。
6.根据权利要求5所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述果糖质量浓度设置成50g/L~200g/L的范围。
7.根据权利要求5所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述发酵温度选自20℃~40℃的范围。
8.根据权利要求5所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,其特征在于,所述发酵的初始pH设置成5.0~7.5的范围。
9.根据权利要求5所述的高产甘露醇的柠檬明串株菌HM1,发酵条件为:所述果糖质量浓度157.51g/L、温度32.52℃、发酵初始pH7.49。
10.一种权利要求1至9中任一项所述的柠檬明串珠菌HM1菌株在食品医药化工中的应用。
11.一种制备甘露醇的方法,其特征在于,包括利用权利要求1至9中所述柠檬明串珠菌HM1的发酵步骤。
12.一种根据权利要求10所述的方法制备的甘露醇在食品医药化工中的应用。
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